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<journal-title><![CDATA[Revista Colombiana de Ciencias Químico - Farmacéuticas]]></journal-title>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Efecto antinociceptivo de Critoniella acuminata, Physalis peruviana y Salvia rubescens]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The antinociceptive effect of extracts, fractions and compounds of Critoniella acuminata, Physalis peruviana and Salvia rubescens were evaluated by the follow methods: Hot Plate test, acetic acid induced abdominal writhing and Formalin test. The fraction of Critoniella acuminata at doses of 100mg/kg p.o. exhibited antinociceptive effect in the hot plate test; while Physalis peruviana fraction at doses of 100 mg/kg p.o., showed an antinociceptive effect against the pain chemically induced. This fraction produced 40% inhibition of the acetic acid induced writhing (acute visceral nociception) and the licks during phase II (acute inflammatory nociception) of the formalin test. The findings of this experimental study suggest that fractions of Critoniella acuminata and Physalis peruviana possess antinociceptive activity with opioid and nsaid-like mechanisms respectively.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">      <p align="right">Art&iacute;culo de Investigaci&oacute;n</p>     <p align="center"><b><font size="4">Efecto antinociceptivo de <i>Critoniella acuminata</i>, <i>Physalis peruviana</i> y <i>Salvia rubescens</i></font></b></p>     <p align="center"><font size="3"><b>Antinociceptive effect of <i>Critoniella acuminata</i>, <i>Physalis peruviana</i> and <i>Salvia rubescens</i></b></font></p>     <p align="center">  Carol E. Mu&ntilde;oz, Nadezdha E. Vergel, Pablo Cabral, Diana Marcela Arag&oacute;n, Luis Fernando Ospina<sup>*</sup> </p>       <p> Departamento de Farmacia, Universidad Nacional de Colombia, Bogot&aacute;, Colombia.    <br>  <sup>*</sup>Correo electr&oacute;nico: <a href="mailto"lfospinag@unal.edu.co>lfospinag@unal.edu.co</a></p>      <p>Recibido para evaluaci&oacute;n: octubre 18 de 2008. Aceptado para publicaci&oacute;n: enero 19 de 2009.</p> <hr>      <p><b><font size="3">RESUMEN</font></b></p>      <p> Se evalu&oacute; el efecto antinociceptivo de extractos, fracciones y compuestos de <i>Critoniella acuminata</i>, <i>Physalis peruviana</i> y <i>Salvia rubescens</i> mediante los m&eacute;todos de placa caliente, contorsiones abdominales inducidas por &aacute;cido ac&eacute;tico y ensayo de la formalina.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La fracci&oacute;n de <i>Critoniella acuminata</i> en dosis de 100 mg/kg <i>p.o</i>. present&oacute; actividad antinociceptiva al aumentar el tiempo de reacci&oacute;n del animal ante la aplicaci&oacute;n de un est&iacute;mulo t&eacute;rmico (m&eacute;todo de la placa caliente), mientras que la fracci&oacute;n de <i>Physalis peruviana</i>, en una dosis de 100 mg/kg <i>p. o</i>., ejerce un efecto antinociceptivo frente al dolor generado por est&iacute;mulos qu&iacute;micos (dolor visceral agudo) al inhibir en un 40% las contorsiones abdominales inducidas por &aacute;cido ac&eacute;tico y el n&uacute;mero de lamidos durante la fase II (dolor inflamatorio agudo) en el ensayo de formalina. Estos resultados sugieren que la ayapina y la fracci&oacute;n de <i>Physalis peruviana</i> estudiadas tienen actividad antinociceptiva, con posibles mecanismos de tipo opioide y aine, respectivamente.</p>      <p><b>Palabras clave</b>: Placa caliente, formalina, contorsiones abdominales, <i>Critoniella acuminata</i>, <i>Physalis peruviana</i>, <i>Salvia rubescens</i>.