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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Propiedades antimicrobianas in vitro de metabolitos secundarios aislados de Peltostigma guatemalense, una especie colombiana de Rutaceas contra el parásito Plasmodium falciparum y contra cepas bacterianas]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[With the study of extracts Peltostigma guatemalense, some fraction without purify and isolated metabolites were found antimicrobial activity against Gram-positive bacteria Staphylococcus aureus ATCC 6538 and Enterococcus faecalis ATCC 29212 and Gram-negative Salmonella typhimurium ATCC 14028s and MS 7953 and as antiparasitic activity against Plasmodium falciparum. The metabolites isolated from extracts of ethanol extract of leaves and wood were: seven alkaloids &#947;-fagarine, anhidroevoxyn, evoxyn, skimmianine, 7-isopenthyloxi-&#947;-fagarina, kokusaginina and 4-methoxy-1-methyl-2- quinolone one coumarin, escopoletina, one flavonoid, gardenine B, one Lignan, syringaresinol, one terpene, lupeol, one sterol, sitosterol and two derivatives of benzoic acid: methyl-p-hydroxybenzoate, phenylacetic acid which were identified by spectroscopic methods and by comparison with the data reported in the literature. The alkaloid compounds, anhidroevoxyn, kokusaginine and 4- methoxy-1-methyl-2-quinolone, showed a strong anti Plasmodium activity and the compound p-hydroxybenzoate presented the most promising antimicrobial activity compared with the other compound tested.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p align="right">Art&iacute;culo de Investigaci&oacute;n</p>     <p align="center"><b><font size="4">Propiedades antimicrobianas <i>in vitro</i> de metabolitos secundarios aislados de <i>Peltostigma guatemalense</i>, una especie colombiana de Rutaceas contra el par&aacute;sito <i>Plasmodium falciparum</i> y contra cepas bacterianas</font></b></p>     <p align="center"><font size="3"><b><i>In vitro</i> antimicrobial properties of secondary metabolites from <i>Peltostigma guatemalense</i>, a Colombian Rutaceae specie, against the <i>Plasmodium falciparum</i> parasite and bacterial strains </b></font></p>     <p align="center">  Juan Manuel Lozano<sup>1</sup>, Luis Enrique Cuca Su&aacute;rez<sup>2</sup></p>       <p><sup>1</sup> Fundaci&oacute;n Instituto de Inmunolog&iacute;a de Colombia (FIDIC), Carrera 50 No. 26-00, Bogot&aacute;, Colombia. Tel.: +57-1-315-8920, ext. 139, fax +57-1-481-5269. Correo electr&oacute;nico: <a href="mailto"jmlozanom@ciencias.unal.edu.co>jmlozanom@ciencias.unal.edu.co</a>, <a href="mailto"jm_lozano@fidic.org.co>jm_lozano@fidic.org.co</a>    <br> <sup>2</sup> Universidad Nacional de Colombia, Bogot&aacute; Colombia, Facultad de Ciencias, Departamento de Farmacia.</p>     <p>Recibido para evaluaci&oacute;n: agosto 4 de 2008 Aceptado para publicaci&oacute;n: octubre 27 de 2008</p> <hr>      <p><b><font size="3">RESUMEN</font></b></p>      <p> Con el estudio de los extractos de Peltostigma guatemalense, algunas fracciones sin purificar y metabolitos aislados, se determin&oacute; la actividad antimicrobiana frente a bacterias gram positivas (<i>Staphylococcus aureus</i> ATCC 6538 y <i>Enterococcus faecalis</i> ATCC 29212) y gram negativas (<i>Salmonella typhimurium</i> ATCC 14028s y MS 7953) as&iacute; como la actividad antiparasitaria frente <i>Plasmodium falciparum</i>. Los metabolitos aislados de los extractos de hojas y extracto etan&oacute;lico de madera fueron: siete alcaloides, skimmianina, &gamma;-fagarina, anhidroevoxina, evoxina, 7-isopentiloxi-&gamma;-fagarina, kokusaginina y 4-metoxi-1-metil-2-quinolona, una cumarina, escopoletina, un flavonoide, gardenina B, un lignano, siringaresinol, un terpeno, Lupeol, un esterol, sitosterol y dos derivados del &aacute;cido benzoico: p-hidroxibenzoato metilo y &aacute;cido fenilac&eacute;tico, los cuales fueron identificados por m&eacute;todos espectrosc&oacute;picos y por comparaci&oacute;n con los datos reportados en la literatura. Los compuestos alcaloidales, anhidroevoxina, kokusaginina y 4-metoxi-1-metil-2-quinolona, mostraron una fuerte actividad anti <i>Plasmodium</i> y el compuesto p-hidroxibenzoato de metilo present&oacute; la actividad antimicrobiana m&aacute;s promisoria comparada con los dem&aacute;s compuestos ensayados.