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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[CRISTALES BIOGÉNICOS DE MAGNETOCOCOS DE LA REPRESA LA FE Y LAGO CALIMA (COLOMBIA)]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[In order to study the morphology and composition of magnetosomes synthesized by two magnetococcus found at La Fe Dam and Calima Lake - Colombia, magnetotactic bacteria (MTBs) were separated by magnetic induction. MTBs and their magnetosomes were evaluated by energy dispersive x-ray spectroscopy (EDX) using transmission electron microscopy (TEM) and the size and shape of the nanocrystals were determined. Results revealed a high similarity between the magnetococcus under study, showing magnetite crystals with hexagonal-prismatic morphology and average length of 83 and 87 nm for crystals from La Fe and Calima respectively. By the size and shape factor, crystals were classified in the single domain magnetic range. Results obtained allow seeing future applications for biogenic magnetite in biotechnology and medicine.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="center"><font size="4" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>CRISTALES BIOG&Eacute;NICOS DE MAGNETOCOCOS DE LA REPRESA LA FE Y LAGO CALIMA (COLOMBIA)</b></font></p>     <p align="center"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><i><b>BIOGENIC CRYSTALS OF MAGNETOCOCCUS FROM LA FE DAM AND CALIMA</b> <b>LAKE (COLOMBIA)</b></i></font></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>VIVIANA   MORILLO</b>    <br>   <i>Grupo de Mineralog&iacute;a Aplicada y Bioprocesos,Universidad   Nacional de Colombia Sede Medell&iacute;n. <a href="mailto:vkmorill@unalmed.edu.co">vkmorill@unalmed.edu.co</a></i></font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> <b>ALEJANDRO SALAZAR</b>    <br>   <i>Grupo de Mineralog&iacute;a Aplicada y Bioprocesos,Universidad   Nacional de Colombia Sede Medell&iacute;n. </i></font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> <b>MARCO M&Aacute;RQUEZ</b>    <br>   <i>Grupo   de Biomineralog&iacute;a Aplicada. Universidad Nacional de Colombia Sede Medell&iacute;n. <a href="mailto:mmarquez@unalmed.edu.co">mmarquez@unalmed.edu.co</a></i></font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> <b>ALVARO MORALES</b>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   <i>Grupo de F&iacute;sica del Estado S&oacute;lido. Universidad de Antioquia, Medell&iacute;n,   Colombia. <a href="mailto:amoral@fisica.udea.edu.co">amoral@fisica.udea.edu.co</a></i></font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> <b>ULYSSES LINS</b>    <br>   <i>Instituto de Microbiolog&iacute;a Profesor Paulo de G&oacute;es.   Universidad Federal de Rio de Janeiro, Brasil. <a href="mailto:ulins@micro.ufrj.br">ulins@micro.ufrj.br</a></i></font></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Recibido para revisar Enero 27 de 2009, aceptado 17 de   junio de 2009, versi&oacute;n final 22 de junio de 2009</b></font></p>     <p>&nbsp;</p> <hr>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>RESUMEN:</b>Con el prop&oacute;sito de estudiar la morfolog&iacute;a y composici&oacute;n de   magnetosomas sintetizados intracelularmente por magnetococos encontrados en la   represa La Fe y lago Calima - Colombia, se separaron bacterias   magnetot&aacute;cticas (MTBs) por inducci&oacute;n magn&eacute;tica. MTBs y sus magnetosomas se evaluaron   mediante espectroscop&iacute;a de energ&iacute;as dispersivas de rayos X (EDX) usando microscop&iacute;a   electr&oacute;nica de transmisi&oacute;n (TEM) para determinar el tama&ntilde;o y la morfolog&iacute;a de   los nanocristales. Los resultados muestran una alta similitud entre los magnetosomas de los   magnetococos estudiados, presentando cristales de magnetita con morfolog&iacute;a hexagonal prism&aacute;tica y una media de   longitud de 83 y 87 nm para cristales de La Fe y Calima respectivamente. Por el tama&ntilde;o y factor de forma, los   cristales se clasificaron en el rango de monodominio magn&eacute;tico. Los datos obtenidos permiten evidenciar   futuras aplicaciones para la magnetita biog&eacute;nica, en biotecnolog&iacute;a y medicina.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>PALABRAS   CLAVE<i>:</i> </b>bacterias   magnetot&aacute;cticas, magnetita biog&eacute;nica, monodominio, nanocristales, TEM/EDX.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>ABSTRACT:</b>In   order to study the morphology and composition of magnetosomes synthesized by   two magnetococcus found at La   Fe Dam and Calima Lake - Colombia, magnetotactic bacteria (MTBs) were separated by magnetic induction. MTBs   and their magnetosomes were evaluated by energy dispersive x-ray spectroscopy (EDX)   using transmission electron microscopy (TEM) and the size and shape of the   nanocrystals were determined. Results revealed a high similarity between the magnetococcus   under study, showing magnetite crystals with hexagonal-prismatic morphology and   average length of 83 and 87 nm for crystals from La Fe and Calima respectively. By the size and shape factor, crystals were classified   in the single domain magnetic range. Results obtained allow seeing future   applications for biogenic magnetite in biotechnology and medicine.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b> KEYWORDS<i>: </i></b>magnetotactic bacteria, biogenic magnetite, single   domain, nanocrystals, TEM/EDX. </font></p> <hr>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>1. INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los materiales magn&eacute;ticos se vienen usando principalmente en la   elaboraci&oacute;n de ferrofluidos, siendo los &oacute;xidos de hierro los m&aacute;s empleados en tales   fines, as&iacute;, materiales como la magnetita se han empleado como micro o   nanotransportadores con aplicaciones en medicina y biotecnolog&iacute;a &#91;1,2&#93;. