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Revista de la Universidad Industrial de Santander. Salud

Print version ISSN 0121-0807

Rev. Univ. Ind. Santander. Salud vol.48 no.1 Bucaramanga Jan.Apr. 2016

http://dx.doi.org/10.18273/revsal.v48n1-2016008 

DOI: http://dx.doi.org/10.18273/revsal.v48n1-2016008

Evaluación del efecto citotóxico
de una resina dental a base de
siloranos sobre fibroblastos L929

Milena Guerrero F.1, Claudia X. Maya C.1, Maricela Vallejo L.1

1. Universidad Cooperativa de Colombia, Pasto, Colombia
Correspondencia: Maricela Vallejo Labrada. Dirección: Facultad de Odontología, Universidad Cooperativa de Colombia, calle 18
No.47-150, piso 1 bloque A. Correo electrónico: maricela.vallejo@campusucc.edu.co. Teléfono: +057 2-7336706.
Recibido: Enero 1 de 2015 Aprobado: Septiembre 1 de 2015


Forma de citar: Guerrero Flórez M, Maya Cerón CX, Vallejo Labrada M. Evaluación del efecto citotóxico de una resina dental a base de siloranos sobre fibroblastos L929. Rev Univ Ind Santander Salud. 2016; 48(1): 71-80.


RESUMEN

Introducción: Las resinas dentales basadas en siloranos, son el resultado de la unión química de siloxanos y oxiranos. Dentro del proceso de evolución de las resinas, se han modificado sus formulaciones para optimizar sus propiedades físicas, mecánicas y estéticas. Sin embargo, aún presentan problemas como la contracción de polimerización, problemas alérgicos y toxicológicos. Objetivo: Determinar el potencial efecto citotóxico de las resinas a base de siloranos sobre la viabilidad celular en un cultivo de fibroblastos de la línea L929. Metodología: Se estudió la exposición de fibroblastos de ratón L929 a resinas dentales a base de siloranos Filtek p90 y metacrilatos Filtek p60 en tres tiempos de fotocurado durante 6 días. Se evaluó el efecto sobre la viabilidad celular mediante pruebas de exclusión vital, micrografías electrónicas y composición elemental de superficie (Mg, Na, K y Ca) por ESEM/EDAX. Resultados: La resina Filtek p90 mostró un mayor efecto citotóxico a tiempos de fotocurado prolongados (20 segundos o más) respecto a la resina Filtek p60. El efecto resultó más marcado para 20 segundos de fotocurado, ya que las concentraciones de Ca y K en la superficie celular fueron las más afectadas. Conclusiones: La resina dental Filtek p90 ejerce un efecto citotóxico relativamente bajo sobre las células de fibroblastos L929 (p <0.01). Su uso en la práctica odontológica se puede considerar bioseguro, pero un tiempo de fotocurado prolongado con la resina dental a base de siloranos puede afectar significativamente la viabilidad de los tejidos dentales.

Palabras clave: citotoxicidad, viabilidad celular, Fibroblastos, Microscopía electrónica de barrido.

Evaluation of the cytotoxic effect of a
silorane-based dental resin on fibroblasts L929

ABSTRACT

Introduction: The resins dental based on siloranes, are the result of chemical bonding between siloxanes and oxiranes. In the process of evolution of the resins, they have changed their formulations to optimize their physical, mechanical and aesthetic properties. However have problems as polymerization shrinkage, allergic and toxicological problems. Objective: determine the potential cytotoxic effect of siloranes based resins on cell viability in cultured fibroblast line L929. Methodology: The exposure of mouse L929 fibroblasts to commercial dental resins based on either, methacrylate Filtek P60 or silorane Filtek P90 for three curing times was assessed throughout 6 days. Its effect on the cell viability was determined by vital exclusion tests, electron micrographs and ionic composition (Mg, Na, K and Ca) by ESEM/EDAX. Results: The dental resin Filtek p90 displayed a higher cytotoxic effect for prolonged curing times (20 seconds or more) than the resin Filtek P60. Moreover, such an effect was stronger at 20 seconds of curing, as long as the concentration of Ca and K on the cell’s surface were the more affected. Conclusions: The dental resin Filtek p90 exerts a relatively low cytotoxic effect on L929 fibroblast cells (p < 0.01), and then, its use can be considered biologically safe in practical dentistry but a prolonged curing time of the silorane-based resin could significantly affect the viability of dental tissues.

