ARTÍCULO DE INVESTIGACIÓN

Evaluación de sustratos y procesos de fermentación sólida para la producción de esporas de Trichoderma sp.

Evaluation of substrates and fermentation solid process for spores production of Trichoderma sp.

Elkin Yabid Agamez Ramos¹ , Raúl Ignácio Zapata Navarro² , Luis Eliécer Oviedo Zumaqué³ , José Luis Barrera Violeth⁴

¹ Biólogo, Investigador del Grupo de Investigación: Agricultura Sostenible, Universidad de Córdoba- Montería, elkinagamez28@yahoo.com.
² Biólogo, Investigadores del Grupo de Investigación: Agricultura Sostenible, Universidad de Córdoba- Montería, ralnacho@yahoo.com.
³ Docente investigador, Facultad de Ciencias Agrícolas, Universidad de Córdoba-Montería, jbarrera11@sinu.unicordoba.edu.co.
⁴ Docente investigador, Facultad de Ciencias Básicas e Ingenierías, Universidad de Córdoba-Montería. loviedo@sinu.unicordoba.edu.co.

Recibido: marzo 28 de 2008 Aprobado: octubre 23 de 2008

Resumen

Se evaluó un aislado nativo del hongo Trichoderma sp. en 13 sustratos y dos procesos de fermentación sólida. Se utilizaron sustratos sólidos a base de semillas de Artocarpus incisa (fruta de pan) y desechos agroindustriales como cascarilla de arroz y algodón. La mejor producción de esporas se registró en el sustrato compuesto por cascarilla de algodón (enriquecida con soluciones de melaza) y semillas de Artocarpus incisa con valores de concentración de esporas entre 2,1 x 10⁸ conidios/g, y 8,38 x 10⁸ conidios/g. Mientras que las más bajas concentraciones se presentaron en cascarilla de arroz. Los sustratos EA-5 (cascarilla de algodón enriquecida con solución de melaza 1% - Urea 1% (5:1)) y E-FP-1 (cascarilla de algodón al 60% - semillas de Artocarpus incisa, al 40%) se diferenciaron significativamente del resto de los sustratos probados por presentar las más altas concentraciones. Se seleccionaron estos dos sustratos para evaluar dos procesos de producción masiva de esporas de Trichoderma sp. utilizando los procesos de fermentación sólida: artesanal y semi-industrial, este último caracterizado por suministro de aire con presión de 2L/min. Mediante conteos de conidias/g. del polvo cosechado en cámara de Neubauer, se determinó la concentración de esporas en cada uno de los sustratos, obteniéndose concentraciones para los procesos artesanal y semi-industrial de 2,53 x 10⁹ y 2.31 x 109 conidios/g, respectivamente. Para estos procesos estadísticamente no se encontraron diferencias significativas, indicando que la aireación aplicada para el proceso semi-industrial no tuvo incidencia relevante para mejorar la esporulación con respecto al proceso artesanal.

Palabras clave: Trichoderma sp., producción de esporas, fermentación sólida.

Abstract

A native Trichoderma sp. fungus strain was evaluated in 13 substrates and two solid fermentation processes. Solid substrates based on Artocarpus incisa seed (breadfruit) were used as well as agro-industrial waste, such as rice and cotton husks. The best spore production was recorded in substrate consisting of cotton husks (enriched with molasses solution and 40% Artocarpus incisa seeds) returning 2,1 x 10⁸ spore/g to 8,38 x 10⁸ spore/g spore concentration values. While that lowest spore concentrations were presented in rice husks, EA-5 (cotton husks enriched with 1% molasses -1% urea solution (5:1) and E-FP-1 substrates (60% cotton husks - 40% Artocarpus incisa seeds) significantly differed from the other substrates tested as they presented the highest concentrations. These two substrates were thus selected for evaluating two solid fermentation-based Trichoderma sp. spore mass production processes: artisanal and semi-industrial; the latter was characterised by air being supplied at 1,6 lb/min pressure. Spore concentration was determined in each substrate by counting conidia/g. harvested dust in a Neubauer chamber, obtaining 2,53 x 10⁹ spore/g concentration for the artisanal process and 2,3 x 10⁹ spore/g concentration for the semi-industrial one. No statistically significant differences were found for these processes, indicating that the air applied for the semi-industrial process had no outstanding effect on improving sporulation regarding the artisanal process.

