Jacqueline Barona, Rafael Otero, Vitelbina Núñez

Programa de Ofidismo/Escorpionismo, Facultad de Medicina, Universidad de Antioquia, Medellín, Colombia.

Este trabajo se realizó con el objetivo de determinar la toxicidad y las características inmunoquímicas del veneno del escorpión Tityus pachyurus y su neutralización por tres antivenenos antiescorpión producidos en Latinoamérica: Alacramyn® del Instituto Bioclón de México; el suero antiescorpiónico del Instituto Butantán de São Paulo, Brasil, y el suero antiescorpiónico del Centro de Biotecnología de la Universidad Central de Venezuela, Caracas, Venezuela. Este escorpión produjo 0,68±0,20 mg (promedio ± DE) de veneno por estimulación manual, el cual presentó una dosis letal 50% (DL50) en ratones de 4,8 mg/kg (91,3 mg/ratón de 18-20 g). Los signos de envenenamiento predominantes en los ratones fueron: sialorrea, dificultad respiratoria, sudoración generalizada, ataxia, alteraciones del comportamiento (excitabilidad, somnolencia) e hiperglicemia 3 y 24 horas después de la inyección 0,5 DL₅₀ del veneno por vía subcutánea. Para los antivenenos de México y Brasil, la dosis efectiva 50% neutralizante del efecto letal fue de 330 y 292 mg de veneno por ml de antiveneno, respectivamente. El antiveneno de Venezuela no neutralizó este efecto. Por electroforesis (SDS-PAGE) se demostró que el veneno contiene proteínas desde menos de 14 kd hasta 97 kd. Los Western blot indicaron reactividad inmunológica de los tres antivenenos con los diversos componentes del veneno, incluso las proteínas de baja masa molecular (<14 kd). Los resultados permiten concluir que el veneno de T. pachyurus es neutralizado eficientemente por los antivenenos contra picaduras de escorpiones producidos en México y Brasil.

Palabras clave: escorpión, veneno, antiveneno, Tityus pachyurus, Colombia.

The toxicity and immunochemical properties of Tityus pachyurus Pocock scorpion venom was characterized, as well as the neutralization capacity against it by three anti-scorpion antivenoms (Alacramyn®, Instituto Bioclón, México; Suero antiescorpiónico, Instituto Butantán, Sao Paulo, Brasil; and Suero antiescorpiónico, Centro de Biotecnología, Universidad Central de Venezuela, Caracas, Venezuela). The venom yield, obtained by manual milking, 680±20 mg venom, a 50% lethal dose in mice was 4.8 mg/kg (90 mg for an 18-20 g mouse). The most common symptoms of venom poisoning in mice were sialorrhea, respiratory distress, profuse sweating, ataxia, behavior alterations (restlessness, somnolence) and hyperglycemia at 3 and 24 hours after subcutaneous venom injection (0.5 LD₅₀). The neutralizing capacity of Bioclón (México City) and Butantán (Sao Paulo) antivenoms (for a 50% effective dose) was 330 and 292 mg venom/ml antivenom, respectively. The Biotecnología (Caracas) antivenom did not neutralize the lethal effect of venom. By electrophoresis (SDS-PAGE) was demonstrated that the venom contains proteins from less than 14 kd to 97 kd. The Western blots indicated immunological reactivity of the three antivenoms with most of venom components, including proteins of low molecular mass (<14 kd). The results allow to conclude that T. pachyurus venom is neutralized efficiently by anti-scorpion antivenoms produced in México and Brasil.

Key words: scorpion, venom, antivenom, Tityus pachyurus, Colombia.

Hasta la fecha, se han descrito en el mundo cerca de 1.500 especies de escorpiones ubicadas en 21 familias (1). La familia Buthidae, que constituye la familia de interés médico, está representada en Colombia por cuatro géneros: Ananteris, Centruroides, Tityus y Rhopalurus, con 35 especies, de las cuales, 29 pertenecen al género Tityus (2-7).

En Latinoamérica, los países más afectados por el escorpionismo son México y Brasil con 200.000 y 8.000 casos al año, respectivamente (8,9). Las especies de escorpiones más importantes son Centruroides spp. en México y Tityus serrulatus en Brasil (10). Los efectos neurotóxicos colinérgicos y adrenérgicos de los venenos de escorpiones se han caracterizado en humanos y en animales de experimentación, así como la capacidad neutralizante de los antivenenos específicos y la existencia de reactividad cruzada con los venenos de otras especies de la familia Buthidae que no se utilizaron en la mezcla inmunizante (8,11-16).