</p> <hr>      <p><b><font size="3">ABSTRACT</font></b></p>      <p> The antinociceptive effect of extracts, fractions and compounds of <i>Critoniella acuminata</i>, <i>Physalis peruviana</i> and <i>Salvia rubescens</i> were evaluated by the follow methods: Hot Plate test, acetic acid induced abdominal writhing and Formalin test. The fraction of <i>Critoniella acuminata</i> at doses of 100mg/kg <i>p.o.</i> exhibited antinociceptive effect in the hot plate test; while <i>Physalis peruviana</i> fraction at doses of 100 mg/kg <i>p.o.</i>, showed an antinociceptive effect against the pain chemically induced. This fraction produced 40% inhibition of the acetic acid induced writhing (acute visceral nociception) and the licks during phase II (acute inflammatory nociception) of the formalin test. The findings of this experimental study suggest that fractions of <i>Critoniella acuminata</i> and <i>Physalis peruviana</i> possess antinociceptive activity with opioid and nsaid-like mechanisms respectively.</p>      <p><b>Key words</b>: Hot Plate, Acetic acid induced writhing, Formalin Test, <i>Physalis peruviana</i>, <i>Critoniella acuminata</i>, <i>Salvia rubescens</i>.</p> <hr>      <p><b><font size="3">INTRODUCCI&Oacute;N</font></b></p>      <p> El uso de plantas medicinales ha tenido gran auge en los &uacute;ltimos a&ntilde;os. Estudios cient&iacute;ficos sobre los usos populares dados a las plantas medicinales buscan corroborar su efectividad, mostrando en algunos casos cierta eficacia cl&iacute;nica para varias enfermedades o condiciones patol&oacute;gicas (1, 2). Tal es el caso de <i>Critoniella acuminata</i>, <i>Physalis peruviana</i> y <i>Salvia rubescens</i>, para las cuales algunos autores ya han reportado actividad antiinflamatoria en ensayos precl&iacute;nicos (3, 4, 5).</p>      <p>Con el fin de continuar con el estudio de la actividad farmacol&oacute;gica de estas plantas, en este trabajo se evalu&oacute; su posible efecto antinociceptivo teniendo en cuenta el efecto antiinflamatorio ya reportado y el uso etnom&eacute;dico que se les da.</p>      <p><b><i>Critoniella acuminata</i></b> (Compositae), conocida com&uacute;nmente como "apio de monte" o "patinegra", se usa tradicionalmente como desinfectante, diafor&eacute;tico, febr&iacute;fugo, cicatrizante y antiprotozoario. Contiene flavonoides, feniletilamidas, derivados del farneseno, ayapina y carbinol. De estos compuestos, se ha demostrado que ayapina tiene actividad antiinflamatoria evaluada en el modelo de edema auricular inducido por aceite de croton en rat&oacute;n (5).</p>      <p><b> <i>Physalis peruviana</i></b> (Solanaceae), com&uacute;nmente conocida como "uchuva", es una planta originaria de los Andes suramericanos y es una de las especies m&aacute;s conocidas de este g&eacute;nero por su uso alimenticio (4). Ha sido ampliamente utilizada como anticancer&iacute;geno, antimicrobiano, antipir&eacute;tico, antileuc&eacute;mico, inmunomodulador y para el tratamiento de enfermedades como malaria, asma, hepatitis y dermatitis; se emplea como cataplasma antiinflamatorio sobre contusiones, torceduras y dislocaciones &oacute;seas (6,7). Los frutos se usan en el tratamiento de la estomatitis, faringitis, diabetes, como descongestionante ocular y diur&eacute;tico. Los estudios realizados han reportado la presencia de witan&oacute;lidos en hojas, frutos y c&aacute;lices, responsables de la actividad citost&aacute;tica (8).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b><i>Salvia rubescens</i></b> (Labiatae), com&uacute;nmente conocida como "salvia colombiana", crece en la zona central de la cordillera Oriental de los Andes colombianos; es una planta de sabor muy amargo a causa de la presencia de amaris&oacute;lido. Se ha empleado como planta medicinal para el tratamiento de infecciones microbianas, hepatitis viral, enfermedades cardiacas, des&oacute;rdenes menstruales, hemorragias y otras anormalidades sangu&iacute;neas. Se encontr&oacute; que el extracto total de <i>Salvia rubescens</i> logr&oacute; inhibir el edema en oreja de rat&oacute;n (3). De las partes a&eacute;reas de esta planta se ha aislado el amaris&oacute;lido, un neoclerodano (9) con actividad antiinflamatoria (10) y efecto sobre la desgranulaci&oacute;n leucocitaria demostrados (11).