La reproducción de los peces

La reproducción de peces en cautiverio puede ser controlada por manipulaciones ambientales, tales como el fotoperíodo, la temperatura del agua o el sustrato de desove. Sin embargo, la biología de algunos peces no es muy conocida o incluso son imposibles de simular los parámetros ambientales necesarios para el desempeño reproductivo natural. En estos casos, existen otras formas de mejorar la reproducción tales como: el uso de hormonas y la nutrición (Constantinos et al., 2010).

El uso de hormonas exógenas es una manera eficaz para inducir la maduración reproductiva. Se pueden usar como herramientas para mejorar la eficiencia de la producción de huevos, aumentar la espermiación y facilitar los procesos de incubación (Constantinos et al., 2010). Agulleiro et al., (2007), Guzmán et al., (2009), ^{Carazo et al., (2011)} y Norambuena et al., (2012) afirman que el uso de terapias hormonales aumenta el número y el volumen de huevos, pero no se mejora el desempeño reproductivo y la calidad. Por otro lado, la disfunción de los reproductores podría estar determinada por factores ambientales en etapas tempranas del desarrollo, factores abióticos y/o efectos de la selección de reproductores y en particular la nutrición (Mañanos et al., 2008 y ^{Howell et al., 2011}).

Desde hace varios años, el campo de la nutrición de peces se ha centrado principalmente en el establecimiento de los requerimientos mínimos para el desarrollo, el crecimiento y el éxito reproductivo de las diferentes especies (NRC, 2011 y Pohlenz et al., 2014). Estudios realizados por Izquierdo et al., (2001), Watanabe y Vassallo-Agius, (2003), Ling et al., (2006), Hachero-Cruzado et al., (2009) y Norambuena et al., (2012), demostraron que numerosos factores tales como la ración y la composición del alimento, influyen en parámetros reproductivos tales como el desarrollo gonadal, la cantidad y la calidad de los huevos, el éxito del desove, el porcentaje de eclosión y la calidad de las larvas producidas, debido a que se afecta la disponibilidad de los componentes bioquímicos esenciales para la gametogénesis y el control de la reproducción (Izquierdo et al., 2001 y Norambuena et al., 2012).

En la actualidad, la información sobre los requerimientos nutricionales de reproductores de especies como la tilapia, aún es escasa, especialmente en relación con lípidos (El-Sayed et al., 2008 Lupatsch et al., 2010).

Los lípidos, principalmente AGPIs requeridos en la dieta pueden ejercer su influencia sobre las actividades de desaturación y elongación, directamente a través de la modificación de la fluidez de la membrana celular o indirectamente a través de la regulación de diversos factores esenciales para la activación o represión de genes tanto de desaturasas como de elongasas importantes para la síntesis de los ácidos grasos esenciales (AGEs) (Jump et al., 1999; Jump 2002 Jaya-Ram 2008). También son importantes para otras funciones como el control de la reproducción y el desarrollo de embriones y/o larvas de peces (Izquierdo et al., 2001 y Norambuena et al., 2012). Dentro de los AGPIs, los de mayor importancia son el ácido linolénico (18:3ω-3, ALN) y el ácido linoleico (18:2ω-6, AL) también conocidos como omega-3 y omega-6 respectivamente. Ambos ácidos grasos son considerados como AGEs, debido a la incapacidad en los peces de sintetizarlos en el organismo, debiendo ser proporcionados en la dieta (Izquierdo et al., 2001 y Norambuena et al., 2012).

Estudios realizados por Furuita et al., (2003), Meunpol et al., (2005), Pérez et al., (2008) y Tocher, (2010), han demostrado que AGPIs suministrados en la dieta de peces dulceacuícolas, intervienen en la síntesis otros AGEs como el ácido araquidónico (20:4 n-6, AA), el ácido eicosapentaenoico (20:5 n-3, AEP) y el ácido docosahexaenoico (22:6 n-3, ADH), los cuales, tienen efectos positivos sobre la sobrevivencia y la calidad de la descendencia (Izquierdo et al., 2001; Watanabe y Vassallo-Agius, 2003; Muskiet et al., 2006; Pickova et al., 2007; Pérez et al., 2008; El-Sayed y Kawanna, 2008; ^{Sawanboonchun, 2009}; Lupatsch et al., 2010; Tocher, 2010; Navarro et al., 2010a; Norambuena et al., 2012 y Morais et al., 2014), además, de ser una fuente de energía metabólica que se almacena principalmente en hígado y músculo (Tocher, 2003; Cejas et al., 2004 y Norambuena et al., 2012).

