IVÓN ANDREA BOLAÑOS-MARTÍNEZ¹ y GISELLE ZAMBRANO-GONZÁLEZ²

¹ Bióloga; Universidad del Cauca; Grupo de Investigación Biología Molecular Ambiental y Cáncer BIMAC: Cra. 4C Nº 19BN-12 Popayán, Cauca, Colombia. ivonand_30@hotmail.com. Autora para correspondencia.

² M.Sc. Departamento de Biología Universidad del Cauca. Colombia. Grupo de estudios en Geología, Ecología y Conservación-GECO-UC. Casa 237 Aída Lucia Popayán Cauca, Colombia. gzambranog@unicauca.edu.co

Recibido: 8-may-2010 - Aceptado: 23-mar-2011

La zoocría señala un mecanismo ventajoso de aprovechamiento de la diversidad por la fuerte unión entre la conservación y el desarrollo sostenible (Claro 2005). Colombia es el segundo país más rico del mundo en mariposas diurnas (Amat et al. 1999), pero se tiene poca información sobre la biología, así como sobre las condiciones de cría de diferentes especies de interés comercial. Esto es preocupante puesto que no existe un protocolo que garantice el éxito de las crías que se van a realizar en cada zona de trabajo (Constantino 1997; Prieto et al. 1999; Fagua et al. 2002; Gómez-S. y Fagua 2002; Sánchez-López 2004; Vélez-Arango 2005).

Los itóminos (Danainae: Ithomiini) o mariposas alas de cristal, son diurnas de distribución Neotropical que presentan vuelo lento y se alimentan de néctar de flores de diversas plantas (Boraginaceae y Asteraceae) de las cuales adquieren alcaloides pirrolizílicos que después son usados para atraer a las hembras (Brown 1984; Brower et al. 2006). Durante los estados inmaduros sus plantas huésped son principalmente de la familia Solanaceae (Drummond y Brown 1987). La tribu Ithomiini es objeto de estudio taxonómico, pues la mayor parte de sus especies se ven envueltas en anillos de mimetismo (Joron y Mallet 1998; DeVries et al. 1999) y los estados inmaduros han permitido un mejor conocimiento sistemático de algunos géneros como Hyalenna (Willmott y Lamas 2006), Pachacutia (Willmott y Lamas 2007) y Megoleria (Willmott y Lamas 2008).

Algunos estudios indican que las mariposas son un valioso recurso de comercialización industrial en decoración y accesorios, puesto que tienen un amplio rango de distribución y se encuentran en diferentes condiciones ecológicas (Morris et al. 1991; Parsons 1992). Para establecer sistemas de cría se ha propuesto la cría ex situ e in situ, siendo la más usada la ex situ por ser un sistema intensivo artificial que implica alta productividad (Constantino 1996). Mientras que la cría in situ se puede implementar como un método de conservación de ecosistemas (Parson 1992).

En este estudio se recurrió a un sistema de cría in situ y ex situ. La cría in situ propuesta consiste en la identificación de la planta huésped que presente postura de huevos (solitaria o gregaria), para luego cubrirla con una malla de tela cuando los individuos estén en la fase pupal, realizando allí el seguimiento del ciclo hasta que los adultos emerjan. La cría ex situ aplicada es la combinación de la cría ex situ convencional (Gómez-S. 2006) y el rancheo.

La determinación de la factibilidad de cría calculando las tasas de mortalidad y supervivencia mediante la técnica demográfica de tablas de vida (Begon et al. 1999), permite entender la dinámica poblacional de un grupo de organismos (Cividanes 2002) y estudiar algunos aspectos de la biología de los insectos, como tiempo de desarrollo y supervivencia (Kazak et al. 2002). Se presentan datos de la duración de los ciclos de vida y factibilidad de cría para dos especies del género Pteronymia, comparando la cría in situ y ex situ. Esta información es de utilidad para quien pretenda iniciar proyectos de zoocría y de conservación a corto y mediano plazo.