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Para muchas de las aplicaciones   biotecnol&oacute;gicas y m&eacute;dicas los cristales de magnetita deben tener tama&ntilde;os nanom&eacute;tricos,   los cuales son generalmente obtenidos por co-precipitaci&oacute;n, resultando en una   alta proporci&oacute;n de part&iacute;culas superparamagn&eacute;ticas y alta saturaci&oacute;n de   magnetizaci&oacute;n, con di&aacute;metros promedios de 10 nm &#91;2&#93;.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Hace varias d&eacute;cadas se report&oacute; que bacterias de   h&aacute;bitat acu&aacute;tico y con actividad magnetot&aacute;ctica son capaces de sintetizar   cristales de magnetita y/o greigita en el interior de la c&eacute;lula, los cuales son   conocidos como magnetosomas &#91;3,4,5&#93;. Los magnetosomas sintetizados por la   bacteria no s&oacute;lo tienen un papel magn&eacute;tico, sino que al parecer pueden ser una   forma de almacenamiento y captura de Fe, como reserva de aceptores o donadores   de electrones &#91;6&#93;.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los nanocristales magn&eacute;ticos sintetizados   por las MTBs, tienen unas propiedades muy particulares, de inter&eacute;s tanto en el   campo cient&iacute;fico como en el industrial, como son tama&ntilde;o, estructura cristalina   organizada respecto a la versi&oacute;n sintetizada inorg&aacute;nicamente, y pureza. Los   cristales intracelulares reportados hasta el momento tienen como caracter&iacute;stica   particular una biocapa, compuesta principalmente por l&iacute;pidos y polisac&aacute;ridos,   que los recubre y ordena en cadenas lineales en la bacteria, permiti&eacute;ndole   orientarse en el campo geomagn&eacute;tico &#91;3,7,8&#93;.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El conocimiento de los principios biol&oacute;gicos y qu&iacute;micos de   biomineralizaci&oacute;n permitir&aacute; aprovecharlos para uso en el desarrollo de   nanomateriales, puesto que las aplicaciones de </font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">minerales con magnetismo son un aporte significativo para la ciencia y   la tecnolog&iacute;a como </font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">medio para almacenamiento de datos en cintas, discos y burbujas   magn&eacute;ticas, en la medicina, para la inmovilizaci&oacute;n de sustancias bioactivas,   elaboraci&oacute;n de biosensores, transportadores de drogas especificas, agentes de   contraste, entre otros &#91;1,2&#93;. </font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>2. METODOLOG&Iacute;A</b></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>2.1. &Aacute;rea de estudio y toma de muestras    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   </b></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Muestras con sedimento y agua para el aislamiento de MTBs fueron   tomadas en la interfase agua/sedimento, a profundidades entre 160 - 310 cm en la represa La Fe, ubicada a 2156 m.s.n.m. al nororiente del departamento de Antioquia y en el lago Calima,   ubicado a 1400 m.s.n.m. en el centro del departamento del   Valle del Cauca, Colombia.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><i>In situ</i> se valoraron par&aacute;metros como temperatura, pH (pH-metro Handylab 1) y ox&iacute;geno   disuelto (OD) (ox&iacute;metro Hanna HI 9143) en funci&oacute;n de la profundidad de la   interfase agua/sedimento. Una vez en el laboratorio, en los microcosmos obtenidos   se hicieron mediciones de Eh (Eh-metro Hanna HI 3619), concentraci&oacute;n de   sulfatos (m&eacute;todo turbidim&eacute;trico normalizado 4500 SO<sub>4</sub><sup>2-</sup>) y   concentraci&oacute;n de hierro (m&eacute;todo de la fenantrolina 3500 Fe), seg&uacute;n los m&eacute;todos   normalizados para el an&aacute;lisis de aguas &#91;9&#93;. Los ensayos fueron medidos en un espectrofot&oacute;metro   GENESYST 10 UV de barrido. La <a href="#tab01">tabla 1</a> muestra las caracter&iacute;sticas principales   de las zonas de muestreo. Luego de los an&aacute;lisis, las muestras se incubaron en   una zona oscura por 30 d&iacute;as a temperatura ambiente (25° C).</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b><a name="tab01"></a>Tabla 1.</b> Caracteristicas de los microcosmos para MTB tipo coco, encontrados en sitios   de muestreo    <br>   </font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Table 1. </b>Characteristics of positive MTB microcosm type cocci, found in the   sampling sites.</font>    <br>   <img src="/img/revistas/dyna/v77n162/a11tab01.gif"></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>2.2. Colecci&oacute;n de MTBs    <br>   </b></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Para aislar MTBs se utiliz&oacute; la   t&eacute;cnica descrita por Lins <i>et al.,</i> (2003) &#91;10&#93; que consiste en un   dispositivo de vidrio con un extremo terminado en capilar, el cual es sometido   a un campo magn&eacute;tico. El dispositivo se llen&oacute; con una muestra de agua/sedimento   y se someti&oacute; a un campo magn&eacute;tico uniforme de ~ 6 Gauss, generado por un   solenoide. Luego de 30 minutos de exposici&oacute;n, se extrajo aproximadamente 1ml   del l&iacute;quido rico en MTBs retenido en el capilar del dispositivo, se deposit&oacute; en   un tubo eppendorf provisto de un im&aacute;n de neodimio de 12,8 Gauss, para obtener   un pellet de MTBs. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En un microscopio &oacute;ptico   OLYMPUS CX31 y con un aumento de 400X se estudi&oacute; el tipo de movilidad celular y   el tiempo en el que un concentrado de MTBs logra alcanzar el borde de una gota   de 16mm.