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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Caracterización de cepas de Rhizobium y Bradyrhizobium (con habilidad de nodulación) seleccionados de los cultivos de fríjol caupi (Vigna unguiculata) como potenciales bioinóculos]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Latin America´s soils are acidic and nitrogen-deficient, for this reason is necessary to explore new alternatives in order to modulate in the development of plants, specially the leguminous plants. The use of bacteria´s potential to induce nodulation and to fix nitrogen in leguminous plants has been studied as an option with potential impact. In our study, we analyzed the diversity of rhizobial isolated of the bean Vigna unguiculata (beans cowpea) cultured in the north of Bolivar department (Colombia). We identified strains able of growing in hostile environment (which have a potential use like bioinoculants). Additionally, we described an approach to taxonomy of these biospecies. We reached the characterization of 52 rhizobial strains (based on their morphologic, requires of culture, metabolic, resistance to metals and antibiotics and authentication characteristics). According with their growing properties, 63.5 % were slow growth strains while the 36.5 % were of rapid growth. The isolates were characterized according to their assimilation carbohydrate´s pattern, finding microorganism as Rhizobium, Bradyrhizobium and Mesorhizobium (12 of which were identified as potential bioinoculants).]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p align="right">Art&iacute;culo de Investigaci&oacute;n</p>     <p align="center"><b><font size="4">Caracterizaci&oacute;n de cepas de <i>Rhizobium</i> y <i>Bradyrhizobium</i> (con habilidad de nodulaci&oacute;n) seleccionados de los cultivos de fr&iacute;jol caupi (<i>Vigna unguiculata</i>) como potenciales bioin&oacute;culos</font></b></p>     <p align="center"><font size="3"><b>Characterization of <i>Rhizobium</i> and <i>Bradyrhizobiu's</i> strains (with ability of nodulation) selected from bean (<i>Vigna unguiculata</i>) cultures as a potentials bioinoculants</b></font></p>      <p align="center">  Bernarda Cuadrado, <sup>*</sup> Guillermo Rubio, Winston Santos</p>     <p> Grupo de Investigaci&oacute;n en Microbiolog&iacute;a y Sistemas Simbi&oacute;ticos, Departamento de Farmacia, Facultad de Ciencias Qu&iacute;micas y Farmac&eacute;uticas, Universidad de Cartagena.</p>     <p>* Correo electr&oacute;nico: <a href="mailto"bernardac@yahoo.com>bernardac@yahoo.com</a></p>     <p>Recibido para evaluaci&oacute;n: febrero 27 de 2009. Aceptado para publicaci&oacute;n: mayo 18 de 2009.</p> <hr>      <p><b><font size="3">RESUMEN</font></b></p>      <p> Los suelos de Latinoam&eacute;rica son &aacute;cidos y deficientes en nitr&oacute;geno; por esta raz&oacute;n es necesario explorar nuevas alternativas con el fin de modular el desarrollo de plantas, especialmente las leguminosas. El uso del potencial de las bacterias para inducir nodulaci&oacute;n y fijar el nitr&oacute;geno en las plantas leguminosas se ha estudiado como una opci&oacute;n con potencial impacto. En este estudio se analiz&oacute; la diversidad de cepas de rhizobios aislados del fr&iacute;jol <i>Vigna unguiculata</i> (fr&iacute;jol caup&iacute;) cultivado en el norte del departamento de Bol&iacute;var (Colombia). Se identificaron aislados capaces de crecer mejor en ambientes hostiles (los cuales tienen un uso potencial como bioinoculantes). Se describe adem&aacute;s un acercamiento a la taxonom&iacute;a de estas bioespecies.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Se caracterizaron 52 cepas de rizobios (basados en sus caracter&iacute;sticas morfol&oacute;gicas, requerimientos de cultivo, metab&oacute;licas, resistencia a metales y antibi&oacute;ticos y de autenticaci&oacute;n). De acuerdo con sus propiedades de crecimiento, el 63,5% fueron de cepas de lento, mientras que el 36,5%, de r&aacute;pido crecimiento. Prevalecieron las de lento crecimiento con un 63,5% del total sobre un 36,5% de r&aacute;pido crecimiento. Los aislados fueron caracterizados de acuerdo con sus patrones de asimilaci&oacute;n de carbohidratos, y se encontraron microorganismos de los g&eacute;neros <i>Rhizobium</i>, <i>Bradyrhizobium</i> y <i>Mesorhizobium</i> (12 cepas identificadas como potenciales bioinoculantes).</p>      <p><b>Palabras clave</b>: <i>Rhizobium</i>, <i>Bradyrhizobium</i>, <i>Vigna unguiculata</i>, biodiversidad, bioin&oacute;culos.</p> <hr>      <p><b><font size="3">ABSTRACT</font></b></p>      <p> Latin America's soils are acidic and nitrogen-deficient, for this reason is necessary to explore new alternatives in order to modulate in the development of plants, specially the leguminous plants. The use of bacteria's potential to induce nodulation and to fix nitrogen in leguminous plants has been studied as an option with potential impact. In our study, we analyzed the diversity of rhizobial isolated of the bean <i>Vigna unguiculata</i> (beans cowpea) cultured in the north of Bolivar department (Colombia). We identified strains able of growing in hostile environment (which have a potential use like bioinoculants). Additionally, we described an approach to taxonomy of these biospecies.</p>      <p>We reached the characterization of 52 rhizobial strains (based on their morphologic, requires of culture, metabolic, resistance to metals and antibiotics and authentication characteristics). According with their growing properties, 63.5 % were slow growth strains while the 36.5 % were of rapid growth. The isolates were characterized according to their assimilation carbohydrate's pattern, finding microorganism as <i>Rhizobium</i>, <i>Bradyrhizobium</i> and <i>Mesorhizobium</i> (12 of which were identified as potential bioinoculants).</p>      <p><b>Key words:</b>: <i>Rhizobium</i>, <i>Bradyrhizobium</i>, <i>Vigna unguiculata</i>, biodiversity, bioinoculants.</p> <hr>      <p><b><font size="3">INTRODUCCION</font></b></p>      <p> El nitr&oacute;geno se encuentra en la naturaleza fundamentalmente como gas (79% de la atm&oacute;sfera), pero a pesar de su gran abundancia, de poco les sirve a las plantas y animales mientras permanezca en la atm&oacute;sfera, ya que son incapaces de fijarlo y aprovecharlo; por fortuna, existen microorganismos que s&iacute; son capaces de fijar ese nitr&oacute;geno atmosf&eacute;rico y transformarlo en compuestos f&aacute;cilmente asimilables (1).</p>      <p>El grupo de bacterias al que se conoce colectivamente como rizobios inducen en las ra&iacute;ces (o en el tallo) de las leguminosas la formaci&oacute;n de estructuras especializadas, los n&oacute;dulos, dentro de los cuales el nitr&oacute;geno gaseoso se reduce a amonio. Se estima que este proceso contribuye entre el 60-80% de la fijaci&oacute;n biol&oacute;gica de nitr&oacute;geno, o FBN, y esta simbiosis aporta una parte considerable del nitr&oacute;geno combinado en la tierra y permite a las plantas leguminosas crecer sin fertilizantes nitrogenados y sin empobrecer los suelos.</p>      <p>El uso indiscriminado de fertilizantes nitrogenados en agricultura ha ocasionando graves problemas de contaminaci&oacute;n. No todo el fertilizante que se aplica es aprovechado por la planta, sino que una cuant&iacute;a importante acaba en lagos y lagunas. La FBN es la opci&oacute;n natural de fertilizaci&oacute;n qu&iacute;mica.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Es marcado el inter&eacute;s que estas bacterias representan para la agricultura, que se emplean como inoculantes (biofertilizantes). Ejemplo de ello es el <i>Rhizobium</i>, que fue la primera bacteria producida a gran escala y se ha a&ntilde;adido como inoculante durante 105 a&ntilde;os a diversos cultivos agr&iacute;colas, con &eacute;xito en muchos casos.</p>      <p>La carencia de equipos y tecnolog&iacute;as adecuadas para caracterizar y clasificar a los rizobios limitaron enormemente a los cient&iacute;ficos en &eacute;pocas pasadas; no obstante, parte de la informaci&oacute;n que se tiene acerca del fenotipo y genotipo de los rizobios descansa en los resultados de las investigaciones llevadas a cabo hace m&aacute;s de 60 a&ntilde;os (2).</p>      <p>En la actualidad, la taxonom&iacute;a de los rizobios se basa en un enfoque polif&aacute;sico que incluye caracterizaci&oacute;n de la morfolog&iacute;a, bioqu&iacute;mica, fisiolog&iacute;a, gen&eacute;tica y filogenia, entre otros aspectos, y no se pueden adelantar estudios de tipo gen&eacute;tico si no se han identificado sus propiedades fenot&iacute;picas (3). Se estima que los rizobios no conocidos en el mundo representan un recurso biol&oacute;gico porque las leguminosas son uno de los grupos de plantas m&aacute;s grande y diverso y se encuentran distribuidas en distintos ecosistemas (4).</p>      <p>En la descripci&oacute;n del fenotipo de estas bacterias se reportan caracter&iacute;sticas morfol&oacute;gicas y de colonias, bioqu&iacute;micas, fisiol&oacute;gicas, patrones de utilizaci&oacute;n de fuentes de carbono y nitr&oacute;geno y resistencia a antibi&oacute;ticos, entre otras. Estos datos se eval&uacute;an normalmente por un an&aacute;lisis de agrupamiento, la taxonom&iacute;a num&eacute;rica, lo cual puede ofrecer una visi&oacute;n detallada de la variaci&oacute;n de las bacterias dentro de una especie o entre diferentes especies y reconocer rasgos caracter&iacute;sticos de cada especie (5).