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Palabras clave</b>: <i>Peltostigma guatemalense</i>, Rutaceae, alcaloide, flavonoide, actividad anti <i>Plasmodium falciparum</i>, actividad antibacteriana.</p> <hr>      <p><b><font size="3">ABSTRACT</font></b></p>      <p> With the study of extracts Peltostigma guatemalense, some fraction without purify and isolated metabolites were found antimicrobial activity against Gram-positive bacteria <i>Staphylococcus aureus</i> ATCC 6538 and <i>Enterococcus faecalis</i> ATCC 29212 and Gram-negative <i>Salmonella typhimurium</i> ATCC 14028s and MS 7953 and as antiparasitic activity against <i>Plasmodium falciparum</i>. The metabolites isolated from extracts of ethanol extract of leaves and wood were: seven alkaloids &gamma;-fagarine, anhidroevoxyn, evoxyn, skimmianine, 7-isopenthyloxi-&gamma;-fagarina, kokusaginina and 4-methoxy-1-methyl-2- quinolone one coumarin, escopoletina, one flavonoid, gardenine B, one Lignan, syringaresinol, one terpene, lupeol, one sterol, sitosterol and two derivatives of benzoic acid: methyl-p-hydroxybenzoate, phenylacetic acid which were identified by spectroscopic methods and by comparison with the data reported in the literature. The alkaloid compounds, anhidroevoxyn, kokusaginine and 4- methoxy-1-methyl-2-quinolone, showed a strong anti <i>Plasmodium</i> activity and the compound p-hydroxybenzoate presented the most promising antimicrobial activity compared with the other compound tested.</p>      <p><b>Key words</b>:<i>Peltostigma guatemalense</i>, Rutaceae, alkaloid, flavonoid, anti <i>Plasmodium falciparum</i> activity, antibacterial activity.</p> <hr>      <p><b><font size="3">INTRODUCCI&Oacute;N</font></b></p>      <p> Durante las &uacute;ltimas cuatro d&eacute;cadas, la p&eacute;rdida de actividad antimicrobiana de los antibi&oacute;ticos convencionales, ocasionada por el incremento de la resistencia microbiana a los mismos, ha generado una crisis mundial antibi&oacute;tica constituy&eacute;ndose en un grave problema de salud p&uacute;blica. A pesar de la existencia de cientos de compuestos disponibles comercialmente, la vida &uacute;til de los antibi&oacute;ticos tradicionales ha decrecido ostensiblemente debido a la "habilidad" de los microorganismos para desarrollar estrategias moleculares de resistencia y adem&aacute;s para transferir tal informaci&oacute;n biol&oacute;gica a otros microbios pat&oacute;genos.</p>      <p>Es as&iacute; como las bacterias y algunos hongos coexisten en una asociaci&oacute;n f&iacute;sica constante junto a diferentes especies de animales y plantas. Sin embargo, una enfermedad ocasionada por un microorganismo pat&oacute;geno de tipo bacteriano u hongo, el cual llega a ocupar un nicho particular en un hospedero, da a lugar a su proliferaci&oacute;n y al desarrollo de sus factores de virulencia y a desarrollar nuevos mecanismos para la evasi&oacute;n del sistema inmune del hospedero.</p>      <p>Por estas razones, urge el desarrollo de nuevos agentes antimicrobianos m&aacute;s potentes y tambi&eacute;n la necesidad de establecer nuevas estrategias para el control de las infecciones humanas de tipo bacteriano y parasitario, entre otras.</p>      <p>La incidencia global de una enfermedad transmisible como la malaria, que anualmente afecta a entre 200 y 500 millones de personas, causando la muerte a entre dos y tres millones de ellas -principalmente ni&ntilde;os menores de cinco a&ntilde;os en los pa&iacute;ses pobres- (1), requiere soluciones prontas basadas, por una parte, en el descubrimiento de nuevos agentes terap&eacute;uticos para el control de las cepas emergentes del <i>Plasmodium</i> resistentes a los antimal&aacute;ricos convencionales y, por otra, en el desarrollo de nuevas y m&aacute;s potentes vacunas para prevenir esta enfermedad. La obtenci&oacute;n de nuevas y m&aacute;s potentes vacunas contra la malaria, as&iacute; como el descubrimiento de nuevos agentes terap&eacute;uticos basados en agentes de tipo no pept&iacute;dico o proteico, posibilitar&aacute;n cambiar o modificar los patrones y las estrategias terap&eacute;uticas tradicionales para el manejo y control de este tipo de enfermedades y, en consecuencia, alterar los patrones de diseminaci&oacute;n normales en el mundo de las mismas. El estudio de las tradiciones culturales y etnobot&aacute;nicas Latinoamericanas est&aacute; consolid&aacute;ndose progresivamente como un componente de gran importancia en el descubrimiento de nuevos f&aacute;rmacos.