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Introducción
Streptococcusagalactiae (S. agalactiae) es una causa importante de neumonía, sepsis y meningitis con alto índice de mortalidad en neonatos. La colonización se produce por la exposición del recién nacido al microorganismo durante el parto a partir del tracto genital materno colonizado, o en el útero por vía ascendente, siendo la tasa de transmisión vertical del 50%1-4. La importancia de realizar tamización de colonización de las gestantes antes del parto, radica en definir el empleo de antibióticos profilácticos para prevenir el desarrollo de la infección. El cultivo de muestras de región perianal e introito vaginal en caldo selectivo y posterior inoculación en Agar sangre es la prueba de oro para detectar colonización por S. agalactiae5. Sin embargo, los cultivos requieren varios días para obtener resultados y tomar las medidas profilácticas adecuadas.
Los ensayos moleculares basados en detección de ADN/ARN ofrecen herramientas prometedoras más sensibles, específicas y rápidas para identificación de S. agalactiae. Se han identificado en su genoma diversos blancos moleculares específicos, como el gen cfb, que codifica el factor CAMP6, el gen scpB la peptidasa C5a7 y el gen sip, una proteína inmunogénica de superficie 10,11.: Shabayek y col en 2010, emplearon PCR para la detección los genes cfb y scpB de Streptococcus grupo B con buenos resultados8. Rasoul-Yousefi-Mashouf y col 2014, emplearon la sub-unidad ribosomal 16S rRNA, de S. agalactiae para determinar la presencia de este microorganismo en muestras clínicas9. Mientras que Nabil Abdullah El Aila y col 2011 emplearon los genes sip y cfb en qPCR a partir de muestras clínicas10. Bergseng y col 2007 emplearon el gen sip11. Entre los estudios que emplean la qPCR se encuentran; el realizado en chicago en el cual la sensibilidad y especificidad fue del 95,8%, y del 64,5%17. Atkins y col en Washington reportaron una sensibilidad y especificidad del 86,8% y 95,2%14. Young y colaboradores en Boston una sensibilidad de 90,8%; y especificidad de 97,6%.18. Empleando PCR convencional, Fabien Rallu y col en Canadá, detectaron el gen scpB y cfb y reportaron una sensibilidad de 99,6%; y 75,3%; y especificidades de 100%, para ambos genes15.
Materiales y metodos
Se realizó un estudio descriptivo prospectivo, se determinó una muestra a conveniencia de 150 mujeres gestantes, seleccionadas de forma aleatoria, en una IPS en el periodo comprendido entre Enero-Julio 2016. El protocolo fue aprobado por el comité de investigación de la IUCMA y por la IPS. Criterio de inclusión: ser gestante entre la semana 35-37 y declaración voluntaria de participación en el estudio mediante la firma del consentimiento informado y de exclusión el uso de antibióticos.
Toma, remisión y procesamiento de las muestras: A las pacientes incluidas,se les tomó muestra con hisopo del introito vaginal y de la region anal. Las muestras se procesaron simultáneamente para qPCR, cultivo en caldo selectivo con posterior siembra en agar sangre de carnero y medio cromogenico para s.agalactiaeSTRB (ChromIDTMStrepto,BioMérieuxSA.)5. Las colonias se identificaron mediante SISTEMA VITEK 2 (BioMérieux SA).
Extracción y cuantificación del ADN: Se realizó a partir de la muestra tomada con hisopo sumergida en 1 ml de solución salina, empleando el kit comercial de Promega"Wizard(r)Genomic DNAPurification Kit catA1120", siguiendo las instrucciones del fabricante. El ADN se cuantifico utilizando nanodrop 2000.
Reacción en cadena de la polimerasa en tiempo real: Para la qPCR se utilizaron los iniciadores reportados por Bergsengy cols. 20077, Las condiciones óptimas de amplificación fueron determinadas mediante PCR convencional a diferentes concentraciones de MgCl2 (2.5mM-5mM) y a temperaturas entre 50°C-55°C. La qPCR se realizó en el equipo BIORADCFX96REALTIMESISTEM C1000, con el siguiente ciclo térmico: desnaturalización a 95°C/30seg, alineamiento a 55°C/25seg y extensión final a 72°C/20seg por 39 ciclos y una curva de melting 65ºC 0:05 A 95ºC.
Estandarización, validación e implementación de qPCR: Se realizó curva de calibración empleando diferentes concentraciones de ADN de un aislamiento de S. agalactiae. Los ensayos se realizaron por triplicado. Se determinó la media , coeficiente de variación y desviación estándar. Se definió el límite de detección de DNA en 0,8 ng que corresponde a un tresthold-cicle de 28. (Figura 1) A todos productos de amplificación obtenidos por qPCR se les realizó una electroforesis convencional para confirmar la amplificación del gen blanco. La presencia de inhibidores se evaluó mediante una PCR convencional adicionando ADN de la cepa control al ADN extraído de las muestras de las pacientes.
Análisis de la información: La información fue procesada en SPSS22 (IBM, EEUU). A las variables cualitativas se les determinó frecuencias absolutas y relativas y a las cuantitativas la media, rango y desviación estándar. Para la comparación del agar cromogénico y la qPCR contra el prueba de oro se determinó la sensibilidad, especificidad, valores predictivo positivo y negativo y la precisión diagnostica, con su IC95%.