En Colombia no se producen antivenenos contra picaduras de escorpión y las publicaciones sobre los aspectos clínicos, epidemiológicos y toxinológicos del escorpionismo aún son escasas en el país, con carencia de estudios epidemiológicos prospectivos (2,17-19). Sin embargo, la existencia de accidentes escorpiónicos graves y de casos fatales en niños de Antioquia y Tolima, descrita por Otero y colaboradores (17), motivó la realización de un estudio prospectivo clínicoepidemiológico (2000-2001) en 5 municipios de Tolima y 10 de Antioquia. La incidencia del accidente escorpiónico fue significativamente mayor en Tolima (12,4 casos/100.000 hab/año) que en Antioquia (2,3 casos/100.000 hab/año). En el primero, el 64,1% de los accidentes fueron ocasionados por Tityus pachyurus Pocock (1897), principalmente en Ibagué, Flandes, Espinal y Melgar; el 25,6% fue por Centruroides gracilis, especie particularmente frecuente en el municipio de Ortega (20).

A partir de este hallazgo y teniendo en cuenta el desconocimiento de las características toxinológicas e inmunoquímicas de los venenos de escorpiones colombianos, se diseñó un estudio para determinar estos aspectos en el veneno de T. pachyurus (dosis letal 50%, signos clínicos y alteraciones metabólicas del envenenamiento experimental en ratones) y, además, para evaluar la capacidad neutralizante frente al efecto letal del veneno (dosis efectiva 50%) de tres antivenenos latinoamericanos producidos en otros países y la reactividad inmunológica mediante Western blotting.

Animales y veneno

Para las pruebas de toxicidad, se utilizaron ratones cepa Swiss Webster con un peso de 18 a 20 g. El veneno se extrajo por estimulación física del telson (2), con intervalos de 30 días (tres extracciones por cada ejemplar); luego, se disolvió en agua desionizada y se hizo una mezcla que se centrifugó a 15.000 g por 30 minutos a 12°C. El sobrenadante se liofilizó y se guardó congelado a -70 °C hasta su uso.

Antivenenos

Se utilizaron tres antivenenos F(ab´)2 producidos en Latinoamérica: 1) el antiveneno polivalente Alacramyn®, lote B-1 B-03, de presentación liofilizada para reconstituirse en 5 ml, con fecha de caducidad del 20 de febrero de 2005, producido en el Instituto Bioclón de México por inmunización de caballos con los venenos de C entruroides limpidus limpidus, Centruroides noxius noxius, Centruroides limpidus tecomanus y Centruroides sufusus sufusus; 2) el suero antiescorpiónico del Instituto Butantán de São Paulo, Brasil, lote 0003035/C, en presentación líquida de 5 ml, con fecha de caducidad del 2 de febrero de 2003, preparado contra los venenos de Tityus serrulatus y Tityus bahiensis, y 3) el suero antiescorpión del Centro de Biotecnología de la Facultad de Farmacia de la Universidad Central de Venezuela, lote 028, en presentación líquida de 5 ml, con fecha de caducidad de junio de 2002, producido contra el veneno de Tityus discrepans de la zona centronorte de Venezuela.

Aspectos toxinológicos

La dosis letal 50% (DL₅₀) para los ratones inoculados se determinó por medio del método de Spearman Karber (18). Para ello, se inocularon intraperitonealmente dosis variables de veneno diluido en 500 µl de solución salina en amortiguador de fosfatos (PBS), pH 7,2, a grupos de cuatro ratones por dosis. La mortalidad se registró durante 48 horas.

Para identificar los signos de envenenamiento sistémico (sialorrea, taquipnea, hiperhidrosis, etc.), se inocularon dos grupos de 10 ratones: el grupo 1 por vía subcutánea en la almohadilla plantar derecha con 1 DL₅₀ del veneno diluido en 50 µl de PBS y el grupo 2 por vía intraperitoneal con 1 DL₅₀ del veneno diluido en 500 ml de PBS. Los ratones se observaron durante 24 horas a los 15, 30 y 60 minutos y a las 3 y 24 horas. También, se determinaron las a-amilasas (U/L) (21), la glucosa (mg/dl) (22) y el calcio sérico (mg/dl) (23) a los 30 y 60 minutos, 3 y 24 horas, con los reactivos de Spinreact, S.A., Ctra. Santa Coloma, Girona (España), en grupos de 10 ratones inoculados por vía subcutánea con 0,5 o 1 DL₅₀. Se incluyeron grupos controles inoculados con PBS.

Aspectos inmunoquímicos

La concentración de proteínas del veneno se determinó por el método de Bradford modificado por Spector, con albúmina sérica bovina como estándar (24).

