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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[This study describes the evaluation of cytotoxic and leishmanicidal activities for Matricaria chamomilla essential oil. M. chamomilla is a plant commonly named "manzanilla" that has many uses in traditional medicine. The activity of essential oil was evaluated in vitro against axenic amastigotes of L. (V) braziliensis at concentrations lower than or equal to 250µg/ml and intracellular amastigotes of L. (V) braziliensis and L. (V) panamensis at concentrations lower than or equal to 30µg/ml. On other hand, the cytotoxic activity was assessed against mammalian cells of the promonocytic human cell line U937 at concentrations below 1.0mg/ml. The essential oil of M. chamomilla showed activity against intracellular amastigotes of L. (V) panamensis and L. (V) braziliensis (EC50 of 2.87 and 10.30µg/ml, respectively). Although the essential oil of M. chamomilla also shown to be potentially toxic to mammalian cellsLC50 ( of 30.21µg ml) this toxicity was similar to that shown by Amphotericin B (LC50 of 31.39µg/ml). This essential oil showed no activity against axenic forms of L. (V) braziliensis suggesting the importance of the compound metabolism inside cells to produce the metabolite that would be active against parasites. These results suggest that the essential oil of M. chamomilla has potential for development of drugs anti- Leishmania that must be validated in future studies in vivo using animal models.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p align="right">Art&iacute;culo de Investigaci&oacute;n</p>     <p align="center"><b><font size="4">Actividad citot&oacute;xica y leishmanicida <i>in vitro</i> del aceite esencial de manzanilla (<i>Matricaria chamomilla</i>)</font></b></p>     <p align="center"><font size="3"><b><i>In vitro</i> leishmanicidal and cytotoxic activities of <i>Matricaria chamomilla</i> essential oil </b></font></p>     <p align="center">  Yesmit Karina R&iacute;os R.<sup>1</sup>, Astrid Carolina Otero J.<sup>1</sup>, Diana Lorena Mu&ntilde;oz H.<sup>2</sup>, M&oacute;nica Echeverry R.<sup>2</sup>, Sara Mar&iacute;a Robledo R.<sup>2</sup>, Maira Alejandra Yepes C.<sup>3</sup></p>       <p><sup>1</sup> Estudiante Programa de Bacteriolog&iacute;a y Laboratorio Cl&iacute;nico. Universidad de Santander, UDES, C&uacute;cuta. Contribuci&oacute;n por igual con el art&iacute;culo.    <br> <sup>2</sup> Universidad de Antioquia, Programa de Estudio y Control de Enfermedades Tropicales, PECET. Carrera 53 # 61-30, Tel&eacute;fono: (4) 219 6502. Fax: (4) 219 6511. Medell&iacute;n, Colombia. Correo electr&oacute;nico: <a href="mailto"sara_robledo@pecet-colombia.org>sara_robledo@pecet-colombia.org</a>; <a href="mailto"srobledo@guajiros.udea.edu.co>srobledo@guajiros.udea.edu.co</a>    <br> <sup>3</sup> Universidad de Santander, UDES, C&uacute;cuta.</p>     <p>Recibido para evaluaci&oacute;n: agosto 11 de 2008 Aceptado para publicaci&oacute;n: noviembre 10 de 2008</p> <hr>      <p><b><font size="3">RESUMEN</font></b></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p> Este estudio describe la evaluaci&oacute;n de las actividades citot&oacute;xica y leishmanicida del aceite esencial de <i>Matricaria chamomilla</i>, una planta conocida como "manzanilla" a la que se le atribuye una variedad de usos en la medicina tradicional. La actividad del aceite esencial se evalu&oacute; <i>in vitro</i> contra amastigotes ax&eacute;nicos de <i>L. (V) braziliensis</i>, a concentraciones menores o iguales que 250&micro;g/ml, y amastigotes intracelulares de <i>L. (V) braziliensis</i> y <i>L. (V) panamensis</i>, a concentraciones menores o iguales que 30&micro;g/ml. Por su parte, la actividad citot&oacute;xica se evalu&oacute; contra c&eacute;lulas mam&iacute;feras de la l&iacute;nea promonoc&iacute;tica humana U-937, a concentraciones por debajo de 1,0 mg/ml. El aceite esencial de manzanilla mostr&oacute; ser activo contra amastigotes intracelulares de <i>L. (V) panamensis</i> y <i>L. (V) braziliensis</i> (CE<sub>50</sub> de 2,87 y 10,30&micro;g /ml, respectivamente). Aunque el aceite esencial de manzanilla tambi&eacute;n mostr&oacute; ser potencialmente t&oacute;xico para las c&eacute;lulas mam&iacute;feras (CL<sub>50</sub> de 30,21&micro;g /ml), esta toxicidad fue similar a la mostrada por la Anfotericina B (CL<sub>50</sub> de 31,39&micro;g /ml). El aceite esencial de manzanilla no mostr&oacute; actividad contra las formas ax&eacute;nicas de <i>L. (V) braziliensis</i>, demostrando la importancia del metabolismo del compuesto en el interior de la c&eacute;lula para que se produzca el metabolito activo contra el par&aacute;sito. Estos resultados aportan bases para sugerir que el aceite esencial de manzanilla tiene potencial para el desarrollo de medicamentos contra <i>Leishmania</i>, el cual debe ser validado en estudios futuros <i>in vivo</i> en modelos animales.