Por otro lado, los AGEs, mediante la ciclación e incorporación de oxígeno molecular, actúan como precursores de los eicosanoides, un grupo de moléculas de 20 átomos de carbono de carácter lipídico, por la vía de la enzima ciclooxigenasa, tiene como metabolitos resultantes la prostanglandina E₂, la prostaciclina y los tromboxanos, y por la vía lipooxigenasa da lugar a productos como leucotrienos y a ciertos hidroxiácidos (Izquierdo et al., 2001; Watanabe y Vassallo-Agius, 2003; Pickova et al., 2007; ^{Sawanboonchun, 2009}; Simopoulos, 2011 y Janssen et al., 2014).

Los AGEs son considerados como un grupo fisiológicamente dinámico de moléculas responsables de una amplia variedad de actividades celulares incluyendo la regulación de genes, la señalización y el mantenimiento de la integridad de la membrana celular (Furuita et al., 2003 y Navarro et al., 2010). Además, de contribuir con el buen funcionamiento del sistema neural (Bell et al., 1995 y Norambuena et al., 2012), ayudan al desarrollo del cerebro y de los ojos (Brodtkorb et al., 1997 y Norambuena et al., 2012), al igual que son constituyentes de las moléculas involucradas en las redes más complejas de comunicación celular del organismo animal (Izquierdo et al., 2001; Watanabe y Vassallo-Agius, 2003; Pickova et al., 2007 y ^{Sawanboonchun, 2009}). Por otro lado, participan en la síntesis de los esteroides gonadales (andrógenos, estrógenos y progestágenos) importantes en los procesos reproductivos (^{Wade et al., 1994} y Norambuena et al., 2012).

Si bien, todos los estudios e información antes mencionados sugieren que los AGPIs de la dieta intervienen en la regulación de la reproducción de peces teleósteos, los mecanismos reales y vías involucradas aún no se conocen (Jaya-Ram et al., 2008). Por ello, es necesario comprender en detalle el papel real de los AGPIs en el proceso de la reproducción de los peces (Bell y Sargent, 2003, Subhadra et al., 2006; Karapanagiotidis et al., 2007; Teoh et al., 2011 y Wing-Keong et al., 2013).

Autores como Izquierdo et al., (2001), Bell y Sargent, (2003), Furuita et al., (2007), Wilson, (2009) y Tocher, (2010), afirman que proporciones en la dieta de ADH/AEP y AEP/AA pueden influir en la calidad de los huevos y de las larvas de muchas especies. De igual manera se ha reportado un efecto directo de la composición de ácidos grasos en la dieta de los reproductores sobre la composición de ácidos grasos en los huevos (Tocher, 2010). Estudios realizados por Vassallo-Agius et al., (2001) en reproductores de trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss), Mazorra et al., (2003) en fletán (Hippoglossus hippoglossus), Furuita et al., (2003) en lenguado japonés (Paralichthys olivaceus), Ling et al., (2006) en pez espada (Xiphophorus helleri), Furuita et al., (2007) en anguila (Anguilla japónica) y Lund et al., (2008) en lenguado común (Solea solea) reportaron que un mínimo de 1,5 a 2,0% de AGPIs en la dieta son necesarios para garantizar huevos y larvas de alta calidad.