</p>      <p><b><font size="3">MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</font></b></p>      <p><b> Material vegetal, extractos y fracciones</b></p>      <p> Los extractos y fracciones utilizados en este trabajo fueron suministrados por otros investigadores de nuestro grupo (4,10). A continuaci&oacute;n se describe brevemente c&oacute;mo se obtuvieron.</p>      <p><b> <i>Salvia rubescens</i> (col 434050)</b></p>     <p> Las partes &aacute;reas, con flores, de <i>Salvia rubescens</i> Kunth subsp. Rubescens se recolectaron en la parte baja del cerro de La Conejera, en la sabana de Bogot&aacute; (2.600 m. s. n. m. / 14 &deg;C) en septiembre de 2005. Luego se seleccionaron las hojas, las cuales se secaron en una estufa con recirculaci&oacute;n de aire a 40-45 &deg;C durante 48 horas. Con posterioridad al secado, el material vegetal se moli&oacute; en un molino de cuchillas. El polvo obtenido se desengras&oacute; con &eacute;ter de petr&oacute;leo por percolaci&oacute;n durante 24 horas a temperatura ambiente. El marco residuo se someti&oacute; a una nueva extracci&oacute;n por percolaci&oacute;n con etanol al 96%. El extracto resultante fue posteriormente fraccionado con diclorometano; la fracci&oacute;n soluble se denomin&oacute; FSR.</p>      <p>FSR fue purificado por cromatograf&iacute;a en columna (fase estacionaria: aerosil-celita 5:1 y fase m&oacute;vil: en su orden diclorometano, acetato de isopropilo, acetato de etilo, acetona y metanol). De las fracciones resultantes despu&eacute;s del uso de acetato de etilo y acetona se obtuvieron cristales de amaris&oacute;lido con una pureza cercana al 95% (10).</p>      <p><b><i>Critoniella acuminata</i> (col 311090)</b></p>     <p> Las partes &aacute;reas, con flores, de <i>Critoniella acuminata</i>, se recolectaron en el kil&oacute;metro 15 de la v&iacute;a Bogot&aacute;-Mesitas del Colegio (2.000 m.s.n.m. / 15 &deg;C) en noviembre de 2005. Luego la planta completa se sec&oacute; en una estufa con recirculaci&oacute;n de aire a 40-45 &deg;C durante 48 horas. Tras el secado, el material vegetal se moli&oacute; en un molino de cuchillas. A continuaci&oacute;n, el polvo se someti&oacute; a percolaci&oacute;n con etanol al 96% hasta agotamiento del material vegetal. Los extractos se filtraron y se concentraron hasta sequedad en un rotaevaporador, los cuales constituyeron el extracto etan&oacute;lico total. Despu&eacute;s se hizo un fraccionamiento en diclorometano; la fracci&oacute;n soluble en diclorometano se denomin&oacute; fca y se utiliz&oacute; en este estudio.</p>      <p>A la fracci&oacute;n fca se le adicion&oacute; metanol induciendo la precipitaci&oacute;n de un compuesto el cual fue purificado por cromatograf&iacute;a en columna (fase estacionara: s&iacute;lica gel 0040- 0,063 mm y fase m&oacute;vil: hexano-cloroformo en polaridad creciente). Dicho compuesto corresponde a la cumarina ayapina (10).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b><i>Physalis peruviana</i> (col 512200)</b></p>     <p> Los c&aacute;lices de <i>Physalis peruviana</i> fueron recolectados directamente por los comerciantes del fruto, en los cultivos situados en La Mesa (Cundinamarca) (1.198 m. s. n. m. / 20 &deg;C).