Para el análisis electroforético del veneno, se corrieron 50 µg del veneno total liofilizado, equivalentes a 7,6 µg de proteína, en geles de poliacrilamida (SDS-PAGE) al 15% en condiciones no reducidas (25). Para ello, se utilizó una cámara Mini-Protean II de Bio-Rad (Richmond, CA, USA). Al terminar la corrida electroforética de 60 minutos, las proteínas se detectaron con el colorante Coomassie Blue R-250. Paralelamente, se corrió un marcador de masa molecular (14,26).

Para el Western blotting, el veneno crudo separado por SDS-PAGE, como se describió anteriormente, se transfirió a membranas de nitrocelulosa durante 90 min en una cámara Mini-TransblotÒ de Bio-Rad. Las membranas se incubaron, luego, con los antivenenos descritos en una dilución de 1:250 durante toda la noche a temperatura ambiente. Se empleó como segundo anticuerpo IgG de conejo anti-IgG equina conjugada con peroxidasa en una dilución de 1:1000, incubado dos horas a temperatura ambiente y 4-Cl-1-naftol como sustrato (27).

Neutralización de la letalidad

Estos experimentos se realizaron con preincubación de veneno y antiveneno, antes de la fecha de caducidad de los tres productos. Se incubaron dosis variables de antiveneno y una dosis fija de veneno (1,5 DL50) a 37°C durante 30 minutos. Estas mezclas se inocularon, luego, por vía intraperitoneal a grupos de 4 ratones por cada dosis y se registró el número de sobrevivientes en 48 horas de observación. La dosis efectiva 50% (DE50), definida como la dosis que protege de la muerte al 50% de la población de ratones y expresada en microgramos de veneno que son neutralizados por 1 ml de antiveneno, se obtuvo mediante el método de Spearman-Karber (28,29). Se hallaron también la dosis efectiva 100% (DE100) y los tiempos de supervivencia con diferentes dosis y antivenenos, al compararlos con el grupo control que recibió solamente veneno.

Análisis estadístico

Los datos de las cuantificaciones séricas se analizaron por medio de las pruebas estadísticas de Anova y el método de Dunnett para comparar diferencias estadísticamente significativas con el control. Se utilizó el paquete estadístico Statistica 98. Los resultados se expresaron como la media ± DE. Las diferencias se consideraron estadísticamente significativas cuando a=0,05.

Aspectos toxinológicos

T. pachyurus produjo 0,68±0,20 mg de veneno por estimulación física del telson (n=31 especímenes, promedio ± DE de tres extracciones por cada ejemplar) con límites de 0,3 y 1,0 mg veneno/ especimen/extracción. La DL₅₀ por vía intraperitoneal en ratones fue de 4,8 µg/kg (91,3 mg/ ratón de 18 a 20 g), con límites de confianza del 95% de 4,4 a 5,2 mg/kg. La dosis letal 100% (DL₁₀₀), definida como la dosis de veneno que ocasionó la muerte al 100% de los ratones inoculados, fue de 5,3 mg/kg (100,4 µg/ratón de 18 a 20 g).

Aspectos inmunoquímicos

Neutralización de la letalidad

Los antivenenos de México y Brasil neutralizaron eficientemente el efecto letal del veneno de T. pachyurus.

La DE₅₀ para el antiveneno Alacramyn® de México fue de 330 µg de veneno/ml de antiveneno, con límites de confianza del 95% de 260 a 410 µg/ml. Para el antiveneno de Brasil, fue de 292 µg de veneno/ml de antiveneno, con límites de confianza del 95% de 230 a 370 µg/ml. La DE100 para los mismos antivenenos fue de 225 µg de veneno/ml de antiveneno, es decir, que para neutralizar 1,0 mg de veneno se requieren 4,4 ml de antiveneno (aproximadamente, una ampolla de 5 ml). No se pudo determinar la DE₅₀ del antiveneno de Venezuela por su baja potencia. Sin embargo, éste aumentó el tiempo de supervivencia de los ratones (75 min) al compararlo con el grupo control (£60 min) que recibió sólo veneno (1,5 DL₅₀ intraperitoneal=137 µg/ratón de 18-20 g de peso).

El veneno de los escorpiones está compuesto principalmente por proteínas básicas de baja masa molecular (neurotoxinas) que se han aislado e identificado por cromatografía, electroforesis y ensayos de competición (8). Éstas actúan sobre canales iónicos dependientes del voltaje (principalmente, Na⁺, Ca⁺⁺, K⁺ y Cl^-) en membranas excitables (tejido nervioso, glandular y muscular); modifica su permeabilidad iónica, las despolariza y produce liberación de neurotransmisores en las terminaciones posganglionares del simpático y del parasimpático. El cuadro clínico del envenenamiento depende de la predominancia de los efectos adrenérgicos o colinérgicos, o de la combinación de ambos (17,31,32).