El estudio se realizó en la Finca Bellavista (3,2º36’40, 35356’’N 76º31’27N, 93483’’W), ubicada en el municipio de Cajibío (Cauca) a una altitud de 1900 msnm, temperatura media anual de 18,5ºC y precipitación media anual de 2260 msnm. Es clasificada como zona de vida de Bosque húmedo Premontano (bh-p) según el sistema de clasificación de Holdridge (1963). Los muestreos para coleccionar las diferentes fases de desarrollo se realizaron durante los meses de enero, febrero y marzo de 2009. Se hicieron 16 muestreos por mes, cada uno de 6h. Los huevos, larvas y pupas, al igual que las plantas huésped se coleccionaron de forma manual y se llevaron a condiciones in situ y ex situ, para el establecimiento del ciclo de vida e identificación en fase adulta.

El material se identificó a especie con la ayuda de claves, registros fotográficos y la colaboración de los especialistas Keith Willmott y Marianne Elias. Finalmente se etiquetaron los ejemplares y se depositaron en la colección de Entomología del Museo de Historia Natural de la Universidad del Cauca (MHNUC EN 10.076- EN 10.080).

Cría in situ: Se escogieron las plantas que presentaron posturas para iniciar el seguimiento de los ciclos de vida. Una vez alcanzada la fase pupal, las plantas se cubrieron con una malla de tela para evitar el escape de los adultos. Se realizó registro fotográfico cuatro veces por día y se cuantificaron los individuos para determinar la mortalidad y duración de cada ínstar.

Cría ex situ: La metodología ex situ (Prieto et al. 1999) consistió en coleccionar los parentales del medio natural y confinarlos en un vivario adecuado con plantas huésped para la ovoposición de las hembras, luego los huevos se trasladan a un laboratorio para realizar el seguimiento del ciclo y así determinar la duración exacta de cada fase. Sin embargo, no se obtuvieron posturas suficientes y se optó por combinarla con el rancheo (Gómez-S. 2006).

Se coleccionaron en el bosque individuos en diferentes fases de desarrollo y se llevaron al laboratorio de cría donde se colocaron en recipientes plásticos tapados con malla de tela y con partes frescas de la planta huésped. Para evitar la desecación de la planta huésped se roció con agua y la base de las hojas se cubrió con algodones humedecidos. En el interior de los recipientes se colocaron servilletas para facilitar la limpieza diaria y evitar el crecimiento de hongos (Gómez- S. 2006). Una vez inicia la fase pupal se trasladaron a jaulas de empupado (Gómez-S. 2006). Este tipo de cría no requiere grandes inversiones en la construcción de invernaderos debido a que la abundancia de la planta huésped para las dos especies es alta en la zona de estudio.

Para establecer la duración de cada fase se tuvieron en cuenta los cambios morfológicos a través del tiempo tales como: longitud corporal, ancho de las cápsulas cefálicas, vestigios de corion y exuvias de piel y de cápsulas cefálicas. Para determinar la factibilidad de cría in situ y ex situ se contabilizaron los individuos en cada fase, determinando la cantidad inicial y final de huevos, larvas, pupas y adultos emergidos. Al finalizar cada fase se realizó el conteo de individuos que pasaban a la siguiente fase, de este modo se calcularon las tasas de mortalidad y supervivencia. Se procesaron datos de 435 individuos de P. zerlina (Hewitson, 1855) (217 in situ y 218 ex situ) y 200 de P. medellina (Haensch, 1905) (100 in situ y 100 ex situ).

Se encontraron 200 posturas individuales de P. medellina y diez posturas gregarias de P. zerlina en el envés de las hojas de Solanum aphyodendron (Knapp, 1985) (Solanaceae). Gracias a su característica gregaria las posturas de P. zerlina, adquieren mayor valor comercial puesto que generan mayor número de individuos a partir de una postura y según Gómez- S. (2006), al colocar más larvas por recipiente, se reduce el tiempo invertido en su cuidado, minimizando los costos.

Duración de los ciclos de vida en cría in situ y ex situ: La duración promedio del ciclo de vida bajo condiciones in situ de P. zerlina es de 37 días y de 38 días bajo condiciones ex situ (Tabla 1). Para P. medellina es de 43 días bajo condiciones in situ y de 44 días bajo condiciones ex situ (Tabla 1). Este tiempo del ciclo es conveniente para los criaderos que quieren obtener individuos rápidamente. Los datos muestran que los individuos criados bajo condiciones ex situ presentan mayor duración del ciclo.