Keywords: cytotoxicity, cell viability, Fibroblast, Scanning Electron Microscopy.


INTRODUCCIÓN

Las resinas dentales compuestas han evolucionado significativamente desde que se introdujeron los materiales en la industria odontológica1. Las resinas compuestas disponibles en el mercado tienen una base común en la polimerización de radicales libres de metacrilatos2. El alto volumen de contracción de resinas dentales basadas en acrilatos, se constituyó en la fuerza promotora para el desarrollo de materiales que contengan una matriz orgánica más ventajosa3. En el año 2007, la casa comercial 3M, introdujo al mercado la resina dental Filtek p90 a base de siloranos, cuya molécula es un producto de la reacción de las moléculas de oxirano y siloxano. El sistema de siloranos tiene una menor contracción de polimerización respecto a las típicas resinas basadas en dimetacrilatos debido a la reacción de curado epóxido que involucra la apertura del anillo oxirano. Algunas ventajas del uso de resinas a base de siloranos son el menor deterioro y pérdida de color de los dientes, menor riesgo de fractura y como consecuencia menor posibilidad de infecciones y caries de los dientes restaurados. Además, estas resinas han demostrado buenas propiedades mecánicas 0,94-1,5% en volumen y fuerza de contracción, comparable con las obtenidas con resinas a base de metacrilatos.

Las investigaciones más recientes en el área odontológica y de los materiales dentales se han concentrado especialmente en la matriz de relleno, las propiedades mecánicas y estéticas4. Algunas investigaciones han establecido que varios composites son liberados a partir de matrices polimerizadas de solventes orgánicos e inorgánicos, algunos de los cuales producen efectos adversos in vitro5. En este sentido, los composites contienen resinas oxirano/poliol que al ser fotocuradas con luz visible han mostrado una resistencia a la compresión comparable con aquellos materiales restaurativos de uso clínico basados en la química de los acrilatos3. En un estudio clínico sobre color marginal, la resistencia de compresión ha demostrado ser inferior que la de un composite nanohíbrido1.

Por su parte, los estudios sobre compatibilidad biológica y citotoxicidad son una herramienta eficaz para garantizar el uso de biomateriales; los ensayos in vitro son útiles para evaluar los efectos de los biomateriales a nivel celular, no requieren animales de experimentación y tienen una buena relación costo/efectividad. Para determinar la compatibilidad y bioseguridad de un material se puede evaluar el comportamiento de células vivas en un ambiente controlado, analizando características del crecimiento celular, alteración de la membrana, replicación y transcripción de ADN, síntesis de proteínas, hormonas y enzimas, metabolismo energético, transformación celular, mutagénesis y carcinogénesis.

Entre las pruebas más usadas para evaluar la permeabilidad celular y consecuente daño a nivel de membrana tras el uso de materiales dentales, se utiliza con frecuencia la prueba de exclusión vital con azul de tripan, la cual, se basa en la incapacidad de las células vivas parar incorporar dicho colorante, penetrando tan solo en las células muertas cuya membrana plasmática está alterada6. Para análisis de ultraestructura a nivel de superficie celular, se han utilizado metodologías tales como Microscopía electrónica de barrido (Scanning Electron Microscopy-SEM) y Microscopía Electrónica de Transmisión (Transmission Electron Microscopy- TEM) para obtener imágenes en tres dimensiones. SEM y la microscopia de fuerza atómica (Atomic Force Microscopy-AFM), también resultan complementarias en el análisis morfológico por imágenes.