</p>      <p><b>Palabras clave</b>: <i>Matricaria chamomilla</i>, actividad leishmanicida, citotoxicidad, manzanilla, productos naturales, <i>L. (V) panamensis</i>, <i>L. (V) braziliensis</i>.</p> <hr>      <p><b><font size="3">ABSTRACT</font></b></p>      <p> This study describes the evaluation of cytotoxic and leishmanicidal activities for <i>Matricaria chamomilla</i> essential oil. <i>M. chamomilla</i> is a plant commonly named "manzanilla" that has many uses in traditional medicine. The activity of essential oil was evaluated <i>in vitro</i> against axenic amastigotes of <i>L. (V) braziliensis</i> at concentrations lower than or equal to 250&micro;g/ml and intracellular amastigotes of <i>L. (V) braziliensis</i> and <i>L. (V) panamensis</i> at concentrations lower than or equal to 30&micro;g/ml. On other hand, the cytotoxic activity was assessed against mammalian cells of the promonocytic human cell line U937 at concentrations below 1.0mg/ml. The essential oil of <i>M. chamomilla</i> showed activity against intracellular amastigotes of <i>L. (V) panamensis</i> and <i>L. (V) braziliensis</i> (EC<sub>50</sub> of 2.87 and 10.30&micro;g/ml, respectively). Although the essential oil of <i>M. chamomilla</i> also shown to be potentially toxic to mammalian cells (LC<sub>50</sub> of 30.21&micro;g ml) this toxicity was similar to that shown by Amphotericin B (LC<sub>50</sub> of 31.39&micro;g/ml). This essential oil showed no activity against axenic forms of <i>L. (V) braziliensis</i> suggesting the importance of the compound metabolism inside cells to produce the metabolite that would be active against parasites. These results suggest that the essential oil of <i>M. chamomilla</i> has potential for development of drugs anti- <i>Leishmania</i> that must be validated in future studies <i>in vivo</i> using animal models.</p>      <p><b>Key words</b>:<i>Matricaria chamomilla</i>, leishmanicidal activity, citotoxicity, chamomile, natural products, <i>L. (V) panamensis</i>, <i>L. (V) braziliensis</i>.</p> <hr>      <p><b><font size="3">INTRODUCCI&Oacute;N</font></b></p>      <p> La leishmaniasis es considerada un problema de salud p&uacute;blica en los pa&iacute;ses donde la enfermedad es end&eacute;mica, incluido Colombia. La enfermedad es producida por al menos 20 especies de protozoos del g&eacute;nero <i>Leishmania</i> y se manifiesta en tres formas cl&iacute;nicas principales que son: la leishmaniasis cut&aacute;nea, la leishmaniasis mucocut&aacute;nea y la leishmaniasis visceral. <i>L. (V) braziliensis</i> y <i>L. (V) panamensis</i> son dos de las especies m&aacute;s frecuentemente aisladas en Colombia causantes de las formas cut&aacute;nea y mucocut&aacute;nea de la enfermedad (1).</p>      <p>Para el tratamiento de la infecci&oacute;n en cualquiera de las formas cl&iacute;nicas se utiliza el antimoniato de meglumina (Glucantime), una sal derivada de antimonio pentavalente (Sb<sup>V</sup>) que, a pesar de presentar inconvenientes como toxicidad moderada, administraci&oacute;n a altas dosis y esquemas prolongados, se contin&uacute;a utilizando como medicamento de primera l&iacute;nea. Sin embargo, la diferente sensibilidad de las especies de <i>Leishmania</i> infectante y la aparici&oacute;n de resistencia en el par&aacute;sito a los Sb<sup>V</sup> inciden, adem&aacute;s, en la respuesta cl&iacute;nica al tratamiento (2).</p>      <p>La pentamidina y la Anfotericina B son medicamentos de segunda l&iacute;nea y se emplean en pacientes que no responden al tratamiento con antimonio pentavalente. La pentamidina, por excretarse en forma prolongada, permite, a diferencia de los Sb<sup>V</sup>, su administraci&oacute;n en d&iacute;as alternos, pero tiene el inconveniente de ser m&aacute;s t&oacute;xica y m&aacute;s costosa que el Sb<sup>V</sup> (3). Por su parte, la Anfotericina B es muy efectiva para cualquiera de las formas cl&iacute;nicas, pero debido a su toxicidad se requiere una administraci&oacute;n intrahospitalaria. Aunque existe una formulaci&oacute;n liposomal de  Anfotericina B menos t&oacute;xica (4), su costo es mayor, lo que dificulta su consecuci&oacute;n, especialmente en pa&iacute;ses en v&iacute;as de desarrollo, donde la leishmaniasis es end&eacute;mica y los gobiernos subsidian los tratamientos, como es el caso de Colombia.