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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[CARACTERIZACIÓN MINERALÓGICA DE LOS PRODUCTOS DE OXIDACIÓN DEL SISTEMA PIRITA-ESFALERITA POR BACTERIAS NATIVAS OXIDANTES DE Fe]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[MINERALOGICAL CHARACTERIZATION OF OXIDATION PRODUCTOS IN A PYRITE-SPHALERITE SYSTEM USING INDIGENOUS Fe OXIDIZING BACTERIA]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[A biooxidation study of sphalerite and pyrite concentrates was evaluated in a shaker experiments using an acidofile native strain, compatible with Acidithiobacillus ferrooxidans. The experiments were done to 35°C, using different proportions of pulp. Scanning electron microscopy (SEM) analysis showing grain morphologies that make evident different mechanisms of oxidation for both sulfides. After oxidation, the sphalerite looks an elemental sulphur layer, with core residues displaying embayment corrosion, indicating an active oxidizer environment. The sulphur layers showing concentrically banding, indicating several pulses of deposition. On the other hand, pyrite crystals displayed embayments and pits of corrosion, without sulphur layers. The principal products of the oxidations of both sulfides were, besides elemental sulphur, jarosite and another iron sulphate. The sequential formation of this mineral phases and the preferential oxidation of sphalerite more than pyrite was made evident.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b><font size="4">CARACTERIZACIÓN MINERALÓGICA DE LOS PRODUCTOS DE OXIDACIÓN DEL SISTEMA PIRITA-ESFALERITA POR BACTERIAS NATIVAS OXIDANTES DE Fe </font></b></font></p>     <p align="center"><font size="3"><b><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">MINERALOGICAL CHARACTERIZATION OF OXIDATION PRODUCTOS IN A PYRITE-SPHALERITE SYSTEM USING INDIGENOUS Fe OXIDIZING BACTERIA</font></b></font></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center"><b><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">DIONI MABEL ZAPATA AGUIRRE</font></b><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">    <br>   <i>Grupo de Mineralogía Aplicada, Facultad de Minas,  Universidad Nacional de Colombia, Sede</i> <i>Medellín</i> </font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>DIANA MARCELA  OSSA HENAO </b>    <br>  <i>Universidad Estadual de Campinas, UNICAMP, Brasil</i> </font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>MARCO  ANTONIO MÁRQUEZ GODOY </b><i>    <br>  Laboratorio de Biomineralogía, Universidad Nacional de Colombia,  Sede Medellín, <a href="mailto:mmarquez@unalmed.edu.co">mmarquez@unalmed.edu.co</a> </i></font></p>      <p align="center">&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Recibido       para revisar Marzo 16 de 2007, aceptado Septiembre 09 de 2007, versión  final Septiembre 16 de 2007</b></font></p>     <p>&nbsp;</p> <hr>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>RESUMEN: </b>La     biooxidación  de esfalerita y pirita fue evaluada a nivel de shaker utilizando microorganismos  acidófilos compatibles con Acidithiobacillus ferrooxidans, a diferentes porcentajes  de pulpa y temperatura de 35ºC. Análisis por SEM evidenciaron morfologías  y mecanismos de oxidación diferentes para los dos sulfuros. La esfalerita  presenta una capa de azufre elemental que bordea núcleos remanentes, los  cuales a su vez muestran golfos de corrosión, evidenciando la actividad oxidante  del medio. Las capas de azufre muestran morfologías típicas de precipitación  a partir de soluciones generadas por la lixiviación de los sulfuros presentes.  De otro lado, en la pirita la oxidación se ve reflejada en los golfos y pits  de corrosión, sin que se observen películas de azufre. Además del azufre  elemental, el principal producto generado durante el proceso fue jarosita.  La secuencia de formación de estas fases, así como la oxidación preferencial  de la esfalerita sobre la pirita fueron evidenciadas.