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>2.3. Estudio de magnetosomas por TEM    <br>   </b></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Una gota del pellet de MTBs fue depositada en   una malla de Cu de 200 Tyler, recubierta con Formvar. La gota se posicion&oacute; de   forma tal que cubriera parcialmente la malla, usando un im&aacute;n para dirigir las   MTBs al borde de la gota en el centro de la malla. Las muestras se dejaron secar a temperatura ambiente y se   observaron en un microscopio de transmisi&oacute;n marca Morgagni 268 T063/D791   operando a 80 kV y en uno marca Phillips, modelo Tecnai G<sup>2</sup> operando   a 200 kV. </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Al microscopio se busc&oacute; la presencia de MTBs y   magnetosomas. El an&aacute;lisis de energ&iacute;as dispersivas de rayos rayos X (EDX) de los   cristales intracelulares se realiz&oacute; en un microscopio de transmisi&oacute;n marca Jeol   1200 EX equipado con un accesorio Noran para an&aacute;lisis qu&iacute;micos y en uno marca Phillips,   modelo Tecnai G<sup>2</sup>.Utilizando el software Origin Pro-Plus 6.2 se midi&oacute;   el ancho y el largo de los magnetosomas, tomando el largo del cristal seg&uacute;n la direcci&oacute;n   del eje de la cadena a trav&eacute;s de la c&eacute;lula. Se analizaron 350 cristales en cada   zona de estudio. Para contar la cantidad de cristales por c&eacute;lula se tomaron 50   magnetococos por zona de muestreo.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>3. RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los resultados obtenidos por microscop&iacute;a &oacute;ptica muestran la presencia   de bacterias magnetot&aacute;cticas tipo coco y bacilo para la represa La Fe y &uacute;nicamente cocos para el lago Calima, en concentraciones aproximadas   de 10<sup>6</sup> MTBs/ml, luego de los 30 d&iacute;as de incubaci&oacute;n. Los cocos   observados en la represa la Fe presentaron una forma ligeramente ovalada,   con tama&ntilde;os promedios de 2.0 <u>+</u> 0,2 &#956;m por 1,9 <u>+</u> 0,1 &#956;m.   Los cocos del lago Calima, aproximadamente esferoidales, mostraron un di&aacute;metro de   1,5 <u>+</u> 0,3 <font face="Symbol">m</font>m. Para la represa La Fe, la concentraci&oacute;n   de cocos y bacilos vari&oacute; dependiendo del periodo de recolecci&oacute;n de la muestras,   concordando con lo encontrado por Simmons <i>et al.</i> (2004) &#91;11&#93;, quienes   reportaron que las poblaciones de microorganismos magnetot&aacute;cticos variaron en   forma, n&uacute;mero y cantidad de magnetosomas en el interior de la c&eacute;lula, de   acuerdo con la &eacute;poca del a&ntilde;o de recolecci&oacute;n y del ambiente clim&aacute;tico,   encontrando mayor concentraci&oacute;n de cocos en invierno y concentraciones   similares de cocos y bacilos en el verano.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>3.1. Movimiento de los magnetococos    <br>   </b></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los cocos magnetot&aacute;cticos de las dos zonas de   estudio mostraron un movimiento coordinado con trayectoria helicoidal junto con   un movimiento de rotaci&oacute;n alrededor de su propio eje. Una vez en el borde de la   gota, los cocos mantuvieron el movimiento de rotaci&oacute;n. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Las velocidades de nado de las dos muestras de   MTBs fueron en promedio de 103 &#956;m/s, con una velocidad mayor para los   cocos de la represa La Fe (113 <u>+</u> 7 &#956;m/s) que para los del   lago Calima (93 <u>+</u> 8 &#956;m/s). Los resultados aqu&iacute; obtenidos son   similares a los reportados por Thomas-Keprta<i> et al.</i> (2001) &#91;12&#93;, quienes,   bajo condiciones &oacute;xicas y en un   campo magn&eacute;tico uniforme, encontraron que la velocidad de nado de las MTBs   evaluadas fue de 105 <font face="Symbol">m</font>m/s en promedio. De otro lado, Silva <i>et al</i>. (2007) &#91;13&#93;, quienes evaluaron la   velocidad de nado de <i>Candidatus </i>Magnetoglobus multicellularis, encontraron   que este agregado, en trayectoria libre, logr&oacute; una velocidad de 90 <u>+</u> 20 <font face="Symbol">m</font>m/s. Estos datos y los resultados   encontrados por TEM al evaluar la cantidad, morfolog&iacute;a y disposici&oacute;n de los   magnetosomas en cadena o agrupaciones en las </font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">c&eacute;lulas conllevan a concluir <i>a priori</i> que la morfolog&iacute;a celular es el factor que determina la diferencia en la velocidad   de nado entre los cocos de La Fe y los de Calima. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>3.2. Estudio de magnetosomas por TEM</b></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><i>3.2.1. Morfolog&iacute;a de los cristales   biog&eacute;nicos    <br>   </i></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los magnetococos de La Fe presentaron cristales alongados, con morfolog&iacute;a hexagonal prism&aacute;tica   (<a href="#fig01">fig. 1</a>), mientras que los del lago Calima mostraron dos tipos de cristales,   unos cocos con cristales de morfolog&iacute;a octa&eacute;dricos y otros con cristales de morfolog&iacute;a   alongada hexagonal prism&aacute;tica (<a href="#fig02">fig. 2</a>).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b><a name="fig01"></a><img src="/img/revistas/dyna/v77n162/a11fig01.gif">    <br>   Figura 1.</b> Magnetosomas de magnetococos de la represa La Fe. a) Coco magnetot&aacute;ctico con dos cadenas de magnetosomas   dispuestos a lo largo de la c&eacute;lula, obs&eacute;rvese los extremos de la cadena con cristales de menor tama&ntilde;o. b) Magnetococo con dos   cadenas de magnetosomas ubicados en la periferia de la c&eacute;lula. c) y d) Magnetosomas con morfolog&iacute;a elongada hexagonalprism&aacute;tica.   e) Espectro de EDX del magnetosoma. Las flechas negras muestran la membrana del magnetosoma alrededor de los   cristales. Las flechas en blanco muestran la forma de medici&oacute;n de la longitud de los cristales. I (inclusi&oacute;n), M (magnetosoma).    <br>   <b>Figure 1.</b> Magnetosomes of magnetococos from La Fe dam. a) Magnetococcus with two chains of magnetosomes arranged   along the cell, note the ends of the chain with little crystals. b) Magnetococcus with two chains of magnetosomes located at the   cell periphery. c) and d) Magnetosomes with elongated hexagonalprismatic   morphology. e) EDX spectrum of magnetosomes.   The black arrows show the magnetosomes membrane around the crystals. The white arrows show how the length of crystals   were measured of the length of the crystals. I (inclusion), M (magnetosomes).