En general, son muy pocas las investigaciones desarrolladas y reportadas en la literatura odontológica respecto a biocompatibilidad de resinas dentales a base de siloranos. Algunos hallazgos sobre efectos biológicos de oxiranos con base en mecanismos genéticos han sido contradictorios. Con la resina Cyracure TM UVR-6105 se ha reportado un test de Ames negativo en cepas de prueba de Salmonella TA1007. Existen evidencias experimentales de que algunos epóxidos reactivos son inductores más potentes de aberraciones cromosomales en células de organismos superiores. En contraste, se han encontrado mutaciones inducidas de genes por varios oxiranos en cepas de Salmonella TA100 y TA102, pero no se han detectado efectos con siloranos5.

Las resinas dentales tradicionales a base de metacrilatos, han demostrado tener un gran efecto citotóxico sobre una variedad de cultivos celulares; ésta razón junto con la importancia de garantizar el uso de materiales seguros, biocompatibles y con la mínima citotoxicidad para los tejidos que se encuentran en contacto directo con el material, permitieron buscar una mejor aproximación del efecto citotóxico que las nuevas resinas a base de siloranos puedan ejercer en células de fibroblastos y conllevó al desarrolló del presente estudio en condiciones de laboratorio donde se analizó la resina Filtek p90 sobre la viabilidad celular de fibroblastos de ratón de la línea celular L929.

METODOLOGÍA

Descripción. El presente estudio se desarrolló dentro de la línea de investigación en Biomateriales de la Facultad de Odontología de la Universidad Cooperativa de Colombia- Sede Pasto. En esta investigación se evaluó el efecto citotóxico de la resina dental a base de siloranos 3M™ Filtek™ P90 in vitro. Para todos los análisis se realizó la exposición directa de fibroblastos de la línea celular L929 - ATCC CCL-1 a las resinas a base de siloranos Filtek p60 y Filtek p90 3M™. Se analizó la viabilidad a través de una prueba de exclusión vital, desarrollada en el laboratorio de Microbiología de la Universidad Cooperativa de Colombia - Pasto, así como también el daño morfológico y la alteración en la composición elemental de potasio (K), magnesio (Mg), sodio (Na) y calcio (Ca) sobre la superficie celular de fibroblastos L929 expuestos a resina mediante ESEM/EDAX. Ésta última prueba se llevó a cabo en el laboratorio de física del plasma de la Universidad Nacional de Colombia - Manizales.

Diseño experimental. El ensayo de citotoxicidad se realizó en placas de poliestireno de 24 pozos, donde se depositó un botón de resina Filtek p90 y Filtek p60 más un volumen de medio DMEN que contenía una cantidad inicial aproximada de 7,5 x 105 células/ml células de fibroblastos L929 ATCC CCL-1 por un tiempo de 6 días. Se evaluaron los factores experimentales: tiempo de fotocurado (0, 10 y 20 segundos) y tipo de resina (p90 y p60). Las variables respuesta analizadas fueron el porcentaje de viabilidad y de composición elemental de Ca, Mg, Na y K. De todos los ensayos (E) se tomaron muestras cada 24 horas por triplicado para un total de 42 muestras analizadas en la prueba de viabilidad y 18 mediante EDAX.

Cultivo celular. El cultivo de fibroblastos L929 ATCCCCL1 se obtuvo de la colección de cultivos celulares de la Fundación in vitro, Cali-Valle. Las células de la línea L929 fueron cultivadas en condiciones estándar bajo los protocolos descritos por Takashima8. Todos los procedimientos de mantenimiento y cultivo se desarrollaron bajo estrictas condiciones de asepsia y bioseguridad.

Preparación de células de Fibroblastos L929. Para obtener la monocapa y la cantidad inicial de células a utilizar en los ensayos de citotoxicidad, a partir del cultivo celular previamente descrito se tomó una botella de cultivo de 24 horas con 50 ml de medio con fibroblastos en confluencia total, se descartó la totalidad del medio de cultivo y se lavó la monocapa tres veces con 1.0 ml de Buffer Salino Fosfato (PBS) estéril. Se hizo una tripsinización y se adicionó 1 ml de medio de crecimiento consistente en medio DMEN (Dulbecco- Sigma) suplementado al 10% con Suero Fetal Bovino (SFB) (GIBCO). Para colectar las células, se trasvasó el contenido de la botella a un tubo de plástico (Biologix) de 15 ml y se centrifugó a 2500 rpm x 5 minutos. Al terminar este tiempo, se descartó el sobrenadante y se lavó el pellet 3 veces con PBS estéril, se adicionaron 5 ml del medio de crecimiento, se llevó a incubación por 12 horas con atmósfera de 5% de CO2 a 37 °C, posteriormente se realizó el conteo y ajuste de la densidad celular.