En acuicultura, para garantizar el aporte de AGPIs en la dieta se han utilizado tradicionalmente los aceites de peces marinos. Se estima que se consume el 90% de la oferta mundial para la elaboración de alimentos balanceados debido a la expansión de esta industria, poniendo en riesgo las necesidades del mercado (Tacon y Metian, 2008, Turchini et al., 2009, Jackson y Shepherd, 2012 y Shepherd y Jackson, 2013). Por lo tanto, se hace necesario explorar nuevas alternativas para reemplazarlos, debido a la disminución de la oferta y al incremento en los costos de producción de alimentos para las especies acuícolas (Sorbera et al., 2001 y Turchini et al., 2009).

Los aceites vegetales se presentan como una alternativa viable y más rentable en comparación con aceites de pescados marinos (APM). Varios estudios han reportado que los aceites vegetales pueden reemplazar parcial o completamente los APM en las dietas de peces sin comprometer el rendimiento, el crecimiento y los demás procesos fisiológicos, esto siempre y cuando los requerimientos de AGEs no se descompensen y se conserven las proporciones de éstos en los alimentos balanceados ofrecidos (Bell et al., 2003, Fonseca-Madrigal et al., 2005, Karapanagiotidis et al., 2007, Turchini et al., 2009, Teoh et al., 2011 y Wing-Keong et al., 2013). Sin embargo, la información sobre el efecto de los aceites vegetales en relación con el desempeño reproductivo de los peces es muy poca (Wing-Keong y Wang, 2013).

Los requerimientos de AGEs varían según las especies piscícolas así; las grasas de los peces se caracterizan por su elevada proporción de ácidos grasos insaturados, tanto marinos como dulceacuícolas presentan una composición muy variable, resultando en una alta proporción de ω-3, que sobrepasa a los ω-6. La proporción ω-6/ω-3 es en peces dulceacuícolas de 0.37 (1:2.77), en peces marinos es de 0.16 (1:6.25) (Tocher et al., 2002; Seiliez et al., 2003; Karapanagiotidis et al., 2007; Teoh et al., 2011 y Wing-Keong et al., 2013). Aunque, es sabido que los peces de agua dulce usan más el ácido linoleico y los marinos más el ácido linolénico.

Aspectos endocrinos involucrados en la reproducción de peces

La reproducción de los peces puede ser más eficiente al controlar y modificar la secreción hormonal de la hipófisis a través del conocimiento de la función del eje cerebro-hipófisis-gónadas (CHG) y el papel de las gonadotropinas en la reproducción (Levavi-Sivan et al., 2010).

El inicio de la maduración sexual en peces presenta dos eventos simultáneos: la función del eje CHG, influenciado por la hormona liberadora de la gonadotropina (GnRH) (Zanuy et al., 2001; Okuzawa, 2002; Weltzien et al., 2004; Jalabert, 2005; Dufour y Rousseau, 2007 y Taranger et al., 2010), y la activación de sus receptores en las gónadas para la producción de células germinales y la síntesis de esteroides sexuales requeridos para el desarrollo de las células germinales en hembras (estrógenos y vitelogénesis), en machos (andrógenos y espermatogénesis), progestágenos y factores de crecimiento que son los efectos finales del desarrollo gonadal (Schulz et al., 2010).

Hormona liberadora de gonadotropinas (GnRH).

Igual que en mamíferos, la hipófisis de los teleósteos adultos se encuentra en una cámara ósea, posterior al quiasma óptico, justo por encima del hueso esfenoides situado por debajo del hipotálamo y conectado por un tallo corto (Frisen, 1967 y Levavi-Sivan B et al., 2010). En los peces dicha cámara ósea, se compone de fibras neurosecretoras que pasan desde el cerebro a la hipófisis, compuesta por la adenohipófisis y la neurohipófisis. La primera contiene las diferentes células secretoras de las hormonas de la hipófisis y por lo tanto representa la parte glandular de la misma. La neurohipófisis se compone principalmente de haces de fibras neurosecretoras procedentes de diferentes partes del cerebro y secretoras de diversos péptidos (Chapman et al., 2005; Pogoda y Hammerschmidt, 2007 y Zohar et al., 2010).

