SciELO - Scientific Electronic Library Online

 
vol.36 número2Aedes aegypti en el área rural: implicaciones en salud públicaEritema necrolítico migratorio y glucagonoma pancreático índice de autoresíndice de materiabúsqueda de artículos
Home Pagelista alfabética de revistas  

Servicios Personalizados

Articulo

Indicadores

Links relacionados

  • En proceso de indezaciónCitado por Google
  • No hay articulos similaresSimilares en SciELO
  • En proceso de indezaciónSimilares en Google

Compartir


Biomédica

versión impresa ISSN 0120-4157

Biomédica vol.36 no.2 Bogotá abr./jun. 2016

http://dx.doi.org/10.7705/biomedica.v36i3.3145 

IMÁGENES EN BIOMEDICINA

doi: http://dx.doi.org/10.7705/biomedica.v36i3.3145

Virus de la influenza

Jorge Rivera 1 , Marcela Neira 2 , Ladys Sarmiento 1 , Édgar Parra 2 , María Leonor Caldas 1

1 Grupo de Morfología Celular, Subdirección de Investigación Científica y Tecnológica, Dirección de Investigación en Salud Pública, Instituto Nacional de Salud, Bogotá, D.C., Colombia

2 Grupo de Patología, Subdirección de la Red Nacional de Laboratorios, Instituto Nacional de Salud, Bogotá, D.C., Colombia

Contribución de los autores:

Jorge Rivera: selección y análisis del caso, procesamiento de las muestras para el estudio inmunohistoquímico y escritura del manuscrito

Marcela Neira: procesamiento de las muestras para el estudio inmunohistoquímico

Ladys Sarmiento: análisis del caso, revisión y edición del manuscrito

Édgar Parra: diagnóstico histopatológico mediante microscopía de luz convencional

María Leonor Caldas: revisión y edición del manuscrito

Recibido: 23/11/15; aceptado: 01/03/16


El virus de la influenza es un importante agente patógeno humano que causa infecciones respiratorias y una considerable morbimortalidad anual a nivel mundial (1,2). El virus puede circular esporádicamente durante brotes locales como parte de una epidemia estacional o puede generar una pandemia mundial. Durante las epidemias estacionales, la mortalidad se reporta principalmente entre personas muy jóvenes y adultos mayores; la Organización Mundial de la Salud estima que cada año se presentan entre tres y cinco millones de casos de enfermedad grave y de 250.000 a 500.000 muertes en el mundo (3,4). Las pandemias de influenza se presentan cuando se produce un reordenamiento genético del virus ( antigen shift ) que da lugar a una variante antigénicamente novedosa para la cual no hay anticuerpos en la población. Hasta la fecha se han reportado pandemias en 1918, 1957, 1968 y 2009, las cuales causaron la muerte de 60 millones de personas, aproximadamente (5-8).

El virus de la influenza pertenece a la familia Orthomixoviridae y comprende tres tipos (A, B y C), cuyas diferencias radican en la base de un antígeno soluble (antígeno S) que se asocia con la ribonucleoproteína interna del virión; el tipo viral puede diferenciarse a partir de las propiedades biológicas de las proteínas proyectadas en la superficie de la envoltura, las glucoproteínas hemaglutinina (H) y neurominidasa (N) (9), diferenciación que da lugar a 15 subtipos de H y nueve subtipos de N. Sin embargo, solo tres subtipos de la hemaglutinina (H1, H2 y H3) y dos subtipos de la neurominidasa (N1 y N2) se han establecido en la población humana (10).

El diagnóstico clínico de la infección por el virus de la influenza es presuntivo, por lo cual se requiere la confirmación por el laboratorio. Los métodos tradicionales de diagnóstico incluyen el aislamiento viral o la serología (11,12), la detección del genoma viral mediante la hibridación in situ o PCR de transcripción inversa en tiempo real ( real-time reverse transcriptase PCR , rRT-PCR) para evaluar la expresión génica en los tejidos y células (13,14,15), y la detección de antígenos mediante anticuerpos monoclonales y policlonales en los tejidos fijados con formol e incluidos en parafina utilizando métodos inmunohistoquímicos (16-18).

Uno de los principales tipos de células que el virus infecta son las células ciliadas del epitelio bronquiolar, como se ilustra en la figura 1. En este tipo celular, la localización de los antígenos virales en el epitelio bronquiolar está asociada a la presencia de los receptores ácido siálico y galactosa a-2,6. Estos receptores son reconocidos por la hemaglutinina de la partícula viral que media la formación del endosoma en la célula huésped (19,20), y se encuentran distribuidos principalmente en el epitelio bronquiolar y en menor medida en las áreas alveolares (21).

Conflicto de intereses

Los autores declaramos que no existen conflictos de intereses.

Financiación

Este trabajo fue financiado por la Dirección de Investigación en Salud Pública del Instituto Nacional de Salud.