Consideraciones éticas: El proyecto fue aprobado por Comité de investigaciones de la IUCMA , garantizando el cumplimiento de los lineamientos éticos.
Resultados
De las 150 muestras tomadas, 139 fueron incluidas en el estudio. La edad promedio de las pacientes fue 26 años, (DS5,8) . El 92,4% de las pacientes eran caucásicas, el73,3% pertenecía a los niveles socioeconómicos 2 y 3, el número de embarazos de las pacientes entre 1- 4. Al evaluar los resultados con relación a estas características, observamos que la prevalencia no presentó diferencias estadísticamente significativas. La prevalencia de colonización por S. agalactiae en las gestantes fue de 20,9%(29 Muestras por prueba de oro, 22,3%(31muestras) por agar cromogénico STRB y 36% (50 Muestras) por qPCR (Tabla1).
Tabla 1 Colonización por Streptococcus agalactiae por los tres métodos evaluados
STRB: Medio cromogénico selectivo para screening de Streptococcus agalactiae.
Los resultados encontrados al comparar la qPCR con la prueba de oro fueron: sensibilidad 79,31% (IC del 95%:0,61-0,90) , especificidad 75,45% (IC del 95%:0,66-0,82), valor predictivo positivo 46% (IC del 95%:0,32-0,59) y negativo 93,2% (IC del 95%: 0,86-0,96) Tabla 2- tabla 3. Al comparar las pruebas diagnósticas qPCR y cultivo en agar cromogénico: sensibilidad 83,78% (IC: 95%: 0,69-0,92), especificidad 78,3% (IC: 95%:0,69-0,85), valor predictivo positivo 57,41% (IC: 95%:0,440,69 ) y negativo 93,2% (IC: 95%: 0,86-0,96) Tabla4 - tabla 5.
Tabla 3 Rendimiento de qPCR como prueba diagnóstica para detectar Strepotococcus agalactiae en mujeres embarazadas en comparación con cultivo como prueba de oro
Tabla 4 Colonización por Strepotococcus agalactiae empleando qPCR y agar cromogénico STRB
STRB: Medio cromogénico selectivo para screening de Streptococcus agalactiae.
Discusión
El empleo de la qPCR permitió aumentar la sensibilidad y la oportunidad diagnostica (El tiempo requerido empleando el cultivo fue de 24-48 horas y por qPCR 6 horas), lo cual impacta en la reducción de riesgos de transmisión neonatal de S. agalactiae, en las complicaciones clínicas de las gestantes y en la mortalidad de los neonatos, lo cual podría representar una disminución en días de estancia y costos hospitalarios por una infección prevenible.
Bergseng y col en 2007, reportaron una prevalencia de colonización del 35%, con sensibilidad de la qPCR frente al cultivo de 97% y especificidad del 99%11, resultados similares empleando el mismo blanco molecular (gen sip), han sido encontrados en nuestro estudio (36%). Feuerschuette y col en 2012 reportaron una prevalencia de 38,2% (21). Nabil Abdullah El Aila, en 2011 empleando los genes sip y cfb mediante qPCR directamente de las muestras, encontraron 27% de positividad frente a 22% del cultivo, una sensibilidad de 95,4%, especificidad de 84,6%, valor predictivo positivo de63,6% y negativo de 98,5% 10.
Los resultados encontrados en el presente estudio al comparar la qPCR con la prueba de oro y con el cultivo en agar cromogenico , evidencian que la qPCR presentó una mejor sensibilidad y valor predictivo positivo al ser comparado con los resultados obtenidos empleando al agar cromogenico. Los resultados del presente estudio están de acuerdo con los reportados en la literatura; en estos se reportan valores que oscilan entre el 45% y el 99% para sensibilidad y 64,5 a 99,1% para especificidad (21), sin embargo se deben buscar blancos moleculares complementarios para aumentar la sensibilidad diagnóstica y su aplicación de rutina.
Los 27 resultados positivos por qPCR con resultado negativo en cultivo, pueden explicarse por la presencia de cepas de S. agalactiae no viables o con un número de unidades de colonia muy bajo que no crecen , incluso si están en un medio a decuado. Estas cepas pueden detectarse utilizando qPCR debido a la mayor sensibilidad de este ensayo 24,21, la anterior afirmación se pudo confirmar ya que de los 27 cultivos negativos por la prueba de oro, 4 (14,8%) fueron positivos empleando el cultivo en agar cromogénico STRB. adicionalmente, tal como lo plantean El Aila N.A . et al, la menor sensibilidad del cultivo podría explicarse por la presencia de microorganismos antagonistas como Enterococcus, que inhiben el desarrollo de S. agalactiae y los organismos no viables que pueden ser detectados por PCR pero no así por cultivo 10. Los 6 resultados positivos por cultivo y negativos por qPCR (CT29,1-29,9), (tabla 6) pueden explicarse por la presencia de inhibidores de DNA en la muestra, tal como lo plantea Feuerschuette 201221, dichos inhibidores pueden ser restos de sangre, cremas vaginales entre otros.
Se requieren metodologías diagnósticas que permitan detectar la real prevalencia de colonización por S. agalactiae en nuestro medio, por lo que consideramos esencial continuar evaluando diferentes blancos moleculares como los genes cfb, cylE y scpB. Con los resultados de este estudio, podemos concluir que la qPCR aumenta la oportunidad diagnóstica y la sensibilidad en la detección de S. galactiae en muestras de introito vaginal y región perianal.