Desde el aislamiento de GnRH, se encontró que la estructura del gen que la codifica fue altamente conservada durante la evolución de los vertebrados y se compone de 4 exones y 3 intrones (Hildahl et al., 2011). La secuencia de codificación transcribe una proteína precursora de 92 aminoácidos (aa) que origina la GnRH y un péptido de 56 aa llamado GAP (péptido asociado con GnRH). El primer exón consiste en una región 5’ no transcrita que difiere en los ADN codificados del hipotálamo; el segundo exón codifica para el péptido señal, GnRH de 10 aa y los primeros 11 residuos de aa de GAP; el tercer exón codifica para los residuos 12 al 43 de GAP y el cuarto exón codifica para los 13 residuos de aa terminales de GAP y el restante es mRNA que no se transduce (Roch et al., 2011).

Así mismo, en varios estudios se ha reportado, que esta molécula se ha conservado desde los peces hasta el ser humano (Counis et al., 2005). Además, muestran que en vertebrados existen por lo menos cinco variantes (Counis et al., 2005 y Hildahl et al., 2011). Otras variantes fueron descubiertas más tarde en los vertebrados no mamíferos y se han visto involucradas en el control del comportamiento reproductivo (Ogawa et al., 2006; Volkoff et al., 2009 y Hildahl et al., 2011). Estudios más recientes sugieren que la GnRH está implicada en el desarrollo de las neuronas, la neuromodulación y el desempeño reproductivo (Ogawa et al., 2006; Palevitch et al., 2009 y Hildahl et al., 2013).

Por lo anterior ahora es sabido que diversas especies, contienen dos o más isoformas de GnRH. Por ejemplo, los peces teleósteos poseen tres genes que muestran distintos patrones de expresión en el cerebro (Zohar et al., 2010).

Los genes identificados en los peces teleósteos son: GnRH1 que es una forma específica de las especies de GnRH expresada y localizada principalmente en el bulbo olfativo, telencéfalo ventral y la zona pre-óptica (González-Martínez et al., 2002). GnRH2, que es una forma conservada desde los peces hasta los mamíferos, fue identificada por primera vez en el pollo (cGnRH-II) (Miyamoto et al., 1982 y Hildahl et al., 2011) y se encuentra principalmente en el tegmento del mesencéfalo. Por último, la GnRH3, que es una forma específica de la GnRH en los peces, se identificó originalmente en el salmón (sGnRH) (^{Sherwood et al., 1983} y Hildahl et al., 2011) y tiene distribución similar a GnRH1.

La diversificación funcional de estas hormonas no se entiende completamente, pero la principal hormona hipofisiotrópica en la mayoría de los teleósteos se considera que es GNRH1, debido a su expresión en el prosencéfalo ventral y a la estimulación de las principales gonadotropinas (FSH y LH). También, se ha reportado que la GnRH1 estimula la síntesis de otras hormonas de la hipófisis en algunas especies, tales como, la hormona de crecimiento (GH), la prolactina (PRL), la adrenocorticotropa (ACTH) y la somatolactina (SL), las cuales son permisivas y regulan otros sistemas fisiológicos que indirecta, pero profundamente, influencian la reproducción (Yaron et al., 2003; Aizen et al., 2007 y Constantinos et al., 2010). La molécula de la GnRH, puede sufrir cambios conformacionales que le permiten ir desde una forma completamente extendida hasta una forma altamente enrollada (Constantinos et al., 2010). Además, el análisis tridimensional de la hormona ha indicado que existe un giro B en la posición 6, que aproxima el carboxilo a la amina terminal, dicha configuración tiene una alta afinidad por los receptores de GnRH. (Carolsfeld et al., 2000 y Hildahl et al., 2011).