</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b><a name="fig02"></a><img src="/img/revistas/dyna/v77n162/a11fig02.gif">    <br>   Figura 2.</b> Magnetosomas de magnetococos del lago Calima. a) Coco magnetot&aacute;ctico con magnetosomas agrupados entre 2   inclusiones de S. b), c) Magnetosomas elongados con morfolog&iacute;a hexagonalprism&aacute;tica.   c) Coco magn&eacute;tico con dos cadenas   paralelas de magnetosomas. d) Magnetosomas cubooctaedrales   en cadena. e) Espectro de EDX del magnetosoma. Las flechas   negras muestran cristales en crecimiento al final de la cadena. Las flechas en blanco muestran la forma de medici&oacute;n de la longitud   de los cristales. I (inclusi&oacute;n de azufre), M (magnetosoma).     <br>   <b>Figure 2.</b> Magnetosomes of magnetococcis from Calima Lake. a) Magnetococcus with clustered magnetosomes between 2 sulfur   inclusions. b), c) Elongated magnetosomes with hexagonalprismatic   morphology. c) Magnetoccus with two parallel chains of   magnetosomes. d) Cubeoctaedral   magnetosomes chain. e) EDX spectrum of magnetosomes. The black arrows show the   magnetosomes membrane around the crystals. The white arrows show how the length of crystals were measured of the length of the   crystals. I (inclusion), M (magnetosomes).</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">De acuerdo con estos resultados y lo expuesto   por Mann <i>et al.</i> (1989) &#91;14&#93;, quienes afirman que la morfolog&iacute;a de los   cristales var&iacute;a dependiendo de la cepa bacteriana, present&aacute;ndose cristales   octa&eacute;dricos en <i>Magnetospirillum magnetotacticum </i>MS-1 &#91;15,16&#93;, cristales no equidimensionales (elongados), de formas hexagonales u octa&eacute;dricas truncadas (en forma de bala, diente o punta   de flecha) en la bacteria MV-1 &#91;17&#93;, entre otras, es   posible, con bases en este criterio, considerar que en el lago Calima existen   dos cepas de cocos magn&eacute;ticos diferentes, sin embargo es necesario   comprobareste hecho por medio de m&eacute;todos certeros como es el caso de las   t&eacute;cnicas de biolog&iacute;a molecular.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Otra caracter&iacute;stica, que vale la pena   resaltar, es que en la mayor&iacute;a de los magnetococos los cristales se observaron   cerca de la pared celular (<a href="#fig01">fig. 1c</a>, <a href="#fig02">2a</a>), lo que hace pensar que la membrana que   rodea a los cristales (<a href="#fig01">fig. 1d</a>) podr&iacute;a ser una invaginaci&oacute;n de la pared   celular, tal como lo han demostrado varios autores a partir de an&aacute;lisis   bioqu&iacute;micos hechos a las membranas de los magnetosomas, mostrando la presencia de compuestos como la   fosfatidiletanolamina y fosfatidilglicerol, comunes a otras membranas   celulares, aunque sin la presencia de amidas ligadas a &aacute;cidos grasos, comunes   en bacterias Gram - negativas, aunque con prote&iacute;nas &uacute;nicas de las membranas de   los magnetosomas, que podr&iacute;an suministrar un ambiente bioqu&iacute;mico propio para la   biomineralizaci&oacute;n de magnetita &#91;18,19,20&#93;.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En la represa La Fe se observ&oacute; una alta proporci&oacute;n de cocos con cadenas dobles de   magnetosomas (<a href="#fig01">fig. 1a</a>, <a href="#fig01">1b</a>) y escasos con cadenas sencillas (<a href="#fig01">fig. 1d</a>). En el   lago Calima se observaron MTBs con cadenas dobles y sencillas de magnetosomas   (<a href="#fig02">fig. 2c</a>, <a href="#fig02">2d</a>), pero ~ 80 % de los magnetococos aparecen con magnetosomas   agrupados entre inclusiones   bacterianas de azufre (<a href="#fig02">fig. 2a</a>, <a href="#fig02">2b</a>). Esa disposici&oacute;n podr&iacute;a   estar influyendo en la menor velocidad de nado de los magnetococos del lago   Calima con respecto a los de la represa La Fe,   en los que la disposici&oacute;n en cadena de los cristales aumentar&iacute;a el momento   dipolar magn&eacute;tico de la c&eacute;lula, permitiendo que la magnetotaxis se realice con   mayor eficiencia a lo largo de la l&iacute;neas de campo magn&eacute;tico &#91;21&#93;. Adicionalmente, la   longitud de las cadenas de magnetosomas vari&oacute; entre c&eacute;lulas de un mismo sitio   de muestreo, con un promedio de 1,09 &#956; para los cocos de La Fe y 0,70 &#956; para los cocos que presentaron magnetosomas dispuestos   en cadena del lago Calima.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los an&aacute;lisis de EDX en los magnetosomas de los cocos de La Fe y Calima detectaron la presencia de Fe y O consistentes con la   composici&oacute;n de una magnetita (<a href="#fig01">fig. 1e</a>, <a href="#fig02">2e</a>). La presencia de peque&ntilde;as cantidades   P, S, K, Ca y Mg, parecen corresponder a las inclusiones bacterianas pr&oacute;ximas a   los magnetosomas y al contenido citoplasm&aacute;tico y de la membrana celular de los   cocos, confirmados por los EDX realizados a las inclusiones celulares (datos no   mostrados), compatible con lo ya evidenciado por Cox <i>et al. </i>(2002) &#91;22&#93;.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><i>3.2.2. Cantidad de Cristales    <br>   </i></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Se observ&oacute; una media de 16 <u>+</u> 3 cristales   por coco magnetot&aacute;ctico de la represa La Fe y 15 <u>+</u> 4 por   coco del lago Calima, mostrando un promedio de magnetosomas similar para los   cocos de los dos sitios de estudio. De otro lado, en los bacilos magn&eacute;ticos de   la represa La Fe, se observ&oacute; una gran cantidad de magnetosomas   (90 <u>+</u> 34). Resultados semejantes con gran n&uacute;mero de cristales han sido   reportados por Blakemore, (1982) &#91;23&#93; con un promedio de 22 magnetosomas por   c&eacute;lula magn&eacute;tica para <i>Aquaspirillum magnetotacticum </i>cepa MS1, y Schüler   y Frankel (1999) &#91;24&#93; y Schüler (2002) &#91;25&#93;, con un promedio de 60 part&iacute;culas   magn&eacute;ticas por c&eacute;lula para <i>Magnetospirillum gryphiswaldense.