</p>       <p>Las plantas del g&eacute;nero <i>Peltostigma</i> pertenecen a la tribu Zanthoxyleae (Rutaceae: Rutoideae), que incluye a la subtribu <i>Choisyinae</i>. Este g&eacute;nero est&aacute; conformado por tres especies: <i>P. exinium</i>, <i>P. parviforum</i> y <i>P. ptelioides</i>, cuya principal caracter&iacute;stica son sus grandes flores de agradable aroma. Los programas de colecci&oacute;n bot&aacute;nica desde Colombia hasta Costa Rica permitieron el descubrimiento de la <i>Peltostigma</i>, una especie relativamente nueva que difiere de las reportadas anteriormente debido a sus hojas sencillas y de flores m&aacute;s peque&ntilde;as (2, 3).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En este trabajo reportamos el aislamiento y la identificaci&oacute;n de siete alcaloides, una cumarina, un flavonoide, un lignano, dos terpenos y un derivado del &aacute;cido fenilac&eacute;tico a partir de los extractos etan&oacute;licos de madera y hojas. Con estos extractos se realizaron estudios preliminares de actividad antibacteriana y antiparasitaria contra <i>Plasmodium falciparum</i> <i>in vitro</i>.</p>      <p>La actividad biol&oacute;gica de los compuestos aislados se ensay&oacute; <i>in vitro</i> empleando para ello cada extracto frente a microorganismos pat&oacute;genos al humano y al rat&oacute;n. Se emplearon dos cepas de bacterias gram positivas (<i>Staphylococcus aureus</i> ATCC 6538 y <i>Enterococcus faecalis</i> ATCC 29212) y dos cepas de bacterias gram negativas (<i>Salmonella typhimurium</i> ATCC 14028s) y MS 7953. La actividad contra el <i>Plasmodium falciparum</i> se evalu&oacute; frente a la cepa FCB-2 de este pat&oacute;geno causante de malaria humana.</p>      <p><b><font size="3">MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</font></b></p>      <p><b>Material vegetal</b></p>      <p>El material analizado corresponde a extractos de hojas y madera de <i>Peltostigma guatemalense</i> (Rutaceae), recolectada en febrero de 1999 en la regi&oacute;n de San Luis (R&iacute;o Claro Antioquia) por el bot&aacute;nico &aacute;lvaro Cogollo Pacheco. Una muestra de este material se mantiene en el herbario de la Fundaci&oacute;n Jard&iacute;n Bot&aacute;nico Rafael Uribe Uribe en la ciudad de Medell&iacute;n (Colombia), codificado con el n&uacute;mero 24509.</p>      <p><b>Extracci&oacute;n, aislamiento e identificaci&oacute;n de los compuestos</b></p>      <p>A partir de las hojas secas y maceradas (2.750 g) y mediante el uso de la metodolog&iacute;a convencional utilizada en Productos Naturales Vegetales, se aislaron e identificaron los siguientes compuestos: skimmianina (4) -8 mg-, &gamma;-fagarina (5) -14 mg-, 7-isopentiloxi&gamma;-fagarina (5) -11 mg-, gardenina B (6) -190 mg-, lupeol (4) -1.024 mg- y sitosterol (4) -243 mg-; &aacute;cido fenilac&eacute;tico (7) -128 mg-, anhidroevoxina (5) -13 mg-, evoxina (5) -41 mg-, escopoletina (8) -92 mg-, p-hidroxibenzoato metilo (8) -117 mg-, kokusaginina (5) -125 mg-, 4-metoxi-1-metil-2-quinolona (5) -34 mg- y siringaresinol (8) -720 mg-.</p>      <p><b>Actividad biol&oacute;gica de los compuestos de <i>Peltostigma guatemalense</i></b></p>     <p><b>Ensayos de actividad antibacteriana <i>in vitro</i></b></p>      <p>La actividad antibacteriana de los extractos crudos de <i>Peltostigma guatemalense</i> y de sus compuestos purificados se probaron contra dos cepas bacterias gram positivas (<i>Staphylococcus aureus</i> ATCC 6538 y <i>Enterococcus faecalis</i> ATCC 29212), obtenidas del IBUN, Instituto de Biotecnolog&iacute;a, Universidad Nacional de Colombia. Tambi&eacute;n se probaron frente a dos cepas de bacterias gram negativas (<i>Salmonella typhimurium</i> ATCC 14028s y MS 7953), gentilmente proporcionadas para este estudio por el doctor E. Groisman, Washington University, St. Louis, MO, USA.