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<journal-title><![CDATA[Revista Colombiana de Ciencias Químico - Farmacéuticas]]></journal-title>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Efecto de algunas especies vegetales antiinflamatorias sobre la actividad enzimática de elastasa y mieloperoxidasa]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[In this work, the effect of aqueous and methanolic extracts of the plants species Critoniella acuminata, Salvia rubescens, Phenax rugosus (Poir.) Wedd and Tabebuia chrysanta G. on the enzymes elastase and myeloperoxidase, involved in degranulation leukocyte process, was evaluated, identifying the potential direct inhibitory effect on the enzyme and/or inhibition of the desgranulation of polymorphonuclear neutrophils. Extracts of Critoniella acuminata and Salvia rubescens presented effects on the degranulation process and the inhibition of the enzyme elastase and myeloperoxidase; the extracts of Phenax rugosus do not showed significant effect. Tabebuia chrysanta methanolic extract only showed effect on inhibition of elastase activity.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font size="2" face="Verdana">     <p align="right">Art&iacute;culo de investigaci&oacute;n cient&iacute;fica</p>     <p align="center"><font size="4"><b>Efecto de algunas especies vegetales antiinflamatorias sobre la actividad enzim&aacute;tica de elastasa y mieloperoxidasa</b></font></p>     <p align="center"><font size="3"><b>Effect of some antiinflammatory plant species on elastase and myeloperoxidase enzyme activity</b></font></p>      <p align="justify">Paola Andrea C&aacute;rdenas<sup>1</sup>, Diana Marcela Arag&oacute;n<sup>1</sup>, Luis Fernando Ospina<sup>1</sup>, Gustavo Isaza<sup>2</sup>, Jorge Enrique P&eacute;rez<sup>2*</sup></p>      <p align="justify"><sup>1</sup> Departamento de Farmacia, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional de Colombia.</p>      <p align="justify"><sup>2</sup> Departamento de Ciencias B&aacute;sicas, Facultad de Ciencias para la Salud, Universidad de Caldas.</p>      <p align="justify"><sup>*</sup> Autor de correspondencia: correo electr&oacute;nico <a href="mailto:dmaragonn@unal.edu.co"><i>dmaragonn@unal.edu.co</i></a></p>  	     <p align="justify"> Recibido para evaluaci&oacute;n: 10 de septiembre de 2012.    <br>   Aceptado para publicaci&oacute;n: 30 de noviembre de 2012. <hr>        ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><b><font size="3">RESUMEN</font></b></p>     <p align="justify">Se evalu&oacute; el efecto de extractos metan&oacute;licos y acuosos de las especies <i>vegetales Critoniella acuminata, Salvia rubescens, Phenax rugosus</i> (Poir.) <i>Wedd y Tabebuia chrysanta</i> G. Nicholson sobre las enzimas elastasa y mieloperoxidasa, relacionadas con el proceso de desgranulaci&oacute;n leucocitaria, y se determin&oacute; el potencial efecto inhibitorio directo sobre la enzima o la inhibici&oacute;n de la desgranulaci&oacute;n de los neutr&oacute;filos polimorfonucleares. Los extractos de <i>Critoniella acuminata y Salvia rubescens</i> presentaron efectos sobre el proceso de desgranulaci&oacute;n y la actividad de las enzimas mieloperoxidasa y elastasa; en el caso de los extractos de Phenax rugosus, estos no mostraron un efecto significativo sobre ninguna de las enzimas. De la especie <i>Tabebuia chrysanta</i> solamente el extracto metan&oacute;lico mostr&oacute; efecto sobre la inhibici&oacute;n de la actividad elastasa.</p>     <p align="justify"><i>Palabras clave</i>: <i>Critoniella acuminata</i>, desgranulaci&oacute;n, elastasa, mieloperoxidasa, <i>Phenax rugosus, Salvia rubescens, Tabebuia chrysanta.