</p>      <p>El material vegetal seco y pulverizado se someti&oacute; a extracci&oacute;n por percolaci&oacute;n con &eacute;ter de petr&oacute;leo hasta agotamiento. El extracto obtenido (EPP) se concentr&oacute; en rotaevaporador utilizando calentamiento suave (25-30 &deg;C) y presi&oacute;n reducida. Posteriormente epp se fraccion&oacute; con una mezcla de metanol y agua 50:50. Luego se fraccion&oacute; por cromatograf&iacute;a en columna (fase estacionaria: s&iacute;lica gel 0,063-0,200 mm y fase m&oacute;vil: en su orden &eacute;ter de petr&oacute;leo, diclorometano, acetato de etilo y etanol). Se obtuvieron 38 fracciones; la n&uacute;mero 28 fue la evaluada en este estudio (FPP). Esta fracci&oacute;n contiene, en un 82%, una mezcla de dos compuestos de tipo glic&oacute;sidos de &eacute;steres alif&aacute;ticos de &aacute;cidos de cadena corta (4).</p>      <p><b>Animales de experimentaci&oacute;n</b></p>     <p> En cada experimento se emplearon ratones machos o hembras, ICR, de 25 a 35 g de peso y 10-12 semanas de edad, criados y mantenidos en condiciones controladas: ciclos 12h luz/12h oscuridad, temperatura 21 &deg;C, agua y comida <i>ad libitum</i>. Los ensayos se realizaron en el <i>bioterio</i> de experimentaci&oacute;n del Departamento de Farmacia de la Universidad Nacional de Colombia. Para minimizar la variabilidad circadiana y tambi&eacute;n posibles variaciones en la sensibilidad al dolor por factores r&iacute;tmicos end&oacute;genos, se trabaj&oacute; siempre en la misma franja horaria.</p>      <p>Todos los experimentos fueron realizados siguiendo consideraciones &eacute;ticas en cuanto al cuidado y uso de animales de experimentaci&oacute;n (12).</p>      <p><b>Ensayos de actividad antinociceptiva</b></p>      <p>Para evaluar el posible efecto antinociceptivo de <i>Critoniella acuminata</i>, <i>Physalis peruviana</i> y <i>Salvia rubescens</i>, se utilizaron tres modelos experimentales: placa caliente (13, 14, 15), ensayo de la formalina (16) y contorsiones abdominales inducidas por &aacute;cido ac&eacute;tico (13, 17).</p>      <p>FCA, EPPP y FSR se evaluaron en dosis de 500 mg/kg (<i>p. o.</i>), FPP, ayapina y amaris&oacute;lido en dosis de 100 mg/kg (<i>p. o.</i>); como sustancias de referencia se emplearon morfina 5 mg/ kg (s. c.) y ASA 200 mg/kg (<i>p.o.</i>). El grupo control recibi&oacute; el veh&iacute;culo en el cual se prepararon los extractos y fracciones: agua destilada, glicerina y propilenglicol (80:10:10), 0,1 mL/10 g de peso corporal.</p>      <p><b>Ensayo de placa caliente</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> Se sigui&oacute; el ensayo descrito por Eddy y Leimbach (15), con peque&ntilde;as modificaciones. Se emple&oacute; una placa UGO Basile con temperatura ajustada en 55 &plusmn; 0,5 &deg;C. Se situ&oacute; cada animal individualmente dentro del cilindro sobre la placa caliente hasta obtener la respuesta de aqu&eacute;l al dolor inducido (salto fuera del cilindro). Se registr&oacute; el tiempo (segundos) que tom&oacute; cada rat&oacute;n en saltar fuera del cilindro; cada animal sirvi&oacute; como su propio control.</p>      <p>Se realiz&oacute; una preselecci&oacute;n de los animales aceptando &uacute;nicamente aquellos que reaccionaron dentro del rango 5-30 segundos. Luego se pusieron de nuevo sobre la placa caliente; la media de dos determinaciones constituy&oacute; "el tiempo de reacci&oacute;n inicial" y se administr&oacute; (<i>p. o.</i>) a cada uno de los ratones el tratamiento correspondiente: veh&iacute;culo, morfina, extracto o fracci&oacute;n de las diferentes plantas. Se evalu&oacute; de nuevo el tiempo de reacci&oacute;n 30, 60 y 90 minutos despu&eacute;s.</p>      <p><b> Ensayo de la formalina</b></p>     <p> Se realiz&oacute; de acuerdo con lo descrito por Hunskaar y Hole (16), con algunas modificaciones. Una hora despu&eacute;s de la administraci&oacute;n del extracto o fracci&oacute;n, se inyect&oacute; formalina al 4% (50 &micro;l, s. c.) en la superficie plantar de la pata izquierda. De inmediato se introdujo el animal en un recipiente transparente para observar su comportamiento.