Utilizando la metodología descrita por Prieto et al. (1999) las hembras no ovipositaron en las plantas huésped, esto ocurrió posiblemente debido a la sensibilidad que presentan estas especies frente a cambios en su hábitat y su asociación con fuentes de agua, estas condiciones representan un desafío para la cría pues los vivarios deben ser acondicionados para brindar las mínimas condiciones para la fecundación y ovoposición.

Factibilidad y supervivencia: De los 435 individuos de P. zerlina criados bajo condiciones ex situ sobrevivió el 64,7% mientras 22,9% sobrevivió bajo condiciones in situ. De los 200 individuos de P. medellina criados bajo condiciones ex situ sobrevivió el 63% y bajo condiciones in situ el 42%. Constantino (1996) estima que en la naturaleza alrededor del 5% de las mariposas alcanzan el estado adulto debido a enemigos naturales, pero con el sistema de cría rancheo (ex situ) se puede lograr que un 80% lleguen a la madurez.

Los individuos de P. zerlina y P. medellina presentan una reducción en la proporción de individuos vivos durante la fase de huevo y el primer y segundo ínstar. Este fenómeno se debe a los huevos no eclosionados o por la parasitación de las larvas. Una de las variables que más influye en la cría ex situ es la humedad, debido a que algunas de las larvas quedan atrapadas en las paredes de los recipientes de cría (humedad generada por rociar agua a la planta huésped); estos resultados concuerdan con lo registrado por Calvo (1999) en la cría de Caligo atreus (Kollar, 1849) (Nymphalidae).

De acuerdo con la tasa de mortalidad (mx) y supervivencia (sx) (Tabla 2) los individuos criados bajo condiciones in situ tienen menor probabilidad de sobrevivir frente a aquellos criados bajo condiciones ex situ debido a la presencia de enemigos naturales y parasitoides en el medio (Mazanec 1987). Apanteles sp. (Hymenoptera: Braconidae, Microgastrine) se encontró como el principal parasitoide de larvas de P. zerlina. Boscán y Godoy (1982) y Anaya et al. (2005) mencionan a Apanteles como uno de los parásitos de larvas de Stenoma catenifer (Walshingham, 1912) (Stenomidae) y de Leptophobia aripa (Boisduval, 1836) (Pieridae). Además se encontraron individuos de la familia Chalcididae (Hymenoptera) parasitando pupas de P. medellina. Los parasitoides de P. zerlina y P. medellina se encontraron en larvas y pupas, por esto es recomendable coleccionar los individuos en la fase de huevo y si se coleccionan estados más avanzados mantenerlos alejados y vigilados para evitar la parasitación de todo el pie de cría (Gómez-S. 2006).

La tasa de mortalidad para la fase de pupa es baja para las dos especies (Tabla 2). La mayor parte de pupas no registraron defecto en su estructura, ni tampoco formación de hongos en su exterior; sólo el 7% de adultos presentaron malformaciones, pues no consiguieron extender las alas o no lograron emerger. De acuerdo con esto, las pupas obtenidas se podrían categorizar como sanas y convierte a P. zerlina y P. medellina en especies indicadas para la comercialización.

El sistema de cría ex situ-rancheo permitió la obtención de un mayor número de adultos, superior en un 42% para P. zerlina y 21% para P. medellina en comparación con el método in situ. Por tal razón es importante considerar este sistema de cría para proyectos de zoocría. Aunque las especies de la tribu Ithomiini son susceptibles a los cambios ambientales, P. zerlina y P. medellina pueden ser consideradas buenas candidatas para proyectos de zoocría, en especial P. zerlina por sus posturas gregarias.

A el Doctor Keith Willmott (Universidad de Florida) y a la Doctora Marianne Elias (Universidad de Cambridge) por la identificación de los ejemplares, a los profesores Bernardo Ramírez y Diego Macías por la identificación de las especies vegetales, a Patricia Mosquera y la Unidad de Microscopia Electrónica de la Universidad del Cauca, a los grupos GECO y BIMAC por su apoyo, al Museo de Historia Natural de la Universidad del Cauca. A el señor Ivan Rebolledo y Alma Castro propietarios de la finca Bellavista. A la Doctora Patricia E. Vélez, al Doctor Liodegar Martínez y al M. Sc. Carlos E. Giraldo por sus valiosos aportes. Este trabajo se realizó con el apoyo financiero de la Sociedad Colombiana de Entomología por concepto de beca de apoyo a la investigación en las Universidades Colombianas.

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