</p>      <p>La necesidad de encontrar medicamentos que superen las desventajas que ofrecen los que est&aacute;n disponibles en el mercado sustenta la b&uacute;squeda y el desarrollo de nuevos compuestos para el tratamiento de la enfermedad. Los productos naturales o compuestos derivados de ellos proporcionan una fuente valiosa de medicamentos gracias al contenido de numerosas mol&eacute;culas con una variedad de actividades farmacol&oacute;gicas (5). La inmensa diversidad qu&iacute;mica y el amplio rango de actividades biol&oacute;gicas de las plantas han permitido el desarrollo de miles de drogas farmacol&oacute;gicas. Es as&iacute; como en los &uacute;ltimos 25 a&ntilde;os, de 1010 nuevas sustancias aprobadas para el manejo cl&iacute;nico de diferentes enfermedades, 490 (48,5%) son de origen natural (6).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Miembros de la familia <i>Asteraceae</i>, los cuales han demostrado diferentes actividades biol&oacute;gicas, han sido utilizados para prop&oacute;sitos medicinales por diferentes comunidades en el mundo. <i>Matricaria chamomilla</i> (<i>Asteraceae</i>), conocida popularmente como "manzanilla", ha sido utilizada como planta medicinal desde hace siglos por sus propiedades relajantes, sedantes, antiespasmol&iacute;ticas, antiinflamatorias, cicatrizantes, digestivas, entre otras (7 y 8). La planta ha demostrado, adem&aacute;s, actividad antimicrobiana <i>in vitro</i> contra <i>Pseudomona auriginosa</i>, <i>Candida albicans</i> y <i>Staphylococcus aureus</i> (9). El extracto crudo hidroalcoh&oacute;lico de <i>M. chamomilla</i> es capaz de inhibir el crecimiento <i>in vitro</i> de promastigotes y amastigotes ax&eacute;nicos de <i>L. (L) amazonensis</i> en 98,1 y 92,7%, respectivamente (10). Las generalidades de <i>M. chamomilla</i> se resumen en la <a href="#tab01">Tabla 1</a>.</p>     <p>    <center><a name="tab01"></a><img src="img/revistas/rccqf/v37n2/v37n2a08tab01.gif"></center></p>      <p> El aceite esencial de manzanilla es un ingrediente popular en t&oacute;picos de salud y de belleza por sus efectos calmante y antiinflamatorio sobre la piel (11). Debido al amplio uso del aceite esencial de manzanilla, en el presente estudio se evalu&oacute; el potencial citot&oacute;xico y contra <i>Leishmania</i> de este aceite. La actividad contra <i>Leishmania</i> se determin&oacute; <i>in vitro</i> contra amastigotes ax&eacute;nicos de <i>L. (V) braziliensis</i> y contra amastigotes intracelulares de <i>L. (V) braziliensis</i> y <i>L. (V) panamensis</i>. La actividad citot&oacute;xica se evalu&oacute; en c&eacute;lulas promonoc&iacute;ticas humanas U-937.</p>      <p><b><font size="3">METODOLOG&Iacute;A</font></b></p>      <p><b>Aceite esencial de <i>M. chamomilla</i></b></p>      <p> El aceite esencial de manzanilla se adquiri&oacute; de Essential Wholesale (Clackamas, OR, USA). Para las evaluaciones de citotoxicidad y actividad contra <i>Leishmania</i>, el aceite esencial se solubiliz&oacute; en Polivinilpirrolidona (PVP). Las diluciones del aceite solubilizado se hicieron en el medio de cultivo a emplear en los respectivos ensayos, es decir, RPMI 1640 o medio de Schneider, seg&uacute;n el caso.</p>      <p><b> Evaluaci&oacute;n <i>in vitro</i> de la citotoxicidad</b></p>      <p> La actividad citot&oacute;xica del aceite esencial de manzanilla se evalu&oacute; sobre la l&iacute;nea celular promonoc&iacute;tica humana U-937 (ATCC CRL 1593.2) siguiendo la metodolog&iacute;a descrita previamente por Weniger y col, 2001 (12). Para ello, las c&eacute;lulas se cultivaron a una concentraci&oacute;n de 100.000 c&eacute;lulas/ml en medio RPMI 1640 con 10% de suero bovino fetal (SBF), en platos de 96 pozos para cultivo celular. Se realizaron seis diluciones dobles seriadas del aceite esencial de manzanilla a partir de 1,0 mg/ml. De la misma manera, se hicieron diluciones de Anfotericina B a partir de 0.1 mg/ml. Este medicamento se us&oacute; como control de toxicidad. Tambi&eacute;n se utilizaron c&eacute;lulas cultivadas en ausencia de los compuestos, pero mantenidas en las mismas condiciones, como control negativo del ensayo.</p>      <p>Las c&eacute;lulas en presencia de las diluciones de cada compuesto se incubaron a 37&deg;C con 5% de CO<sub>2</sub> durante 72 horas. Luego de las 72 horas de incubaci&oacute;n, el efecto de los compuestos se determin&oacute; midiendo la actividad de la deshidrogenasa mitocondrial, adicionando 10&micro;l/pozo de MTT (bromuro de 3-(5,4 dimetil tizol-2-I) -2-5 difenil tretrazolium) e incubando a 37&deg;C durante 3 horas. Despu&eacute;s de este tiempo se adicionaron 100&micro;l/pozo de una soluci&oacute;n al 50% de isopropanol y 10% de SDS, para solubilizar los cristales de Formaz&aacute;n. La producci&oacute;n de Formaz&aacute;n se midi&oacute; a 570 nm en un lector de microplatos, 30 minutos despu&eacute;s de la adici&oacute;n de la soluci&oacute;n isopropanol-SDS.