</p>      <p>Algunos rizobios tienen un rango m&aacute;s amplio de plantas hu&eacute;spedes que otras y hay muchos problemas con este acercamiento, incluso el hecho de que existen cerca de 18.000 especies de legumbres e incontables tipos de rizobios. La "especificidad del anfitri&oacute;n" de las bacterias y plantas pr&aacute;cticamente ha desaparecido, y un ejemplo es el caso particular de los rizobios aislados de <i>Vigna (V.) unguiculata</i>, en que la mayor&iacute;a es capaz de nodular a todas las legumbres (6).</p>      <p>Son varias las especies de leguminosas comestibles que se siembran en Colombia; el &aacute;rea que ocupan se concentra principalmente en la Regi&oacute;n Andina y valles interandinos. Colombia es el primer pa&iacute;s productor de fr&iacute;jol en la Zona Andina, con alrededor de 130.000 hect&aacute;reas sembradas en 2007 y donde el primer lugar lo ocupa el fr&iacute;jol com&uacute;n (<i>Phaseolus vulgaris</i>), con 133.720 hect&aacute;reas, mientras que en la Regi&oacute;n Caribe, la importancia la tiene el fr&iacute;jol caupi (<i>Vigna sp</i>), con 4.600 hect&aacute;reas (7,8). Entre tanto, en el pa&iacute;s se tiene que importar fr&iacute;jol, pues la demanda es m&aacute;s alta que la oferta, por lo que se est&aacute; incentivando la siembra de esa leguminosa (9).</p>      <p>Los suelos de Latinoam&eacute;rica se caracterizan por ser deficientes en nitr&oacute;geno y tener, en t&eacute;rminos generales, niveles bajos de f&oacute;sforo y un pH &aacute;cido, lo cual, adem&aacute;s de ser factores limitantes de la productividad de las plantas, afectar&iacute;an el desarrollo de la simbiosis leguminosa-<i>Rhizobium</i> (10). En vista de esto, los cient&iacute;ficos vislumbran la soluci&oacute;n en el mejoramiento genot&iacute;pico de las plantas y el fomento de microorganismos que favorezcan la eficiente utilizaci&oacute;n de nitr&oacute;geno y otros nutrientes.</p>      <p>En 1987, Rodr&iacute;guez y Cerrato aislaron 120 cepas de <i>Rhizobium (R.) phaseoli</i> en los estados de M&eacute;xico, Tlaxcala, Hidalgo y Puebla. &eacute;stas se caracterizaron por su morfolog&iacute;a macro y microsc&oacute;pica, adem&aacute;s de sus propiedades bioqu&iacute;micas. Los resultados que obtuvieron permitieron agrupar varias cepas con propiedades fisiol&oacute;gicas que se pusieron de manifiesto en invernadero y en campo (11).</p>      <p>En el verano de 1996, Gonz&aacute;lez caracteriz&oacute; y calcul&oacute; mediante dendograma los &iacute;ndices de similitud entre diferentes cepas de la familia <i>Rhizobiaceae</i> aisladas de plantas de caupi (<i>V. unguiculata</i>) en el departamento de C&oacute;rdoba (Colombia). Tambi&eacute;n caracteriz&oacute; la cepa CIAT 4645, utilizada como control positivo del procedimiento. La pertenencia de las cepas a la familia <i>Rhizobiaceae</i> se comprob&oacute; amplificando por medio de la t&eacute;cnica de Reacci&oacute;n de la Polimerasa (PCR) un fragmento del gen nif-H; se encontr&oacute; que de las 11 cepas aisladas analizadas, ocho de ellas y la cepa ciat 4645 amplificaron un fragmento de 789 pb correspondientes al gen nif-H, lo cual comprueba la alta variabilidad existente dentro de las cepas aisladas de plantas de caup&iacute; de un mismo cultivo y confirma la "promiscuidad" de <i>V. unguiculata</i>, pues se observa que una misma planta se encuentra inoculada por cepas diferentes en n&oacute;dulos distintos (12).</p>      <p>En 2000, Diouf y colaboradores obtuvieron 58 nuevas cepas aisladas de n&oacute;dulos de ra&iacute;ces de fr&iacute;jol com&uacute;n cultivado en suelos originarios de diferentes &aacute;reas agroecol&oacute;gicas en Senegal y Gambia (este de &aacute;frica). Se us&oacute; un acercamiento polif&aacute;sico que inclu&iacute;a t&eacute;cnicas genot&iacute;picas y fenot&iacute;picas para estudiar la diversidad de los diferentes <i>Rhizobium</i> aislados y determinar su relaci&oacute;n taxon&oacute;mica con especies de referencia (13).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En 2002, Mart&iacute;nez y Garc&iacute;a aislaron 28 cepas rizobianas nodulantes del fr&iacute;jol caup&iacute; en suelos del departamento de Bol&iacute;var, en una relaci&oacute;n de 1:3 entre la presencia de cepas de crecimiento r&aacute;pido frente a las de crecimiento lento (14); Daguer y Gonz&aacute;lez en 2003 encontraron una relaci&oacute;n de 1: 9 entre los aislamientos, y Rubio y Santos, 1: 7 (15), lo que habla de la gran diversidad existente seg&uacute;n el lugar de muestreo.</p>      <p>Por otro lado, diversos factores pueden afectar la simbiosis impidiendo la aparici&oacute;n de n&oacute;dulos y como consecuencia de ello la leguminosa puede morir, salvo que el suelo sea muy rico en derivados nitrogenados. Dentro de estos se encuentran: 1) factores qu&iacute;micos: concentraci&oacute;n de cloruro de sodio, metales, temperatura, pH, niveles t&oacute;xicos de aluminio o manganeso y bajos niveles de calcio, magnesio, potasio y molibdeno (16); 2) factores f&iacute;sicos: la erosi&oacute;n, presencia de malezas, compactaci&oacute;n, hidromorfismo, entre otros (17) y 3) factores biol&oacute;gicos: presencia de virus y bacterias que inhiben la nodulaci&oacute;n, una de ellas el <i>Bdellovibrio</i> (18).</p>      <p>La b&uacute;squeda de nuevas alternativas que ayuden a disminuir los costos de la producci&oacute;n agr&iacute;cola, cuidar el ambiente y por ende lograr un desarrollo sostenible obliga a estudiar la posibilidad de utilizar el potencial que tienen las bacterias que nodulan en las ra&iacute;ces de las leguminosas y en especial de las que se consideran no especializadas o promiscuas, de suerte que puedan utilizarse para inducir nodulaci&oacute;n y fijar nitr&oacute;geno en otras leguminosas que pueden ser de mayor efectividad que el vigna y que se cultiven en las mismas regiones. El seleccionar cepas aut&oacute;ctonas con alta capacidad de competencia en lugar de introducir cepas que aunque competitivas provienen de n&oacute;dulos o suelos ajenos al sitio en cuesti&oacute;n y que por la determinante influencia que tiene la poblaci&oacute;n de <i>Rhizobium aut&oacute;ctono</i>, el cual compite con las cepas introducidas y da lugar a un menor rendimiento (19, 20), indica que puede ser ventajoso a la hora de pensar en utilizar los rizobios aislados y propios como biofertilizantes. Esto constituir&iacute;a una posible alternativa para el enriquecimiento de los suelos con vocaci&oacute;n agr&iacute;cola.</p>      <p>Por tanto, el objetivo de este estudio es analizar la diversidad de las cepas de rizobios aisladas del fr&iacute;jol <i>V. unguiculata</i> (fr&iacute;jol caup&iacute;), cultivado en el norte del departamento de Bol&iacute;var, tomando como base sus caracter&iacute;sticas morfol&oacute;gicas, de cultivo, metab&oacute;licas, resistencia a metales y antibi&oacute;ticos y de autenticaci&oacute;n de cada microorganismo, como un paso previo a la identificaci&oacute;n genot&iacute;pica y de genes inductores de nodulaci&oacute;n, e identificar cu&aacute;les de los aislados son capaces de crecer mejor en ambientes hostiles, hacer un acercamiento a la taxonom&iacute;a y por ende concluir cu&aacute;les tienen potencial uso como bioin&oacute;culos.</p>      <p><b><font size="3">METODOLOGIA</font></b></p>      <p><b> Material vegetal</b></p>      <p> Se recolectaron de forma aleatoria y representativa las ra&iacute;ces de 57 plantas de fr&iacute;jol <i>V. unguiculata</i>, en cultivos situados en los municipios de Santa Rosa, Villanueva, Mar&iacute;a la Baja y Turbana, en el departamento de Bol&iacute;var (<a href="#fig01">Figura 1</a>). La selecci&oacute;n de los sitios de muestreo se realiz&oacute; con ayuda de funcionarios de la Unidad Municipal de Asistencia T&eacute;cnica Agropecuaria (UMATA) de los municipios seleccionados. Se identific&oacute; la especie hospedante (se recolectaron hojas, flores y semillas para la posterior identificaci&oacute;n de la planta) con colaboraci&oacute;n de agr&oacute;nomos de Instituto Agropecuario Colombiano (ICA).</p>     <p>    <center><a name="fig01"></a><img src="img/revistas/rccqf/v38n1/v38n1a06fig01.gif"></center></p>      <p><b>Toma de muestras</b></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p> Con una esp&aacute;tula se describi&oacute; una circunferencia en el terreno alrededor de la planta con un radio de 15 cm aproximadamente y se cav&oacute; en el contorno definido con una profundidad de 20 cm, levantando el bloque y removiendo la tierra de las ra&iacute;ces. De las ra&iacute;ces de cada planta se seleccionaron de 5 a 10 n&oacute;dulos de buen aspecto y se eliminaron raicillas secundarias. Si la planta ten&iacute;a semillas, &eacute;stas se recog&iacute;an y almacenaban para utilizarse posteriormente en el proceso de autenticaci&oacute;n.</p>      <p>La ra&iacute;z seleccionada y despojada de raicillas secundarias se coloc&oacute; en tubos con cloruro de calcio anhidro y se refriger&oacute; hasta llegar al laboratorio de Microbiolog&iacute;a de la Facultad de Ciencias Qu&iacute;micas y Farmac&eacute;uticas de la Universidad de Cartagena, donde se procesaron y se codificaron seg&uacute;n las iniciales del sitio de recolecci&oacute;n y el n&uacute;mero de la muestra.