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Las muestras se ensayaron para actividad antibacteriana mediante ensayos <i>in vitro</i> de difusi&oacute;n radial empleando una adaptaci&oacute;n hecha de un ensayo semejante reportado previamente (9).</p>      <p>Brevemente, una colonia de cada cepa bacteriana en ensayo se inocul&oacute; en 2 mL de medio de cultivo l&iacute;quido (caldo) durante toda la noche, a 37&deg;C con agitaci&oacute;n. Posteriormente se realiz&oacute; un in&oacute;culo bacteriano de 200 a 500 &micro;L en 25 a 50 mL de medio fresco; seg&uacute;n el caso, se emple&oacute; tripticasa de soya (TSB) al 3% (w / v) o medio l&iacute;quido de Luria Bertoni (LB) (Becton-Dickinson, Cockesville, MD, USA) con agitaci&oacute;n a 37&deg;C. Una vez cada microorganismo alcanz&oacute; la fase logar&iacute;tmica de crecimiento entre 2,5 y 5 horas, el material se centrifug&oacute; a 10.000 rpm durante 10 minutos a 4&deg;C. Seguidamente se realizaron dos lavados con una soluci&oacute;n 10 mM buffer fosfato salino (PBS) pH 7.2 y el sedimento bacteriano se suspendi&oacute; en 10 mL del buffer fr&iacute;o. Posteriormente se determin&oacute; la densidad &oacute;ptica (DO) de cada suspensi&oacute;n a una longitud de onda de 620 nm y se cuantific&oacute; el crecimiento de cada cepa teniendo en cuenta la relaci&oacute;n reportada de DO<sub>620</sub> 0.20 = 5 x 10<sup>7</sup> UFC / mL. En seguida se tom&oacute; un volumen equivalente a 1 a 4 x 10<sup>6</sup> UFC, el cual se adicion&oacute; a 14 mL de una suspensi&oacute;n precalentada que conten&iacute;a 3 mg de medio TSB, agarosa de baja electroendo&oacute;smosis al 1% (w/v) (Sigma Chemical Co, Saint Louis, MO, USA) y Tween-20 al 0.02% (v/v) (Sigma Chemical Co, Saint Louis, MO, USA). Luego de que las bacterias se dispersaron homog&eacute;neamente, la suspensi&oacute;n de agar se sirvi&oacute; en cajas pl&aacute;sticas de Petri (Nunc, Naperville, IL, USA) y se dejaron en reposo para dar lugar a una capa uniforme solidificada. Luego del enfriamiento, se realizaron perforaciones de 3 mm de di&aacute;metro sobre la mezcla homog&eacute;nea agar-bacterias, empleando para ello un sacabocados de acero inoxidable. Luego se adicionaron las muestras a ensayar, incluidos los controles positivos y negativos, en vol&uacute;menes entre 5-10 &micro;L por pozo. Las cajas se incubaron durante aproximadamente 3 horas a 37&deg;C, para luego ser cubiertas con una capa constituida por un volumen aproximado de 10 mL de un medio enriquecido en nutrientes que permite su solidificaci&oacute;n. Finalmente, luego de 12 a 16 horas de incubaci&oacute;n a 37&deg;C, se determin&oacute; el valor del di&aacute;metro de inhibici&oacute;n del crecimiento bacteriano causado por las muestras en prueba. Los controles del ensayo fueron los antibi&oacute;ticos est&aacute;ndar Kanamicina, Ampicilina y Tetraciclina para efectos de comparaci&oacute;n y tamizado de las diferentes muestras. Luego de este tamizado por difusi&oacute;n radial, se seleccionaron aquellas muestras promisorias para evaluaci&oacute;n de actividad antibacteriana mediante ensayos cuantitativos <i>in vitro</i>. Las zonas claras correspondieron en todos los casos a la inhibici&oacute;n del crecimiento bacteriano causadas por la muestra en prueba. El valor de las Unidades de Actividad (UA) se report&oacute; de acuerdo con la relaci&oacute;n de que por cada 0.1 mm de zona clara producida por la inhibici&oacute;n del crecimiento bacteriano es igual a 1 UA (3). Las muestras positivas seleccionadas mediante el ensayo de difusi&oacute;n radial se evaluaron con ensayos antibacterianos de tipo cuantitativo. Este ensayo es una modificaci&oacute;n del primero para el cual se evalu&oacute; el crecimiento continuo de 10.000-1 x 10<sup>6</sup> UFC durante el tiempo de incubaci&oacute;n a 37&deg;C de cada cepa bacteriana en presencia o ausencia de los controles y muestras en prueba. La inhibici&oacute;n del crecimiento bacteriano se calcul&oacute; como porcentaje (%) de inhibici&oacute;n de crecimiento = 100 x (DO<sub>620</sub> bacterias totales - DO<sub>620</sub> medio) - (DO<sub>620</sub> muestra en prueba - DO<sub>620</sub> blanco) / (OD<sub>620</sub> bacteria totales - DO<sub>620</sub> blanco).