</i></p> <hr>     <p align="center"><b><font size="3">SUMMARY</font></b></p>     <p align="justify">In this work, the effect of aqueous and methanolic extracts of the plants species <i>Critoniella acuminata, Salvia rubescens, Phenax rugosus</i> (Poir.) <i>Wedd and Tabebuia chrysanta</i> G. on the enzymes elastase and myeloperoxidase, involved in degranulation leukocyte process, was evaluated, identifying the potential direct inhibitory effect on the enzyme and/or inhibition of the desgranulation of polymorphonuclear neutrophils. Extracts of <i>Critoniella acuminata</i> and <i>Salvia rubescens</i> presented effects on the degranulation process and the inhibition of the enzyme elastase and myeloperoxidase; the extracts of <i>Phenax rugosus</i> do not showed significant effect. Tabebuia chrysanta methanolic extract only showed effect on inhibition of elastase activity.</p>     <p align="justify"><i>Key words: </i> <i>Critoniella acuminata</i>, degranulation, elastase, myeloperoxidase, <i>Phenax rugosus, Salvia rubescens, Tabebuia chrysanta.</i></p> <hr>     <p align="center"><font size="3"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>      <p align="justify">Durante el proceso de inflamaci&oacute;n es esencial el papel de los leucocitos polimorfonucleares (PMNs), que son las c&eacute;lulas leucocitarias predominantes en la inflamaci&oacute;n aguda y las primeras c&eacute;lulas m&oacute;viles en llegar al &aacute;rea afectada. Los PMNs se adhieren a las c&eacute;lulas epiteliales y atraviesan la pared de los vasos sangu&iacute;neos atra&iacute;dos por factores quimiot&aacute;cticos para desgranular-liberar enzimas que degradan el agente invasor (1).</p>     <p align="justify">Los neutr&oacute;filos desempe&ntilde;an papeles normales o de defensa en los procesos inflamatorios, o anormales en alergias o enfermedades autoinmunes. En los procesos patol&oacute;gicos antes mencionados el arsenal enzim&aacute;tico rico en colagenasas y proteasas produce destrucci&oacute;n de los tejidos. Se ha propuesto que la excesiva actividad mieloperoxidasa y elastasa, as&iacute; como las especies de ox&iacute;geno reactivas, est&aacute;n implicadas directamente en el da&ntilde;o tisular (2).</p>     <p align="justify">La mieloperoxidasa (MPO) es una enzima lisosomal que se almacena principalmente en los gr&aacute;nulos azur&oacute;filos de los neutr&oacute;filos polimorfonucleares humanos. La MPO se libera en vacuolas fagoc&iacute;ticas durante la activaci&oacute;n celular y su grado de actividad est&aacute; directamente relacionado con la concentraci&oacute;n de neutr&oacute;filos en el tejido inflamado; por lo que la medici&oacute;n de esta actividad enzim&aacute;tica ha sido considerada un sensible marcador cuantitativo de la quimiotaxis y de la infiltraci&oacute;n de neutr&oacute;filos en el proceso inflamatorio, tambi&eacute;n es considerada como un indicativo de estr&eacute;s oxidativo (3).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">La elastasa es una metaloprote&iacute;na con actividad enzim&aacute;tica proteasa, capaz de degradar el col&aacute;geno, los proteoglicanos del cart&iacute;lago, la elastina (de ah&iacute; su nombre) y la membrana basal. Adem&aacute;s puede convertir el fibrin&oacute;geno en fibrina y actuar sobre el comple mento a distintos niveles. Es una proteasa con una amplia gama de sustratos y existe la posibilidad de un amplio incremento de la actividad elastasa asociada a la infiltraci&oacute;n y desgranulaci&oacute;n de neutr&oacute;filos en los s&iacute;ndromes coronarios agudos (4).