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>PALABRAS CLAVE:</b> Biolixiviación de Zn,  biooxidación de esfalerita, mineralogía de procesos, Acidithiobacillus ferrooxidans</font></p>      <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>ABSTRACT: </b>A      biooxidation study of sphalerite and pyrite concentrates was evaluated in      a shaker experiments using an acidofile native strain, compatible with Acidithiobacillus      ferrooxidans. The experiments were done to 35°C, using different proportions      of pulp. Scanning electron microscopy (SEM) analysis showing grain morphologies      that make evident different mechanisms of oxidation for both sulfides. After      oxidation, the sphalerite looks an elemental sulphur layer, with core residues      displaying embayment corrosion, indicating an active oxidizer environment.      The sulphur layers showing concentrically banding, indicating several pulses      of deposition. On the other hand, pyrite crystals displayed embayments and      pits of corrosion, without sulphur layers. The principal products of the      oxidations of both sulfides were, besides elemental sulphur, jarosite and      another iron sulphate. The sequential formation of this mineral phases and  the preferential oxidation of sphalerite more than pyrite was made evident.</font></p>      <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>KEYWORDS</b>: Zn biolixiviation, sphalerite biooxidation,  process mineralogy, Acidithiobacillus ferrooxidans</font></p>  <hr>       <p>&nbsp;</p>      <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>1. INTRODUCCIÓN</b></font></p>      <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los procesos      de biooxidación y biolixiviación  de sulfuros son actualmente utilizados para el pretratamiento de menas refractarias  de oro, así como para la recuperación de metales de interés económico como  Cu, U, Co y Zn [1]. La biolixiviación de Zn, utilizando microorganismos acidófilos,  ha sido ampliamente estudiada, sin embargo, es evidente que aun no existe  un acuerdo sobre los mecanismos de biooxidación de la esfalerita durante  el proceso de biolixiviación del Zn, ni una teoría aceptada que explique  dicho proceso [2]. Para el sector minero es importante, tanto desde el punto  de vista económico como ambiental el conocimiento de las diferentes fases  que se forman durante estos procesos y entender la posible influencia que  tienen los productos insolubles formados en la superficie, tales como azufre  elemental, sobre la velocidad de disolución, ya que se podrían desarrollar  modelos más completos y eficientes de cinéticas de disolución de sulfuros  [3] y mejorar en gran parte el diseño y operación de plantas de lixiviación  bacteriana [4]. El principal objetivo de esta publicación es analizar los  productos formados durante el proceso de biooxidación del sistema pirita-esfalerita  y examinar las diferencias en la cinética del proceso y en la actividad de  las bacterias, desde el punto de vista de los cambios en la morfología, texturas  y composición química de los productos finales, al someter a las bacterias  a un proceso de adaptación con diferentes porcentajes de pulpa.</font></p>      <p>&nbsp;</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>2. MATERIALES  Y MÉTODOS</b></font></p>      <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El concentrado      de esfalerita y pirita utilizado para el proceso de biooxidación, fue tomado de la parte alta del distrito  minero de Marmato (Colombia). Este concentrado se obtuvo por medio de una  separación manual y fue molido a un tamaño de partícula pasante malla 150  (<i>Tyler</i>). </font></p>      <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Fueron utilizadas      cepas nativas oxidantes de hierro, compatibles con el género <i>Acidithiobacillus ferrooxidans</i>,  las cuales fueron aisladas dentro del desarrollo del proyecto de investigación  Colciencias-UN “<i>Recuperación de Zn mediante lixiviación bacteriana de  esfalerita proveniente de los residuos de la explotación aurífera en el distrito  minero de </i>Marmato, Caldas”. Los experimentos de biooxidación fueron llevados  a cabo en <i>erlenmeyers</i> de 500ml, utilizando un volumen final de 100ml,  conteniendo un 10% (v/v) de inóculo y 5ml de sulfato ferroso al 30% en un  medio 9K.