</p>      <p><b>Procesamiento de los n&oacute;dulos</b></p>      <p> Para el procesamiento de las muestras se tuvieron en cuenta las t&eacute;cnicas descritas por el Centro Internacional de Agricultura Tropical (CIAT) (22) y Somesagaran (23).</p>      <p>Tras ser lavados, a los n&oacute;dulos, se les verific&oacute; mediante un estudio macrosc&oacute;pico la actividad de la nitrogenasa, identificada como positiva al observar una coloraci&oacute;n rojiza en su interior, que indica la producci&oacute;n de leghemoglobina (22).</p>      <p>Luego se procedi&oacute; a realizar las pruebas de pureza a fin de descartar la presencia de contaminantes; la caracterizaci&oacute;n de las cepas y la autenticaci&oacute;n para confirmar la inducci&oacute;n de nodulaci&oacute;n y producci&oacute;n de nitrogenasa.</p>      <p>Los n&oacute;dulos se maceraron y el producto obtenido se sembr&oacute; en cajas petri con agar extracto de levadura-manitol o LMA con indicador rojo congo (LMA-RC) (levaduramanitol- agar: extracto de levadura: 1,5 g/L; manitol: 10,0 g/L; MgSO<sub>4</sub>: 0,20 g/L; K<sub>2</sub>HPO<sub>4</sub>: 0,50 g/L; NaCl: 0,20 g/L; FeCl<sub>3</sub>: 1,00 mL/L; agar: 15,0 g/L). El rojo congo se a&ntilde;adi&oacute; a raz&oacute;n de 10,0 mL/L de medio (pH 7).</p>      <p>Posteriormente se incubaron a 28 &deg;C durante 10 d&iacute;as, con observaciones diarias, descartando las cajas contaminadas y replicando las colonias t&iacute;picas de rizobios en agar LMA-RC, hasta obtener cultivos uniformes y libres de impurezas. Las cepas aisladas se sometieron a las siguientes pruebas de pureza para descartar la presencia de posibles contaminantes (21):</p>  <ul>     <li>    <p> Coloraci&oacute;n de Gram: las colonias seleccionadas deb&iacute;an estar formadas por bacterias  Gram negativas y de tipo bacilar.</p></li>     ]]></body>
<body><![CDATA[<li>    <p>Caracter&iacute;sticas de crecimiento en el agar peptona-glucosa o PGA: se sembraron los cultivos en medio PGA (peptona: 10,0 g/L, glucosa: 5,0 g/L, agar: 15,0 g/L,p&uacute;rpura  de bromocresol 1,0% en etanol: 10,0 mL/L, pH: 6,7) y se incubaron a 28 &deg;C por cinco d&iacute;as. El crecimiento acompa&ntilde;ado con un cambio de pH indicaba la presencia de un contaminante, porque los rizobios no crecen en este medio.</p></li>     <li>    <p>Producci&oacute;n de 3-ketolactosa en el agar levadura-lactosa o LLA (21): se sembraron los cultivos en medio LLA y se incubaron a 28 &deg;C hasta lograr un buen crecimiento de las colonias. Luego se cubrieron las cajas con 15 mL de reactivo de Benedict por 10 minutos. La formaci&oacute;n de un color amarillo despu&eacute;s de este lapso indicaba presencia de <i>Agrobacterium sp</i>, un contaminante frecuente capaz de inducir la nodulaci&oacute;n pero no de fijar el nitr&oacute;geno.</p></li>     <li>    <p>Variaci&oacute;n de pH en caldo extracto de levadura-manitol o LM: las cepas se sembraron en caldo LM por 15 d&iacute;as, al cabo de lo cual se midi&oacute; el pH teniendo presente que un pH menor de 5,5 o mayor de 8 indicaba la presencia de microorganismos contaminantes.</p></li>     </ul>      <p> Las cepas que pasaron las tres pruebas fueron posteriormente caracterizadas fenot&iacute;picamente y empleadas al mismo tiempo en el ensayo de autenticaci&oacute;n.</p>      <p>Para la caracterizaci&oacute;n se sembraron en LMA-RC o el mismo medio pero modificado seg&uacute;n el aspecto que se iba a evaluar. Las placas se incubaron a 28 &deg;C por 15 d&iacute;as m&aacute;ximo y las colonias se clasificaron de acuerdo con su apariencia (forma, color, textura y tama&ntilde;o), seg&uacute;n las categor&iacute;as sugeridas por Somasegaran (23).</p>  <ul>     <li>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Dentro de los par&aacute;metros evaluados estuvieron:</p></li>      <li>    <p> La velocidad de crecimiento en medio LMA-RC (tiempo m&aacute;ximo de incubaci&oacute;n: 15 d&iacute;as).</p></li>     <li>    <p>La producci&oacute;n de acidez (o alcalinidad) en medio lma con indicador azul de bromotimol o abt.</p></li>     <li>    <p> La tolerancia a cloruro de sodio al 1, 2 y 3%.</p></li>     <li>    <p>Crecimiento a diferentes valores de pH: 4,0, 5,0 (con HCl 1N), 7,0 y 9,0 (con NaOH 0,5N).</p></li>     <li>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El crecimiento bacteriano a diferentes temperaturas: 10, 36 y 40 &deg;C.</p></li>     <li>    <p>La resistencia al Zn<sup>+2</sup>, Al<sup>3+</sup> y Co<sup>+2</sup> al 0,4%.</p></li>     <li>    <p>Asimilaci&oacute;n de diversas fuentes de carbono al 1%: maltosa, ramnosa, xilosa, galactosa, manosa, rafinosa, lactosa, fructosa, sucrosa, arabinosa, glucosa, sorbitol, sorbosa y dextrina.</p></li>     <li>    <p>Resistencia intr&iacute;nseca a antibi&oacute;ticos: sulfato de amikacina (3 ppm y 10 ppm), ciprofloxacina, ceftriazona, clindamicina, ampicilina, gentamicina y cloranfenicol.</p></li>     </ul>      <p> Durante todos los ensayos, tanto de caracterizaci&oacute;n morfol&oacute;gica, fisiol&oacute;gica, bioqu&iacute;mica, de resistencia y de autenticaci&oacute;n, se emplearon cinco cepas de referencia, tres de <i>Bradyrhizobium</i>, la CIAT 79, <i>Bradyrhizobium</i> 5625, <i>Bradyrhizobium</i> 5626 y dos de <i>Rhizobium</i>, la <i>R. tropici</i> 4654 y <i>R. leguminusarum</i> 9116.</p>      <p>Para el proceso de autenticaci&oacute;n se eligieron al azar diez de las cepas purificadas que fueron sembradas por triplicado en tubos con medio LMA inclinado e incubadas a 28 &deg;C hasta crecimiento. Al mismo tiempo, a semillas de fr&iacute;jol caup&iacute; reci&eacute;n cosechadas en los cuatro municipios del estudio se les someti&oacute; a un procedimiento de desinfecci&oacute;n con etanol e hipoclorito de sodio, se trasladaron a cajas de petri con agar en agua al 0,75% hasta su germinaci&oacute;n y de ah&iacute; a las jarras de Leonard con soluci&oacute;n nutritiva de Sandman (22), en una c&aacute;mara de fotoper&iacute;odo de 12 horas y a una temperatura de 25-30 &deg;C. Al cabo de una semana se descartaron las plantas con crecimiento deficiente.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Las plantas se regaron con soluci&oacute;n de Sandman (1:4) cada tres d&iacute;as, durante los cuales se hicieron observaciones para identificar la aparici&oacute;n de n&oacute;dulos. Cinco semanas despu&eacute;s del trasplante a las jarras se finaliz&oacute; el ensayo y se registraron los resultados obtenidos acerca de cu&aacute;les de las cepas probadas fueron capaces de inducir nodulaciones; se anot&oacute; el color interior de los n&oacute;dulos. Cada cepa se evalu&oacute; por triplicado.</p>      <p>Las cepas rizobianas ya caracterizadas y autenticadas se conservaron de acuerdo con el m&eacute;todo de conservaci&oacute;n en fragmentos en porcelana (22).</p>      <p><b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico de los resultados</b></p>      <p> Los resultados se analizaron utilizando el <i>software</i> Stat Graphics Plus 5.1 bajo Windows, usando todas las caracter&iacute;sticas fenot&iacute;picas e incluyendo como variable principal la velocidad de crecimiento, que permite realizar una clasificaci&oacute;n jer&aacute;rquica. El m&eacute;todo empleado fue el del "Vecino m&aacute;s Cercano". Se asign&oacute; a cada una de las pruebas realizadas el n&uacute;mero 0 en caso de que la respuesta fuera negativa (ausencia de crecimiento) y el n&uacute;mero 1 cuando la respuesta fuese positiva (crecimiento normal). Tambi&eacute;n se hicieron gr&aacute;ficas para el estudio de los porcentajes y tablas de distribuci&oacute;n de frecuencias. Los resultados obtenidos en las diferentes pruebas se compararon con las bases de datos existentes y se hizo una aproximaci&oacute;n a la clasificaci&oacute;n taxon&oacute;mica de g&eacute;nero, y teniendo en cuenta la resistencia, se identificaron aquellas cepas con potencial uso como biofertilizantes.</p>      <p><b><font size="3">RESULTADOS Y DISCUSION</font></b></p>      <p> De un total de 57 muestras recolectadas en los municipios de Villanueva, Santa Rosa, Turbana y Mar&iacute;a la Baja, se obtuvieron 77 n&oacute;dulos de los cuales se aislaron 166 cepas bacterianas, que fueron sometidas a las pruebas de pureza. De esta suerte se logr&oacute; un total de 52 cepas distribuidas de la siguiente forma: 15 de Villanueva (28%), 5 de Mar&iacute;a la Baja (10%), 12 de Turbana (23%) y 20 de Santa Rosa (39%).</p>      <p>El mayor porcentaje (39%) se encontr&oacute; en el municipio de Santa Rosa, seguido por Villanueva (28%). Esta frecuencia podr&iacute;a deberse a mayor actividad de siembra de leguminosas, m&aacute;s exactamente de fr&iacute;jol caup&iacute; comparado con los otros municipios objeto de muestreo y posiblemente por la ausencia de iones de Al<sup>3+</sup> y Co<sup>+2</sup> (dato no mostrado), metales perjudiciales para el normal crecimiento de las plantas (23).</p>      <p><b> Caracterizaci&oacute;n morfol&oacute;gica, fisiol&oacute;gica y bioqu&iacute;mica de las cepas rizobianas</b></p>      <p> Las cepas estudiadas presentaron caracter&iacute;sticas diversas en cuanto a tiempo de crecimiento, tama&ntilde;o de las colonias, forma, textura y color, teniendo como par&aacute;metro las categor&iacute;as de Somasegaran, al igual que la reacci&oacute;n en agar LMA-ABT (<a href="#tab01">Tabla 1</a>).