Preparación de la resina sobre placas de poliestireno. Se tomaron 0,15g de resina Filtek p90 y Filtek p60 y se depositaron sobre un moldeador estéril en forma de botón con fondo plano y superficie convexa. Se polimerizaron con lámpara LED radii plus SDI con una intensidad mayor a 1000 mWatts/cm2, en el modo no rampa. Exposición de las células de fibroblastos L929 a las resinas. Se realizó en placas de poliestireno de 24 pozos, (Biologix). Una vez transferidos los botones de las resinas a cada pozo de las placas de cultivo se adicionó un volumen de 0,5 ml de cultivo ajustado a la densidad celular requerida y se completó con 1,5 ml de medio DMEN (Dulbecco- Sigma) para un volumen de cultivo final de 2.0 ml en cada pozo. La incubación se realizó por 6 días a 37°C, 5% de CO2 y atmósfera humidificada. Tabla 1.

Prueba de viabilidad por exclusión vital. Se tomaron muestras cada 24 horas por duplicado para un total de 42, se utilizó la coloración azul de tripan para determinar la densidad celular inicial y para la determinación del porcentaje de viabilidad9.A partir de una dilución 1:10 preparada con 1 μL de la suspensión celular en 9 μL de azul de tripán, se depositó en cámara de Neubauer y se observó con microscopio óptico OHAUS con el objetivo de 40, se realizó el conteo y se obtuvieron los datos de viabilidad en número de células/ml. Para calcular el porcentaje de viabilidad se utilizó la fórmula: % viabilidad= (# de células viables / # total de células) x 100). Para estimar el porcentaje de mortalidad se utilizó la fórmula: % mortalidad = (# total de células muertas / # total de células) x 100. Y el número total de células se obtuvo así: # total células = Promedio Células x 10 x Vol x 10000, siendo 10 una constante; vol el volumen de 100 μL depositado en la cámara de conteo y 10000, el factor de dilución).

Procesamiento de muestras para el ESEM/ EDAX. Se seleccionaron 18 muestras para su análisis, siguiendo los procedimientos y recomendaciones de preparación para ESEM descritos en Current Protocols10. Se analizaron muestras de resinas expuestas a las células directamente y muestras de células suspendidas en medio de cultivo líquido (no expuestas).

Fijación de material para EDAX. Se sumergieron portaobjetos de 0,7 mm de diámetro en ácido nítrico 5 M por 15 minutos a temperatura ambiente, en cámara extractora de aire. Se decantó el ácido nítrico y se lavó 10 veces con agua doblemente destilada. Se decantaron todos los remanentes de agua antes del lavado final. Se lavó cada portaobjetos dos veces con metanol y se colocaron en cajas de petri estériles.

Fijación de células con glutaraldehido para EDAX. A 0.15 ml de suspensión celular se adicionaron 1.35 ml de glutaraldehido al 2.5% precalentado y se mezcló suavemente por inversión. Se sellaron los tubos con parafina y se incubaron por 2 horas a 37°C, con agitación suave de 100 rpm en agitador automático.

Se obtuvo el pellet de células por centrifugación durante 5 min a 2500 rpm y temperatura ambiente. Se removió el sobrenadante completamente con una pipeta y resuspendió el pellet de células completamente en 1 ml de PBS pH 7.4. Este procedimiento se repitió una vez más. Luego del segundo lavado, se removió el sobrenadante y se resuspendieron las células en 20 μL de PBS pH 6.0.