</p>     <p align="justify"><i>Phenax rugosus</i> (Poir.) Wedd (Urticaceae, n. v. esparietaria) y <i>Tabebuia chrysanta</i> G. Nicholson (Bignoniaceae, n. v. guayac&aacute;n amarillo, ca&ntilde;ahuate) son plantas empleadas en el eje cafetero colombiano por sus propiedades antiinfecciosas e inmunomoduladoras (5, 6, 7); tambi&eacute;n se ha reportado la presencia de saponinas, cumarinas, lactonas terp&eacute;nicas y esteroides o triterpenoides para <i>Phenax rugosus</i>, y estos mismos metabolitos, adem&aacute;s de alcaloides y taninos, para <i>Tabebuia chrysanta</i> (7). A la especie <i>Critoniella acuminata (Asteraceae</i>, n. v. patinegra) se le atribuyen propiedades desinfectantes, febr&iacute;fugas y cicatrizantes; de esta planta se han aislado flavonoides, feniletilamidas, derivados del farneseno, ayapina y carbinol (8, 9). La <i>Salvia rubescens (Labiatae</i>, n. v. salvia colombiana) es empleada en el tratamiento de infecciones microbianas, hepatitis viral, enfermedades card&iacute;acas, hemorragias, entre otros, y de las partes a&eacute;reas de <i>Salvia rubescens</i> se ha aislado un neoclerodano llamado amarisolide. En varios trabajos se ha mostrado que extractos de estas cuatro especies presentan efecto antiinflamatorio en modelos <i>in vivo</i> (9, 10).</p>     <p align="justify">El presente trabajo evalu&oacute; el efecto de los extractos metan&oacute;lico y acuoso de Critoniella acuminata, Salvia rubescens, Phenax rugosus y Tabebuia chrysanta sobre las enzimas liberadas en el proceso de desgranulaci&oacute;n leucocitaria: elastasa y mieloperoxidasa, determinando el potencial efecto inhibitorio directo sobre la enzima o la inhibici&oacute;n de la desgranulaci&oacute;n de los PMNs.</p>      <p align="center"><font size="3"><b>METODOLOG&Iacute;A</b></font></p>      <p><b>Material vegetal</b></p>     <p align="justify"><i>Phenax rugosus</i> se recolect&oacute; en la vereda El Guayabo, municipio de Cartago, Valle del Cauca (Colombia), a 1.400 m. s. n. m. y 22 &ordm;C de temperatura promedio, y <i>Tabebuia chrysanth</i>a en la vereda Sant&aacute;gueda, municipio de Palestina, Caldas (Colombia), a 1.800 m. s. n. m. y a una temperatura promedio de 20 &ordm;C. Ambas especies fueron identificadas y clasificadas en el herbario de la Facultad de Ciencias Agropecuarias de la Universidad de Caldas y debidamente comparadas con las muestras de referencia 1016 para <i>Phenax rugosus</i> (Poir.) Wedd y 1525 para <i>Tabebuia chrysantha</i> G. Nicholson.</p>      <p align="justify">Las partes a&eacute;reas, con flores, de <i>Salvia rubescens</i> Kunth subsp. <i>Rubescens</i> se recolectaron en la parte baja del cerro de La Conejera, en la Sabana de Bogot&aacute; (2.600 m. s. n. m. / 14 &ordm;C), mientras que las partes a&eacute;reas, con flores, de Critoniella acuminata, se recolectaron en el kil&oacute;metro 15 de la v&iacute;a Bogot&aacute;-Mesitas del Colegio (2.000 m. s. n. m. / 15 &ordm;C). Ambas especies fueron identificadas y clasificadas en el Herbario Nacional Colombiano con n&uacute;meros de <i>voucher</i> COL 434050 para <i>Salvia rubescens</i> y COL 311090 para <i>Critoniella acuminata</i>.</p>     <p><b>Obtenci&oacute;n de extractos</b></p>     <p align="justify">Las hojas se lavaron con abundante agua destilada, se secaron en estufa a una temperatura de 40 &ordm;C durante 24 h, se pulverizaron y almacenaron en frascos &aacute;mbar a -4 &ordm;C hasta el momento de ser empleadas. Las muestras vegetales fueron sometidas a un proceso de maceraci&oacute;n en agua fr&iacute;a, como se hace la preparaci&oacute;n tradicional, y con metanol con el fin de extraer un mayor tipo y concentraci&oacute;n de constituyentes. Se obtuvieron dos extractos, metan&oacute;lico y acuoso de las especies objeto de estudio, los cuales se concentraron en rotavapor; el extracto metan&oacute;lico se conserv&oacute; en estado seco a -4 &ordm;C y el extracto acuoso fue liofilizado. Los extractos son identificados as&iacute;: CM (extracto metan&oacute;lico <i>Critonella acuminata</i>), CA (extracto acuoso de <i>Critonella acuminata</i>), SM (extracto metan&oacute;lico de <i>Salvia rubescens</i>), SA (extracto acuoso de <i>Salvia rubescens</i>), PA (extracto acuoso de <i>Phenax rugosus</i>), PM (extracto metan&oacute;lico de <i>Phenax rugosus</i>), TA (extracto acuoso de <i>Tabebuia chrysantha</i>), TM (extracto metan&oacute;lico de <i>Tabebuia chrysantha</i>).