</p>     <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center><a name="tab01"></a><img src="img/revistas/rccqf/v38n1/v38n1a06tab01.gif"></center></p>      <p>Con base en estos par&aacute;metros, de las 52 cepas, 19 (37%) fueron de crecimiento r&aacute;pido (2 a 5 d&iacute;as), las cuales acidificaron el medio LM y produjeron colonias gomosas, muy suaves y acuosas, grandes, de 4 a 5 mm, transl&uacute;cidas. Las 33 cepas restantes (63%) fueron rizobios de crecimiento lento (5-7 d&iacute;as), productores de alcalinidad en medio LMA, de colonias peque&ntilde;as (1mm), opacas en su gran mayor&iacute;a y menos gomosas.</p>      <p>Alarc&oacute;n y colaboradores (25) relacionaron el tiempo de crecimiento con el di&aacute;metro de las colonias y sus formas. Con esta base se concluye que las cepas aisladas pueden dividirse en dos grandes grupos que corresponder&iacute;an, a su vez, a los descritos por Jordan (26): las de crecimiento r&aacute;pido o grupo I, g&eacute;nero <i>Rhizobium</i>, y las de crecimiento lento o grupo II, g&eacute;nero <i>Bradyrhizobium</i>. <i>Rhizobium</i> , <i>Bradyrhizobium</i>, <i>Mesorhizobium</i>, <i>Sinorhizobium</i> y <i>Azorhizobium</i>, conocidos colectivamente como rizobios, son bacterias gramnegativas, fijadoras de nitr&oacute;geno, que forman n&oacute;dulos en la planta anfitri&oacute;n, pertenecen a diferentes familias dentro de la clase Alpha Rizobiales. El g&eacute;nero <i>Mesorhizobium</i> (que significa intermediario entre <i>Rhizobium</i> y <i>Bradyrhizobium</i>) presenta crecimiento lento o moderado y producci&oacute;n de &aacute;cido (26); de igual forma, el g&eacute;nero <i>Azorhizobium</i> crece tan r&aacute;pido como <i>Rhizobium</i> y produce alcalinidad como <i>Bradyrhizobium</i> (27). De manera que ninguna de las 52 cepas estudiadas corresponder&iacute;a a los g&eacute;neros <i>Mesorhizobium</i> o <i>Azorhizobium</i>.</p>      <p> El fr&iacute;jol caup&iacute; est&aacute; incluido en el grupo de leguminosas, que seg&uacute;n Somasegaran (23) y Thies (28) puede ser nodulado en su mayor parte por rizobios de crecimiento lento, lo cual es confirmado en este estudio. Adem&aacute;s, se observ&oacute; en 12 casos crecimiento de dos tipos diferentes de rizobios y el fen&oacute;meno considerado "dimorfismo" (22), lo que indica que una misma planta puede ser infectada por cepas con caracter&iacute;sticas diferentes no s&oacute;lo desde el punto de vista morfol&oacute;gico, sino tambi&eacute;n fisiol&oacute;gico y gen&eacute;tico (29), sin que importe la zona de muestreo. De los 12 casos, el 50% (6 casos) se dio en los aislados del municipio de Santa Rosa y todos ellos correspondientes a cepas de crecimiento lento. S&oacute;lo se present&oacute; un caso en que ambas cepas eran de crecimiento r&aacute;pido y otro de crecimiento lento y r&aacute;pido en un mismo n&oacute;dulo.</p>      <p><b> Caracterizaci&oacute;n fisiol&oacute;gica y bioqu&iacute;mica</b></p>      <p><b>Tolerancia a concentraciones del 1 y 2% de NaCl</b></p>      <p> Del total de aislamientos, se encontr&oacute; que 11 (21%) no crecieron a ninguna concentraci&oacute;n de NaCl, 10 de ellos eran de crecimiento lento y proced&iacute;an del municipio de Villanueva. S&oacute;lo toleraron 1% de NaCl ocho casos (15%), de los cuales siete correspond&iacute;an a cepas de crecimiento r&aacute;pido. S&oacute;lo 20 aislados toleraron 3% de NaCl (38%) y de &eacute;stos, 18 eran de crecimiento lento, la mayor&iacute;a provenientes de Santa Rosa. S&oacute;lo seis cepas pudieron crecer en el rango entre 1 a 3% y pertenec&iacute;an al grupo de crecimiento r&aacute;pido.</p>      <p>Se observa que a medida que aumenta la concentraci&oacute;n de NaCl, las de crecimiento lento lo toleran m&aacute;s que las de crecimiento r&aacute;pido. Lo cual concuerda con los resultados de Matos-Cuzcano (31) y Barboza (32), pero no con lo expresado por Jordan (26).    <br> Barboza y colaboradores (32) muestran en su estudio que algunas cepas de <i>Bradyrhizobium sp</i> pueden tolerar concentraciones del 1,5% de NaCl; al contrario, Jordan (26) se&ntilde;ala que las cepas de crecimiento lento, miembros del g&eacute;nero <i>Bradyrhizobium</i>, no pueden crecer al 2% de NaCl.</p>      <p>En los suelos de los municipios de Turbana y Mar&iacute;a la Baja se encontraron concentraciones de sodio del orden de 0,042 y 0,047% (dato no mostrado), hecho que pone de manifiesto que la resistencia de las cepas al cloruro de sodio es independiente de la concentraci&oacute;n de sodio en los suelos, ya que en ambos sitios se lograron aislados que toleran altas concentraciones.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Mpepereki y colaboradores (33) aislaron cepas de <i>Rhizobium</i> de <i>V. unguiculata</i> tolerantes a concentraciones por encima de 5,5% de NaCl, y Ghittoni y Bueno (34), rizobios de r&aacute;pido crecimiento m&aacute;s tolerantes que los de lento crecimiento; en otras palabras: <i>Rhizobium</i> y <i>Bradyrhizobium</i> han demostrado marcada variaci&oacute;n en la tolerancia a la sal, ya que mientras algunos han sido inhibidos por concentraciones de 100 mM (0,6%) de NaCl (34), otros como <i>R. mieliloti</i> muestran tolerancia en un rango de 300 (1,8%) a 700 mM (4,2%) de NaCl (35).</p>      <p>La presencia de sal puede afectar el crecimiento y la supervivencia de <i>Rizobium</i> en el suelo, disminuyendo la colonizaci&oacute;n de la ra&iacute;z, el proceso de infecci&oacute;n y con ello el desarrollo del n&oacute;dulo y el funcionamiento activo de &eacute;ste en la fijaci&oacute;n de nitr&oacute;geno (37). Por tanto, es conveniente estudiar los suelos de estas regiones con el fin de evaluar si la capacidad de resistencia al NaCl se relaciona directamente con un tipo de adaptaci&oacute;n. En todo caso, las cepas con tolerancia a concentraciones altas de NaCl podr&iacute;an tener un posible uso como bioin&oacute;culos.</p>      <p><b> Tolerancia a diferentes valores de pH (4, 5 y 9)</b></p>      <p> Hubo mucha diversidad en los aislamientos, pues se encontr&oacute; que predominantemente las cepas de crecimiento lento fueron capaces de crecer en los cuatro pH utilizados, en contraposici&oacute;n con lo que Jordan (26) se&ntilde;ala, que usualmente las cepas del g&eacute;nero <i>Bradyrhizobium</i> no crecen a pH 9.</p>      <p>Todas las cepas que toleraron pH 7 a 9 pertenec&iacute;an al grupo de las de crecimiento r&aacute;pido, la mayor&iacute;a del municipio de Villanueva. Dentro del grupo de rhizobios de crecimiento r&aacute;pido, las &uacute;nicas que pudieron crecer en los cuatro niveles de pH evaluados la 5DMR1 de Mar&iacute;a la Baja y la 5BMR4 y 8BCR4 de Santa Rosa; estas dos crecieron a concentraciones de 1 y 2% de NaCl, por lo que ser&iacute;an de mucho inter&eacute;s como potenciales bioin&oacute;culos.</p>      <p>En Bol&iacute;var se encuentran especies de fr&iacute;jol sembradas en su mayor&iacute;a en zonas de pendiente fuerte a escarpada, con suelos generalmente &aacute;cidos y de bajo contenido en f&oacute;sforo (8), lo que concuerda con los valores de pH de 5,24 y 6,85 encontrados en Turbana y Mar&iacute;a la Baja (14).</p>      <p><b> Crecimiento a diferentes temperaturas (10, 36 y 40 &deg;C)</b></p>      <p> Del total de 52 cepas estudiadas, se observ&oacute; que 19 (37%) crecieron ampliamente en el rango de las tres temperaturas evaluadas y 27 (51%) toleraron temperaturas de 35 y 40 &deg;C; adem&aacute;s, 5 cepas (9,5%) crecieron s&oacute;lo a 35 &deg;C.</p>      <p>El hecho de que las cepas en t&eacute;rminos generales presentaran un buen crecimiento a 35 y 40 &deg;C puede atribuirse al clima tropical de las zonas de donde fueron aisladas, que tienen caracter&iacute;sticas mesof&iacute;licas; la temperatura de los suelos de Bol&iacute;var oscila alrededor de 35 &deg;C, condici&oacute;n que las hace &uacute;tiles como posibles bioin&oacute;culos.</p>      <p>Los datos expuestos en este estudio mediante este factor condicionante est&aacute;n de acuerdo con Osa-Afiana y Alexander (38), que encontraron que la temperatura m&aacute;xima de crecimiento para los rizobios de zonas tropicales es de 42 &deg;C. Adem&aacute;s, Mun&eacute;var (24) concluye que las cepas de rizobios son capaces de crecer a temperaturas de entre 27 y 45 &deg;C, lo cual coincide con lo que se encontr&oacute; en este estudio.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b> Resistencia a Zn<sup>+2</sup>, Al<sup>+2</sup> y Co<sup>+2</sup></b></p>      <p> Del total de 52 cepas estudiadas, 41 (79%) presentaron alg&uacute;n tipo de tolerancia a los metales utilizados; de &eacute;stas, 17 son de r&aacute;pido crecimiento, y 24, de lento. Santa Rosa tuvo el mayor n&uacute;mero (41%) de cepas tolerantes seguida por Villanueva (32%).</p>      <p>Del total de aislados tolerantes, el 83% resistieron los tres metales empleados. Tong y Sadowsky (39) y Somasegaran (23) indican que las cepas del g&eacute;nero <i>Bradyrhizobium</i> son tolerantes a la presencia de 4mg/L de Zn<sup>+2</sup> y Co<sup>+2</sup>. Los mismos autores encontraron que ninguna de las seis especies de Rhizobium ensayadas pudo crecer en presencia de estos metales, dato que es contrario a lo observado en este estudio, el cual encontr&oacute; que las cepas de crecimiento r&aacute;pido (posiblemente <i>Rhizobium</i>) toleraron la presencia de estos metales.