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Cada concentraci&oacute;n del compuesto (los medicamentos), as&iacute; como del control sin compuesto se evalu&oacute; por triplicado en tres experimentos diferentes. Los resultados se expresaron como la Concentraci&oacute;n letal 50 (CL<sub>50</sub>), que correspondi&oacute; a la concentraci&oacute;n a la cual ocurri&oacute; el 50% de muerte celular. La CL<sub>50</sub> se calcul&oacute; por el an&aacute;lisis Probit, un m&eacute;todo param&eacute;trico de regresi&oacute;n lineal que permite el an&aacute;lisis de la relaci&oacute;n dosis-respuesta (13).</p>      <p><b>Evaluaci&oacute;n <i>in vitro</i> de la actividad contra <i>Leishmania</i></b></p>      <p> El efecto del aceite esencial de manzanilla se evalu&oacute; sobre amastigotes ax&eacute;nicos de <i>L. (V) braziliensis</i> y sobre amastigotes intracelulares de <i>L. (V) panamensis</i> y <i>L. (V) braziliensis</i>.</p>      <p><b>Amastigotes ax&eacute;nicos.</b> La actividad leishmanicida se evalu&oacute; en amastigotes ax&eacute;nicos de <i>L. (V) braziliensis</i> (M/HOM/87/UA301) mediante el m&eacute;todo MTT. Los amastigotes ax&eacute;nicos se cultivaron a una concentraci&oacute;n de 1.000.000 par&aacute;sitos/ml en medio Schneider pH 5.4 con 20% de SBF, en platos de 96 pozos para cultivo celular. Se realizaron seis diluciones dobles seriadas del aceite esencial de manzanilla, a partir de 250&micro;g/ml. De la misma manera, se hicieron diluciones de Anfotericina B a partir de una concentraci&oacute;n de 0,25&micro;g/ml, medicamento que se utiliz&oacute; como control de efectividad en el ensayo. Par&aacute;sitos cultivados en ausencia de los compuestos, pero mantenidos en las mismas condiciones, fueron utilizados como control negativo del ensayo.</p>      <p>Los par&aacute;sitos cultivados en presencia de las diluciones del aceite esencial y de la Anfotericina B se incubaron a 32&deg;C con 5% de CO<sub>2</sub> durante 72 horas. Luego de las 72 horas de incubaci&oacute;n, el efecto de los compuestos se determin&oacute; midiendo la actividad de la deshidrogenasa mitocondrial, adicionando 20&micro;l/pozo de MTT e incubando a 32&deg;C durante 4 horas. Despu&eacute;s de este tiempo, se adicionaron 100&micro;l/pozo de una soluci&oacute;n al 50% de isopropanol y 10% de SDS, y la producci&oacute;n de Formaz&aacute;n se midi&oacute; a 570 nm en un lector de microplatos, 30 minutos despu&eacute;s de la adici&oacute;n de la soluci&oacute;n isopropanol-SDS.</p>      <p>Cada concentraci&oacute;n del compuesto (los medicamentos), as&iacute; como el blanco, se evalu&oacute; al menos por duplicado en tres experimentos diferentes. Los resultados se expresaron como la Concentraci&oacute;n Efectiva 50 (CE<sub>50</sub>), que corresponde a la concentraci&oacute;n a la cual ocurre el 50% de muerte de los par&aacute;sitos. La CE50 se calcul&oacute; por el an&aacute;lisis Probit, como se describi&oacute; previamente.</p>      <p><b>Sobre amastigotes intracelulares.</b> La efectividad del aceite esencial de manzanilla se evalu&oacute; sobre amastigotes intracelulares de <i>L. (V) braziliensis</i> (MHOM/CO/87/UA/ UA301) por an&aacute;lisis al microscopio de placas te&ntilde;idas con Giemsa y amastigotes intracelulares de <i>L. (V) panamensis</i> (M/HOM/88/UA140pirGFP), por citometr&iacute;a de flujo. Puesto que en las infecciones <i>in vitro</i> los &iacute;ndices de infecci&oacute;n son dependientes de la proporci&oacute;n par&aacute;sito:c&eacute;lula empleada, para cada una de estas especies de <i>Leishmania</i> se determin&oacute; la Concentraci&oacute;n Infectiva 50 (CI<sub>50</sub>), al infectar 1x10<sup>5</sup> c&eacute;lulas/ml con diferentes proporciones de par&aacute;sito:c&eacute;lula (1:1, 5:1, 10:1, 20:1, 40:1 y 80:1). La CI<sub>50</sub> que corresponde a la proporci&oacute;n de par&aacute;sitos con la cual ocurre el 50% de infecci&oacute;n de las c&eacute;lulas fue calculada por el an&aacute;lisis Probit (13).</p>      <p>Para <i>L. (V) braziliensis</i> se sigui&oacute; el protocolo descrito por Robledo y col (1999) (14) con algunas modificaciones. Se prepararon c&eacute;lulas U-937 a una concentraci&oacute;n de 1x10<sup>5</sup> c&eacute;lulas/ml de medio RPMI 1640 y 100ng/ml de Forbol 12-miristato 13-acetato (PMA). En cada pozo de una placa para cultivo celular de 24 pozos se dispens&oacute; 1 ml de c&eacute;lulas y se incubaron a 37&deg;C con 5% CO<sub>2</sub>. Luego de 48 horas de incubaci&oacute;n, las c&eacute;lulas adheridas se infectaron con promastigotes en fase estacionaria de crecimiento (sexto d&iacute;a de crecimiento), en una proporci&oacute;n de 25 par&aacute;sitos por cada c&eacute;lula, que corresponde a la CI<sub>50</sub> calculada previamente para esta cepa de <i>L. (V) braziliensis</i>.