</p>      <p><b>Ensayos <i>in vitro</i> de actividad antiparasitaria contra <i>Plasmodium falciparum</i></b></p>      <p>Las muestras tambi&eacute;n fueron evaluadas por su actividad antiparasitaria contra <i>Plasmodium falciparum</i> mediante el empleo de un ensayo reportado previamente (10).Para tal efecto, se emple&oacute; la cepa de malaria humana FCB-2 del <i>Plasmodium falciparum</i> en un cultivo rico en nutrientes y de gl&oacute;bulos rojos humanos del grupo sangu&iacute;neo O Rh (+).</p>      <p>Brevemente, el ensayo antiparasitario contra el <i>Plasmodium falciparum</i> se realiz&oacute; por infecci&oacute;n normal de gl&oacute;bulos rojos humanos con par&aacute;sitos de la malaria en estadio de anillo, hasta llegar a una parasitemia > 5%. En seguida se realiz&oacute; la sincronizaci&oacute;n de esta infecci&oacute;n en cultivo con el objeto de estabilizar una poblaci&oacute;n estadio-espec&iacute;fica del par&aacute;sito, empleando para ello sorbitol e incubaci&oacute;n en medio de cultivo celular RPMI-1640 suplementado con buffer Hepes 25 mM, hipoxantina 1 mg/mL, gentamicina 40 &micro;g/mL, penicilina 5 U/mL, glucosa 2 g/L, NaHCO<sub>3</sub> 5 % y plasma humano O + al 10%. </p>      <p>Una vez los par&aacute;sitos alcanzaron el estadio esquizonte, se distribuyeron cuantitativamente en una caja para cultivo celular de 96 pozos previamente servida con las muestras a analizar. El volumen final por pozo fue de 100 &micro;L, con un hematocrito de 1,5% y 0,3% de parasitemia. Todas las muestras se ensayaron por triplicado y se incubaron durante 18 horas a 37&deg;C, en una atm&oacute;sfera de CO<sub>2</sub> al 5%, O<sub>2</sub> al 5% y N<sub>2</sub> al 90%. Posteriormente, las cajas se centrifugaron, las c&eacute;lulas se cosecharon y de cada sobrenadante del cultivo se retiraron 50 &micro;L, siendo reemplazados por 100 &micro;L de una suspensi&oacute;n de leche descremada con una concentraci&oacute;n de 15 &micro;g/mL de hidroetidina. Seguidamente se incubaron durante otros 30 minutos a 37&deg;C y posteriormente se realizaron lavados con PBS. El sedimento obtenido se resuspendi&oacute; en 300 &micro;L PBS y esta suspensi&oacute;n celular se verti&oacute; en tubos de poliestireno con el objeto de cuantificar los porcentajes de parasitemia en cada muestra mediante la t&eacute;cnica de citometr&iacute;a de flujo, en un equipo FACScan (Becton Dickinson, San Jos&eacute;, CA, USA). La secuencia de eventos se registr&oacute; y analiz&oacute; empleando el programa Cell Quest del mismo fabricante. La cantidad de gl&oacute;bulos rojos parasitados se cuantific&oacute; por an&aacute;lisis de cuadrantes. Los gl&oacute;bulos rojos normales y los parasitados por el <i>Plasmodium falciparum</i> en presencia de una concentraci&oacute;n de EGTA 15 &micro;g/mL se emplearon como los controles negativo y positivo del ensayo, respectivamente. La inhibici&oacute;n de la invasi&oacute;n del par&aacute;sito a los gl&oacute;bulos rojos se calcul&oacute; mediante la relaci&oacute;n: % I I = (% parasitemia del control - % parasitemia de la muestra) / (% parasitemia del control) multiplicado por 100.</p>      <p><b><font size="3">RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N </font></b></p>      <p><b>Actividad antibacteriana de los compuestos aislados de <i>Peltostigma guatemalense</i></b></p>      <p><b>Ensayo cualitativo de difusi&oacute;n radial</b></p>      <p> Se analizaron extractos crudos obtenidos de hojas y madera de la <i>Peltostigma guatemalense</i> mostrando perfiles de actividad contra bacterias, como se observa en la <a href="#tab01">Tabla 1</a>, siendo los extractos provenientes de las hojas mucho m&aacute;s activos. Algunos de los extractos obtenidos mostraron propiedades antibacterianas luego de ser fraccionados por reparto en solventes; por ejemplo, el extracto en cloroformo de hojas fue activo contra los dos tipos de cepas de bacterias ensayadas tanto gram positivas como gram negativas. El extracto obtenido en acetato de etilo a partir de las hojas de la <i>Peltostigma guatemalense</i>, as&iacute; como el extractos de la madera de esta planta  obtenidos en &eacute;ter de petr&oacute;leo, &eacute;ter et&iacute;lico y en fase acuosa, no presentaron actividad contra ninguna de las cepas bacterianas.