</p>      <p>De los tres metales evaluados, la tolerancia al aluminio es una caracter&iacute;stica realmente deseable para la selecci&oacute;n de un bioin&oacute;culo principalmente en suelos &aacute;cidos, donde &eacute;ste suele acumularse. El Al<sup>+2</sup> es un metal t&oacute;xico y el primer indicio de su existencia es el descenso del crecimiento en longitud de las ra&iacute;ces. El Al<sup>+2</sup> puede actuar inhibiendo el alargamiento y la divisi&oacute;n celulares (35).</p>      <p>En suelos &aacute;cidos con pH de 5,0, donde la presencia de metales es relevante, la presencia de Al+2 inhibe tambi&eacute;n la nodulaci&oacute;n; se han encontrado cepas de <i>Rhizobium</i> y <i>Bradyrhizobium</i> que fueron resistentes a Al<sup>+2</sup> 50mM a bajos pH (5,0) (35). Johnson y Wood (40) reportaron que el Al<sup>+2</sup> se enlaza al dna de cepas sensibles y tolerantes de rizobios, pero la s&iacute;ntesis de dna no se afecta en las cepas tolerantes de <sup>R. loti</sup>; entre tanto, Richardson y colaboradores (41) encontraron que 7,5 mM de Al<sup>+2</sup> reprimen la expresi&oacute;n del gen nod.</p>      <p><b>Selecci&oacute;n de potenciales bioin&oacute;culos</b></p>      <p> Los criterios b&aacute;sicos que hay que considerar en el proceso de selecci&oacute;n son la capacidad para formar n&oacute;dulos (infectividad), fijar nitr&oacute;geno (efectividad), sobrevivencia en las semillas y en el suelo, adaptaci&oacute;n o tolerancia a situaciones de estr&eacute;s y estabilidad gen&eacute;tica. Tambi&eacute;n es fundamental la capacidad de crecimiento en las condiciones de producci&oacute;n de los inoculantes (41).</p>      <p>Teniendo en cuenta que uno de los puntos para selecci&oacute;n de cepas de rizobios con potencial uso como inoculante es su capacidad para tolerar condiciones de estr&eacute;s, se seleccionaron las cepas que presentaron resistencia a los factores estudiados (NaCl, pH, metales Zn<sup>+2</sup>, Al<sup>+2</sup> y Co<sup>+2</sup> y temperatura).</p>      <p>De esta forma 16 cepas se seleccionaron por tener alg&uacute;n grado de tolerancia a NaCl al 1, 2 y 3%. Estudios de suelos realizados por Gonz&aacute;lez y Cort&eacute;s (43) en la zona del Canal del Dique (norte de Bol&iacute;var) municipios de Arjona, Calamar, Mahates, Mar&iacute;a la Baja, San Estanislao, Santa Rosa, Soplaviento, Turbaco, Turbana y Villanueva, muestran un promedio de 3,78 meq de sodio por cada 100 gramos de muestra, lo cual equivaldr&iacute;a a s&oacute;lo un 0,22% de NaCl; incluso valores hallados de 12,5 meq s&oacute;lo representar&iacute;an un 0,7%. Por ende, estas cepas sobrepasan las expectativas.</p>      <p>De igual forma, se preseleccionaron individualmente las cepas m&aacute;s tolerantes en cada factor; se identificaron 38 cepas con buena respuesta a valores de pH &aacute;cidos (4 y 5) y 39 que toleraron concentraciones de 4 ppm de Zn<sup>+2</sup>, Al<sup>+2</sup> y Co<sup>+2</sup>. Los estudios de Gonz&aacute;lez y Cort&eacute;s muestran un perfil &aacute;cido de los suelos del norte de Bol&iacute;var con valores que oscilan alrededor de las 6,12 unidades de pH, incluso alcanzando valores cercanos a 4,5 en algunos sectores y concentraciones de Al+2 que van de 0,1 a 2,86 ppm. &eacute;ste es el m&aacute;s t&oacute;xico de los metales empleados y, por tanto, el m&aacute;s influyente para la selecci&oacute;n de las cepas. En cuanto a la temperatura, 98% de las cepas se desarrollaron bien a las temperaturas propias del departamento.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En total de las 52 cepas, 12 pueden tolerar al menos tres de los cuatro factores evaluados y s&oacute;lo cuatro cepas 2ACR5, 8BCR4, 8ECR4 y 8EMR4 toleraron los cuatro factores (<a href="#tab02">Tabla 2</a>) y se han preseleccionado como potenciales inoculantes.</p>     <p>    <center><a name="tab02"></a><img src="img/revistas/rccqf/v38n1/v38n1a06tab02.gif"></center></p>      <p><b> Diversidad gen&eacute;tica: asimilaci&oacute;n de diferentes fuentes de carbono y resistencia intr&iacute;nseca a los antibi&oacute;ticos</b></p>      <p><b> Asimilaci&oacute;n de fuentes de carbono</b></p>      <p> Se ha demostrado la habilidad de las bacterias del g&eacute;nero <i>Rhizobium</i> para asimilar una gama de carbohidratos mayor a la del g&eacute;nero <i>Bradyrhizobium</i>, por lo cual esta propiedad se considera de alta significancia taxon&oacute;mica, en particular para este grupo (22).</p>      <p>Existe una gran diversidad entre los patrones de asimilaci&oacute;n, escogi&eacute;ndose entre los m&aacute;s usados la sacarosa, maltosa, lactosa, sorbitol y dextrina, y los menos usados (y a su vez los m&aacute;s discriminantes) xilosa, arabinosa y sorbosa.</p>      <p>Todos los aislados de Villanueva, independientemente de que fueran de crecimiento lento o r&aacute;pido, asimilaron glucosa, sacarosa, maltosa y lactosa, excepto ramnosa, lo que indica que posiblemente se trate de dos cepas que difieren principalmente en la velocidad de crecimiento. En el resto de los sitios de muestreo se observ&oacute; mayor diversidad.</p>      <p>Mediante un dendograma (<a href="#fig02">Figura 2</a>), el total de los aislados se separ&oacute; en cinco grupos que se diferencian en el patr&oacute;n de asimilaci&oacute;n de ciertos carbohidratos, en particular de ramnosa, fructosa, xilosa y galactosa, que permiten hacer un acercamiento taxon&oacute;mico. Frente a este comportamiento, se podr&iacute;a concluir que existen desde este punto al menos cinco cepas diferentes, dos de crecimiento r&aacute;pido y tres de crecimiento lento.</p>      <p>Al parecer las cepas aisladas y de crecimiento lento pertenecen al g&eacute;nero <i>Bradyrizobioum</i>; dentro de &eacute;stas, <i>B. elkanii</i>, <i>B. japonicum</i>, <i>B. liagningense</i> y <i>B. yuanmingense</i>, y al g&eacute;nero <i>Mesorhizobium</i>, <i>M. ciceri</i>y <i>M. mediterraneum</i>, <i>M. amorphae</i>, <i>M. chacoense</i> y <i>M. huakuii</i>, y las de crecimiento r&aacute;pido, a <i>Rhizobium</i> (<i>R. etli</i> y <i>R. indigoferae</i>) (43, 44), lo que debe ser confirmado por estudios gen&eacute;ticos.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b> Resistencia intr&iacute;nseca a los antibi&oacute;ticos</b></p>      <p> La identificaci&oacute;n y selecci&oacute;n de cepas m&aacute;s eficientes de rizobios se ha llevado a cabo utilizando diferentes metodolog&iacute;as; dentro de &eacute;stas, la resistencia intr&iacute;nseca a antibi&oacute;ticos es &uacute;til por su fiabilidad a bajos niveles de antibi&oacute;tico, estabilidad y reproducibilidad durante un largo per&iacute;odo (45).</p>      <p>Generalmente para evaluar la resistencia intr&iacute;nseca a antibi&oacute;ticos se emplean medios de cultivo a los cuales les han adicionado antibi&oacute;ticos puros, mientras en otros casos los antibi&oacute;ticos pueden utilizarse en discos (10, 24). En este estudio se usaron antibi&oacute;ticos comerciales, como lo hicieron Xavier y colaboradores (47), con el fin de observar la diversidad de los rizobios.</p>      <p>Aunque la variaci&oacute;n en la resistencia de cepa a cepa puede ser notable, en general, los rizobios de crecimiento r&aacute;pido son intr&iacute;nsecamente m&aacute;s sensibles que los de crecimiento lento a estreptomicina (25), contrario a lo hallado en este trabajo, en el cual las cepas de crecimiento r&aacute;pido fueron m&aacute;s resistentes a las concentraciones de estreptomicina que las cepas de crecimiento lento.</p>      <p>En las cepas de crecimiento r&aacute;pido resistentes a estreptomicina se encontr&oacute; alta sensibilidad a la concentraci&oacute;n de 500 ppm de ampicilina, pero alta resistencia a 500 ppm de cloranfenicol. Xavier y colaboradores (47) describen rizobios nodulantes de fr&iacute;jol caup&iacute; aislados en zonas tropicales del noreste brasile&ntilde;o, sensibles a 500 ppm de ampicilina, pero al contrario de lo hallado aqu&iacute;, sensibles a 500 ppm de cloranfenicol.</p>      <p>La gentamicina indujo el mayor porcentaje de resistencia (77%) en los aislados, mientras que la ampicilina obtuvo el menor (20%). La amikacina a 10 ppm no fue tolerada por cepas de lento crecimiento, mientras que a 3 ppm s&oacute;lo cinco de las 25 cepas resistentes lo eran. El ser resistentes a estos dos antibi&oacute;ticos les confiere una ventaja a las cepas de r&aacute;pido crecimiento sobre las de lento crecimiento, esto es, tener amplio espectro de tolerancia.</p>      <p><b>Autenticaci&oacute;n</b></p>      <p> De las 52 cepas obtenidas como resultado de las pruebas de purificaci&oacute;n se eligieron 20 al azar para la prueba de autenticaci&oacute;n, con el fin de comprobar su capacidad de inducir la formaci&oacute;n de n&oacute;dulos en la ra&iacute;z de la planta hospedera, seg&uacute;n lo recomendado por el ciat (22). Esta prueba se realiz&oacute; por triplicado.</p>      <p>Las plantas inoculadas en jarras de Leonard se mantuvieron por un lapso de 45 d&iacute;as en las condiciones adecuadas en el laboratorio, al t&eacute;rmino del cual se observ&oacute; la presencia de n&oacute;dulos en las ra&iacute;ces y una coloraci&oacute;n rosada a roja dentro de &eacute;stos, lo que evidenci&oacute; la presencia de leghemoglobina y por ende una activa fijaci&oacute;n de nitr&oacute;geno. Los testigos con nitr&oacute;geno o sin &eacute;l no presentaron nodulaci&oacute;n. El m&aacute;ximo de n&oacute;dulos encontrados en cada planta fue de 3, la mayor&iacute;a en las ra&iacute;ces principales.