</i> A partir de   estos resultados es posible concluir que, como ya se ha anotado por otros   autores, el n&uacute;mero de part&iacute;culas magn&eacute;ticas por c&eacute;lula depende principalmente   de la especie de MTB y no de las condiciones de crecimiento o de la   disponibilidad de nutrientes en el medio.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Teniendo en cuenta las cercanas similitudes   entre los cristales de los cocos de las represas de La Fe y Calima, parece ser que la morfolog&iacute;a y cantidad de cristales no   influye ostensivamente en la velocidad de nado de las MTBs, ya que en los dos   casos se tienen 16 <u>+</u> 3 cristales con morfolog&iacute;a alongada hexagonal   prism&aacute;tica y sin embargo se presentan diferencias en la velocidad de nado. Por   ello se puede concluir que la diferencia en la velocidad de nado est&aacute; influenciada   en gran parte por la disposici&oacute;n de las part&iacute;culas en el interior de la c&eacute;lula,   siendo la disposici&oacute;n en cadena y no en agregados, la que favorece una mayor   velocidad. Por otro lado, se puede concluir que la cantidad de cristales no   influye de una forma directamente proporcional con la velocidad de nado, si se   tiene en cuenta que en bacilos magn&eacute;ticos de la represa La Fe (con 90 <u>+</u> 34 cristales por c&eacute;lula, datos no publicados),   muestran una velocidad de nado menor que la observada para los cocos de &eacute;sta   misma represa (con 16 <u>+</u> 3 cristales por c&eacute;lula).</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">3.2.3. <i>Tama&ntilde;o de los magnetosomas    <br>   </i></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los magnetosomas de las MTBs de La Fe y Calima mostraron una amplia variedad en el tama&ntilde;o de cristal, tanto longitudinal   como transversalmente. En general, los cristales fueron m&aacute;s largos que anchos,   con tan solo 8,23% de &eacute;stos m&aacute;s anchos que largos y 0,66% aproximadamente   equidimensionales.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><i>Longitud de los Cristales<b>: </b></i>Se mostr&oacute; una amplia distribuci&oacute;n de tama&ntilde;os para   los 2 concentrados celulares estudiados, que va desde 20 hasta 170 nm para los   cristales de La Fe, con un promedio de 82,5 <u>+</u> 18,2 nm, y   de 20 hasta 140 nm para cristales del lago Calima, con un promedio de 86,6 <u>+</u> 22,8 nm (<a href="#fig03">fig. 3a</a>). Es importante anotar adem&aacute;s que, de una forma general los   cristales de la represa de Calima se presentaron con longitudes mayores, siendo   que la mayor proporci&oacute;n de &eacute;stos se present&oacute; entre 80-100 nm, mientras que para la Fe la mayor&iacute;a estuvo entre 70-80 nm (<a href="#fig03">fig. 3a</a>).</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b><a name="fig03"></a><img src="/img/revistas/dyna/v77n162/a11fig03.gif">    <br>   Figura 3.</b> Porcentaje de Cristales de la represa La Fe y lago Calima Vs Tama&ntilde;o de los cristales. a) Longitud. b) Ancho. c) Relaci&oacute;n   ancho/largo.    <br>   <b>Figure 3.</b> La Fe dam and Calima Lake crystal percentage Vs crystal size. a) Length. b) Width. c) width/length</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><i>Ancho de los Cristales:</i> En la <a href="#fig03">figura 3b</a> se muestra la distribuci&oacute;n de los cristales seg&uacute;n el   ancho. Los cocos de Calima presentan una distribuci&oacute;n entre 10 - 90 nm con una   media de 58,3 <u>+</u> 12,8 nm. Los magnetococos de La Fe mostraron una distribuci&oacute;n amplia entre 20 - 150 nm, con una media de   68,5 <u>+</u> 19,5 nm. </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><i>Factor forma<b>: </b></i>Los resultados muestran que, en general, los cocos de   la represa La Fe son m&aacute;s anchos, pero m&aacute;s cortos que los del   lago Calima. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La dispersi&oacute;n de este factor para los   magnetosomas del lago Calima est&aacute; entre 0,4 y 1,8, mientras que para La Fe est&aacute; entre 0,4 y 1,5, con una media de 0,7 y 0.84 para la Fe y Calima respectivamente (<a href="#fig03">fig. 3c</a>).</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La estructura de dominios en las part&iacute;culas magn&eacute;ticas est&aacute; determinada   principalmente por el volumen de las mismas &#91;26&#93;. As&iacute;, cuando el tama&ntilde;o de las   part&iacute;culas disminuye, el tama&ntilde;o de los dominios y ancho de los l&iacute;mites se   reducen, de modo que, por debajo de un tama&ntilde;o cr&iacute;tico, la energ&iacute;a debida a los   l&iacute;mites de los dominios es mayor que la energ&iacute;a magnetost&aacute;tica debida a una   magnetizaci&oacute;n uniforme, por lo que la part&iacute;cula adopta una estructura de   monodominio &#91;27&#93;. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los resultados obtenidos al comparar los   tama&ntilde;os de los magnetosomas en las MTBs tipo coco de las dos zonas de estudio   concuerdan con las descripciones realizadas de magnetosomas en otros estudios   que reportan cristales de magnetosomas de aproximadamente 35 - 140 nm de   longitud &#91;17,21,22,28,29&#93;. Dicho tama&ntilde;o clasifica a los cristales como   magnetos biog&eacute;nicos de dominio &uacute;nico (SD) con momentos dipolares permanentes &#91;30&#93;, permitiendo que la part&iacute;cula maximice su   eficiencia como un transportador magn&eacute;tico &#91;21&#93;. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Al representar las dimensiones de los cristales magn&eacute;ticos intracelulares   de las MTBs cocoidales de La   Fe y Calima en el modelo de   clasificaci&oacute;n de dominio magn&eacute;tico te&oacute;rico de Butler - Banerjee (<a href="#fig04">fig. 4</a>) se corrobora que la mayor&iacute;a   de los cristales caen en el campo de estructura de dominio &uacute;nico (SD), los   cuales son estable y uniformemente   magnetizados, siendo capaces de   preservar la direcci&oacute;n de su momento magn&eacute;tico. Sin embargo, hay un porcentaje importante   de magnetosomas con tama&ntilde;o menor a 30 nm, que cae en el rango   superparamagn&eacute;tico (SPM) (2,27% para los cocos de la represa La Fe y 3,43% de cocos de Calima), con una magnetizaci&oacute;n uniforme, pero con momentos no   constantes en direcci&oacute;n por reversiones del momento magn&eacute;tico, generando un   momento promedio igual a cero &#91;31,32&#93;.