</p>     <p><b>Obtenci&oacute;n de polimorfonucleares</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Los polimorfonucleares (PMNs) fueron obtenidos de sangre perif&eacute;rica humana: un volumen de sangre se mezcl&oacute; en proporciones iguales con dextr&aacute;n 3% en soluci&oacute;n salina normal (SSN) y se dej&oacute; en reposo durante 20 min, el sobrenadante se centrifug&oacute; a 1.850 xg durante 5 min. El <i>pellet</i> fue suspendido en SSN y se coloc&oacute; sobre Ficoll- Hypaque<sup>&reg;</sup> en proporci&oacute;n 2:1 y se centrifug&oacute; por 20 min a 2.000 xg. Se eliminaron las dos capas superiores (plasma y mononucleares) y se recuper&oacute; el <i>pellet</i>, el cual fue lisado con soluci&oacute;n hipot&oacute;nica (NaCl 0,2%) por 30 s, posteriormente se adicion&oacute; un volumen igual de soluci&oacute;n hipert&oacute;nica (NaCl 1,6 %) y se centrifug&oacute; por 5 min a 1.850 xg. El proceso de lisis se realiz&oacute; cuantas veces fue necesario para eliminar todos los eritrocitos presentes. Los PMNs se suspendieron en PBS pH 7,4 (11).</p>     <p><b>Citotoxicidad</b></p>     <p align="justify">Se realiz&oacute; el ensayo de MTT (metil tiazol tetrazolio) para evaluar el posible efecto citot&oacute;xico de los extractos en estudio. En placas de 96 pozos, 200 &mu;L de una suspensi&oacute;n de PMNs (5&#42;10<sup>6</sup> c&eacute;lulas/mL) con 2 &mu;L de la soluci&oacute;n problema (Cf: 100 &mu;g/mL) o 2 &mu;L del veh&iacute;culo (dimetil sulf&oacute;xido, DMSO) se incubaron durante 30 min a 37 &ordm;C. Posteriormente se someti&oacute; a centrifugaci&oacute;n a 1.850 xg por 10 min a 4 &ordm;C, se elimin&oacute; el sobrenadante y se adicion&oacute; a cada pozo 100 &mu;L de una soluci&oacute;n de MTT 0,42 mg/mL en HBSS (Hank’s Buffered Salt Solution). Se incub&oacute; por 90 min a 37 &ordm;C. Nuevamente se centrifug&oacute; a 1.850 xg por 10 min a temperatura ambiente y se elimin&oacute; el sobrenadante. Se adicionaron 100 &mu;L de DMSO y se agit&oacute; para solubilizar los cristales de formaz&aacute;n. La absorbancia se midi&oacute; a 495 nm. Se calcul&oacute; el porcentaje de viabilidad con respecto al control, el cual se toma como el 100% de viabilidad (11).</p>     <p><b>Desgranulaci&oacute;n leucocitaria</b></p> A 500 &mu;L de una suspensi&oacute;n de PMNs (2,5*10<sup>6</sup> c&eacute;lulas/mL) se agregaron 5 &mu;L de citocalasina B (Cf: 100 &mu;M) y 5&mu;L de f-MLP (N-formil- metionil- leucil- fenilalanina, Cf: 10 nM); la mezcla de reacci&oacute;n se incub&oacute; por 10 min a 37 &ordm;C. Posteriormente se centrifug&oacute; a 1.850 xg durante 10 min a 4 &ordm;C y se recuper&oacute; el sobrenadante, al cual se denomin&oacute; "fuente enzim&aacute;tica" (11).</p>     <p align="justify">Para determinar la actividad de los extractos evaluados sobre el proceso de desgranulaci&oacute;n se preincubaron 500 &mu;L de la suspensi&oacute;n de PMNs durante 5 min a 37 &ordm;C con 5 &mu;L del extracto a evaluar (Cf: 100 &mu;g/mL), posteriormente se adicionaron 5 &mu;L de citocalasina B (Cf: 100 &mu;M) y 5&mu;L de f-MLP (Cf: 10 nM) y se incub&oacute; nuevamente por 10 min a 37 &ordm;C. En los sobrenadantes recuperados despu&eacute;s de la centrifugaci&oacute;n (1.850 xg, 10 min, 4 &ordm;C) se determin&oacute; la actividad de elastasa y MPO como se describe a continuaci&oacute;n.