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>    <center><a name="tab01"></a><img src="img/revistas/rccqf/v37n2/v37n2a05tab01.gif"></center></p>      <p><b>Ensayo cuantitativo de actividad antibacteriana</b></p>      <p> El ensayo cuantitativo de actividad antibacteriana se realiz&oacute; empleando los extractos crudos que fueron positivos en los ensayos de tamizado cualitativos realizados por la t&eacute;cnica de difusi&oacute;n radial. Los extractos obtenidos por fraccionamiento del extracto total etan&oacute;lico a partir de las muestras de <i>Peltostigma guatemalense</i>, mediante fraccionamiento por reparto con solventes de polaridad creciente, tambi&eacute;n fueron evaluados, como se puede observar en la <a href="#tab02">Tabla 2</a>. Los compuestos puros aislados de los diferentes extractos tambi&eacute;n fueron sometidos a an&aacute;lisis antimicrobianos, como se describi&oacute; en la secci&oacute;n de materiales y m&eacute;todos. Las densidades &oacute;pticas (DO) se midieron a una longitud de onda de 620 nm a diferentes tiempos, 0, 5 y 24 horas luego de iniciarse la prueba. Un valor superior a 25% de inhibici&oacute;n del crecimiento bacteriano se consider&oacute; como estad&iacute;sticamente significativo. No fue posible detectar actividad inhibitoria alguna del crecimiento bacteriano para algunas de las muestras ensayadas debido a interferencias producidas por el desarrollo del color propio de las mismas, por lo que fueron reportadas como ND (actividad no detectada o determinada).</p>     <p>    <center><a name="tab02"></a><img src="img/revistas/rccqf/v37n2/v37n2a05tab02.gif"></center></p>      <p> Como puede observarse en la <a href="#tab02">Tabla 2</a>, los extractos etan&oacute;licos de corteza y madera no tuvieron efecto alguno en el crecimiento de ninguna de las cepas bacterianas analizadas, mientras que el extracto etan&oacute;lico de hojas inhibi&oacute; significativamente el crecimiento de <i>Enterococcus faecalis</i> en un 41.84 &plusmn; 1.25% luego de 24 horas. Este hecho sugiere la presencia de alg&uacute;n componente activo en este extracto responsable de la actividad antibacteriana. El extracto acuoso obtenido de la madera inhibi&oacute; el crecimiento de la misma cepa bacteriana en un 38.64 &plusmn; 1.28% luego de 5 horas de comenzado el ensayo, pero no se observ&oacute; efecto alguno posterior a este tiempo, probablemente debido a un efecto temporal de tipo bacteriost&aacute;tico. Un comportamiento semejante present&oacute; el extracto obtenido en acetato de etilo a partir de las hojas, inhibiendo el crecimiento bacteriano del <i>Enterococcus</i> en un 29.54 &plusmn; 1.32% s&oacute;lo a las 5 horas de la prueba. No se encontr&oacute; evidencia de actividad contra las cepas de bacterias gram negativas en ninguno de estos extractos.</p>      <p> Como se observa en la <a href="#tab03">Tabla 3</a>, los compuestos puros aislados de los extractos previamente estudiados mostraron una actividad inhibitoria diferencial contra todo el grupo de cepas bacterianas analizadas. La Gardenina B inhibi&oacute; pobremente el crecimiento de las cepas de bacterias gram negativas, mientras que mostr&oacute; una capacidad inhibitoria espec&iacute;fica contra la cepa gram positiva de <i>Staphylococcus aureus</i> en un 44.64 &plusmn; 1.12% 24 a las horas del ensayo. El p-hidroxibenzoato de metilo, por el contrario, mostr&oacute; cierta preferencia de actividad inhibitoria por las bacterias gram negativas, registrando valores de inhibici&oacute;n moderados de 20.32 &plusmn; 1.23% y 39.64 &plusmn; 1.44% a las 24 horas del ensayo frente a las cepas de <i>Salmonella typhimurium</i>.