</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b><a name="fig04"></a>Figura 4.</b> Campo de estabilidad del dominio &uacute;nico de la magnetita en funci&oacute;n del factor forma y de la longitud. Los   esquemas de la derecha representan el arreglo de los momentos magn&eacute;ticos en part&iacute;culas con dominio doble,   monodominio y superparamagn&eacute;ticas. La l&iacute;nea punteada inferior muestra el l&iacute;mite SD/superparamagn&eacute;tico, determinado   por paralelep&iacute;pedos rectangulares (Butler y Banerjee, 1975). Tambi&eacute;n se estima la longitud m&iacute;nima SD en el factor forma   cercana a 1. La l&iacute;nea punteada superior separa el campo SD estable del campo SD metaestable, tomado a partir de   modelos micromagn&eacute;ticos de Witt et al. (2005) para cristales de magnetosomas con formas caracter&iacute;sticas. La l&iacute;nea   punteada roja muestra la ubicaci&oacute;n de los cristales de MTBs de la represa La Fe y Lago Calima. Las regiones sombreadas   marcan el tama&ntilde;o y forma de cristales de bacterias magnetot&aacute;cticas (Tomado de Kopp y Kirschvink, 2008 &#91;33&#93;).     <br>   <b>Figure 4.</b> Stability field of single domain magnetite in function of form factor and length. The diagrams on the right   represent the arrangement of magnetic moments in double domain, single domain and superparamagnetic particles. The   lower dotted line shows the SD/superparamagnetic limit determined by rectangular parallelepipeds (Butler and Banerjee,   1975). It is also estimated the shortest length in the SD form factor close to 1. The upper dotted line separates the stable SD   field of metastable SD field, taken from Witt et al. (2005) micromagnetic models for magnetosomes crystals with   characteristic shapes. The red dotted line shows the location of MTB crystals from La Fe dam and Calima Lake. The   shaded regions mark the size and shape of MTB crystals (From Kopp and Kirschvink, 2008 &#91;33&#93;). </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El modelo muestra que al disminuir el tama&ntilde;o   de part&iacute;cula, se entra en un tama&ntilde;o cr&iacute;tico en el que el grano no puede alargar   la pared del dominio. Por debajo de ese tama&ntilde;o cr&iacute;tico, la estructura de SD es   el estado de energ&iacute;a m&aacute;s baja.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> El tama&ntilde;o cr&iacute;tico depende de varios   par&aacute;metros (magnetizaci&oacute;n de saturaci&oacute;n, anisotrop&iacute;a magnetocristalina,   intercambio de energ&iacute;a y forma del grano). As&iacute;, el modelo predice que el l&iacute;mite   SD - TD (dos dominios) es de 76 nm y que con el incremento en la elongaci&oacute;n de   la part&iacute;cula, incrementa el tama&ntilde;o cr&iacute;tico llegando a tener un factor forma &lt;0,2.   La anisotrop&iacute;a de forma aumenta el l&iacute;mite SD con disminuci&oacute;n en la raz&oacute;n para   part&iacute;culas no equidimensionales &#91;32&#93;. </font></p>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>4. CONCLUSIONES</b></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Con este trabajo se determin&oacute; la presencia de cocos   con actividad magnetot&aacute;ctica en la represa La Fe, Antioquia y Lago   Calima, (Valle del Cauca), que no hab&iacute;an sido reportadas en </font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Colombia, cuya velocidad de nado parece   depender de la disposici&oacute;n y cantidad de los </font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">cristales en la c&eacute;lula, encontrando mayor   velocidad en cocos con cristales dispuestos en </font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">cadena y menor en cocos con cristales   agrupados.Por EDX se determin&oacute; que los nanocristales sintetizados por los   magnetotocos en estudio son &oacute;xidos de hierro tipo magnetita y no sulfuros    de hierro, tipo greigita. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Dichos cristales mostraron diferencias en   forma y tama&ntilde;o, resultantes del control cristaloqu&iacute;mico ejercido por cada   microorganismo en el proceso biomineralizaci&oacute;n.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Se mostr&oacute; que la gran mayor&iacute;a de   los cristales pertenecen a una estructura de dominio magn&eacute;tico &uacute;nico, con la   presencia de algunos cristales que caen en el rango superparamagn&eacute;tico al   poseer tama&ntilde;os menores a 30 nm.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En general, los resultados obtenidos muestran ligeras diferencias entre   los magnetosomas de los magnetococos de los dos sitios en estudio, con   diferencias en tama&ntilde;o y n&uacute;mero de cristales que no se consideran significativas   entre los dos tipos de cocos encontrados, aunque las peque&ntilde;as diferencias presentadas   y las diferencias en los microambientes de donde se obtuvieron las MTBs pueden   ser se&ntilde;ales de tener dos especies bacterianas diferentes, sin embargo es   necesario realizar an&aacute;lisis filogen&eacute;ticos que permitan afirmarlo. </font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>5. AGRADECIMIENTOS</b></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los autores agradecen al Programa   Nacional de Biotecnolog&iacute;a de Colciencias por la financiaci&oacute;n del proyecto. A   Empresas P&uacute;blicas de Medell&iacute;n (EEPPM) y COMFENALCO y a Empresas El&eacute;ctricas del   Pac&iacute;fico S.A. por autorizar el muestreo y facilitar la log&iacute;stica en la represa La Fe y Lago Calima respectivamente. Al Instituto de Microbiolog&iacute;a Profesor   Paulo de G&oacute;es de la Universidad   Federal de R&iacute;o de Janeiro, al laboratorio   de Mineralog&iacute;a Aplicada de la Universidad Nacional de Colombia, Sede Medell&iacute;n. A.L.M. agradece el apoyo   parcial del CODI, Universidad de Antioquia.