</p>      <p><b>An&aacute;lisis num&eacute;rico</b></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p> Al incluir caracter&iacute;sticas tales como crecimiento en NaCl al 1%, pH 4 y 5, velocidad de crecimiento, temperatura de crecimiento de 35 &deg;C, resistencia a Zn<sup>+2</sup>, Al<sup>+2</sup> y Co<sup>+2</sup>, asimilaci&oacute;n de xilosa, fructosa y sorbosa y resistencia intr&iacute;nseca a antibi&oacute;ticos como amikacina (10 ppm) y ampicilina, fue posible hacer un an&aacute;lisis general de la situaci&oacute;n de diversidad de las cepas aisladas, por medio de la elaboraci&oacute;n de un dendograma (<a href="#fig02">Figura 2</a>).</p>     <p>    <center><a name="fig02"></a><img src="img/revistas/rccqf/v38n1/v38n1a06fig02.gif"></center></p>      <p> En el dendograma a una distancia de 32, se traza una l&iacute;nea horizontal y se observan 3 grupos bien definidos en los cuales se establece la diferencia seg&uacute;n la velocidad de crecimiento: grupo 1, de crecimiento lento; grupo 2, de crecimiento r&aacute;pido; y grupo 3, dos cepas de crecimiento intermedio. El grupo 1, a su vez, a una distancia de 19, se divide en dos: el subgrupo 1, constituido por aquellas cepas de crecimiento lento, que no asimilan los carbohidratos: xilosa, fructosa y sorbosa; no toleran los antibi&oacute;ticos: amikacina (10 ppm) y ampicilina; capaces de crecer a pH muy &aacute;cidos (4 y 5), no toleran concentraciones de NaCl superiores a 1% y resistencia a todos los metales a los que fueron expuestos. La cepa (1AMR1) tiene un comportamiento ligeramente distinto de las dem&aacute;s, ya que tiene la cualidad de tolerar concentraciones de NaCl 1% y a&uacute;n superiores. Y el subgrupo 2, que est&aacute; constituido por cepas que presentan asimilaci&oacute;n a carbohidratos, tales como xilosa y fructosa, y posiblemente se trate de <i>Bradyrhizobium</i> y <i>Mesorhizobium</i>, por el patr&oacute;n de asimilaci&oacute;n de los carbohidratos que se describi&oacute; al comienzo. Este grupo se caracteriza por presentar resistencia intr&iacute;nseca a ampicilina. Aqu&iacute; est&aacute;n cinco cepas de inter&eacute;s (9CCR1, 2DMR1, 4DCR1, 6DCR1 y 7CMR1).</p>      <p>El grupo 2, compuesto de las cepas de r&aacute;pido crecimiento, presenta las siguientes caracter&iacute;sticas: tolerancia a concentraciones de NaCl 1% y mayores; poco o nulo crecimiento a pH muy &aacute;cido; tolerancia a los metales (Zn<sup>+2</sup>, Al<sup>+2</sup> y Co<sup>+2</sup>); asimilaci&oacute;n de fructosa y resistencia intr&iacute;nseca a amikacina (10 ppm) y ampicilina. Gracias a que las cepas son de r&aacute;pido crecimiento, su tolerancia a condiciones de acidez muy dr&aacute;sticas les representa un factor estresante pr&aacute;cticamente insuperable; de la misma manera, s&oacute;lo cuatro cepas de este grupo asimilan correctamente al carbohidrato sorbosa (8BCR4, 4FMR3, 4FCR3, 8FCR4).</p>      <p>Por &uacute;ltimo, se observa un grupo peque&ntilde;o conformado por dos cepas (5DMR1 y 7EMR5), que tienen caracter&iacute;sticas muy propias que no les permiten ser clasificadas entre las dem&aacute;s, ya que aun cuando la cepa 5DMR1 asimile xilosa y fructosa y adem&aacute;s resista a la ampicilina, no est&aacute; clasificada en el subgrupo 2, por su velocidad de crecimiento. La cepa 7EMR5 tiene las caracter&iacute;sticas como para estar categorizada con el grupo 2, pero por su resistencia a los metales no es posible incluirla en &eacute;l. Estas dos cepas est&aacute;n en el mismo grupo porque comparten caracter&iacute;sticas tales como velocidad de crecimiento intermedio, tolerancia a NaCl 1%, a los tres metales empleados en el estudio y asimilaci&oacute;n del carbohidrato fructosa.</p>      <p>Se pudo apreciar que aislamientos pertenecientes a diferentes sitios geogr&aacute;ficos de muestreo presentaron caracter&iacute;sticas muy similares, incluso id&eacute;nticas en especial en las cepas de crecimiento r&aacute;pido. Con todo, se puede deducir que las bacterias de crecimiento r&aacute;pido, si bien son un grupo peque&ntilde;o, no dejan de tener variabilidad en su interior, lo cual no sucede en las de crecimiento lento.</p>      <p>Finalmente, seg&uacute;n los resultados observados en el dendograma (<a href="#fig02">Figura 2</a>), cepas que discrepan solamente en algunas de las pruebas se consideraron parte de un mismo conglomerado; por tanto, resulta indispensable confirmar estas diferencias con pruebas gen&eacute;ticas, para as&iacute; asegurar una posici&oacute;n taxon&oacute;mica m&aacute;s estricta, es decir, que se puedan enunciar especies dentro de cada g&eacute;nero.</p>      <p><b><font size="3">CONCLUSIONES</font></b></p>      <p> El n&uacute;mero de grupos establecidos de acuerdo con los patrones de crecimiento en las pruebas de tolerancia a salinidad, metales, temperaturas y pH &aacute;cidos y alcalinos funcion&oacute; como un indicador de la biodiversidad de las cepas. El factor que m&aacute;s discrimin&oacute; fue el crecimiento en NaCl, en el que se establecieron siete grupos de distinto comportamiento; por el contrario, del crecimiento a pH variados, s&oacute;lo se establecieron tres grupos. El sitio de muestreo con mayor biodiversidad fue Villanueva y en especial el corregimiento de Zipacoa (dato no mostrado), ya que las cepas de este sitio estuvieron formando parte de 12 grupos del total de 20 establecidos, seguido de Santa Rosa, con 11 grupos. Turbana s&oacute;lo form&oacute; parte de ocho grupos.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Seg&uacute;n las caracter&iacute;sticas morfol&oacute;gicas, velocidad de crecimiento y producci&oacute;n de acidez y alcalinidad, se encontr&oacute; que con mayor probabilidad las cepas de rizobios que nodulan <i>V. unguiculata</i> en el norte de Bol&iacute;var pueden pertenecer a los g&eacute;neros <i>Rhizobium</i> y <i>Bradyrhizobium</i>; sin embargo, evidencias de la utilizaci&oacute;n de carbohidratos nos indican la posible existencia de <i>Mesorhizobium</i>. Este g&eacute;nero, como su nombre lo indica, crece en un rango intermedio entre <i>Rhizobium</i> y <i>Bradyrhizobium</i>.</p>      <p>En general, la relaci&oacute;n encontrada fue 65,5% de cepas de lento crecimiento (<i>Bradyrhizobium</i>) y un 35,5% de r&aacute;pido crecimiento (<i>Rhizobium</i>). Por sitio de muestreo s&oacute;lo en Villanueva (Zipacoa) y Santa Rosa (Tabacal) se encontr&oacute; el porcentaje de cepas de r&aacute;pido crecimiento 100% y 66,6% respectivamente, mientras que en los dem&aacute;s sitios (Santa Rosa y Mar&iacute;a la Baja), los porcentajes de <i>Rhizobium</i> fueron inferiores a 28%.</p>      <p>Se encontr&oacute; que pueden existir cepas distintas provenientes del mismo n&oacute;dulo, lo cual evidencia cierto grado de promiscuidad de <i>V. unguiculata</i> que le otorgar&iacute;a ventaja sobre otras especies de leguminosas, ya que si bien los mayores esfuerzos para potenciar la simbiosis se han centrado en las bacterias, la mejora de la simbiosis se obtendr&aacute; por la manipulaci&oacute;n de la planta hospedera, de tal forma que se inhiban los mecanismos de defensa que limitan la nodulaci&oacute;n de distintas especies de rizobios.</p>      <p>Pruebas de crecimiento en diversos rangos de NaCl, pH y temperatura demostraron ser de gran importancia para el estudio del papel ecol&oacute;gico y la interacci&oacute;n de los rizobios con el ecosistema; sin embargo, no son concluyentes para identificar g&eacute;neros de rizobios y s&oacute;lo son &uacute;tiles para esbozar la diversidad gen&eacute;tica de estas bacterias.</p>      <p>Seg&uacute;n Mart&iacute;nez-Viera (48) y Fern&aacute;ndez y Novo (49), los rizobios pueden crecer en un rango de temperatura de 20 a 31 &deg;C. As&iacute; mismo, Hamdi (50) y Jordan (26) sit&uacute;an a los bradyrhizobios entre los menos tolerantes a la alcalinidad; sin embargo, B&eacute;cquer (3) caracteriz&oacute; cepas de <i>Bradyrhizobium sp</i>, que crecieron a 40 &deg;C y toleraron pH de 11, lo cual demuestra la amplia diversidad gen&eacute;tica de estas bacterias y corrobora resultados obtenidos en este estudio. De modo general, las cepas de crecimiento r&aacute;pido exhibieron mejores cualidades de tolerancia a factores estresantes, especialmente en pruebas como resistencia intr&iacute;nseca a antibi&oacute;ticos y temperatura que las de crecimiento lento.</p>      <p>Es muy dif&iacute;cil identificar especies de <i>Rhizobium</i> basados &uacute;nicamente en pruebas de caracterizaci&oacute;n fisiol&oacute;gica, bioqu&iacute;mica y morfol&oacute;gica; m&aacute;s a&uacute;n cuando diversos autores como Lloret y Mart&iacute;nez-Romero (51) consideran que los pl&aacute;smidos pueden transferirse de un g&eacute;nero a otro, tanto en condiciones de laboratorio como en el campo, y existen referencias de una transferencia lateral de marcadores cromos&oacute;micos en <i>Rhizobium</i>.