Key words: Trichoderma sp., spores production, solid fermentation.

Introducción

Los hongos del género Trichoderma sp. son un grupo de microorganismos que habitan naturalmente en un número importante de suelos agrícolas, con abundante materia orgánica en descomposición y altas densidades de raíces. Su desarrollo se ve favorecido por la presencia de otros hongos que atacan a los cultivos. Trichoderma sp. se encuentra ampliamente distribuido en todo el mundo en diferentes zonas de vida, además también se suelen hallar asociados a la superficie de plantas y cortezas de madera descompuesta, en diferentes zonas de vida y hábitat (Harman, 1990).

El interés científico despertado por los hongos de este género, se debe a las características antagónicas que presentan frente a hongos fitopatógenos. Entre los mecanismos de control referenciados para Trichoderma sp. está la competencia por nutrientes o espacio, el micoparasitismo y la antibiosis. Estos tres mecanismos no son excluyentes sino que actúan sinérgicamente en el control de los patógenos. La importancia relativa de cada uno de ellos depende de cada pareja de antagonismo-patógeno y de las condiciones ambientales (Harman y Kubicek, 1998; Chet et ál., 1997; Belanger et ál., 1995).

El hongo Trichoderma sp, produce tres tipos de propágalos: hifas, clamidosporas y esporas (conidias) (Papavizas, 1985). Las esporas son los más viables de los propágulos empleados en programas de biocontrol (Elad et ál., 1993). Estos cuerpos especializados se caracterizan por poseer una gruesa pared exterior, constituida por tres capas (endospora, epispora y perispora) que protegen el interior de la espora (protoplasto). Esta gruesa pared se diferencia de la pared celular de las células vegetativas del hongo (hifas y clamidosporas), las cuales son mucho más delgadas y no está formada por capas constitutivas como las esporas. La ventaja para la espora de poseer una pared celular gruesa es aislarla del medio-ambiente y permitir que sobreviva a condiciones adversas, manteniéndola en dominancia hasta que las condiciones sean propicias para la germinación. En consecuencia, las conidias son verdaderas semillas que utiliza el hongo para colonizar nuevos sustratos y, en el caso de Trichoderma sp., es la principal forma de producción comercial. La biomasa de esporas puede ser obtenida por medio de cultivos sumergidos (Elad y Kirshner, 1993), o cultivos en sustratos sólidos (Lewis y Papavizas, 1983).

Las necesidades nutricionales de Trichoderma sp. son bien conocidas, es capaz de degradar sustratos muy complejos como almidón, pectina y celulosa entre otros, y emplearlos para su crecimiento gracias al gran complejo enzimático que posee (enzimas hidrolíticas como amilasas, pectinasas, celulasas y quitinasas entre otras). Así mismo, Trichoderma asimila como fuente de nitrógeno compuestos tales como aminoácidos, urea, nitritos, amoniaco y sulfato de amonio (Moore 1996).

Por otra parte los microelementos, sales y vitaminas en grandes cantidades no son indispensables para el desarrollo de Trichoderma (Papavizas 1985). Los elementos traza requeridos para el crecimiento de los hongos en general incluyen hierro zinc, cobre molibdeno y manganeso en concentraciones muy pequeñas cercanas a 10^-9 M. Dentro de las vitaminas necesarias se encuentran tiamina (B6), piridoxina (B6), ácido nicotínico (B3), ácido pantoténico ( B5), riboflavina (B2), cianocobalina (B12) y ácido aminobenzoico (Moore, 1996).

La bioprospección de microorganismos antagonistas como Trichoderma sp. es una de las alternativas actuales para combatir hongos fitopatógenos. La versatilidad, adaptabilidad y fácil manipulación lo han convertido como uno de los antagonistas más utilizados para el control fitosanitario (Lorenzo et ál., 2000). En la actualidad Cuba es uno de los países que produce 250 toneladas de biopreparados por año, mediante capacidad instalada, que permiten proteger más de 100.000 ha (Fernández y Vega 2001).