</p>     <p><b>Actividad elastasa</b></p>     <p align="justify">Se tomaron 250 &mu;L del sobrenadante obtenido en el proceso de desgranulaci&oacute;n y se incubaron durante 20 min a 37 &ordm;C con N- ter- butoxi- carbonil-L-alanina (t- BOC, Cf: 200 &mu;M) como substrato (5). La actividad de elastasa se determin&oacute; espectrofotom&eacute;tricamente mediante la cuantificaci&oacute;n del p- nitrofenil&eacute;ster liberado (415 nm).</p>     <p align="justify">Al evaluar el efecto de los extractos directamente sobre la actividad ezim&aacute;tica elastasa se sigui&oacute; el procedimiento anterior, se tomaron 250 &mu;L de "fuente enzim&aacute;tica" para ser incubados con 2,5 &mu;L de cada extracto (Cf: 100 &mu;g/mL) desde el inicio de la reacci&oacute;n.</p>     <p><b>Actividad MPO</b></p>     <p align="justify">Se tomaron 50 &mu;L del sobrenadante obtenido en el proceso de desgranulaci&oacute;n, se adicion&oacute; tamp&oacute;n PBS (pH 7,4), tamp&oacute;n fosfatos (pH 5,4), per&oacute;xido de hidr&oacute;geno (Cf:0,3 &mu;M) y se incub&oacute; por 5 min a 37 &ordm;C. Posteriormente se adicion&oacute; el sustrato TBM (tetrametilbencidina, Cf: 1,5 mM) y se incub&oacute; por 3 min a 37 &ordm;C. Para detener la reacci&oacute;n se agregaron 30 &mu;L de acetato s&oacute;dico 1,5 M (pH 3,0) y finalmente se determin&oacute; la absorbancia a 620 nm (11).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Cuando se evalu&oacute; el efecto de los extractos directamente sobre la actividad enzim&aacute;tica mieloperoxidasa se sigui&oacute; el procedimiento anterior, se tomaron 250 &mu;L de "fuente enzim&aacute;tica" para ser incubados con 2,5 &mu;L de cada extracto (Cf: 100 &mu;g/mL) desde el inicio de la reacci&oacute;n.</p>      <p><b>Estad&iacute;stica</b></p>     <p align="justify">Los resultados son expresados como la media aritm&eacute;tica de los valores &plusmn; desviaci&oacute;n est&aacute;ndar de la media. Los datos fueron interpretados estad&iacute;sticamente con un an&aacute;lisis de varianza simple (Anova), seguido de an&aacute;lisis de comparaciones m&uacute;ltiples (test de Tukey) con un nivel de significancia de p &lt; 0,05.</p>      <p align="center"><b><font size="3">RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</font></b></p>      <p align="justify">Los resultados obtenidos muestran el efecto de los diferentes extractos sobre el proceso de desgranulaci&oacute;n. En las tablas 1 y 2 se muestra el efecto de los extractos sobre el proceso de desgranulaci&oacute;n medido por medio de la actividad mieloperoxidasa y elastasa. La mayor&iacute;a de los extractos presentaron inhibici&oacute;n del proceso de desgranulaci&oacute;n de elastasa en magnitudes similares, y es de resaltar los extractos TM y CM, que presentaron inhibiciones superiores al 60% (<a href="#tab01">Tabla 1</a>). En cuanto a la actividad de los extractos frente a la actividad enzim&aacute;tica de elastasa (<a href="#tab01">Tabla 1</a>), los porcentajes de inhibici&oacute;n no superan el 30%.</p>      <p align="justify">La actividad de los extractos ante el proceso de desgranulaci&oacute;n de MPO fue muy baja (<a href="#tab02">Tabla 2</a>), &uacute;nicamente los extractos CA y CM presentaron inhibici&oacute;n de la actividad enzim&aacute;tica-MPO superior al 45%. Por otro lado, los extractos CA y SA presentaron porcentajes de inhibici&oacute;n de la actividad enzim&aacute;tica de mieloperoxidasa mayores al 80% (<a href="#tab02">Tabla 2</a>).