</p>      <p>Se debe prestar especial atenci&oacute;n a todas las cepas aisladas que presentaron tolerancia a los factores de estr&eacute;s a las que fueron sometidas. Est&aacute; comprobado que sus caracter&iacute;sticas fisiol&oacute;gicas se diferencian notablemente de aquellos que son aislados de zonas agr&iacute;colas con condiciones edafoclim&aacute;ticas m&aacute;s nobles. Esas caracter&iacute;sticas resultantes de mutaciones en el genoma pueden y deben ser explotadas en la pr&aacute;ctica agr&iacute;cola. En este estudio se tuvieron en cuenta la tolerancia a estr&eacute;s salino, de metales, temperaturas y pH, adem&aacute;s de caracter&iacute;sticas de resistencia a antimicrobianos; sin embargo, es importante realizar autenticaciones en condiciones de campo para verificar el tama&ntilde;o de n&oacute;dulos, su localizaci&oacute;n en la ra&iacute;z y la sobrevivencia del inoculo en la semilla.</p>      <p><b><font size="3">AGRADECIMIENTOS</font></b></p>      <p> A la Vicerrector&iacute;a de Investigaciones de la Universidad de Cartagena, a la Facultad de Ciencias Qu&iacute;micas y Farmac&eacute;uticas por facilitar los equipos, personal e instalaciones para el desarrollo de este trabajo. De igual forma, a los profesionales del ICA en la identificaci&oacute;n de las plantas y de las umatas de los municipios, en el acompa&ntilde;amiento para la realizaci&oacute;n de los diferentes muestreos.</p> <hr>      <p><b><font size="3">BIBLIOGRAFIA</font></b></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p> 1. M. P. Russelle y A. S. Birr, Biological nitrogen fixation. Large-scale assessment of symbiotic dinitritogen fixation by crops: Soybean and alfalfa in the Mississipi river basin, <i>J. Agron</i>., 96, 1754 (2004).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000163&pid=S0034-7418200900010000600001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 2. P. A. Dangeard, Recherches sur les tubercles radicaux des legumineuses, <i>Botaniste</i>, 16, 1 (1926).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000164&pid=S0034-7418200900010000600002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 3. C. J. B&eacute;cquer, "Diversidad gen&eacute;tica y posici&oacute;n taxon&oacute;mica de rizobios, aislados de leguminosas forrajeras nativas en Sancti-Sp&iacute;ritus, Cuba", Tesis de Maestr&iacute;a, Universidad de La Habana, 1998.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000165&pid=S0034-7418200900010000600003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 4. C. J. B&eacute;cquer, Descripci&oacute;n y clasificaci&oacute;n de rizobios: Enfoque hist&oacute;rico, m&eacute;todos y tendencias actuales, <i>Revista Biolog&iacute;a</i>, 18, 9 (2004).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000166&pid=S0034-7418200900010000600004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 5. C. J. B&eacute;cquer, "Caracterizaci&oacute;n y selecci&oacute;n de rizobios aislados de leguminosas nativas de Sancti-Sp&iacute;ritus, Cuba", Tesis de Doctorado, Universidad de La Habana, 2002.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000167&pid=S0034-7418200900010000600005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 6. W. Broughton, Roses by Other Names: Taxonomy of the Rhizobiacea, <i>J. Bacteriol</i>., 185, 2975 (2003).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000168&pid=S0034-7418200900010000600006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 7. Departamento Nacional de Planeaci&oacute;n. Rep&uacute;blica de Colombia. Anuario Estad&iacute;stico del Sector Agropecuario-Min Agricultura. , junio 2009, url:  <a href="http://www.dnp.gov.co" target="_blank"> http://www.dnp.gov.co/PortalWeb/Portals/0/archivos/documentos/ddrs/Indicadores/Tabla%201.pdf</a>.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000169&pid=S0034-7418200900010000600007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 8. Departamento Nacional de Planeaci&oacute;n. Anuario estad&iacute;stico del sector Agropecuario- Min-Agricultura. agosto, 2009.  url:<a href="http://www.dnp.gov.co" target="_blank"> http://www.dnp.gov.co/PortalWeb/Default.aspx</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000170&pid=S0034-7418200900010000600008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 9. Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural. Rep&uacute;blica de Colombia. Pol&iacute;ticas y programas misionales. Apoyos y econ&oacute;micos y financiamiento: Incentivos al fr&iacute;jol. junio 2009. url: <a href="http://www.minagricultura.gov.co" target="_blank"> http://www.minagricultura.gov.co/07presupuesto/07a_gin_frijol.aspx</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000171&pid=S0034-7418200900010000600009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 10. H. W. Fassbender y E. Bornemisza, "Qu&iacute;mica de suelos con &eacute;nfasis en suelos de Am&eacute;rica Latina", Instituto Interamericano de Cooperaci&oacute;n para la Agricultura Eds., San Jos&eacute;, 1994, p. 420.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000172&pid=S0034-7418200900010000600010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 11. M. N. Rodr&iacute;guez-Mendoza y R. Ferrera-Cerrato, Estudio microbiol&oacute;gico de un grupo de cepas de Rhizobium phaseoli aislados en la meseta central (M&eacute;xico), <i>Rev. Latinoam. Microbiol</i>., 29, 91 (1987).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000173&pid=S0034-7418200900010000600011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 12. D. S. Gonz&aacute;lez, "Caracterizaci&oacute;n mediante marcadores moleculares de cepas de los g&eacute;neros <i>Rhizobium</i> y <i>Bradyrhizobium</i> que maximicen la fijaci&oacute;n simbi&oacute;tica de nitr&oacute;geno con caup&iacute; (<i>Vigna ungiculata</i>)", Tesis de Grado, Ingenier&iacute;a Agr&oacute;noma, Universidad P&uacute;blica de Navarra, 1997.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000174&pid=S0034-7418200900010000600012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 13. D. P. de Lajudie, M. Neyra, K. Kersters, M. Gillis, E. Mart&iacute;nez-Romero y M. Gueye, Polyphasic characterization of rhizobia that nodulate <i>Phaseolus vulgaris</i> in West Africa (Senegal and Gambia), <i>Int. J. Syst. Evol. Microbiol</i>., 50, 159 (2000).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000175&pid=S0034-7418200900010000600013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 14. K. Mart&iacute;nez y J. Garc&iacute;a, "Estudio de la diversidad de la cepas rizobianas nodulantes del fr&iacute;jol caup&iacute; en los municipios de Villanueva y Santa Rosa en el departamento de Bol&iacute;var", Tesis de Grado, Qu&iacute;mica Farmac&eacute;utica, Universidad de Cartagena, 2002.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000176&pid=S0034-7418200900010000600014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 15. N. Daguer y Th. Gonz&aacute;lez, "Diversidad de las cepas de <i>Rhizobium</i> y <i>Bradyrhizobium</i> que nodulan al frijol caup&iacute; (<i>Vigna unguiculata</i>) y autenticaci&oacute;n utilizando bolsas de crecimiento y jarras de Leonard", Tesis de Grado, Qu&iacute;mica Farmac&eacute;utica, Universidad de Cartagena, 2003.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000177&pid=S0034-7418200900010000600015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 16. G. A. Rubio y W. R. Santos, "Selecci&oacute;n de cepas rizobianas aisladas de frijol caupi (<i>Vigna unguiculata</i>) con potencial uso como biofertilizantes", Tesis de Grado, Qu&iacute;mica Farmac&eacute;utica, Universidad de Cartagena, 2006.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000178&pid=S0034-7418200900010000600016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 17. S. F. Wright, R. J. Wright, J. E. Sworobuk y D. G. Boyer, Effect of acid soil chemical properties on nodulation and competition of <i>Rhizobium trifolii</i>, <i>Comm. Soil. Sci. Plant Anal</i>., 19, 311 (1988).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000179&pid=S0034-7418200900010000600017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 18. M. S. Jim&eacute;nez, "Fijaci&oacute;n biol&oacute;gica de nitr&oacute;geno por leguminosas arb&oacute;reas para sombra de caf&eacute; en Puerto Rico", Tesis de Maestr&iacute;a, Universidad de Puerto Rico, 2007.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000180&pid=S0034-7418200900010000600018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 19. M. Abdullah, K. Al-Falih, Factors affecting the efficiency of symbiotic nitrogen fixation by <i>Rhizobium</i>, <i>Pakistan J. Biol. Sci</i>., 5, 1277 (2002).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000181&pid=S0034-7418200900010000600019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 20. J. E. Thies, P. W. Singleton y B. B. Bohlool, Influence of the size of indigenous rhizobial populations on establishment and symbiotic performance of introduced rhizobia on field-grow legumes, <i>Appl. Environ. Microbiol</i>., 57, 19 (1991).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000182&pid=S0034-7418200900010000600020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 21. J. E. Thies, P. W. Singleton y B. B. Bohlool, Modeling symbiotic performance of introduced rhizobia in the field by use indices of indigenous population size and nitrogen status of the soil. <i>Appl. Environ Microbiol</i>., 57, 29 (1991).