La multiplicación de Trichoderma sp, se realiza de forma artesanal o industrial, implementando técnicas de fermentación líquida y sólida, en la fermentacion sólida se utilizan sustratos de arroz y residuos agroindustriales tales como cascarilla de arroz, paja de arroz, trigo, entre otros medios compuestos por subproductos de la industria azucarera como la melaza (Fernández y Vega, 2001). En trabajos realizados por Stefanova, M. (1995), se señala el flujo de producción de un biopreparado de Trichoderma en cultivo bifásico líquido-líquido y líquido-sólido, utilizando como medio melaza-levadura, obteniendo concentraciones de conidios de 2-3 x 10⁸ /ml, en la fermentacion liquida, y con la sólida de 2-3 x 10⁹ conidios/g.

La producción semi-industrial e industrial de Trichoderma, es una alternativa tecnológica muy eficiente desde el punto de vista productivo y económico para la obtención de biofungicidas de alta calidad, involucra procesos estandarizados con el control de variables como humedad temperatura y flujo de aireación. Este último muy importante puesto que puede mejorar la cantidad y calidad de las esporas producidas (Agosin et ál., 1997).

En Colombia, el arroz es el sustrato más utilizado para la producción de biopreparados de Trichoderma sp. a partir de procesos de fermentación artesanal e industrial. En la actualidad la empresa Sanatrade S.A. elabora un producto llamado Tricho-D el cual tiene como ingrediente activo al hongo Trichoderma harzianum, conocido como un bio-regulador y antagonista natural de los fitopatógenos, este producto es utilizado en Colombia en investigaciones para la protección de zocas del café frente al ataque de Cerotocystis fimbrata. (Castro y Rivillas, 2003).

La utilización de otro tipo de sustratos naturales para la producción de esporas de Trichoderma sp. ha sido poco estudiada en el país sólo empresas como Natural Control ubicada en la Ceja, Antioquia y Laverlam S.A., en Cali, producen toneladas de estos biopreparados utilizando arroz como sustrato base para el desarrollo y esporulación del hongo, trabajos realizados por Fernández y Vega (2001), probaron la eficiencia y viabilidad de la producción de esporas de Trichoderma sp. con subproductos de la industria azucarera de Cuba, con soportes sólidos como materiales celulósicos, atendiendo a la alta capacidad celulítica de este hongo.

La utilización de subproductos agrícolas con altos contenidos celulósicos plantea la posibilidad de reemplazar los sustratos utilizados como el arroz y el trigo, los cuales actualmente encuentran limitado su utilización por los altos costos. Así mismo, existen semillas de árboles con alto contenido de nutrientes que pueden ser utilizadas para enriquecer los sustratos, como es el caso de las semillas del árbol del pan (Artocarpus incisa), es una especie perteneciente al género de los Artocarpus, dentro de la tribu de las Artocarpeae, de la familia de las Moraceae con cientos de variedades de árboles distribuidas en zonas tropicales de Asia y Suramérica. Las semillas de los frutos del pan producidas abundantemente por el árbol son muy nutritivas. Son ricas en azucares contienen entre un 20 y 37% de carbohidratos, calcio, hierro, fósforo y niacina, y en vitaminas C y B1 (Zerega et ál., 2005).

En el departamento de Córdoba, Colombia, se producen gran cantidad de residuos agrícolas como la cascarilla de algodón (Gossypium hirsutum) y cascarilla de arroz (Oriza sativa) que pueden ser utilizados para evaluar la producción de esporas del hongo Trichoderma sp. mediante procesos de fermentación sólida artesanal y semi-industrial.

A fin de evaluar la posibilidad de producir esporas de Trichoderma sp. se planteó la necesidad de realizar ensayos con el objetivo de evaluar la viabilidad de sustratos locales y procesos de producción artesanal y semi-industrial. Con los resultados de esta investigación se contribuye con información útil para la consecución de herramientas que permitan la obtención de posibles productos agroecológicos con aislados nativos de Trichoderma sp. los cuales en futuras investigaciones se puedan experimentar en el campo para el control de plagas fúngicas en el departamento.

Materiales y métodos

El presente estudio se realizó en el Laboratorio de Fitopatología de la Universidad de Córdoba, ubicada geográficamente en el norte del municipio de Montería (Córdoba), localizada a 08º 45’ 27’’ latitud norte y con 75º 53’ 24’’ longitud oeste, a 49 msnm, temperatura promedio de 28,3 °C, precipitación anual de 1249 mm, y una humedad relativa anual que oscila entre 80 y 85% (Borrero et ál., 1996).