</p>     <p>El efecto antinociceptivo se determin&oacute; midiendo el n&uacute;mero de lamidos durante las dos fases: 0-5 minutos (fase I) y 15-30 minutos (fase II).</p>      <p><b> Contorsiones abdominales inducidas por &aacute;cido ac&eacute;tico</b></p>     <p> Este ensayo fue descrito por Collier y colaboradores en 1968 (17). En resumen: todos los animales recibieron &aacute;cido ac&eacute;tico 1% intraperitoneal (0,1 mL/10 g), para inducir contorsiones abdominales. Una hora antes de la inyecci&oacute;n de &aacute;cido ac&eacute;tico cada grupo recibi&oacute; el tratamiento asignado. El n&uacute;mero de contorsiones se midi&oacute; durante 20 minutos. Una reducci&oacute;n significativa en el n&uacute;mero de contorsiones comparada con el grupo control se consider&oacute; una respuesta antinociceptiva positiva. El porcentaje de inhibici&oacute;n de contorsiones se calcul&oacute; as&iacute;: <a href="#ecu1">ecu1</a></p>     <p>    <center><a name="ecu1"></a><img src="img/revistas/rccqf/v38n1/v38n1a03ecu1.gif"></center></p>      <p>Donde Ct: contorsiones del grupo tratado.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> Cc: contorsiones del grupo control.</p>      <p><b> An&aacute;lisis estad&iacute;stico</b></p>      <p> Los resultados de la evaluaci&oacute;n de la actividad antinociceptiva se expresaron como la media aritm&eacute;tica de los valores &plusmn; desviaci&oacute;n est&aacute;ndar de la media y se analizaron estad&iacute;sticamente mediante anova de una v&iacute;a; seguido de una prueba de Tukey para comparaciones m&uacute;ltiples. Se consider&oacute; significativa (*) la diferencia entre los grupos tratados y el grupo de control cuando p &lt; 0,05.</p>      <p><b><font size="3">RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</font></b></p>      <p><b>Ensayo de la placa caliente</b></p>     <p> En este ensayo (<a href="#tab01">Tabla 1</a>), el tiempo de reacci&oacute;n no se aument&oacute; ni a los 30 ni a los 90 minutos despu&eacute;s de administrados los tratamientos; mientras que 60 minutos despu&eacute;s &uacute;nicamente el compuesto ayapina aument&oacute; el tiempo de reacci&oacute;n respecto al grupo control, pero en menor magnitud que la respuesta de la morfina. Si bien 60 minutos es el tiempo de m&aacute;xima actividad de ayapina, dicha actividad es de muy corta duraci&oacute;n, hecho posiblemente asociado a la farmacocin&eacute;tica del compuesto.</p>     <p>    <center><a name="tab01"></a><img src="img/revistas/rccqf/v38n1/v38n1a03tab01.gif"></center></p>      <p> El modelo de la placa caliente se emplea para determinar espec&iacute;ficamente un posible efecto antinociceptivo en el sistema nervioso central (13, 14). Por esta raz&oacute;n, se espera que las sustancias que presenten actividad en este modelo tengan un mecanismo similar al de analg&eacute;sicos opiodes. Teniendo en cuenta que esta evaluaci&oacute;n se realiz&oacute; &uacute;nicamente con una dosis de 100 mg/kg, es conveniente realizar posteriormente un ensayo dosis-respuesta que permita mostrar la magnitud real de la actividad antinociceptiva de ayapina y ampliar la elucidaci&oacute;n de su posible mecanismo de acci&oacute;n.</p>      <p><b>Ensayo de la formalina</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> En &eacute;l se observ&oacute; (<a href="#tab02">Tabla 2</a>) un n&uacute;mero mayor de lamidos en la primera fase (5 minutos de duraci&oacute;n) y por consiguiente mayor frecuencia de lamidos respecto de la segunda fase (15 minutos de duraci&oacute;n). Como era de esperarse, dado su mecanismo de acci&oacute;n, la morfina (5 mg/kg s. c.) ejerci&oacute; una acci&oacute;n protectora ante el est&iacute;mulo qu&iacute;mico (formalina) en ambas fases del ensayo, mientras que el ASA (200 mg/kg <i>p. o.