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000183&pid=S0034-7418200900010000600021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 22. Centro Internacional de Agricultura Tropical-CIAT, "Simbiosis leguminosa-rizobio. Manual de m&eacute;todos de evaluaci&oacute;n, selecci&oacute;n y manejo agron&oacute;mico", CIAT Eds., Cali, 1988, p. 203.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000184&pid=S0034-7418200900010000600022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 23. P. Somasegaran y H. J. Hoben, "Handbook of <i>rhizobia</i>: methods in legume- <i>Rhizobium</i> technology", Springer-Verlag Eds., New York, 1994, p. 450.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000185&pid=S0034-7418200900010000600023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 24. F. Mun&eacute;var y A. G. Wollum II, Effect of high root temperature and <i>Rhizobium</i> strain on nodulation, nitrogen fixation, and growth of soybeans, <i>Soil Sci. Soc</i>. Am. J., 45, 1113 (1981).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000186&pid=S0034-7418200900010000600024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 25. E. P. Alarc&oacute;n, A. Lozano y H. Chaparro, Caracterizaci&oacute;n fenot&iacute;pica de los aislamientos rizobianos de Acacia (<i>Acacia sp</i>) y Retamo (<i>Teline monpessulana</i>), Rev. Colom. Quim, 26, 21 (1997).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000187&pid=S0034-7418200900010000600025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 26.  D. C. Jordan.  En: "Bergey's  manual of systematic bacteriology", Ed. por Williams and Wilkins Baltimore,  Vol. 1, pp. 23-256, 1984.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000188&pid=S0034-7418200900010000600026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 27. B. D. W. Jarvis, P. van Berkum, W. X. Chen, S. M. Nour, M. P. Fern&aacute;ndez, J. C. Cleyet-Marel y M. Gillis, Transfer of <i>Rhizobium loti</i>, <i>Rhizobium huakuii</i>, <i>Rhizobium ciceri</i>, <i>Rhizobium mediterraneum</i>, and <i>Rhizobium tianshanense to Mesorhizobium</i> gen. nov, <i>Int. J. Syst. Bacteriol</i>., 47, 895 (1997).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000189&pid=S0034-7418200900010000600027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 28. B. Dreyfus, J. L. Garc&iacute;a, y M. Gillis, Characterization of <i>Azorhizobium caulinodans</i> gen. nov., a stem-nodulating nitrogen-fixing bacterium isolated from <i>Sesbania rostrata</i>, <i>Int. J. Syst. Bacteriol</i>. 38, 89 (1988).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000190&pid=S0034-7418200900010000600028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 29. E. Thies, P. W. Singleton y B. B. Bohlool, Subgroup of the Cowpea miscellany: Symbiotic specificity within <i>Bradyrhizobium sp</i> for <i>Vigna unguiculata</i>, <i>Phaseolus lunatus</i>, <i>Arachis hypogea</i> and <i>Macrotilium atropurpureum</i>, <i>Appl. Environ. Microbiol</i>., 57, 1540 (1991).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000191&pid=S0034-7418200900010000600029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 30. A. Sessitsch, K. J. Wilson, A. D Akkermans y W. M. de Vos, Simultaneous detection of different <i>Rhizobium</i> strains marked with either the <i>Escherichia coli</i> gusA gene or the <i>Pyrococcus furiosus</i> celB gene, <i>Appl. Environ. Microbiol</i>., 62, 4191 (1996).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000192&pid=S0034-7418200900010000600030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 31. G. Matos-Cuzcano, E. Orme&ntilde;o-Orrillo y D. Z&uacute;&ntilde;iga-D&aacute;vila, Diversidad de los rizobios que nodulan el cultivo de pallar (<i>Phaseolus lunatus</i> L.) en la Costa Central del Per&uacute;, Ecolog&iacute;a, 1, 42 (1998).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000193&pid=S0034-7418200900010000600031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 32. F. Barboza, N. Correa y S. Rosas. En "Memorias XVIII Reuni&oacute;n Latinoamericana de Rizobiolog&iacute;a", Santa Cruz de la Sierra, 1995, pp. 197.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000194&pid=S0034-7418200900010000600032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 33. S. Mpepereki, F. Makonese y A. G. Wollum, Physiological characterization of indigenous rhizobia nodulating <i>Vigna unguiculata</i> in Zimbabwean soils, Symbiosis 22, 275 (1997).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000195&pid=S0034-7418200900010000600033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 34. N. E. Ghittoni, y M. A. Bueno, Changes in the cellular content of trehalose in four peanut rhizobia strains cultured under hypersalinity, <i>Simbiosis</i>, 20, 117 (1996).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000196&pid=S0034-7418200900010000600034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 35. M. M. Yelton, S. S. Yang, S. A. Edie y S. T. Lim. Characterization of an effective salt-tolerant fast-growing strain of <i>Rhizobium japonicum</i>, <i>J. Gen. Microbiol</i>., 129, 1537 (1983).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000197&pid=S0034-7418200900010000600035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 36. H. H. Zahran, <i>Rhizobium</i>-Legume symbiosis and nitrogen fixation under severe conditions and in an arid climate, Microbiol. <i>Mol. Biol. Rev</i>., 63, 968 (1999).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000198&pid=S0034-7418200900010000600036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 37. D. Z&uacute;&ntilde;iga, L. Pliego, J. Sanju&aacute;n y C. Lluch. En: "Avances en la investigaci&oacute;n sobre fijaci&oacute;n biol&oacute;gica de nitr&oacute;geno", Ed. por Chordi y Mart&iacute;nez, Salamanca, 1996, pp. 279-281.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000199&pid=S0034-7418200900010000600037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 38. L. O. Osa-Afiana y M. Alexander, Differences among cowpea rhizobia in tolerance to high temperature and desiccation in soil, <i>Appl. Environ. Microbiol</i>., 43, 435 (1982).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000200&pid=S0034-7418200900010000600038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 39. Z. Tong y M. J. Sadowsky, A selective medium for the isolation and quantification of <i>Bradyrhizobium japonicum</i> and <i>Bradyrhizobium elkanii</i> strains from soils and inoculants, <i>Appl. Environ. Microbiol</i>., 60, 581 (1994).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000201&pid=S0034-7418200900010000600039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 40. A. C. Johnson y M. Wood, dna, a possible site of action of aluminum in <i>Rhizobium spp</i>, <i>Appl. Environ. Microbiol</i>., 56, 3629 (1990).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000202&pid=S0034-7418200900010000600040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 41. A. E. Richardson, R. J. Simpson, M. A. Djordjevic y B. G. Rolfe, Expression of nodulation genes in <i>Rhizobium leguminosarum</i> biovar <i>trifolii</i> is affected by low pH and by Ca and Al ions, <i>Appl. Environ. Microbiol</i>., 54, 2541 (1988).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000203&pid=S0034-7418200900010000600041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 42. A. Perticari, N. Arias, H. Baigorri, J. De Battista, L. Lett, M. Montecchia, J. Pacheco Basurco, A. Simonella, S. Toresani, L. Ventimiglia y R. Vicentini. En: "El libro de la soja", Ed. por sema, Buenos Aires, 2003, pp. 69-76.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000204&pid=S0034-7418200900010000600042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 43. A. Gonz&aacute;lez Fletcher y A. Cort&eacute;s Lomba&ntilde;a, "Estudio general de suelos de la zona del canal del dique (municipios de Arjona, Calamar, Mahates, Mar&iacute;a la Baja, San Estanislao, Santa Rosa, Soplaviento, Turbaco, Turbana y Villanueva)", Instituto Geogr&aacute;fico Agust&iacute;n Codazzi Eds., Bogot&aacute;, 1982.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000205&pid=S0034-7418200900010000600043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>44. D. J. Brenner y J. T. Staley. 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Kremer y H. L. Peterson, Nodulation efficiency of legume inoculation as determined by intrinsic antibiotic resistance, <i>Appl. Environ. Microbiol</i>., 43, 636 (1982).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000208&pid=S0034-7418200900010000600046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 47. G. R. Xavier, L. M. V. Martins, M. C. P. Neves y N. G. Rumjanek. Edaphic factors as determinants for the distribution of intrinsic antibiotic resistance in a cowpea rhizobia population, <i>Biol. Fertil. 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Novo, "Vida microbiana en el suelo", Universidad de La Habana Eds., La Habana, 1988.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000211&pid=S0034-7418200900010000600049&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 50. Y. A. Hamdi, "La fijaci&oacute;n biol&oacute;gica del nitr&oacute;geno", FAO EDS., Roma, 1985.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000212&pid=S0034-7418200900010000600050&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 51. L. Lloret y E. Mart&iacute;nez-Romero, Evoluci&oacute;n y filogenia de <i>Rhizobium</i>, Rev. Latinoam. 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