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>REFERENCIAS</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>&#91;1&#93;</b> AMEMIYA, Y., ARAKAKI, A., STANILAND, S., TANAKA, T., MATSUNAGA, T. Controlled formation of magnetite crystal by partial oxidation of ferrous hydroxide in the presence of recombinant magnetotactic bacterial protein Mms6. Biomaterials, 28, 35, 5381-5389, 2007.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0012-7353201000020001100001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   <b>&#91;2&#93;</b> HAN, L., LI S., YANG, Y., ZHAO, F., HUANG, J., CHANG, J. Comparison of magnetite nanocrystal formed by biomineralization and chemosynthesis, J. of magnetism and magnetic material, 312, 236-242, 2007.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0012-7353201000020001100002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   <b>&#91;3&#93;</b> BLAKEMORE, R., MARATEA, D. AND WOLFE, R. Isolation and pure culture of a freshwater magnetic spirillum in chemically defined medium, J. of Bacteriology, 140, 720-729, 1979.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0012-7353201000020001100003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   <b>&#91;4&#93;</b> FRANKEL, R., PAPAEFTHYMIOU, G, BLAKEMORE, R., O'BRIEN, W. Fe3O4 precipitation in magnetotactic bacteria, Biochimica et Biophysica Acta (BBA)- Molecular Cell Research, 763, 2, 22, 147-159, 1983.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0012-7353201000020001100004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   <b>&#91;5&#93;</b> BAZYLINSKI, D., HEYWOOD, B., MANN, S., FRANKEL, R. Fe3O4 and Fe3S4 in a bacterium, Nature, l, 366, 218, 1993.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0012-7353201000020001100005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   <b>&#91;6&#93;</b> DUBBELS, B., DISPIRITO, A., MORTON, J., SEMRAU, J., NETO, J., BAZYLINSKI, D. Evidence for a copper-dependent iron transport system in the marine, magnetotactic bacterium strain MV-1, Microbiology, 150, 2931-2945, 2004.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0012-7353201000020001100006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   <b>&#91;7&#93;</b> SCHÜLER, D., BAEUERLEIN, E. Iron-limited growth and kinetics of iron uptake in Magnetospirillum gryphiswaldense. Arch. Microbiol., 166, 301-307, 1996.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0012-7353201000020001100007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   <b>&#91;8&#93;</b> BAZYLINSKI D., SPRING, S. Magnetotactic bacteria. Disponible en Internet: <a href="http://141.150.157.117:8080/prokPUB/chaphtm/281/complete.htm" target="referencia">http://141.150.157.117:8080/prokPUB/chaphtm/281/complete.htm</a>. 2000.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0012-7353201000020001100008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   <b>&#91;9&#93;</b> AMERICAN PUBLIC HEALTH ASSOCIATION; AMERICAN WATER WORK ASSOCIATION; WATER POLLUTION CONTROL FEDERATION. 1992. M&eacute;todos normalizados para el an&aacute;lisis de agua potables y residuales. 17ª edici&oacute;n.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0012-7353201000020001100009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   <b>&#91;10&#93;</b> LINS, U., FREITAS, F., KEIM, C., LINS DE BARROS, H., ESQUIVEL, D., FARINA, M. Simple homemade apparatus for harvesting uncultured magnetotactic microorganisms, Braz J Microbiol., 34, 111-116, 2003.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0012-7353201000020001100010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   <b>&#91;11&#93;</b> SIMMONS, S., SIEVERT, S., FRANKEL, R., BAZYLINSKY, D., EDWARDS, K. Spaciotemporal Distribution of Marine Magnetotactic Bacteria in a Seasonally Stratified Coastal Salt Pond, Applied and Enviromental Microbiology, 70, 10, 6230-6239, 2004.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0012-7353201000020001100011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   <b>&#91;12&#93;</b> THOMAS-KEPRTA, K., CLEMETT, S., BAZYLINSKI, D., KIRSCHVINK, J., MCKAY, D., WENTWORTH, S., VALII, H., EVERETT, K., GIBSON, J., MCKAY, M., ROMANEK, C. Truncated hexa-octahedral magnetite crystals in ALH84001: Presumptive biosignatures. Edited by Bruce Watson, Rensselaer Polytechnic Institute, Troy, NY. PNAS., Vol. 98. N° 5. 2001.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0012-7353201000020001100012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   <b>&#91;13&#93;</b> SILVA, K., ABREU, F., ALMEIDA, F., KEIM, C., FARINA, M., LINS, U. Flagellar apparatus of south - seeking many - celled maganetotoactic prokaryotes, Microsc Res Tech., 70, 10-17, 2007.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0012-7353201000020001100013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   <b>&#91;14&#93;</b> MANN, S., FRANKEL, R. Magnetite biomineralization in unicellular organisms. In: Biomineralization: Chemical and Biochemical Perspectives. Mann S, Webb J, Williams RJP (eds) VCH Publishers, New York. 389 - 426. 1989.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0012-7353201000020001100014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   <b>&#91;15&#93;</b> BALKWILL, R., HUGH, R., MARC, B. Late phanerozoic structures, Canadian Arctic Archipelago, Palaeogeography, Palaeoclimatology, Palaeoecology, 30, 219-227, 1980.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0012-7353201000020001100015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   <b>&#91;16&#93;</b> MANN, S., SPARKS, N., FRANKEL, R., BAZYLINSKI, D., JANNASCH, H. Biomineralization of ferromagnetic greigite (Fe3O4 and iron pyrite (FeS2) in a magnetotactic bacterium. Nature, 343, 258-261, 1990.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0012-7353201000020001100016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   <b>&#91;17&#93;</b> SCHÜLER, D. Magnetoreception and Magnetosomes in Bacteria, Microbiology Monographs, Spring. 