</p>      <p>Las c&eacute;lulas en contacto con los par&aacute;sitos se incubaron durante 2 horas a 34&deg;C con 5% de CO<sub>2</sub>. Despu&eacute;s de este tiempo, se realizaron dos lavados con soluci&oacute;n tamp&oacute;n de fosfatos (PBS) para eliminar los par&aacute;sitos libres, se adicion&oacute; un medio nuevo y se incubaron nuevamente durante 24 horas. Luego se reemplaz&oacute; el medio por uno m&aacute;s fresco que conten&iacute;a las diferentes concentraciones del aceite esencial de manzanilla. Las c&eacute;lulas infectadas se expusieron a cada concentraci&oacute;n del aceite durante 72 horas y se lavaron tres veces con PBS. Para la tinci&oacute;n, las c&eacute;lulas se dejaron secar a temperatura ambiente, se fijaron con metanol y se colorearon con Giemsa. Despu&eacute;s de lavar con agua destilada, los pozos se dejaron secar y las l&aacute;minas adheridas al fondo se desprendieron y se depositaron en una l&aacute;mina portaobjetos para proceder con la lectura al microscopio. Se contaron al menos 100 c&eacute;lulas (infectadas y no infectadas), registrando el n&uacute;mero de amastigotes contenidos en cada una de las infectadas. Como control de infecci&oacute;n del ensayo, se utilizaron c&eacute;lulas infectadas y cultivadas en ausencia de los compuestos, pero mantenidas en las mismas condiciones. Los resultados se expresaron como la CE<sub>50</sub> calculada por el an&aacute;lisis Probit (13).</p>      <p>Para la evaluaci&oacute;n con <i>L. (V) panamensis</i> se prepararon c&eacute;lulas U-937 a una concentraci&oacute;n de 3x10<sup>5</sup> c&eacute;lulas/ml de medio RPMI 1640 y 100 ng/ml de Forbol-12-miristato Acetato (PMA). En cada pozo de una placa para cultivo celular de 24 pozos se dispens&oacute; 1 ml de la suspensi&oacute;n de c&eacute;lulas y se incubaron a 37&deg;C con 5% CO<sup>2</sup>. Luego de 48 horas de incubaci&oacute;n, las c&eacute;lulas adheridas se infectaron con promastigotes en fase estacionaria de crecimiento (cosechados al quinto d&iacute;a de crecimiento), en una proporci&oacute;n de 15 par&aacute;sitos por cada c&eacute;lula, que corresponde a la CI<sup>50</sup> determinada previamente para las infecciones con esta cepa de <i>L. (V) panamensis</i>.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Las c&eacute;lulas con los par&aacute;sitos se incubaron durante 2 horas con 5% de CO<sub>2</sub> a 34&deg;C. Luego de dos lavados con PBS para eliminar los par&aacute;sitos libres, se adicion&oacute; un medio nuevo y las c&eacute;lulas se incubaron de nuevo. Despu&eacute;s de 24 horas de incubaci&oacute;n, se reemplaz&oacute; el medio por uno m&aacute;s fresco que conten&iacute;a las diferentes concentraciones del aceite esencial de manzanilla. C&eacute;lulas infectadas y cultivadas en ausencia de compuestos sirvieron como control de infecci&oacute;n. Las infectadas se expusieron a cada concentraci&oacute;n del aceite durante 72 horas; posteriormente, se removieron cuidadosamente del fondo del plato utilizando el &eacute;mbolo de una jeringa y se analizaron por citometr&iacute;a de flujo. Las c&eacute;lulas se ti&ntilde;eron con 5&micro;l de anticuerpo anti-CD33 (un ant&iacute;geno de membrana espec&iacute;fico para la l&iacute;nea monoc&iacute;tica/mieloide (15) marcado con ficoeritrina (PE). El porcentaje de c&eacute;lulas infectadas (eventos CD33+, GFP+) y la carga parasitaria se analiz&oacute; por citometr&iacute;a de flujo en 10.000 eventos. Los datos se procesaron con el programa WinMDI (Joe Trotter, Purdue University, USA). La CE<sub>50</sub> se calcul&oacute; seg&uacute;n la reducci&oacute;n de la carga parasitaria, al dividir la intensidad de fluorescencia (IF) obtenida con el aceite esencial por la IF obtenida en ausencia de compuestos. La Anfotericina B se utiliz&oacute; como medicamento de control de efectividad para ambos ensayos. Cada concentraci&oacute;n del aceite esencial y del medicamento, as&iacute; como el control sin medicamento, se evalu&oacute; por triplicado en dos experimentos diferentes. Los resultados se expresaron como la CE<sub>50</sub> calculada por el an&aacute;lisis Probit, como se describi&oacute; previamente. El &iacute;ndice de selectividad (IS) se calcul&oacute; dividiendo la actividad citot&oacute;xica por la actividad leishmanicida (IS = CL<sub>50</sub> / CE<sub>50</sub>).