Debido a esto, se le atribuye a la GnRH como función principal la estimulación para la síntesis y liberación de las hormonas gonadotrópicas o GtHs en teleósteos (Imanaga et al., 2014), como en todos los vertebrados permitiendo de este modo la regulación del eje CHG, además su estimulación conduce a la gametogénesis y a la producción de esteroides en las gónadas (Roch et al., 2011)

Ácidos grasos, posibles reguladores de las hormonas gonadotrópicas

En peces al igual que en los mamíferos, el hipotálamo regula la liberación de hormonas de la hipófisis tales como las gonadotropinas a través de varias neurohormonas asociadas al eje CHG como la GnRH, el GABA (ácido gamma-aminobutírico), la PACAP (polipéptido activador de adenilato ciclasa de la hipófisis), el IGF-I, la norepinefrina, el NPY (neuropéptido Y), la kisspectina, la leptina y la ghrelina y el inhibidor de GnRH la dopamina. Además, los esteroides gonadales y péptidos ejercen sus efectos sobre éstas, ya sea directamente o a través del hipotálamo (Levavi et al., 2010).

La acción de dichas neurohormonas requiere la unión a receptores específicos anclados en la membrana plasmática de las células diana de las gónadas, donde activan una o más vías de segundos mensajeros, que conducen a la secreción de esteroides sexuales (estradiol en hembras y 11-cetotestosterona (11 -KT) en los machos) (Levavi et al., 2010).

Moberg et al., (1995), demostraron la existencia de dos gonadotropinas en peces, las llamaron GtH-I y GtH-II, estructuralmente las GTHs al igual que las de los mamíferos, son glicoproteínas heterodiméricas que en una misma especie comparten una subunidad α común unida de forma no covalente a una subunidad β específica la cual determina la especificidad biológica de la hormona (Yaron et al., 2003). Cada subunidad, α FSHβ y LHβ está codificada por un gen diferente en su secuencia de aminoácidos y conservación filogenética. El heterodímero completo α/β es capaz de unirse específicamente a su receptor, pero cada subunidad por separado es inactiva (Yaron e et al., 2003). Querat et al., (2000), clonaron las subunidades α/β de GtH-I y GtH-II y basados en su árbol filogenético, sugirieron que se deben denominar FSHβ y LHβ respectivamente.

Las GtHs FSHβ y LHβ son producidas en las células gonadotropas de la adenohipófisis (Weltzien et al., 2014), gracias a la hormona GnRH de las neuronas del hipotálamo se estimula su síntesis y liberación para después unirse a sus receptores específicos, FSHR y LHR en las gónadas, estimulando la producción de gametos masculinos y femeninos (Weltzien et al., 2004, Rocha et al., 2007 y Mittelholzer et al., 2009).

La liberación de las dos GHTs son reguladas diferencialmente durante el ciclo reproductivo, pero los detalles de los mecanismos detrás de esta regulación diferencial aún están lejos de ser claros (Padmanabhan y McNeilly, 2001 y Sharma et al., 2012). Los avances recientes indican un control diferencial de la transcripción de estos genes por factores paracrinos, así como efecto diferencial de pulsos de frecuencia de la GnRH (Bernard et al., 2010; Thackray et al., 2010; Levavi et al., 2010; Sharma et al., 2012; Thompson y Kaiser, 2014; Hodne et al., 2013).

Aunque Moberg et al., (1995); Planas y Swanson, (1995) y Levavi et al., (2010) realizaron algunos estudios en especies marinas como el salmón y expusieron que las concentraciones plasmáticas y en la pituitaria de FSHβ eran mayores que LHβ durante la vitelogénesis y en estadios iniciales de la espermatogénesis; y los niveles de LHβ eran mayores durante la ovulación y la espermiación debido a su potente acción sobre la estimulación de 17α, 20β-dihidroxi-4-pregnen-3-ona (DHP) en las etapas finales de la maduración de ovocitos, la ovulación en las hembras y la espermiación en los machos (Planas y Swanson, 1995; Yaron et al., 2003; Levavi-Sivan et al., 2010 y Aizen et al., 2012). Lo anterior ha permitido a varios investigadores concluir que los peces poseen un sistema doble de GtHs equipotentes que controlan la reproducción (Swanson et al., 1991 y Levavi-Sivan et al., 2010).