Obtención del aislado de Trichoderma sp.

Se utilizó un aislado de Trichoderma sp. codificado como T1 proveniente de la colección de cepas del Laboratorio de Fitopatología de la Universidad de Córdoba, el cual fue aislado en cultivos de plátano en el municipio de San Juan de Urabá (Antioquia), preservado en refrigeración a 4 °C. El aislado fue activado en medio agar papa dextrosa ((PDA) 20 gramos de D(+) glucosa, 22 gramos de extracto de papa, 15 gramos de agar), durante siete días e incubado a una temperatura de 25-28 °C.

Evaluación in vitro de sustratos sólidos para la producción de esporas.

Sustratos empleados. Para evaluar la producción de esporas de Trichoderma sp. en sustratos sólidos, se utilizaron desechos agrícolas tales como: cascarilla de arroz (Oriza sativa), cascarilla de algodón (Gossypium hirsutum) y semillas del árbol fruta de pan (Artocarpus incisa), provenientes de los cultivos presentes en los lotes de la Universidad de Córdoba.

Preparación de los sustratos. Los sustratos se trituraron hasta obtener partículas de 0,5-3,0 mm de diámetro, se colocaron en recipientes de 4 L llenos con soluciones de urea y melaza con diferentes concentraciones o humedecidos en agua destilada, manteniéndose en remojo por 2 horas, el pH se ajustó con ácido acético 10%, en un rango de 5,5-6,5 con la ayuda de un potenciómetro. Luego se eliminó el exceso de solución con la ayuda de un tamiz de 0,1 mm. Los sustratos se colocaron en fundas plásticas de 3 mm de grosor y se esterilizaron en autoclave a 115 °C a 0,75 PSI, por un periodo de 15 min; posteriormente se ajustó la humedad en un 70-80%, mediante el secado en un horno a temperatura de 70°C por un periodo de 48 horas (tabla 1). La determinación de la humedad de los sustratos se realizó con base en la pérdida de peso de la muestra.

Preparación de inóculos. Para la obtención de los inóculos, se trabajó con cultivos puros del aislado T₁ de Trichoderma sp. de 72 horas de incubación en agar PDA bajo luz blanca para favorecer la esporulación, posteriormente fueron extraídas las colonias miceliares en discos de PDA con el hongo esporulado con una concentración aproximada de 1,0-3,0 x 10⁷ conidios/disco (tabla 1).

Bioensayos in vitro. A partir de los cultivos puros se tomaron discos del aislado T1 de 0,5 cm de diámetro, para inocular cada uno de los distintos sustratos en cajas de Petri con una concentración de 1,0-3,0 x 10⁷ conidios/ml, la concentración se determinó mediante el recuento de esporas en cámara de Neubauer (improved 0,100 mm), tomando los discos con esporas y agregándolos en un tubo de ensayo con 10 ml de agua destilada esteril que contenía Tween 80 al 0,1%, esta solución madre se homogeneizó en un agitador vibratorio durante 30 segundos, se realizaron diluciones seriadas decimales con la adición de Tween 80 al 0,1% (Fernández y Vega, 1997).

Las cajas se incubaron a temperatura ambiente en fotoperiodo luz-oscuridad (12:12 horas durante) durante 7 días. Al cabo de 7 días se realizó el conteo de esporas en cámara de Neubauer siguiendo la metodología propuesta por Monzón (2001), y Fernández y Vega (1997) para el control de calidad de biopreparados de Trichoderma sp. Para esto se tomó 1,0 gramo del sustrato colonizado por el hongo (conidios más sustrato) y se adicionaron a 10 ml de agua destilada estéril con Tween 80 al 0,1%, esta suspensión se homogenizó en un agitador vibratorio durante 10 segundos y posteriormente se realizaron diluciones seriadas decimales hasta obtener la dilución apropiada (10^-3) usando agua destilada con Twen 80 al 0,1%.

Diseño estadístico. Se aplicó un diseño completamente aleatorio (DCA), con cinco repeticiones. Los datos obtenidos fueron sometidos a un análisis de varianza y prueba de Tukey, utilizando el software estadístico SAS versión 5,0 y con α = 0,05. Seleccionando de esta forma los dos mejores medios sólidos que favorecieran a la producción de esporas, para realizar los ensayos a fin de implementar los procesos de producción masiva de esporas de Trichoderma sp. mediante un método artesanal y semi-industrial.