3 edition. Vol. 3. 2007.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0012-7353201000020001100017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   <b>&#91;18&#93;</b> GORBY, Y., BEVERIDGE, T., BLAKEMORE, R. Characterization of the Bacterial Magnetosome Membrane, J. Bacteriol., 170, 834-841, 1988.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0012-7353201000020001100018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   <b>&#91;19&#93;</b> GRÜNBERG, K., MULLER, E., OTTO, A., RESZKA, R., LINDER, D., KUBE, M., REINHARDT, R., SCHÜLER, D. Biochemical and proteomic analysis of the magnetosome membrane in Magnetospirillum gryphiswaldense, Appl Environ Microb., 70, 1040-1050, 2004.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0012-7353201000020001100019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   <b>&#91;20&#93;</b> KOMEILI, A., LI, Z., NEWMAN, D., JENSEN, G. Magnetosomes are cell membrane invaginations organized by the actin-like protein MamK, Science, 311, 242-245, 2006.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0012-7353201000020001100020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   <b>&#91;21&#93;</b> THOMAS-KEPRTA, K., BAZYLINSKI, D., KIRSCHVINK, J., CLEMETT, S., MCKAY, D., WENTWORTH, S., VALII, H., GIBSON, E., ROMANEK, C. Elongated prismatic magnetite crystals in ALH84001 carbonate globules: Potential Martian magnetofossils, Geochimica et Cosmochimica Acta, 64, 23, 4049-4081, 2000.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0012-7353201000020001100021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   <b>&#91;22&#93;</b> COX, B., POPA, R., BAZYLINSKI, D., LANOIL, B., DOUGLAS, S., BELZ, A., ENGLER, D., NEALSON, K. Organization and Elemental Analysis of P, S, and Fe rich Inclusions in a Population of Freshwater Magnetococci, Geomicrobiology Journal, 19, 387-406, 2002.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0012-7353201000020001100022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   <b>&#91;23&#93;</b> BLAKEMORE, R. Magnetotactic bacteria, Ann. Rev. Microbiol. 36, 217-238, 1982.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0012-7353201000020001100023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   <b>&#91;24&#93;</b> SCHÜLER, D., FRANKEL, R. Bacterial magnetosomes: microbiology, biomineralization and biotechnological applications, Appl Microbiol Biotechnol., 52, 464-473, 1999.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S0012-7353201000020001100024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   <b>&#91;25&#93;</b> SCHÜLER, D. The biomineralization of magnetosomes in Magnetospirillum gryphiswaldense. Int Microbiol., 5, 209-214, 2002.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0012-7353201000020001100025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   <b>&#91;26&#93;</b> CULLITY, B. Domains and the magnetization process. In: Intruduction to magneticmaterials. Addison-Wesley. Reading, Massachusetts. 287-352, 1972.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S0012-7353201000020001100026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   <b>&#91;27&#93;</b> D&Aacute;VILA, A. Detection and function of biogenic magnetite. T&eacute;sis doctoral. Ludwig Maximilians UniverstitÄat MÄunchen, Deutschland. 135. 2005.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0012-7353201000020001100027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   <b>&#91;28&#93;</b> BAZYLINSKI, D., GARRATT-REED, A., FRANKEL, R. Electron microscopic studies of magnetosomes in magnetotactic bacteria, Microscopy Res. Tech., 27, 389-401, 1994.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000120&pid=S0012-7353201000020001100028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   <b>&#91;29&#93;</b> P&Oacute;SFAI, M., MOSKOWITZ, B., ARAT&Oacute;, B., SCHÜLER, D., FLIES, C., BAZYLINSKI, D., FRANKEL, R. Properties of intracellular magnetite crystals produced by Desulfovibrio magneticus strain RS-1, Earth and Planetary Science Letters, 246, 444-455, 2006.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0012-7353201000020001100029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   <b>&#91;30&#93;</b> BAZYLINSKI, D., FRANKEL, R. Magnetic iron oxide and iron sulphide minerals within microorganims: Potencial biomarkers. In: Biomineralization. Progress in Biology, molecular biology and application. 2° completed revised and extended edition. Edited by Edmun Baeuerlein. 17-43, 2004.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000122&pid=S0012-7353201000020001100030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   <b>&#91;31&#93;</b> ROBIN, C., LYNN, J. Magnetofossils, the magnetization of sediments, and the evolution magnetite biomineralization. Ann. Rev. Earth Planet. Sci., 17, 169-95, 1989.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0012-7353201000020001100031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   <b>&#91;32&#93;</b> BAZYLINSKI, D., MOSKOWITZ, B. Microbial mineralization of magnetic iron minerals. Microbiology, magnetism and environmental significance. In Geomicrobiology. 181-223, 2003.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000124&pid=S0012-7353201000020001100032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   <b>&#91;33&#93;</b> KOPP, R., KIRSCHVINK, J. The identification and biogeochemical interpretation of fossil magnetotactic bacteria, Earth-Science Reviews, 86, 42-61, 2008.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S0012-7353201000020001100033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   <b>&#91;34&#93;</b> WITT, A., FABIAN, K., BLEIL, U. Three-dimensional micromagnetic calculations for naturally shaped magnetite: octahedra and magnetosomes, Earth And Planetary Science Letters, 233, 311-324. 2005. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000126&pid=S0012-7353201000020001100034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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