Los AGPI, mantienen niveles elevados de hormonas gonadotrópicas (FSHβ, LHβ) (Izquierdo, 2001). Achata, (1995) y Gulliver et al., (2012), explican una de las vías por la cual se manifiesta el aumento de las concentraciones de FSHβ y LHβ a partir de la suplementación con AGPI en mamíferos. Estos autores afirman que la mayoría de los ácidos grasos de la dieta son incorporados dentro de los fosfolípidos, posteriormente con un estímulo apropiado, la fosfolipasa A es activada trayendo consigo la liberación de los ácidos grasos esenciales, especialmente el AA, que inicia la formación de las prostaglandinas (PGs).

Sin embargo, autores como Aranda et al., (2002), proponen un posible mecanismo de cómo intervienen los lípidos en la reproducción de mamíferos. A partir de pregnenolona, primera hormona esteroidea derivada del colesterol y precursora de progesterona, se da origen a corticoesteroides y a hormonas sexuales (estrógenos). Al aumentar las concentraciones de estrógenos se eleva la producción de LHβ y FSHβ por estímulo en la adenohipófisis. Además, los estrógenos actúan en forma sinérgica con las gonadotropinas promoviendo crecimiento ovárico, formación de receptores de LHβ y FSHβ y actividad misma de la aromatasa, lo que explicaría el aumento preovulatorio de los niveles circulantes de estradiol. Estas hormonas también podrían desempeñar un papel central en el proceso de selección y dominancia folicular (^{Mateos, 1999}). Por otro lado, en estudios más recientes de Gulliver et al., (2012) se proponen varios mecanismos que se deben considerar al momento de examinar el efecto y vías de los AGPIs.

Estudios realizados en otras especies, reportan que dietas enriquecidas con ácidos grasos, influyen sobre la fertilidad afectando diversos elementos del eje CHG (Wathes et al., 2007). Por ejemplo, la inclusión de AGPIs a ratas in vivo aumenta la expresión de LHβ (Garrel et al., 2011) y afecta la gametogénesis. La composición de AGPIs de las membranas de las células de los espermatozoides y de los ovocitos son importantes durante la fertilización (Aitken y Baker, 1995). Las células de Leydig y de Sertoli son importantes para el metabolismo de lípidos en machos, participan en la regulación del nivel de colesterol necesario en la producción de esteroides que aseguren la composición apropiada de la membrana de los espermatozoides y garanticen los fosfolípidos para mantener la calidad de los mismos (Simopoulos, 2011, Dunning y Robker, 2012 y Janssen et al., 2014).

La acumulación de pruebas indica que la β-oxidación de los ácidos grasos en las hembras es esencial para la maduración de ovocitos y durante las primeras etapas del desarrollo del embrión, también son precursores de las prostaglandinas y esteroides, importantes en múltiples funciones reproductivas (Dunning y Robker, 2012). Autores como Hachero et al., (2013) estudiaron los resultados de la inactivación de los genes implicados en el metabolismo de lípidos (por ejemplo, LXR) o en el flujo de colesterol, encontrando que conducen a subfertilidad o esterilidad.

Regulación endocrina: ciclo reproductivo de las hembras de tilapia

En los últimos años, la tilapia se ha convertido en uno de los peces más importante en la acuicultura mundial. Esta especie se considera apropiada por las potenciales características de crecimiento, intervalo entre desoves, facilidad de desove, resistencia a enfermedades, eurihalina, soportar tenores bajos de oxígeno, altas densidades de siembra, buena rusticidad y buena calidad nutricional (Coward y Little, 2001, Matan et al., 2013 y Corinne et al., 2014). Estas características, adicionales al genoma recientemente publicado, hacen de la tilapia un modelo cada vez más popular para los estudios evolutivos, fisiológicos y desempeño productivo (Matan et al., 2013 y Corinne et al., 2014).

En la tilapia hay dos tipos de receptores de GnRH (GnRHR): GnRHR3 es el tipo de receptor para la reproducción, mientras que GnRHR1 es probablemente el tipo de receptor que se expresa en los somatotrofos, que son las células de la hipófisis que producen la hormona del crecimiento (GH), y responden a la liberación de ésta, en respuesta a la estimulación de la hormona liberadora de la hormona del crecimiento (GHRH), o a la inhibición de la somatostatina (Chen y Fernald, 2008).