</p>       <p><b><font size="3">RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</font></b></p>      <p> En este estudio se demuestra que el aceite esencial de <i>M. chamomilla</i> (manzanilla) tiene actividad <i>in vitro</i> contra <i>L. (V) braziliensis</i> y <i>L. (V) panamensis</i>, las dos especies m&aacute;s prevalentes responsables de la leishmaniasis cut&aacute;nea y mucocut&aacute;nea en Colombia. Las actividades leishmanicidas y citot&oacute;xicas se establecieron seg&uacute;n rangos de concentraciones previamente establecidos en nuestro laboratorio (<a href="#tab02">Tabla 2</a>). La evaluaci&oacute;n de la actividad del aceite esencial de manzanilla sobre estas especies de <i>Leishmania</i> permiti&oacute; demostrar que el compuesto es muy activo contra amastigotes intracelulares, tanto de <i>L. (V) panamensis</i>, como de <i>L. (V) braziliensis</i>, siendo <i>L. (V) panamensis</i> ligeramente m&aacute;s sensible que <i>L. (V) braziliensis</i> al aceite esencial de manzanilla, pero tambi&eacute;n a la Anfotericina B (<a href="#tab03">Tabla 3</a>). Si bien las diferencias pueden explicarse mediante el m&eacute;todo de evaluaci&oacute;n de la sensibilidad utilizado, es decir, citometr&iacute;a de flujo y microscop&iacute;a, siendo la citometr&iacute;a de flujo un m&eacute;todo automatizado y la microscopia un m&eacute;todo de evaluaci&oacute;n que est&aacute; sujeto a la experiencia del evaluador, consideramos que las diferencias en sensibilidad se debe a diferencias inherentes al par&aacute;sito, ya que cuando existen diferencias en sensibilidades <i>in vitro</i> &eacute;stas se han observado previamente aun entre cepas de una misma especie de <i>Leishmania</i> (14). Si tenemos en cuenta que un compuesto es muy activo cuando presenta CE<sub>50</sub> cercanas o inferiores a 10&micro;g/ml, las CE<sub>50</sub> observadas de 2,87 y 10,30 &micro;g/ml para <i>L. (V) panamensis</i> y <i>L. (V) braziliensis</i>, respectivamente, sugieren que el aceite esencial es muy activo contra estas especies de <i>Leishmania</i>. Esta mayor sensibilidad no es significativa, toda vez que la actividad se conserva en el mismo rango de sensibilidad esperado para compuestos activos (0-10&micro;g/ml) (<a href="#tab02">Tabla 2</a>). Dada la cantidad de componentes constituyentes del aceite esencial de <i>M. chamomilla</i> (<a  href="#tab01">Tabla 1</a>), cada uno de ellos con propiedades biol&oacute;gicas distintas, se hace necesario realizar estudios de actividad contra <i>Leishmania</i> con los componentes aislados para  poder atribuir esta actividad a un componente en particular.</p>     <p>    <center><a name="tab02"></a><img src="img/revistas/rccqf/v37n2/v37n2a08tab02.gif"></center></p>     <p>    <center><a name="tab03"></a><img src="img/revistas/rccqf/v37n2/v37n2a08tab03.gif"></center></p>      <p> Resultados contrarios se obtuvieron cuando se evalu&oacute; la actividad del aceite esencial en la forma ax&eacute;nica de amastigotes de <i>L. (V) braziliensis</i>. En esta evaluaci&oacute;n se encontr&oacute; que el aceite esencial de manzanilla no es activo contra la forma ax&eacute;nica de amastigotes de <i>L. (V) braziliensis</i> con una CE<sub>50</sub> de 230,24 &micro;g/ml (<a href="#tab03">Tabla 3</a>). El hecho que el aceite esencial tenga actividad contra la forma intracelular, pero no contra la extracelular del par&aacute;sito, sugiere que el compuesto, al ser liposoluble, sea internalizado por la c&eacute;lula y metabolizado por la misma, y que probablemente son los productos derivados de este metabolismo intracelular los responsables de la actividad del aceite esencial, haci&eacute;ndolo m&aacute;s efectivo sobre la forma intracelular del par&aacute;sito que sobre la ax&eacute;nica. Esta situaci&oacute;n se observa en medicamentos como los antimoniales pentavalentes, los cuales son reducidos a antimoniales trivalentes en el interior del macr&oacute;fago para que puedan ejercer su efecto leishmanicida (16 y 17). Sin embargo, debido a que no se dispone de informaci&oacute;n acerca del metabolismo celular de los distintos componentes del aceite esencial de <i>M. chamomilla</i>, es necesario realizar estudios futuros con el fin de determinar lo que sucede con el aceite luego de su ingreso en la c&eacute;lula.</p>      <p> El aceite esencial de manzanilla, por su parte, tuvo una actividad citot&oacute;xica similar a la mostrada por la Anfotericina B (CL<sub>50</sub> de 30,21 y 31,39 &micro;g/ml para el aceite esencial y la Anfotericina B, respectivamente). Teniendo en cuenta que CL<sub>50</sub> inferiores a 100&micro;g/ ml se consideran como potencial t&oacute;xico (<a href="#tab02">Tabla 2</a>), la CL<sub>50</sub> obtenida para el aceite de manzanilla sugiere que este compuesto, al igual que la Anfotericina B, es t&oacute;xico para las c&eacute;lulas. La toxicidad mostrada por el aceite esencial de manzanilla posiblemente se debe a la presencia de fenoles, aldeh&iacute;dos y alcoholes como compuestos constituyentes importantes que pueden alterar la estructura celular (18 y 19).