</p>     <p>    <center><a name="tab03"></a><img src="img/revistas/rccqf/v37n2/v37n2a05tab03.gif"></center></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Los compuestos kokusaginina y 7-isopentiloxi-&gamma;-fagarina evidenciaron actividad antibacteriana contra las cepas de bacterias gram positivas y una tendencia bacteriost&aacute;tica respecto a las cepas bacterianas gram negativas, de acuerdo con los datos mostrados en la <a href="#tab03">Tabla 3</a>.</p>      <p>Fue posible confirmar que los extractos de la <i>Peltostigma guatemalense</i> tuvieron una actividad antibacteriana moderada, como se observa en los ensayos de actividad cuantitativa del crecimiento bacteriano. Se demostr&oacute; tambi&eacute;n un incremento en la actividad inhibitoria espec&iacute;fica de los compuestos puros aislados de los extractos iniciales.</p>      <p><b>Actividad antiparasitaria contra <i>Plasmodium</i> de los compuestos asilados de <i>Peltostigma guatemalense</i>.</b></p>      <p> En este ensayo se observ&oacute; que algunos de los extractos crudos obtenidos fueron capaces de inhibir el proceso de invasi&oacute;n <i>in vitro</i> del par&aacute;sito de la malaria humana causada por el <i>Plasmodium falciparum</i> a gl&oacute;bulos rojos humanos, incluso a concentraciones de 35 ppm. Los extractos acuosos de madera de <i>Peltostigma guatemalense</i> mostraron los valores de actividad m&aacute;s bajos respecto a los dem&aacute;s extractos analizados, como se observa en la <a href="#fig01">Figura 1</a>.</p>     <p>    <center><a name="fig01"></a><img src="img/revistas/rccqf/v37n2/v37n2a05fig01.gif"></center></p>      <p> Los datos observados en la <a href="#fig01">Figura 1</a> revelan que los extractos etan&oacute;licos de madera y el extracto obtenido en &eacute;ter et&iacute;lico de las hojas fueron capaces de inhibir la invasi&oacute;n del <i>Plasmodium falciparum</i> en los gl&oacute;bulos rojos, incluso a concentraciones de 35 ppm. Los datos observados en la <a href="#fig02">Figura 2</a> muestran que los compuestos 4-metoxi- 1-metil-2-quinolona y p-hidroximetilbenzoato de metilo, respectivamente, inhibieron el proceso de invasi&oacute;n del par&aacute;sito de la malaria a gl&oacute;bulos rojos humanos, mientras que los compuestos kokusaginina, 7-isopentiloxi-&gamma;-fagarina y anhidroevoxina (alcaloides de tipo furoquinol&iacute;nico, inhibieron este proceso infectivo <i>in vitro</i> de una manera dependiente de la dosis. La gardenina B mostr&oacute; un efecto efectivo pero moderado respecto a este proceso infeccioso. Este compuesto se encuentra frecuentemente en plantas de la familia <i>Rutaceae</i>, pero rara vez aparece en plantas del g&eacute;nero <i>Peltostigma</i>.</p>      <p>    <center><a name="fig02"></a><img src="img/revistas/rccqf/v37n2/v37n2a05fig02.gif"></center></p>      <p> De acuerdo con los resultados obtenidos, 6 de los 12 compuestos aislados ensayados presentaron una fuerte actividad antiparasitaria contra el <i>Plasmodium falciparum</i> <i>in vitro</i>, incluso a una concentraci&oacute;n de 35 ppm.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El patr&oacute;n de metabolitos secundarios encontrados en la especie colombiana de <i>Peltostigma guatemalense</i> confirm&oacute; que este grupo pertenece a la familia <i>Rutaceae</i>, como se hab&iacute;a propuesto taxon&oacute;micamente (11).</p>      <p>Estudios fitoqu&iacute;micos para esta nueva especie de <i>Rutaceae</i> demuestran de esta manera que esta especie tiene una tendencia a expresar un patr&oacute;n molecular de metabolitos secundarios normalmente encontrados en esta familia.</p>      <p><b><font size="3">AGRADECIMIENTOS </font></b></p>      <p> Este trabajo fue financiado por las siguiente entidades: Instituto Colombiano para el Desarrollo de la Ciencia y la Tecnolog&iacute;a Francisco Jos&eacute; de Caldas - COLCIENCIAS, European Economical Community y el Departamento de Qu&iacute;mica de la Universidad Nacional de Colombia. Deseamos expresar nuestra gratitud al profesor Manuel Elkin Patarroyo por sus valiosos aportes a este trabajo, as&iacute; como a los grupos funcionales de investigaci&oacute;n de la Fundaci&oacute;n Instituto de Inmunolog&iacute;a de Colombia, FIDIC.