</font></p>      <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Estos ensayos      fueron realizados como parte del proceso progresivo de adaptación de las bacterias a este tipo de minerales,  el cual inició con un porcentaje de pulpa de 2.5% y se llevó a cabo por un  tiempo de 16 días. Posteriormente los microorganismos fueron llevados a un  medio con 5% de pulpa durante un tiempo de 45 días y finalmente se llevaron  a un porcentaje de pulpa del 8% durante 55 días. En cada una de las condiciones  las proporciones de esfalerita y pirita fueron 1:1. Las muestras se incubaron  a 35°C, a una agitación constante de 180 +/- 10 rpm. </font></p>      <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Periódicamente se hizo un monitoreo de la cinética  del proceso mediante las medidas de pH, Eh y concentración de Zn en solución  (resultados no mostrados). Al final de cada proceso se filtró la solución  para recuperar los sólidos residuales, para así analizarlas posteriormente  por medio de microscopía electrónica de barrido (SEM), modo de observación  BSE (electrones retroproyectados). Para los análisis con SEM/EDX, se elaboraron  secciones pulidas de las muestras, las cuales fueron metalizadas con grafito  y analizadas microquímicamente utilizando un detector EDX, con un voltaje  de aceleración de 25kV y un tiempo de colecta de 120 segundos.</font></p>      <p>&nbsp;</p>      <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>3. RESULTADOS  Y DISCUSIÓN</b></font></p>      <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Con base en las      observaciones de secciones delgadas pulidas, mediante el uso de microscopio      de luz plana polarizada, modo de operación luz reflejada, se pudo constatar que en los concentrados la esfalerita  y la pirita se presentaron como constituyentes mayores (&gt;95%), acompañadas  por proporciones menores de otros sulfuros como calcopirita, galena y tetraedrita,  así como trazas de arsenopirita y pirrotita. Los cristales de esfalerita  presentaron finas inclusiones de calcopirita, principalmente en forma de  pequeñas gotículas (&lt; 60&#956;m), mostrando una textura <i>disease</i>,  así como finas lamelas de exsolución; adicionalmente fue posible observar  finas inclusiones de galena y en menor proporción de tetraedrita, como inclusiones  de cristales anedrales y algunas veces en forma de lamelas. Dentro de los  minerales de ganga detectó  como componente mayor cuarzo, además de microclina, plagioclasa y esporádicamente  calcita, rutilo y clorita.</font></p>      <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">A partir de los      análisis microquímicos, se pudo  constatar que el Fe en la esfalerita varía entre 6 y 12Wt%. El contenido de  Cd varió entre 0.4At%  y 0.65At%, mientras que el Mn mostró proporciones máximas de 1.8At%. Algunos  análisis  microquímicos en pirita evidenciaron la </font></p>      <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">presencia de      contenidos de As en solución sólida  (0.77At%), mientras que la galena se caracterizó por presentar cantidades  considerables de plata en su estructura, variando entre 5 y 16Wt%.</font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Por medio de      los análisis realizados con SEM/EDX  se puedo ver que los productos de la oxidación bacteriana para los tres porcentajes  de pulpa utilizados es similar, siendo principalmente jarosita, azufre elemental  y sulfato de hierro, estando las principales diferencias marcadas por la  proporción relativa entre las fases presentes, su morfología y texturas.</font></p>      <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En las muestras      con 2.5% de pulpa se pudo observar la presencia de pequeños granos de jarosita aislados (<a href="#fig01">Figura      1a</a>), siendo  evidente en algunas partes que éstos empiezan a unirse para formar aglomerados;  también se observó la formación de jarosita de hábito acicular (<a href="#fig01">Figura  1a</a>)  y aglomerados de sulfato de hierro (<a href="#fig01">Figura 1b</a>). </font></p>      <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b><a name="fig01"></a><img src="/img/revistas/dyna/v75n154/a06fig01.gif">    <br>   Figura 1. </b>a)      Jarosita (Ja) con hábito acicular así como en forma de pequeños agregados      aislados. b) Aglomerado de sulfatos de hierro (Sulf) y cristales de pirita      (Py) sin reaccionar.    <br>      <b>Figure 1. </b>a) Jarosite (Ja) with  acicular habits and small agglomerates. b) Iron sulfate agglomerates (Sulf)  and pyrite crystals (Py) without reaction.</font></p>      <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La esfalerita      típicamente se presenta rodeada  por una capa de azufre elemental, la cual llega a alcanzar hasta 100µm, muchas  veces recubierta a su vez por una película más fina de sulfato de hierro  como se puede observar en la <a href="#fig02">Figura 2a</a>. De otro lado, los cristales de pirita  sólo se encuentran en ocasiones rodeados por una delgada capa (~1µm) de sulfato  de hierro (<a href="#fig02">Figura 2b</a>), siendo que en ocasiones fue posible observar que algunos  granos muestran un bajo grado de oxidación, evidenciado por la presencia  de golfos de corrosión.</font></p>      <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b><a name="fig02"></a><img src="/img/revistas/dyna/v75n154/a06fig02.gif">    <br>   Figura 2. </b>a)      Imagen SEM/BSE mostrando núcleo de esfalerita (Sph) oxidada con golfos de corrosión, rodeada  por una capa de S elemental, recubierta a su vez por una película de sulfato  de hierro (Sulf) hacia el borde más externo. b) Cristal de pirita (Py) rodeado  por una capa delgada de sulfato de hierro (Sulf).    <br>  <b>Figure 2.</b> SEM/BSE image. Sulfur  layer (S) and iron sulphate (Sulf) around sphalerite nuclei oxidized. b) Pyrite  crystal (Py) with a thin layer of iron sulphate (Sulf) around.</font></p>      <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En los ensayos      utilizando 5% y 8%, las muestras biooxidadas presentaron características similares, encontrándose una proporción  de jarosita y sulfato de hierro mucho mayor, en comparación con la muestra  a 2,5% de pulpa, así como aglomerados de tamaños mayores, lo cual se considera  una consecuencia lógica si se tiene en cuenta que el porcentaje de sustrato  disponible para lixiviar es mayor, al igual que el tiempo de residencia,  además de un tiempo de adaptación mayor para las bacterias, traduciéndose  esto en una mayor eficiencia en el proceso. </font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Igualmente, las      capas de azufre elemental formadas alrededor de los cristales de esfalerita      se presentaron en mayores espesores, mostrando texturas claras que evidenciaron      un proceso de precipitación (<a href="#fig03">Figura  3</a>), las cuales al parecer fueron generadas en varios pulsos de depositación,  evidenciados por su textura frecuentemente bandeada (<a href="#fig03">Figura  3b</a>). De otro  lado, en estas muestras se observaron relaciones de intercrecimiento que  muestran claramente una depositación de la jarosita posterior a la formación  de las capas de azufre (<a href="#fig04">Figura 4</a>), donde los granos de esfalerita con películas  de S<sup>0</sup> se observan aglomerados por masas de jarosita.</font></p>      <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b><a name="fig03"></a><img src="/img/revistas/dyna/v75n154/a06fig03.gif">    <br>   Figura 3. </b>a)      y b) Capas de azufre mostrando texturas de depositación concéntrica y en      varios eventos (bandeadas).<b>    <br>  Figure 3</b>. Sulfur layers  showing concentric textures.</font></p>      <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b><a name="fig04"></a><img src="/img/revistas/dyna/v75n154/a06fig04.gif">    <br>   Figura       4.</b> Cristales de esfalerita con una capa de azufre elemental (S<sup>0</sup>),        aglomerados por precipitados de jarosita, indicando una secuencia deposicional.    <br>  <b>Figure 4. </b>Sphalerite crystals with sulfur layer around and enveloped  by jarosite precipitates.