</i>) mostr&oacute; una protecci&oacute;n frente al dolor inflamatorio (segunda fase), pero no frente al dolor neurog&eacute;nico. Durante la primera fase se observ&oacute; que la fFPP disminuy&oacute;, respecto al grupo control, el n&uacute;mero de lamidos de la pata inyectada con formalina, mientras que los dem&aacute;s tratamientos no presentaron una actividad significativa en esta fase del ensayo.</p>      <p>Ahora bien, en la segunda fase se observ&oacute; una disminuci&oacute;n, comparado con el control, en el n&uacute;mero de lamidos de la pata inyectada en los grupos tratados con la FPP y FSR. Las sustancias patr&oacute;n utilizadas presentaron una disminuci&oacute;n de los lamidos, mientras que los dem&aacute;s tratamientos empleados no mostraron efecto durante esta fase del ensayo.</p>     <p>    <center><a name="tab02"></a><img src="img/revistas/rccqf/v38n1/v38n1a03tab02.gif"></center></p>      <p> El modelo de nocicepci&oacute;n de la formalina puede discriminar entre el dolor central y el dolor perif&eacute;rico. La primera fase se genera en la periferia por medio de la activaci&oacute;n de neuronas nociceptivas por acci&oacute;n directa de la formalina, mientras que la segunda fase ocurre por medio de la activaci&oacute;n de neuronas centrales en la m&eacute;dula espinal (13). Por esta raz&oacute;n se recomienda usar dos controles positivos, uno de tipo opioide, como la morfina, que logre inhibir ambas fases, y otro de tipo AINE, como el ASA, que inhiba solamente la segunda fase de este ensayo (13, 14).</p>      <p>Los resultados encontrados en el estudio permiten proponer que para el caso del FSR y la FPP la actividad antinociceptiva de estos involucra mecanismos de tipo aine, lo cual complementa el conocimiento previo de su actividad antiinflamatoria (4, 10).</p>      <p>Los dem&aacute;s tratamientos empleados no mostraron efecto antinociceptivo durante esta fase del ensayo. Teniendo en cuenta que previamente estos extractos y fracciones hab&iacute;an mostrado efecto antiinflamatorio, es probable que la dosis empleada en este estudio no sea suficiente para mostrar actividad antinociceptiva, por lo cual ser&iacute;a interesante evaluar dosis m&aacute;s altas.</p>      <p><b>Contorsiones abdominales inducidas por &aacute;cido ac&eacute;tico</b></p>      <p> En este ensayo (<a href="#tab03">Tabla 3</a>) resalta el efecto mostrado por la FPP, con una inhibici&oacute;n de las contorsiones abdominales del 40%; actividad comparable a la mostrada por la sustancia patr&oacute;n analg&eacute;sica: ASA (34% de inhibici&oacute;n).</p>     <p> Los dem&aacute;s extractos y fracciones produjeron inhibiciones entre el 17 y 29%, efectos que no fueron significativos frente al control.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>    <center><a name="tab03"></a><img src="img/revistas/rccqf/v38n1/v38n1a03tab03.gif"></center></p>      <p> Aunque las contorsiones abdominales inducidas por &aacute;cido ac&eacute;tico no constituye un modelo de nocicepci&oacute;n espec&iacute;fico, permite mostrar un efecto antinociceptivo general de las sustancias que se est&aacute;n evaluando. En este modelo de dolor se generan indirectamente mediadores end&oacute;genos como bradiquinina y serotonina, los cuales estimulan las neuronas nociceptivas perif&eacute;ricas. Estas fibras son sensitivas tanto para opiodes como para antiinflamatorios no esteroideos (13, 14).</p>      <p>La FPP inhibi&oacute; el dolor inducido por &aacute;cido ac&eacute;tico con una potencia similar a la de la sustancia patr&oacute;n. A pesar de no ser significativa la disminuci&oacute;n de las contorsiones abdominales en los grupos con los dem&aacute;s extractos y fracciones evaluadas, s&iacute; se observ&oacute; inhibici&oacute;n de las contorsiones. Esta situaci&oacute;n puede llevar a pensar que existe una relaci&oacute;n entre la respuesta encontrada y la actividad antiinflamatoria ya demostrada, pero que a las dosis empleadas en este estudio no se evidencia claramente.