Producción de esporas de Trichoderma sp. por los procesos artesanal y semi-industrial.

Para la evaluación de los procesos de producción de esporas se seleccionaron los dos mejores sustratos en los cuales el hongo tuviera una concentración de esporas alta y seguidamente se procedió a realizar el montaje para la producción artesanal y semi-industrial de esporas de Trichoderma sp.

Procesos utilizados para la producción de esporas. Para la producción de esporas del aislado de Trichoderma sp. se siguió la tecnología orientada por Fernández y Vega (1997), utilizando la variante de la bandeja con algunas modificaciones. Se utilizaron bandejas plásticas rectangulares de 30 x 15 cm. con capacidad para 4 kg de sustrato.

Producción artesanal. Para la producción de esporas mediante el proceso artesanal se modificaron las bandejas con orificios de 2,0 cm. de diámetro en la parte superior de uno de los lados laterales de la bandeja, en donde se insertó un tubo de PVC de 5,0 cm. de longitud acondicionado con algodón y gasa humedecida con alcohol al 95%.

Producción semi-industrial. Las bandejas del proceso semi-industrial se modificaron con un conducto de aireación también realizado con tubos de PVC de media pulgada situado en la parte inferior de la bandeja y con conexión para el suministro de aire a una bomba de acuario HIGH QUALITY modelo AC-1000 con capacidad de 2 L/min a una presión › 0,024 Mpa.

Preparación de inóculos madres (Matriz). A partir del aislado de Trichoderma sp. seleccionado y cultivado en agar PDA, se tomaron discos de 0,5 cm de diámetro y se sembraron en los sustratos seleccionados en cajas de Petri, los medios se incubaron por tres a cinco días hasta obtener colonias de buen aspecto y esporulación, de cada caja se tomaron alrededor de 2,0 a 3,0 g y se diluyeron en 50 ml de agua destilada estéril, obteniendo inóculos con concentraciones de esporas de 1,0 -3,0 x 10⁷ ufc/ml, lo cual se verificó mediante el conteo de esporas en cámara de Neubauer de 0,100 mm. A cada bandeja se le agregaron 200 g de sustrato previamente esterilizado y con una humedad del 70%. Posteriormente se inoculó cada bandeja con un volumen de 20 ml y una concentración de 1-2 x 10⁷ ufc/ml, esparciendo el inóculo con una pipeta de Pasteur por todo el medio. Las bandejas se cubrieron con plásticos herméticos y sellados por los extremos con cinta adhesiva.

Incubación y obtención de esporas. El montaje se realizó en columna ubicando tres bandejas por cada una de ellas, todo el montaje se desarrolló en un cuarto de crecimiento a temperatura ambiente (26-28 ºC) durante 8 días, una vez que el micelio hubiera cubierto y esporulado en todo el sustrato se hizo el conteo de esporas utilizando cámaras de Neubauer de 0.100 mm, para esto se tomó un gramo de sustrato fermentado en cada proceso, siguiendo la técnica propuesta por Monzón (2001) y Fernández y Vega (2003).

Evaluación estadística de los tratamientos de la fermentación sólida. Para la evaluación de los procesos implementados para la producción de esporas se aplicó un diseño completamente aleatorizado y distribuido a una prueba factorial 2x3 (dos procesos con tres medios sólidos) con tres repeticiones. Los resultados obtenidos fueron sometidos a un análisis de varianza, las medias fueron comparadas con el test de medias de Tukey con α = 0,05, utilizando el software estadístico SAS versión 5,0.

Resultados y discusión

Evaluación in vitro de medios sólidos para la producción de esporas.