Deshidratación y Secado de las muestras fijadas. A las muestras fijadas previamente se les realizó una serie de lavados con etanol al 25%, 50%, 75%, 90% y 100%, incubando por 20 minutos a temperatura ambiente en cada grado de etanol. Las muestras se secaron en horno a 80°C durante 4 horas. Finalmente, se procedió a recortar con asa bisturí el fondo de cada pozo y se llevaron al análisis por ESEM/EDAX.

Análisis por ESEM/EDAX. Las muestras se llevaron al equipo de ESEM, al cual se aplicó vacío y enfriamiento con Nitrógeno líquido -196°C. Se tomaron micrografías en 40x, 180x y 1400x de aumento. Los espectros EDAX se obtuvieron tras realizar un barrido a nivel de superficie celular. Se tomaron 3 espectros por cada muestra, los resultados se obtuvieron en porcentaje de peso atómico (%At) y se graficaron para establecer tras este tiempo de exposición, las células mayormente afectadas.

Análisis de resultados. Con los resultados de la prueba de exclusión vital se calculó el porcentaje de viabilidad con el promedio de tres réplicas por tratamiento. Se obtuvo el número de células totales y se calculó el porcentaje de viabilidad y de mortalidad con base en el promedio de células vivas y células muertas respectivamente. Posteriormente, se aplicó una prueba F de normalidad al 95% de significancia, análisis unidimensional y análisis de varianza. Los resultados de composición elemental obtenidos por EDAX se determinaron para cada elemento mediante la razón pico/fondo. El análisis del porcentaje de los elementos Mg y Ca se realizó por separado y el análisis de los elementos K/Na se realizó utilizando el cociente de ambos. Para el análisis de estos resultados se tuvo en cuenta la función de transporte celular a través de la membrana en la cual participan estos elementos químicos.

RESULTADOS

Mediante el uso de la tinción de exclusión vital, se verificó la morfología compatible con las células de estudio. Se observaron células alargadas, fusiformes, móviles, sin coloración azul aparente, por lo cual se garantizó la viabilidad del cultivo para los ensayos posteriores.

Los resultados de la prueba de viabilidad obtenidos durante los 6 días del ensayo de exposición de las células de fibroblastos L929 a las resinas dentales Filtek p90 y Filtek p60 muestran que la mortalidad en todos los casos fue baja. Todos los datos fueron obtenidos por triplicado para cada tratamiento durante los 6 tiempos de seguimiento. Tabla 2.

El análisis unidimensional mostró todos los resultados de los siete ensayos (E1-E7), ajustados a una distribución normal dado que los valores de la asimetría tipificada y el coeficiente de Curtosis se encontraron dentro del rango esperado (-2,+2). En el análisis de varianza para la comparación de medias, no se encontraron diferencias estadísticamente significativas en los resultados de viabilidad entre los ensayos E1-E7.

Si se comparan los resultados del ensayo E7 correspondiente a células de fibroblastos L929 sin exponer a resinas dentales, cuya prueba de viabilidad no presentó diferencias significativas respecto a los ensayos con células expuestas, se puede considerar un bajo efecto citotóxico de las resinas sobre las células estudiadas.

Al comparar la exposición de cada una de las resinas sobre la viabilidad celular, existe un efecto en promedio menor con p60 y con p90 en ausencia de fotocurado. Por otro lado, la combinación de la resina Filtek p90t20 evidencio un mayor efecto sobre la viabilidad celular respecto a los tratamientos p90t10 y p90t0. Figura 1.

El análisis de composición elemental por ESEM/ EDAX se obtuvo a partir de muestras de células fijadas en placas de vidrio. Para confirmar la adhesión de las células de fibroblastos L929 a la resina dental, se tomaron microfotografías de la resina con las células adheridas y se encontró que p90t20 fue el tratamiento que más efecto tuvo sobre la composición iónica analizada.

Los resultados de composición elemental de Na, K, Mg y Ca se obtuvieron en porcentaje de peso molecular (Wt) y peso atómico (At). Con los resultados de %At se construyeron gráficas de composición de Mg, Ca, K y Na, así como también del cociente de K/Na con el fin de establecer la relación existente entre la variación de estos iones respecto al daño de la membrana celular evidenciado a través de la prueba de exclusión vital. A las 24 horas del ensayo la composición elemental de Ca está significativamente baja en el tratamiento p90t20 respecto a los demás tratamientos. Figura 2A.