Correspondencia: María Leonor Caldas, Avenida calle 26 N° 51-20, Bogotá, D.C., Colombia Teléfono: 220 7700; extensión 1262 mcaldas@ins.gov.co

Referencias

1. Schnitzler SU, Schnitzler P. An update on swine-origin influenza virus A/H1N1: A review. Virus Genes. 2009;39:279-92. http://dx.doi.org/10.1007/s11262-009-0404-8        [ Links ]

2. Taubenberger J, Morens D. The pathology of influenza virus infections. Annu Rev Pathol. 2008;3:499-522. http://dx.doi.org/10.1146/annurev.pathmechdis.3.121806.154316        [ Links ]

3. World Health Organization. Influenza (seasonal). Fact sheet N° 211, March, 2014. Fecha de consulta: 14 de octubre de 2015. Disponible en: http://www.who.int/mediacentre/factsheets/fs211/en.         [ Links ]

4. Barker W, Mullooly J. Pneumonia and influenza deaths during epidemics: Implications for prevention. Arch Intern Med. 1982;142:85-9. http://dx.doi.org/10.1001/archinte.1982.00340140087016        [ Links ]

5. Michaelis M, Doerr HW, Cinatl J Jr. An influenza A H1N1 virus revival - pandemic H1N1/09 virus. Infection. 2009;37: 381-9. http://dx.doi.org/10.1007/s15010-009-9181-5        [ Links ]

6. Sullivan SJ, Jacobson RM, Dowdle WR, Poland GA. 2009 H1N1 influenza. Mayo Clin Proc. 2010;85:64-76. http://dx.doi.org/10.4065/mcp.2009.0588        [ Links ]

7. Craighead J. Influenza viruses. En: Craighead J, editor. Pathology and pathogenesis of human viral disease. First edition. St. Louis: Academic Press; 2000. p. 35-46.         [ Links ]

8. Instituto Nacional de Salud. Semana epidemiológica número 18 de 2010. Boletín Epidemiológico Semanal del 2 al 8 de mayo de 2010. Bogotá, D.C.: INS; 2010.         [ Links ]

9. Hinrichs S, Harrison C, Haggerty S. Viral diseases. En: Damjanov I, Linder J, editors. Anderson´s pathology. Tenth edition. St. Louis: Mosby Yearbook Inc.; 1996. p. 922-3.         [ Links ]

10. Nicholson K, Wood J, Zambon M. Influenza. Lancet. 2003; 362:1733-45. http://dx.doi.org/10.1016/S0140-6736(03)14854-4        [ Links ]

11. Teichtahl H, Buckmaster N, Pertnikovs E. The incidence of respiratory tract infection in adults requiring hospitalization for asthma. Chest. 1997;112:591-6. http://dx. doi.org/10.1378/chest.112.3.591        [ Links ]

12. Mäkelä MJ, Nikkari S, Meurman O, Laine M, Arvilommi H. Virus-specific, antibody-secreting cells during upper respiratory infections. J Med Virol. 1995;47:416-20.         [ Links ]

13. Guarner J, Shieh W, Dawson J, Subbarao K, Shaw M, Ferebee T, et al . Immunohistochemical and in situ hybridization studies of influenza A virus infection in human lungs. Am J Clin Pathol. 2000;114:227-33. http://dx.doi.org/10.1309/HV74-N24T-2K2C-3E8Q        [ Links ]

14. Cheon S, Chae C, Lee Y. Detection of nucleic acids of porcine reproductive and respiratory syndrome virus in the lungs of naturally infected piglets as determined by in-situ hybridization. J Comp Pathol. 1997;117:157-63.         [ Links ]

15. World Health Organization. CDC protocol of real time RT-PCR for influenza H1N1. Geneva: WHO Fecha de consulta: 19 de noviembre de 2015. Disponible en: http://www.who.int/csr/resources/publications/swineflu/realtimeptpcr/en/.         [ Links ]

16. Haines D, Waters E, Clark E. Immunohistochemical detection of swine influenza virus in formalin-fixed and paraffin-embedded tissues. Can J Vet Res. 1993;57:33-6.         [ Links ]

17. Vincent L, Janke B, Paul P, Halbur P. A monoclonal antibody–based immunohistochemical method for the detection of swine influenza virus in formalin-fixed, paraffin-embedded tissues. Vet Diagn Invest.1997;9:191-5. http://dx.doi.org/10.1177/104063879700900214        [ Links ]

18. Guarner J, Paddock C, Shieh W, Packard M, Patel M, Montague J, et al . Histopathologic and immunohisto-chemical features of fatal influenza virus infection in children during the 2003-2004 season. Clin Infect Dis. 2006;43:132-40. http://dx.doi.org/10.1086/505122        [ Links ]

19. Rogers G, Paulson J. Receptor determinants of human and animal influenza virus isolates: Differences in receptor specificity of the H3 hemagglutinin based on species of origin. Virology. 1983;127:361-73.         [ Links ]

20. Gagneux P, Cheriyan M, Hurtado-Ziola N, van der Linden E, Anderson D, McClure H, et al . Human-specific regulation of alpha 2-6-linked sialic acids. J Biol Chem. 2003;278: 48245-50. http://dx.doi.org/10.1074/jbc.M309813200        [ Links ]

21. Nelli R, Kuchipudi S, White G, Pérez B, Dunham S, Chang K. Comparative distribution of human and avian type sialic acid influenza receptors in the pig. BMC Vet Res. 2010;6:4. http://dx.doi.org/10.1186/1746-6148-6-4        [ Links ]

Creative Commons License Todo el contenido de esta revista, excepto dónde está identificado, está bajo una Licencia Creative Commons