</p> <hr>      <p><b><font size="3">REFERENCIAS</font></b></p>      <!-- ref --><p> 1. World Health Organization (2002). WHO Report (<a href="http://www.who.int/infectiou-disease-report/2002/index.html" target="_blank">http://www.who.int/infectious-disease-report/2002/index.html</a>). R.E. Gereau, Novon. 5, 34 (1995).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0034-7418200800020000500001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 2. R. Lehrer, M. Rosenman, S. Harwig, R. Jackson, and P. Eisenhauer. Ultrasensitive assay for endogenous antimicrobial polypeptides <i>J. Immunol. Methods</i>. 137, 167 (1991).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0034-7418200800020000500002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 3. Annals of the Missouri Botanical Garden, 527-530. Missouri Botanical Garden Press, 1991.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0034-7418200800020000500003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 4. C.A. Coy. Biochemical Systematics and Ecology. Metabolites isolated from <i>Esenbeckia alata</i> (Karst &amp; Triana). 2007. 35. 386-388.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0034-7418200800020000500004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 5. F. Ayafor, L. Sondengam, Ngo Bilon, E. Tsamo, F. Samuel, J. Kimbu. Furoquinoline alkaloids of Teclea ouabanguiensis . <i>J. Nat. Prod</i>., 1982, 45 (6), pp 714-717.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0034-7418200800020000500005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 6. A. Bartholomeu, F. Barros-Filho, M. Nunes, F. Concei&ccedil;&atilde;o, M. de Oliveira, M. Marcos. Metabolitos secundarios de <i>Esenbeckia almawillia</i> Kaastra (RUTACEAE). <i>Quim. Nova</i>. 2007. 30. (7). 1589-1591.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0034-7418200800020000500006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 7. Niedermayer O. Determination of Phenylacetic Acid in Penicillin Fermentation Media by Means of Gas Chromatography. <i>Anal. Chem</i>., 1964, 36 (4), pp 938- 939.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0034-7418200800020000500007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 8. T. Mabry, A. Ulubelen. Chemistry and utilization of phenylpropanoids including flavonoids, coumarins, and lignans. <i>J. Agric. Food Chem</i>., 1980, 28 (2), pp 188- 196.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0034-7418200800020000500008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 9. J.M. Lozano, F. Espejo, D. D&iacute;az, L.M Salazar, J. Rodr&iacute;guez, C. Pinz&oacute;n, J.C. Calvo, F. Guzm&aacute;n, M.E. Patarroyo. Reduced amide pseudopeptide analogues of a malaria  peptide possess secondary structural elements responsible for induction of functional antibodies which react with native proteins expressed in <i>Plasmodium falciparum</i> erythrocyte stages. <i>J. Peptide Res</i>.; 52, 457 (1998).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0034-7418200800020000500009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 10. E. Couillerot, C. Caron, L. Comes, J.C. Audran, and J.C. Chenieux, Benzophenanthridine and fluoroquinoline accumulation in cell suspension cultures of <i>Fragara zanthoxyloides</i>. <i>Phytochemistry</i> 37, 425 (1994).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0034-7418200800020000500010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 11. P.G. Waterman, and M.F. Grudon. In "Chemistry and Chemical Taxonomy of the Rutales", Annual Preceedings of the Phytochemical Society of Europe, (Proceedings of the Phytochemical Society of Europe). Academic Press, 1984, Number 22.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0034-7418200800020000500011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Chemistry and Chemical Taxonomy of the Rutales]]></article-title>
<source><![CDATA[Annual Preceedings of the Phytochemical Society of Europe, (Proceedings of the Phytochemical Society of Europe)]]></source>
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