La producción promedio de veneno para T. pachyurus fue muy similar a la descrita para otras especies de escorpiones del grupo T. asthenes como T. fuhrmanni de Colombia (33). Su DL₅₀ (4,8 mg/kg) permite clasificarlo como moderadamente tóxico al compararlo con venenos de escorpiones de la misma familia de alta toxicidad como C. noxius de México (0,26 mg/kg) y Tityus serrulatus de Brasil (1,2 mg/kg), y de baja toxicidad como T. cambridgei de Brasil (12 mg/kg) (8,14). Los signos de envenenamiento observados en los ratones, coinciden con los efectos inducidos por venenos de otros escorpiones de la familia Buthidae tanto en animales de experimentación como en seres humanos (8,13,30,33,34).

El veneno es de rápida absorción, acorde con los hallazgos de otros estudios (33-36), puesto que desde los primeros 15 a 30 minutos se observaron signos de envenenamiento tales como sialorrea, disnea y excitabilidad. El envenenamiento producido luego de la inyección del veneno por vía intraperitoneal fue mucho más rápido e intenso que por vía subcutánea y, además, se presentó hiperhidrosis, lagrimación y muerte; esta última ocurrió en 1-3 horas con 1 DL50 por vía intraperitoneal. El veneno también es de rápida eliminación, puesto que en los ratones sobrevivientes los signos fueron desapareciendo después de las primeras 2 a 3 horas posinoculación.

Uno de los signos de envenenamiento sistémico escorpiónico es la hiperglicemia (17,13,20,37). El veneno de T. pachyurus indujo esta alteración metabólica en los ratones a dosis bajas (0,5 DL₅₀), pero no cuando se inyectó 1 DL₅₀ por vía subcutánea, observación que se reprodujo al repetir el experimento y para la cual hasta ahora no tenemos una explicación objetiva. Además, es importante resaltar que este veneno no produjo aumento de amilasas séricas a dosis moderadas (1 DL₅₀) en ratones, efecto que tampoco se apreció en víctimas humanas picadas por esta especie en el departamento de Tolima, en el estudio clínicoepidemiológico prospectivo que se realizó recientemente (20). Sin embargo, hemos observado elevación de amilasas séricas en pacientes picados por escorpiones del mismo grupo como T. asthenes en Antioquia, en los cuales se ha demostrado por tomografía o ecografía abdominal, pancreatitis edematosa aguda o hemorrágica; esta complicación también se ha descrito en picaduras por otras especies de escorpiones de los géneros Tityus y Centruroides en Latinoamérica (17,20).

No obstante, el antiveneno de Venezuela prolongó el tiempo de supervivencia de los ratones en los experimentos de neutralización in vivo, mediante preincubación de veneno y antiveneno, y se logró hallar la DE₅₀ y la DE₁₀₀ para los antivenenos de México y Brasil (DE₁₀₀=225 µg de veneno/ml, es decir, que 1 mg de veneno es neutralizado por 4,4 ml de antiveneno).

En diversos estudios se ha demostrado que existe reactividad cruzada entre un antiveneno monoespecífico o polivalente y los venenos de escorpiones de otras especies del mismo género o de géneros diferentes de la misma familia (14-16). El hallazgo de una buena potencia neutralizante en los antivenenos de Brasil y México, producido este último contra especies del género Centruroides, podría explicarse por la conservación a lo largo de la evolución de la mayoría de los determinantes antigénicos de las toxinas de venenos de escorpiones de la familia Buthidae; se han encontrado similitudes en su estructura primaria y tridimensional (41).

Al Instituto Bioclón S.A. de C.V., México, al Instituto Butantán, São Paulo, Brasil, y al Instituto de Biotecnología de la Universidad Central de Venezuela, por la donación de los antivenenos para el estudio. A la Universidad de Antioquia por la financiación de la investigación. A los compañeros del Grupo de Ofidismo/Escorpionismo de la Universidad de Antioquia. A los profesores Abel Díaz y Rafael Valderrama de la Facultad de Medicina de la Universidad de Antioquia.

Correspondencia:

Jacqueline Barona, Programa de Ofidismo/Escorpionismo, Facultad de Medicina, Universidad de Antioquia, apartado aéreo 1226, Medellín, Colombia.

Telefax: (57-4) 263 1914.

Recibido: 28/08/04; aceptado: 13/02/04

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