</p>      <p>El &iacute;ndice de selectividad (IS) del aceite esencial de manzanilla fue de 2,93 y 10,52 sobre amastigotes intracelulares de <i>L. (V) braziliensis</i> y <i>L (V) panamensis</i>, respectivamente, mientras que el &iacute;ndice de selectividad para amastigotes ax&eacute;nicos de <i>L. (V) braziliensis</i> fue menor a 1,0 (IS=0,14). (<a href="#tab04">Tabla 4</a>). El &iacute;ndice de selectividad observado para el aceite esencial de manzanilla indica que la actividad contra <i>Leishmania</i> del aceite sobre ambas especies es mayor que la actividad citot&oacute;xica observada sobre c&eacute;lulas U937. Si tenemos en cuenta que un IS &gt; 10 es indicativo de actividad selectiva sobre el agente infeccioso (<a href="#tab02">Tabla 2</a>), nuestros resultados sugieren entonces que el aceite esencial de manzanilla tiene potencial como compuesto leishmanicida. Aunque el aceite esencial mostr&oacute; ser potencialmente toxico para las c&eacute;lulas mam&iacute;feras con una CL<sub>50</sub> de 30,21 &micro;g/ml, la buena actividad contra <i>Leishmania</i> mostrada contra la forma intracelular del par&aacute;sito sugiere que el compuesto tiene potencial como mol&eacute;cula candidata a medicamento. Sin embargo, este potencial debe ser validado en estudios <i>in vivo</i>, ya que existen mecanismos que pueden disminuir considerablemente la toxicidad del compuesto, como la manipulaci&oacute;n de las mol&eacute;culas activas, ya sea con liposomas o pol&iacute;meros que permitan la reducci&oacute;n de la toxicidad celular. Un ejemplo de esto es la f&oacute;rmula liposomal de la Anfotericina B, que por estar recubierta por una monocapa de naturaleza lip&iacute;dica no s&oacute;lo facilita la entrada del medicamento en la c&eacute;lula, sino que evita el da&ntilde;o que producir&iacute;a la  nfotericina libre al unirse a la membrana celular (20).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>    <center><a name="tab04"></a><img src="img/revistas/rccqf/v37n2/v37n2a08tab04.gif"></center></p>      <p> En conclusi&oacute;n, los resultados del presente estudio aportan bases para sugerir que el aceite esencial de manzanilla posee potencial para el desarrollo de medicamentos contra <i>Leishmania</i>, el cual debe ser validado en estudios futuros <i>in vivo</i> con modelos animales. Estos resultados tambi&eacute;n sustentan el potencial de la medicina tradicional basada en plantas y otros productos naturales como fuente importante para el descubrimiento de nuevos f&aacute;rmacos que puedan utilizarse para el tratamiento de la leishmaniasis.</p>      <p><b><font size="3">AGRADECIMIENTOS</font></b></p>      <p> Este trabajo fue financiado por COLCIENCIAS (C&oacute;digo No. 1101-00018-9999, 2006).</p> <hr>      <p><b><font size="3">BIBLIOGRAF&iacute;A</font></b></p>       <!-- ref --><p> 1. I.D. V&eacute;lez, E. Rodr&iacute;guez, R. Duarte, L. L&oacute;pez, M. Casta&ntilde;o, D.P. Colorado, L.M. Carrillo, D.M. Sierra, S.M. Robledo, J.C. Quintana y C.A. Rinc&oacute;n. Enfermedades tropicales. Gu&iacute;a de manejo de ETV y accidente of&iacute;dico. Programa de prevenci&oacute;n y control de enfermedades tropicales y accidente of&iacute;dico en las fuerzas militares. Litograf&iacute;a Solingraf, Medell&iacute;n, Colombia, 2005, 150 p. ISBN958-655-881-9.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000059&pid=S0034-7418200800020000800001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 2. B.L. Herwaldt. Leishmaniasis, <i>Lancet</i>. 354, 1191, 1999.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000060&pid=S0034-7418200800020000800002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 3. S.M Robledo, J.A. Puerta, D.L. Mu&ntilde;oz, M. Guardo e I.D. V&eacute;lez. Efficacy and tolerance of pentamidine for treatment of cutaneous leishmaniasis caused by por <i>L. (V) panamensis</i> in Colombia. <i>Biom&eacute;dica</i>, 26, 188, 2006.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000061&pid=S0034-7418200800020000800003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 4. S. Sundar, H. Mehta, A.V. Sures, S.P. Singh, M. Rai y H.W. Murray. Amphotericin B treatment for Indian visceral leishmaniasis: conventional vs.  lipid-formulations. <i>Clinical of Infectious Diseases</i>, 38, 377, 2004.