</font></p>      <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En general las      imágenes muestran una oxidación  activa y preferencial de la esfalerita en relación a la pirita, pues esta última  siempre se encontró en mayores proporciones al final del proceso, mostrando  golfos de corrosión que indican una oxidación inicial de este sulfuro, situación  que era de esperarse, pues en una mezcla de diferentes sulfuros en donde  se forman pares galvánicos, las bacterias preferencialmente oxidarán aquellos  de menor potencial de electrodo, siendo este el caso de la esfalerita para  este sistema [5]. De otro lado, se observaron algunos granos de pirita con  películas finas de azufre elemental y sulfato de hierro (<a href="#fig01">Figura  1b</a>), lo cual  también podría estar influyen como inhibidor de su oxidación. La formación  de capas de azufre elemental durante el proceso de oxidación de la esfalerita  ha sido reportada por varios autores [6,7,2] señalando que su presencia tiene  gran influencia en la cinética del proceso de lixiviación del Zn. </font></p>      <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Para este caso,      las muestras con 55 días de oxidación  aún presentaron núcleos de esfalerita sin reaccionar, evidenciando una inhibición  en el proceso atribuible a este tipo de productos. Datos sobre concentración  de Zn en solución analizados para estos ensayos (resultados no mostrados)  muestran que a pesar de la presencia del azufre elemental, se alcanzaron  concentraciones de hasta 50.000ppm Zn en solución, lo que puede sugerir que,  aun en presencia de estas películas, se puede estar dando difusión del hierro  férrico en solución hacia la superficie de la esfalerita, oxidándola. </font></p>      <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Aunque estas      capas son relativamente gruesas, las imágenes en SEM muestran que éstas      suelen ser porosas y en algunos casos no envuelven totalmente los cristales      de esfalerita, dejando algunas partes expuestas al medio lixiviante (<a href="#fig03">Figura      3b</a>). De otro lado, aunque <i>A. ferrooxidans</i> tiene  la habilidad de disolver azufre elemental, la velocidad de disolución y precipitación  del azufre es más grande que la disolución, además de que su afinidad para  oxidar compuestos reducidos de azufre, es menor, por lo que una combinación  con microorganismos especializados en la oxidación este tipo de compuestos,  tales como <i>Acidithiobacillus thiooxidans</i>, podría mejorar la cinética  al eliminar estas capas de azufre. </font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><i>Deveci</i> <i>et al</i>.      [8] también atribuyó la  disminución de la velocidad de lixiviación de Zn a la abundante precipitación  de hierro férrico en la forma de jarosita dentro del sistema, lo cual podría  llevar a la finalización del proceso de lixiviación al formarse una capa  protectora sobre la superficie del mineral; sin embargo, en este trabajo  se observó que la formación de jarosita se dio principalmente como agregados  y no formando capas sobre la superficie de la esfalerita.</font></p>      <p>&nbsp;</p>      <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>4. CONCLUSIONES</b></font></p>      <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Durante el proceso      de biooxidación del sistema  esfalerita-pirita y a partir de las observaciones microscópicas de los productos  de oxidación se evidenció la formación de capas de azufre elemental alrededor  de los granos de esfalerita, capas que presentan una textura frecuentemente  bandeada, evidenciando una depositación posiblemente en varios eventos. A  pesar de la presencia de estas películas, se alcanzaron concentraciones de  hasta 50.000ppm Zn en solución, lo que sugiere que, aun en presencia de éstas,  se está dando difusión del hierro férrico en solución hacia la superficie  de la esfalerita. En general las imágenes muestran una oxidación activa y  preferencial de la esfalerita en relación a la pirita, pues esta  última siempre se encontró en mayores proporciones al final del proceso y su  oxidación se ve reflejada en los golfos y pits de corrosión, sin que se observen  películas de azufre a su alrededor.</font></p>      <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Las relaciones      de intercrecimiento muestran claramente una depositación de la jarosita posterior a la formación de las capas de  azufre, donde los granos de esfalerita con películas de S<sup>0</sup> se  observan rodeadas por masas de jarosita.