Es de tener en cuenta que la variación en la composición de Ca permite explicar el tipo de muerte celular, para este caso asociada a la exposición de las células a la resina a base de siloranos. Los iones de calcio tienen un papel significativo en una amplia variedad de actividades celulares, entre ellas la contracción muscular, división celular, secreción, fecundación, transmisión sináptica, metabolismo, transcripción y movimiento celular. La concentración de iones calcio en un compartimiento celular particular está bajo el control de la actividad reguladora de bombas de Ca y canales iónicos para Ca que se localizan dentro de las membranas que rodean el compartimiento11.

Respecto al ión Mg, presenta una clara disminución en el tratamiento con la resina Filtek p60t0 a base de metacrilatos, mientras que en los tratamientos con la resina a base de siloranos se mantiene constante durante todo el experimento en los tres tiempos de fotocurado. Cabe mencionar que la disminución de Mg es afín con el descenso en la concentración de ATP, fenómeno que algunos autores lo han relacionado con procesos de muerte celular por necrosis12,13. Además es un elemento presente dentro de las células tanto en citoplasma como en membranas mitocondrial y plasmática y tiene un importante papel como cofactor de muchas enzimas implicadas en el metabolismo de las células, sin embargo, el análisis en este estudio se ve limitado debido a que el "screening" por EDAX se realizó solamente a nivel de la superficie de celular.

En el índice de K/Na, se puede evidenciar que con el tratamiento p90t0 se ve más afectado el equilibrio de estos dos iones, considerados importantes en el transporte a nivel de la membrana celular. Figura 2B.

La concentración típica de K dentro de una célula de mamífero es cercana a 100 mM, mientas que fuera de la célula es solo de 5mM. Por consiguiente, existe un intenso gradiente de concentración de K a través de la membrana plasmática que favorece la difusión de K hacia afuera de la célula. Los iones de Na también se distribuyen en concentración desigual a ambos lados de la membrana plasmática, pero el gradiente es opuesto respecto a la concentración de K, ya que la concentración de Na es cercana a 150 mM fuera de la célula y de 10-20 mM a nivel intracelular.

El índice de K/Na, fue significativamente más bajo en los tratamientos p90t0 y p60t10. El estudio del índice de K/Na que según Roomans14, constituye uno de los criterios más sensibles y confiables de viabilidad celular, muestra para los tratamientos p90T0 y p60T10 la menor variación en la composición iónica, lo que corresponde con una menor pérdida de la viabilidad, a su vez, el desbalance entre estos dos elementos químicos, algunos autores lo han relacionado con procesos proapoptóticos celulares13.

El descenso en los niveles de K está asociado principalmente a procesos de muerte celular por apoptosis, proceso que en muchas células es normal y hasta necesario cuando cumplen con un ciclo de vida y funciones particulares, aunque también es un mecanismo para la eliminación de células anormales.

Con base en los anteriores resultados se realizó un seguimiento a los tratamientos que presentaron las mayores variaciones es decir, p90t0, p90t20, p60t10 y se construyeron gráficas para evaluar el efecto del tratamiento en dos tiempos de seguimiento. Se muestra que los iones K y Mg, disminuyeron con el tiempo de exposición a la resina dental y tiempo de fotocurado de 20 segundos, y el ión Ca presenta un ligero incremento con el tiempo de exposición a la resina dental. Figura 3. Comportamiento diferente al observado para las células sin exposición, las cuales mantuvieron sus concentraciones iónicas estables durante todo el tiempo de experimentación.

Estos resultados podrían dar indicios de eventos proapoptóticos que permitirían explicar el incrementado efecto citotóxico que tuvo la combinación p90t20, respecto a la células sin exponer a materiales dentales o aún expuestas pero con tiempos cortos de 10 segundos o incluso sin fotocurado.