</p>      <p>No sorprende que en este tipo de experimentos farmacol&oacute;gicos se encuentre actividad en las fracciones y no en los extractos m&aacute;s complejos de los cuales &eacute;stas proceden. Lo cual sucede siempre y cuando el proceso de fraccionamiento lleve a la depuraci&oacute;n y enriquecimiento de los principios activos responsables de la actividad. As&iacute; mismo, en extractos generales y fracciones complejas se pueden ver enmascaradas las acciones farmacol&oacute;gicas por la posibilidad de presentar efectos de sinergismo y antagonismo a causa de los numerosos compuestos presentes.</p>      <p><b><font size="3">CONCLUSIONES</font></b></p>      <p> La FPP tiene actividad antinociceptiva frente al dolor producido por est&iacute;mulos qu&iacute;micos (contorsiones abdominales AINE, que constituye el primer reporte sobre este tipo de actividad para los c&aacute;lices de <i>Physalis peruviana</i>.</p>      <p>La FCA mostr&oacute; un efecto antinociceptivo frente al dolor producido por est&iacute;mulos t&eacute;rmicos (placa caliente), reflejando posiblemente un mecanismo de acci&oacute;n analg&eacute;sica tipo opioide, lo cual plantea la necesidad de experimentos posteriores para comprobar el posible mecanismo de acci&oacute;n.</p>      <p><b><font size="3">AGRADECIMIENTOS</font></b></p>      <p> A la Divisi&oacute;n de Investigaci&oacute;n de la Sede Bogot&aacute; de la Universidad Nacional de Colombia, por la financiaci&oacute;n de este proyecto. Al Grupo de investigaci&oacute;n "Principios Bioactivos de Plantas" y al Departamento de Farmacia de la Universidad Nacional de Colombia por facilitar los equipos e instalaciones para el desarrollo de este trabajo.</p> <hr>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b><font size="3">BIBLIOGRAF&Iacute;A</font></b></p>      <!-- ref --><p> 1. T. Zinky J. Chaffin, Herbal health products:  What family physicians need to know, Am. Fam. Physician, 1, 58 (1998).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0034-7418200900010000300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 2. C. Johns, Herbal remedies: Adverse effects and drug interactions, Am. Fam. Physician, 1, 59 (1999).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0034-7418200900010000300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 3. A. Vel&aacute;squez, "Efecto antiinflamatorio y antioxidante de algunas plantas utilizadas en la medicina tradicional colombiana", Tesis de Maestr&iacute;a, Universidad Nacional de Colombia, 2002, p. 65.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0034-7418200900010000300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 4. L. A. Franco, G. Matiz, J. Calle, R. Pinz&oacute;n y L. F. Ospina, Actividad antiinflamatoria de extractos y fracciones obtenidas de c&aacute;lices de <i>Physalis peruviana</i> L., Biom&eacute;dica, 27, 110 (2007).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0034-7418200900010000300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 5. F. Gonz&aacute;lez y M. Vesga, "Caracterizaci&oacute;n qu&iacute;mica de algunos metabolitos secundarios de <i>Critoniella acuminata</i> (H. B. K.) R. M. King &amp; H. Robinson y evaluaci&oacute;n de su posible actividad antiinflamatoria", Tesis de Grado, Universidad Nacional de Colombia, 2003, p. 58.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0034-7418200900010000300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 6. H. Y.Bernal y J. E. Correa, "Especies vegetales 6. promisorias de los pa&iacute;ses del convenio Andr&eacute;s Bello", Talleres Editoriales Guadalupe Eds., Bogot&aacute;, 1998, T. 7, pp. 441-46.