</p>      <p align="justify">En general los extractos de <i>Critoniella acuminata</i> presentaron mayor inhibici&oacute;n de la actividad enzim&aacute;tica; el extracto metan&oacute;lico (CM) fue el que gener&oacute; la mayor inhibici&oacute;n de la enzima elastasa, tanto en la inhibici&oacute;n de la desgranulaci&oacute;n como en la inhibici&oacute;n de la actividad enzim&aacute;tica directa, mientras que el extracto acuoso mostr&oacute; la inhibici&oacute;n m&aacute;s alta frente a MPO. Estos resultados est&aacute;n en concordancia con estudios previos en los que se demostr&oacute; el efecto de la ayapina, componente de <i>C. acuminata</i>, a la cual se le atribuye parte de su actividad antiinflamatoria, inhibe de forma directa la elastasa (12).</p>      <p align="justify">El extracto metan&oacute;lico de <i>Salvia rubescens</i> mostr&oacute; inhibici&oacute;n de la desgranulaci&oacute;n de elastasa, a la vez que el extracto acuoso inhibe &uacute;nicamente en forma directa la actividad enzim&aacute;tica MPO. Estos resultados sugieren que los extractos de esta planta inhiben selectivamente el proceso de desgranulaci&oacute;n o directamente la actividad en la fuente enzim&aacute;tica. En trabajos previos se demostr&oacute; actividad antiinflamatoria <i>in vivo</i> para amarisolide, un compuesto aislado de esta planta, el cual inhibe de forma moderada la actividad MPO (12).</p>      <p align="justify">Los extractos metan&oacute;lico y acuoso de <i>Tabebuia chrysanta</i> no presentaron actividad frente al proceso de desgranulaci&oacute;n - MPO y la actividad enzim&aacute;tica de fuente de MPO, pero s&iacute; presentaron inhibici&oacute;n del proceso de desgranulaci&oacute;n - elastasa (inhibici&oacute;n mayor al 50%). Aunque en una proporci&oacute;n baja, los extractos presentaron inhibici&oacute;n frente a la actividad enzim&aacute;tica de fuente de elastasa. Teniendo en cuenta los resultados ya expuestos, podemos sugerir que el modo de acci&oacute;n antiinflamatorio de la <i>T. chrysanta</i> est&aacute; relacionado con la inhibici&oacute;n de elastasa tanto en el proceso de desgranulaci&oacute;n leucocitaria como directamente ante la enzima.      <p align="center"><a name="tab01"></a><img src="img/revistas/rccqf/v41n2/v41n2a03tab01.jpg"></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="tab01"></a><img src="img/revistas/rccqf/v41n2/v41n2a03tab02.jpg"></p>       <p align="justify">Los extractos acuoso y metan&oacute;lico de <i>Phenax rugosus</i> mostraron comportamiento similar entre ellos, ya que no inhiben el proceso de desgranulaci&oacute;n - MPO, aunque logran una inhibici&oacute;n moderada de desgranulaci&oacute;n - elastasa (alrededor del 50%).</p>      <p align="justify">En conclusi&oacute;n, todos los extractos evaluados inhiben la desgranulaci&oacute;n de elastasa, mientras que solo los extractos de <i>Critoniella acuminata</i> presentan inhibici&oacute;n de la desgranulaci&oacute;n de mieloperoxidasa. De manera directa los extractos de <i>Critoniella aciminata y Salvia rubescens</i> inhiben la actividad de mieloperoxidasa en la fuente enzim&aacute;tica. Este trabajo contribuye al establecimiento de posibles modos de acci&oacute;n antiinflamatorios para dichas especies vegetales usadas con fines medicinales.</p>  <hr>      <p align="center"><font size="3"><b>REFERENCIAS</b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify">1. W. Rojas, "Inmunolog&iacute;a", Medell&iacute;n, Ed. Corporaci&oacute;n para Investigaciones Biol&oacute;gicas, 1996, pp. 146-148.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000057&pid=S0034-7418201200020000300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p align="justify">2. J. Smith, Neutrophils, host defense, and inflammation: a double-edged sword, <i>J. Leukocite Biol.</i>, 56, 72 (1994).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000059&pid=S0034-7418201200020000300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p align="justify">3. H. Cheng, B. Xia, L. Zhang, F. Zhou, Y. Zhang, M. Ye, Z. Hu, J. Li, Z. Z. Wang, Matrine improves 2,4,6-trinitrobenzene sulfonic acid-induced colitis in mice, <i>Pharmacol. Res.