Con microscopía electrónica de barrido en ambiente ESEM, los fibroblastos disminuyeron su tamaño y perdieron su morfología característica, esto puede deberse además de lo explicado anteriormente a una disminución en la capacidad para producir el colágeno.

DISCUSIÓN

La línea celular L929 (fibroblastos de ratón), ha sido ampliamente utilizada en estudios de biocompatibilidad de materiales odontológicos15,16 y es además la línea celular recomendada en las normas ISO 10993-5 para estudios in vitro17. El uso de cultivos celulares como parte de las pruebas recomendadas para evaluar el comportamiento biológico de los materiales al ser puestos en contacto con los tejidos humanos, se considera relativamente simple, reproducible, efectivo y de fácil manipulación18,19,20.

La lesión ocasionada por el efecto de biomateriales de uso odontológico a nivel celular, puede tener como objetivo los organelos celulares tales como las mitocondrias (responsables de la respiración celular), los ribosomas (síntesis proteica), el retículo endoplasmático (inducción enzimática y biodegradación) y las lesiones de núcleo (replicación del ADN)21.

Sin embargo, en este estudio se utilizó la prueba de exclusión vital con azul de tripán, un método colorimétrico que permite realizar una aproximación cuantitativa de sobrevivencia/viabilidad, en la cual la pérdida de viabilidad evidenciada en aquellas células que incorporan el colorante es un indicativo de daño a nivel de su membrana22. En este sentido, los valores de supervivencia celular en todos los grupos superaron el 90%, estos resultados podrían explicarse en parte porque en este estudio el fotocurado de las resinas se realizó con lámpara de fotopolimerización de luz de emisión de diodos (LED).

En diferentes estudios realizados sobre fotopolimerizacion con lámpara LED han mostrado notables ventajas con respecto a las lámparas halógenas convencionales, lámparas de arco de plasma y lámparas de cuarzo de tungsteno, tales como una mejor calidad en la polimerización, una estructura interna del material más estable y una menor generación de calor, además de ventajas de tipo técnico como un mayor tiempo de vida útil (superior a 10.000 horas), mayor resistencia a los impactos, recalentamiento y vibración23,24, 25,26.

El tiempo de exposición de las células a los materiales dentales, es un importante factor descrito en la literatura que influye sobre el grado de toxicidad de las resinas compuestas. En este sentido, en un estudio realizado por Ferracane y Condon27, encontraron que los efectos más tóxicos de las resinas hacia las células ocurren a las 24 horas de exposición, estos resultados se contradicen con los de otros autores en donde la máxima liberación de compuestos sin reaccionar ocurre después de este tiempo de exposición28. Con nuestros resultados, llama la atención que el efecto del tiempo de fotocurado es inverso entre Filtek p90 y Filtek p60. Es decir, aunque con Filtek p60 se afecta más la viabilidad sin fotocurado, en la medida que se aumenta el tiempo de fotocurado, disminuye ese efecto negativo sobre la viabilidad, mientras que para p90 es inverso, es decir, sin fotocurado se afecta la viabilidad celular en menor grado que con los 20 segundos de fotocurado.

Cuando el cultivo es expuesto a las resinas sin fotopolimerizar (p90T0 y p60T0), se observa que con la resina en base a metacrilatos Filtek p60, se presenta una mortalidad celular más alta, esto podría ser debido a que el mecanismo de polimerización de estas resinas es por radicales libres y se ha comprobado que una polimerización inadecuada o un bajo grado de conversión afecta la biocompatibilidad. Diferentes estudios comprueban que cuando el porcentaje de conversión de monómeros aumenta, la toxicidad celular disminuye29. Sin embargo, el porcentaje de monómeros sin reaccionar después de la polimerización inicial es más bajo en los nuevos materiales, aunque aún no existe una conversión total durante la polimerización, los efectos citotóxicos dependen de la permeabilidad dentinaria o grosor de la dentina remanente que son factores no controlables por parte del operador30,31,32.