Se inoculó el aislado T₁ en diferentes sustratos o medios a base de cascarilla de algodón, cascarilla de arroz enriquecidos con soluciones de melaza- urea y semillas de Arthocarpus incisa. El crecimiento del aislado (T₁) de Trichoderma sp. fue óptimo al observarse desarrollo y esporulación favorable en la mayoría de estos sustratos, principalmente en cascarilla de algodón. El crecimiento fue rápido, con formación de hifas a las 48 horas, alcanzando a cubrir toda la superficie del medio a las 120 horas, micelio denso con producción de gran cantidad de esporas (color verde claro). A los 8 días presentó concentraciones que van desde los 2,1 x 10⁸ conidios/g hasta los 8,4 x 10⁸ conidios/g, esta última obtenida en el medio EA-5 (cascarilla de algodón con solución de melaza 1% - urea 1%, 5:1). En el medio EA-2 (cascarilla de algodón con solución de urea 0,1%) no se presentó un buen crecimiento, el desarrollo del micelio fue muy lento y poco denso cubriendo todo el medio al cabo de los 10 días de inoculación, la esporulación fue muy escasa.

Los medios a base del sustrato cascarilla de arroz (CA-1, CA-2, y CA-3) presentaron las concentraciones más bajas, el crecimiento fue lento, detallándose la formación de hifas a las 96 horas con cubrimiento total de todo el medio a los 10 días, formación de un micelio fino poco denso y la esporulación no cubrió totalmente la caja de Petri, presentándose de forma irregular en pequeños brotes. En los sustratos FP-1 (semillas cocidas de Arthocarpus incisa), E- FP-1 (cascarilla de algodón más semillas cocidas de Arthocarpus incisa 3:2) y C-FP-1 (cascarilla de arroz más semillas cocidas de Arthocarpus incisa 3:2), el desarrollo fue favorable con formación de hifas a las 48 horas, micelio denso y esporulación abundante a los 6 días de inoculación.

Entre los medios que tenían semillas de Artocarpus incisa el medio E-FP-1, se obtuvieron las más altas concentraciones de esporas (7,4 x 10⁸ ufc/g.) (tabla 2). En el medio de control, con arroz, el crecimiento también fue rápido, con formación de hifas a las 48 horas, micelio denso, registrándose concentraciones de esporas de 5,1 x 10⁹ ufc/g.

Los resultados del análisis de varianza muestran diferencias estadísticas altamente significativas (P<0,01) entre los medios evaluados, indicando que al menos uno de los tratamientos estudiados presentó un valor promedio estadísticamente diferente. La prueba de Tukey de separación de medias (tabla 2) indicó que el sustrato con mayor producción de esporas fue EA-5, el cual se diferenció significativamente con respecto a los demás.

Las otras variantes probadas a partir del sustrato cascarilla de algodón enriquecidos con soluciones de melaza-urea (EA-4 y EA-6) y semillas de Artocarpus incisa (FP-1, EA-1) arrojaron también concentraciones altas. Entre éstos no se encontraron diferencias significativas, no obstante, en relación con el medio de control (arroz) existen diferencias significativas. Los medios EA-1 y EA-3 presentaron valores de concentraciones de esporas intermedias entre los medios evaluados; con relación al control no hubo diferencias significativas.

Los medios con el sustrato de cascarilla de arroz presentaron las concentraciones más bajas de esporas en los ensayos in vitro, indicando estadísticamente que no existieron diferencias significativas.

La utilización de este tipo de materiales naturales ratifica lo dicho por Miller y Churchill (1986), quienes publicaron una lista completa de sustratos derivados de la agricultura y que pueden ser utilizados para la producción de esporas de Trichoderma sp. como se puede observar en los resultados obtenidos con el medio EA-1 (cascarilla de algodón humedecido con agua destilada) confirmando la actuación de los nutrientes de este material en la esporulación del aislado (T1) de Trichoderma sp. La adición de melaza y urea al sustrato de cascarilla de algodón tuvo un efecto importante al estimular considerablemente la esporulación del aislado T₁ de Trichoderma sp. ratificando a estas sustancias como buenas fuentes de carbono y nitrógeno.

La relación carbono (C): nitrógeno (N) es esencial para las fermentaciones de hongos, de este balance en lo fundamental dependerá el que se logre la formación de los propágulos deseados. En los hongos, se necesita que la fuente C esté en exceso en el medio y el contenido de N sea el factor limitante del crecimiento, lo que desencadena el proceso esporulativo (Elósegui, 2006).

En efecto, las concentraciones de melaza al 2% en los medios como fuente de carbono sobre Trichoderma sp. ejercieron el resultado que se esperaba, es decir, una mayor esporulación; así mismo, la urea como fuente de nitrógeno en concentraciones de 1% frenó el proceso de crecimiento para dar paso a una mayor esporulación que la obtenida en los medios que presentaban concentraciones de urea al 0.1%.