</font></p>      <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Con el fin de      mejorar la cinética del proceso  es importante establecer el tiempo y condiciones bajo las cuales productos  como el azufre elemental y la jarosita empiezan a depositarse sobre la superficie  de la esfalerita, para que éste sea removido y evitar la inhibición de la  lixiviación de Zn. </font></p>      <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Para esto, se      deben controlar parámetros como  la acidez del medio, con el fin de privilegiar la precipitación de jarosita  hacia el final del proceso, permitiendo altas concentraciones de Fe<sup>3+</sup> en  solución, el cual es bien conocido como el principal agente oxidante en este  tipo de procesos, y evitar la formación de películas de precipitados sobre  los minerales a ser oxidados.</font></p>      <p>&nbsp;</p>      <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>5. AGRADECIMIENTOS</b></font></p>      <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">COLCIENCIAS y      su Programa Nacional de Biotecnología  por su apoyo incondicional a la investigación y la financiación de este proyecto.  A los laboratorios de Microscopía Avanzada y Biomineralogía de la Universidad  Nacional de Colombia-Sede Medellín. Al municipio de Marmato, especialmente  a los propietarios y trabajadores de las minas San Antonio, El Patacón, El  Corozo y La Ochoa, por su apoyo incondicional.</font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>      <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>REFERENCIAS</b></font></p>      <!-- ref --><p>    <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b> [1]</b> RAWLINGS, D. Characteristics and adaptability of iron- and sulfur-oxidizing microorganisms used for the recovery of metals from minerals and their concentrates. Microbial Cell Factories, 4 (13), 112-135. 2005.        &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S0012-7353200800010000600001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>    <b>[2]</b> RODRÍGUEZ, Y., BALLESTER, A., BLÁZQUEZ, M. L., GONZÁLEZ, F., and MUÑOZ, J. A. New information on the sphalerite bioleaching mechanism at low and high temperature. Hydrometallurgy 71, 57–66.    2003.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000066&pid=S0012-7353200800010000600002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>    <b>[3]</b> MCGUIRE, M., EDWARDS, K., BANFIELD, J., and HAMERS, R. Kinetics, surface chemistry, and structural evolution of microbially mediated sulfide mineral dissolution. Geochemica et Cosmochimica Acta 65(8), 1243-1258. 2001.        &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0012-7353200800010000600003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>    <b>[4]</b> WEISENER, C., SMART, R., and GERSON, A. Kinetics and mechanisms of the leaching of low Fe sphalerite. Geochimica et Cosmochimica Acta 67(5), 823-830. 2003.        &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0012-7353200800010000600004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>    <b>[5]</b> KARAVAIKO, G., ROSSI, G., AGATE, A. D., GROUDEV, S. N. ANDA AVAKYAN. Z. Biogeotechnology of metals Manual. Centre for international projects. Moscow. 1988.        &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0012-7353200800010000600005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>    <b>[6]</b> SHI, S AND FANG, Z. Bioleaching of marmatite flotation concentrate by Acidithiobacillus ferrooxidans. Hydrometallurgy 75 (1-4), 1-10. 2004.        &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0012-7353200800010000600006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>    <b>[7]</b> GARCÍA, O., BIGHAM, J. and TUOVINEN O. Sphalerite oxidation by    Thiobacillus ferrooxidans and Thiobacillus thiooxidans. Can. J. Microbiol.    41, 578-584. 1995.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0012-7353200800010000600007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>    <b>[8]</b> DEVECI, H., AKCIL, A., and ALP, I. Bioleaching of complex zinc    sulphides using mesophilic and thermophilic bacteria: comparative importance  of pH and iron. Hydrometallurgy 73, 293–303. 2004. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0012-7353200800010000600008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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