Estudios in vitro han mostrado que la reacción de polimerización nunca es completa y los efectos adversos son debidos a la liberación de monómeros no polimerizados como el TEDGMA - BISGMA O UDMA. En otros estudios co-monómeros TEDGMA han sido identificados como los principales componentes que son liberados dentro de un medio acuoso causando citotoxicidad e inhibiendo el crecimiento celular en las primeras horas después de la polimerización inicial33,34. En cuanto a la resina Filtek p90 sin polimerizar se observa que la citotoxicidad es mínima, esta resina tiene un método de polimerización distinto, el estudio del método de polimerización por apertura de anillos y su relación con el nivel de celularidad de esta resina debería ser materia de interés ya que existen muy pocos estudios al respecto.

Los resultados evidenciaron diferencias sustanciales entre las dos resinas con relación al tiempo de fotocurado y el efecto de este sobre la viabilidad; se podría decir entonces, que la resina Filtek p90 requiere tiempos de fotocurado cortos y Filtek p60 requiere tiempos de fotocurado más largos, para mantener una mayor viabilidad celular.

La pérdida en los valores de calcio como la registrada en este experimento para el tratamiento p90t20, permiten inferir que a mayor tiempo de fotocurado mayor efecto sobre la viabilidad. Los iones de Ca pueden activar o inhibir varios sistemas enzimáticos y de transporte, cambiar la permeabilidad iónica de las membranas, inducir fusión de membranas o alterar la estructura y función del citoesqueleto.

Sin embargo, el Ca precipita estas reacciones junto con diversas proteínas de unión con calcio, como la calmodulina (CaM), que se encuentra presente en células vegetales, animales, humanas y de microorganismos y cuyo papel es esencial en la función del Ca intracelular sobre todo cuando las células están expuestas a algún estímulo. El complejo Ca2+ - CaM, puede unirse con el sistema de transporte de Ca de la membrana plasmática, en cuyo caso, los niveles elevados de calcio en la membrana celular, activan el sistema encargado de liberar a la célula de cantidades excesivas del ión, lo que constituye un mecanismo de autoregulación para mantener las concentraciones intracelulares bajas de Ca tal como sucede en células en reposo o sin estímulos exógenos11.

Por otro lado, niveles bajos de Ca a nivel de la superficie celular podrían explicar una posible activación de la vía extrínseca de apoptosis en la cual varios estudios soportan la activación de oncogenes como Bcl-235, lo cual permitiría explicar otro posible mecanismo de muerte celular desencadenado en los fibroblastos por la exposición a la resina dental.

CONCLUSIONES

El tratamiento p90t20 presenta el mayor efecto citotóxico respecto a los demás tratamientos, lo cual se evidenció con los resultados de la prueba de exclusión vital y se confirmó con los análisis de composición elemental por EDAX.

El análisis de composición iónica permitió evidenciar que las concentraciones de K y de Ca son principalmente afectadas tras la exposición de los fibroblastos a las dos resinas dentales, siendo afectados en mayor grado con la resina a base de metacrilatos (Filtek P60).

Nuestros resultados evidencian que las dos resinas dentales tienen efecto citotóxico ya que en ambos casos la viabilidad se ve afectada respecto al control L929 (Células sin exposición a resina dental), sin embargo, se garantiza su uso en la práctica odontológica ya que el grado de citotoxicidad evidenciado se ajusta al permitido para materiales de uso clínico.

Hay diferencias estadísticamente significativas entre las dos resinas con relación al tiempo de fotocurado y efecto de este sobre la viabilidad; se podría decir que la resina Filtek p90 requiere tiempos de fotocurado cortos y Filtek p60 requiere tiempos de fotocurado más largos, para garantizar un menor efecto citotóxico en ambos casos.

Los resultados del análisis de composición elemental podrían sugerir un efecto citotóxico mediado por la posible activación de un mecanismo apoptótico inducido por las resinas al utilizar la combinación tiempos de fotocurado y tiempos de exposición prolongados. Sin embargo, conclusiones al respecto requieren futuros estudios.

CONFLICTOS DE INTERÉS

Los autores declaramos no tener conflicto de interés.


REFERENCIAS

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