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0034-7418200900010000300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 7. F. Cabello, F. Durst, J. Jorrin y D. Werck-Reichhart, Coumarins in Helianthus tuberosus characterization induced accumulation and biosynthesis, Phytochemistry, 38, 918 (1998).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0034-7418200900010000300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 8. T. W. Baumann y C. M. Meier, Chemical defence by withanolides during fruit development in <i>Physalis peruviana</i>, Phytochem., 33, 317 (1993).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0034-7418200900010000300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 9. E. Maldonado, J. C&aacute;rdenas, H. Boh&oacute;rquez, E. Escamilla y A. Ortega, Amarisolide, a neo clerodane diterpene glycoside from <i>Salvia amarissima</i>, Phytochem., 42, 1105 (1996).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0034-7418200900010000300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 10. A. L. Valenzuela Correa, "Estudio sobre la ruta de metabolismo del &aacute;cido araquid&oacute;nico como posible mecanismo de actividad antiinflamatoria para principios bioactivos de plantas medicinales colombianas", Tesis Doctoral, Universidad Nacional de Colombia, 2008, pp. 71-80.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0034-7418200900010000300010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 11. M. Rodr&iacute;guez, N. Vergel, L. F. Ospina, J. Calle y R. Pinz&oacute;n, Evaluaci&oacute;n de actividades enzim&aacute;ticas elastasa y mieloperoxidasa como marcadores de desgranulaci&oacute;n leucocitaria en modelos de inflamaci&oacute;n aguda, Rev. Col. Cienc. Quim. Farm., 34, 35 (2005).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0034-7418200900010000300011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 12. A. Mrad de Osorio y C. A. Cardozo de Mart&iacute;nez, "Utilizaci&oacute;n de animales de laboratorio en la experimentaci&oacute;n biol&oacute;gica", Universidad Nacional de Colombia, Instituto de Biotecnolog&iacute;a, Eds., Bogot&aacute;, 2000, p. 27.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0034-7418200900010000300012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 13. A. Ortega, A. Roca y J. A. Mic&oacute;, Modelos animales de dolor: una visi&oacute;n cr&iacute;tica, Rev. Soc. Esp. Dolor, 9, 447 (2002).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0034-7418200900010000300013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 14. J. M. Gonz&aacute;lez-Dader, Modelos animales de dolor y aspectos &eacute;ticos de la experimentaci&oacute;n animal, Rev. Soc. Esp. Dolor, 7, 3131 (2000).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0034-7418200900010000300014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 15. N. B. Eddy y D. Leimbach, Synthetic analgesics. II. Dithienylbutenyl and dithienylbutilamines, J. Pharmacol. Exp. Ther., 107, 385 (1953).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0034-7418200900010000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 16. S. Hunskaar y K. Hole, The formalin test in mice: Dissociation between inflammatory and non-inflammatory pain, Pain, 30, 103 (1987).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0034-7418200900010000300016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 17. H. D. J. Collier, L. C. Dinnin, C. A. Johnson y C. Schneider, The abdominal response and its suppression by analgesic drugs in the mouse, B. J. Pharmacol. Chemother., 32, 295 (1968).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0034-7418200900010000300017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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