Durante la vitelogénesis, las hembras de tilapia generalmente presentan aumento de los niveles de RNAm en GnRHR3 y GnRHR1 como parte de la retroalimentación positiva sobre la liberación de FSHβ, aumento de los receptores de dopamina D2 (DRD2) y aumento de las concentraciones de estradiol (E₂) (Levavi-Sivan et al., 2003; Levavi-Sivan et al., 2005) e inhibición de la liberación de FSHβ y LHβ y síntesis de LHβ como parte de la retroalimentación negativa. Al final de la vitelogénesis, hay un aumento en la síntesis y liberación de FSHβ, como parte de la preparación para una nueva generación de folículos (Aizen et al., 2007, Levavi-Sivan et al., 2006 Levavi et al., 2010).

En la maduración, las etapas incluyen: (1) aumento en los niveles de RNAm de GnRHR3 (Levavi-Sivan et al., 2004); (2) aumento en los niveles de DRD2, lo que probablemente refleja la retroalimentación negativa sobre la liberación de LH; (3) disminución en los niveles de RNAm de DRD2 concomitantes con el aumento de la GnRHR3, probablemente como parte del reclutamiento de una nueva generación de ovocitos para un nuevo ciclo; (4) aumento en la síntesis de LHβ en dosis más bajas de DHP (hacia la maduración final de los oocitos) y disminución en dosis más altas de DHP, probablemente como parte de la retroalimentación negativa, y (5) aumento en la síntesis de FSHβ en dosis más bajas de DHP como parte del reclutamiento de una nueva generación de ovocitos para un nuevo ciclo (Levavi-Sivan et al., 2006).

La síntesis y la liberación de hormonas de la reproducción en diferentes etapas de las hembras de tilapia, como modelo para estudio de la fisiología reproductiva, presentan dos picos claros de ambas gonadotropinas (FSHβ y LHβ), en la vitelogénesis y en la maduración. El primero es evidente 2-3 días después del desove, en la fase de vitelogénesis. Los niveles relativamente altos de LHβ durante la fase de vitelogénesis son concomitantes con el aumento de la FSHβ; por ello en tilapia se sugiere que la LHβ juega un papel no sólo durante la maduración final de los oocitos, sino también durante la vitelogénesis. El segundo pico es evidente justo antes del siguiente desove. El aumento de la FSHβ probablemente refleja el perfil hormonal durante el reclutamiento de una nueva generación de folículos para el próximo ciclo (Aizen et al., 2007 y Levavi-Sivan et al., 2010). En la tilapia, el nivel de 17β-estradiol, alcanza su punto máximo cuando se produce la vitelogénesis y los niveles de DHP aumentan de forma similar con los niveles de LHβ, lo que sugiere su participación en eventos de maduración final (Tacon et al., 2000 y Levavi-Sivan et al., 2010).

Partiendo de la biología reproductiva de la tilapia y apoyados en las investigaciones realizadas en múltiples especies piscícolas, se hace necesario indagar y estudiar con detalle el género Oreochromis para identificar la participación de los AGPIs en cuanto a producción de ovas y a frecuencia reproductiva, a través de la relación que tienen sobre los genes participantes en el proceso reproductivo y la identificación de la posible ruta metabólica.

Lo anterior con el objetivo de contribuir a la producción de semilla de tilapia con estándares de calidad, a través de una dieta rica en ácidos omega 3 y omega 6 que permitan mejorar su desempeño productivo y reproductivo (Simopoulos, 2011; Janssen et al., 2014). et al., 2014). Por otro lado, es importante el desarrollo de investigaciones que permitan dilucidar la ruta metabólica y los mecanismos por cuales los ácidos grasos poliinsaturados ejercen su función en la reproducción de la tilapia, mediante el uso de herramientas tecnológicas avanzadas como la proteómica.