Nutricionalmente la melaza presenta un altísimo contenido en azúcares e hidratos de carbono, además de vitaminas del grupo B y abundantes minerales, entre los que se destacan el hierro, el cobre y el magnesio, elementos esenciales para los requerimientos nutricionales de estos hongos como lo plantea Moore (1996).

Las concentraciones obtenidas con los sustratos de cascarilla de arroz y algodón en los diferentes sustratos probados, son similares a las obtenidas en investigaciones de reproducción de cepas de Trichoderma sp. como las realizadas por Lorenzo et ál. (2000), en las cuales, con base del sustrato de cascarilla de arroz al 30% más paja de arroz 70%, se obtuvieron concentraciones de hasta 2,3 x 10⁸ conidios/g. No obstante el sustrato de cascarilla de arroz no parece ser el más indicado para el desarrollo de estructuras reproductivas para la generación de conidióforos y conidios (esporas), como lo plantea Panazo (2001), quien en pruebas realizadas con distintos sustratos para la reproducción de Trichoderma sp. encontró que el sustrato de cascarilla de arroz resultó ser el menos indicado por su incapacidad de mantener condiciones de humedad durante el ciclo de desarrollo del hongo.

La utilización de semillas cocidas de fruta de pan (Artocarpus incisa) en los sustratos evaluados se convierte en una buena forma de mejorar la esporulación de Trichoderma sp.; la presencia de posibles sustancias como azúcares, proteínas y minerales en determinadas concentraciones estimuló considerablemente el desarrollo y la esporulación del aislado T1 de Trichoderma sp. a tal punto que en aquellas pruebas realizadas con el sustrato de cascarilla de arroz sin aditivo, se obtuvieron concentraciones más bajas de esporas que las que se obtuvieron con el medio C-FP-1 (sustrato de cascarilla de arroz con semillas de Artocarpus incisa).

A partir de los ensayos in vitro se seleccionaron los medios EA-5 y E-FP1, por presentar las concentraciones de esporas más altas, para llevar a cabo el proceso de producción de esporas por el método artesanal y semi-industrial.

Producción de esporas por los métodos artesanal y semi-industrial.

El aislado (T₁) de Trichoderma sp. se desarrolló rápidamente en las bandejas de los procesos artesanal y semi-industrial. A partir de las 24 horas se observó la formación de hifas en ambos procesos, con un micelio denso el cual cubrió toda la superficie del sustrato después de 120 horas de inoculación (figura 1), a esta instancia la esporulación alcanzó a cubrir el sustrato en un 80%. Al transcurrir los 8 días de la incubación se observó gran producción de esporas. En el proceso artesanal la producción promedio de esporas fue de 2,5 x 109 ufc/g. Mientras que para el proceso semi-industrial la concentración de esporas fue de 2,3 x 10⁹ ufc/g.

El pH de los sustratos osciló entre valores de 5 a 7,3 en ambos procesos, la aireación no afectó considerablemente el pH de los medios en el proceso semi-industrial, y éstos a su vez fueron muy similares a los encontrados en los medios del proceso artesanal. Al cabo de los 8 días de fermentación en el proceso semi-industrial la humedad varió ya que el sustrato sólido por medio de la aireación se deshidrató permitiendo así extraer el gramo de esporas con mayor facilidad. La colonización completa del micelio sobre el sustrato, la textura de este, así como la coloración de las esporas fue la misma para ambos procesos. No se observaron diferencias morfológicas en cuanto al aspecto micelial producido por los dos procesos.

El análisis de varianza resultó no significativo en la concentración de esporas obtenidas entre los sustratos (P<0,05), tampoco para los procesos implementados para la producción esporas (P<0,05), ni en la interacción de estos dos factores (tabla 3); en relación con el sustrato control tampoco se encontraron diferencias significativas con los dos sustratos experimentales en ambos procesos.

En lo que se refiere al análisis estadístico entre el proceso artesanal y el proceso semi-industrial y los sustratos sólidos donde se desarrolló y esporuló el hongo no se encontró diferencia significativa entre ellos, indicándonos que ambos procesos obtienen un buen rendimiento en cuanto a concentración de esporas, esto pudo ser debido al tipo de nutrientes implementados para estos procesos.

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