</i>, 53, 202 (2006).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000061&pid=S0034-7418201200020000300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">4. P.A. Henriksen, J.M. Sallenave, Human neutrophil elastase: Mediator and therapeutic target in atherosclerosis, <i>Biochem. Cell Biol.</i>, 40, 1095 (2008).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000063&pid=S0034-7418201200020000300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p align="justify">5. J.E. P&eacute;rez, G. Isaza, S. Acosta, Actividad antibacteriana de extractos de <i>Phenax rugosus y Tabebuia chrysantha, Biosalud,</i> 6, 59 (2007).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S0034-7418201200020000300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p align="justify">6. L.F. Ospina, D.M. Arag&oacute;n, N.E. Vergel, G. Isaza, J.E. P&eacute;rez, Anti-inflammatory and antioxidant activities of <i>Phenax rugosus</i> (Poir.) Wedd and <i>Tabebuia chrysanta</i> G. Nicholson, <i>Vitae</i>, 18, 49 (2011).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0034-7418201200020000300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p align="justify">7. J.E. P&eacute;rez, G. Isaza, J.G. Bueno, M.C. Arango, B.L. Hincapi&eacute;, A.M., D.P. Londo&ntilde;o, Efecto de los extractos de <i>Phenax rugosus, Tabebuia chrysantha, Althernantera williamsii y Solanum dolichosepalum</i> sobre el leucograma y la producci&oacute;n de anticuerpos en ratas, <i>Rev. Med. Risaralda,</i> 10, 13 (2004).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0034-7418201200020000300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p align="justify">8. C.E. Mu&ntilde;oz, N.E. Vergel, D.M. Arag&oacute;n, L.F. Ospina, Efecto antinociceptivo de Critoniella acuminata, <i>Physalis peruviana y Salvia rubescens, Revista Colombiana de Ciencias Qu&iacute;mico-Farmac&eacute;uticas</i>, 38, 31 (2009).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0034-7418201200020000300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">9. F. Gonz&aacute;lez, M. Vesga, "Caracterizaci&oacute;n qu&iacute;mica de algunos metabolitos secundarios de <i>Critoniella acuminata</i> (H.B.K) R.M. King &amp; H. Robinson y evaluaci&oacute;n de su posible actividad antiinflamatoria", tesis de grado, Universidad Nacional de Colombia, 2003.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0034-7418201200020000300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p align="justify">10. A. Vel&aacute;squez, "Efecto antiinflamatorio y antioxidante de algunas plantas utilizadas en la medicina tradicional colombiana", tesis de maestr&iacute;a, Universidad Nacional de Colombia, 2002.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0034-7418201200020000300010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p align="justify">11. H. Correa, A.L. Valenzuela, L.F. Ospina, C. Duque, Anti-inflammatory effects of the gorgonian <i>Pseudopterogorgia elisabethae</i> collected at the Islands of Providencia and San Andr&eacute;s (SW Caribbean), <i>J. Inflammation</i>, 6, 5 (2009).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0034-7418201200020000300011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>12. M. Rodr&iacute;guez, N. Vergel, L.F Ospina, J. Calle, R. Pinz&oacute;n, Evaluaci&oacute;n de actividades enzim&aacute;ticas elastasa y mieloperoxidasa como marcadores de desgranulaci&oacute;n leucocitaria en modelos de inflamaci&oacute;n aguda, <i>Revista Colombiana de Ciencias Qu&iacute;mico-Farmac&eacute;uticas</i>, 34, 35 (2004).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0034-7418201200020000300012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>  </font>      ]]></body><back>
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