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000062&pid=S0034-7418200800020000800004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 5. D.J. Newman, G.M. Cragg y K.M. Snader. Natural products as sources of new drugs over the period 1981-2002. <i>Journal of Natural Products</i>, 66, 1022, 2003.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000063&pid=S0034-7418200800020000800005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 6. D.J. Newman y G.M. Cragg. Natural products as sources of new drugs over the last 25 years. <i>Journal of Natural Products</i>, 70, 461, 2007.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000064&pid=S0034-7418200800020000800006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 7. G.D. Appelt. Pharmacological aspects of selected herbs employed in Hispanic folk medicine in San Luis Valley of Colorado, USA: <i>Matricaria chamomilla</i>. <i>Journal of Ethnopharmacology</i>, 13, 51, 1985.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S0034-7418200800020000800007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 8. D.L. McKay y J.B. Blumberg. A review of the bioactivity and potential health benefits of chamomile tea (Matricaria recutita L.). <i>Phytotherapy Research</i>, 20, 519, 2006.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000066&pid=S0034-7418200800020000800008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 9. J.C. Nogueira, M. de F. Diniz y E.O. Lima.<i>In vitro</i> antimicrobial activity of plants in Acute Otitis Externa. <i>Revista Brasilera Otorrinolaringologia</i> (Engl Ed.), 74, 118, 2008.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0034-7418200800020000800009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 10. P.S. Luize, T.S. Tiuman, L.G. Morello, P.K. Maza, T. Ueda-Nakamura, B.P. Dias Filho, D.A. Garc&iacute;a Cortez, J.C. Palazzo de Mello y C.V. Nakamura. Effects of medicinal plant extracts on growth of <i>Leishmania (L.) amazonensis</i> and <i>Trypanosoma cruzi</i>. <i>Brazilian Journal of Pharmaceutical Sciences</i>, 41, 85, 2005.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0034-7418200800020000800010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 11. No authors listed, <i>Matricaria chamomilla</i> (German chamomile) - <i>Monograph. Alterative Medicine Review</i>, 13, 58, 2008.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0034-7418200800020000800011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 12. B. Weniger, S. Robledo, G.J. Arango, E. Deharo, R. Arag&oacute;n, V. Mu&ntilde;oz, J. Callapa, A. Lobstein y R. Anton. Antiprotozoal activities of Colombian plants. <i>Journal of Ethnopharmacology</i>, 78, 193, 2001.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0034-7418200800020000800012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 13. D.J. Finney. "Statistical method in biological assay", London, Griffin, 508 p., 1978.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0034-7418200800020000800013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 14. S.M. Robledo, A.Z. Valencia y N.G. Saravia. Sensitivity to Glucantime of <i>Leishmania viannia</i> isolated from patients prior to treatment. <i>Journal of Parasitology</i>, 85, 360, 1999.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0034-7418200800020000800014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 15. D. Simmons y B. Seed. Isolation of a cDNA encoding CD33, a differentiation antigen of myeloid progenitor cells. <i>Journal of Immunology</i>, 141, 2797, 1988.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0034-7418200800020000800015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 16. P. Shaked-Mishan, N. Ulrich, M. Ephros y D. Zilberstein. Novel intracellular Sb-V reducing activity correlates with antimony susceptibility in <i>Leishmania donovani</i>. <i>Journal of Biological Chemistry</i>, 276, 3971, 2001.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0034-7418200800020000800016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 17. H. Denton, J.C. McGregor y G.H. Coombs. Reduction of anti-leishmanial pentavalent antimonial drugs by a parasite-specific thiol-dependent reductase, TDR1. <i>Biochemistry Journal</i>, 381, 405, 2004.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0034-7418200800020000800017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 18. F. Bakkali, S. Averbeck, D. Averbeck y M. Idaomar. Biological effects of essential oils. <i>Food Chemistry Toxicology</i>, 46, 446, 2008.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0034-7418200800020000800018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 19. G. Sacchetti, S. Maietti, M. Muzzoli, M. Scaglianti, S. 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