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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Evaluación de una prueba Elisa IgG de avidez para toxoplasma para el diagnóstico en el embarazo y correlación con IgM E IgA en el laboratorio del Centro de Investigaciones Biomédicas de la Universidad del Quindío, 2008]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Evaluating a Toxoplasma IgG avidity ELISA test for diagnostic purposes during pregnancy and correlating it with Toxoplasma IgM and IgA in the Biomedical Research Centre’s laboratory at the Universidad del Quindío, 2008]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Aims: determining the cut-off value for a homebased ELISA assay for IgG avidity at the Biomedical Research Centre at the Universidad del Quindío and correlating the results from pregnant females’serum samples with IgM and IgA test results. Material and methods: 17 patients having known infection dates were studied to determine the receptor operator curve (ROC) for a home-made avidity assay. 91 sera samples from pregnant females were also analysed at the same laboratory for IgM and IgA anti Toxoplasma antibodies. Results: 100% sensitivity and 88% specificity were obtained by using a 30% avidity cut-off value for identifying infections acquired less than 4 months beforehand. 63% of the 91 pregnant females had less than 16 weeks’ gestation at the time of examination and three of the patients had low avidity tests (<30%). Only one case had avidity less than <30% after 8 months’ infection. The avidity test was requested before the 16th week of the gestational period for most of the patients. Conclusions: a 30% cut-off identified sera containing infections having less than 4 months’ evolution.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[toxoplasmosis]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[IgG de avidez]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[curva ROC]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[sensibilidad, especificidad]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">  <font size="4">    <center><b>Evaluaci&oacute;n de una prueba Elisa IgG de avidez para <i>toxoplasma</i> para el diagn&oacute;stico en el embarazo y correlaci&oacute;n con IgM E IgA en el laboratorio del Centro de Investigaciones Biom&eacute;dicas de la Universidad del Quind&iacute;o, 2008</b></center></font>    <p></p>     <p>    <center>    <p>Elizabeth Torres Morales, Bacteri&oacute;loga*, Jorge Enrique G&oacute;mez-Mar&iacute;n, MD, PhD**</p></center></p>     <p>    <center>    <p>&nbsp;</p>    <p>Recibido: febrero 5/08 - Aceptado: julio 29/08</p></center></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>* Grupo de Estudio en Parasitolog&iacute;a Molecular (GEPAMOL). Centro de Investigaciones Biom&eacute;dicas, Universidad del Quind&iacute;o. Armenia, Colombia.</p>     <p>** Centro de Investigaciones Biom&eacute;dicas, Universidad del Quind&iacute;o, Armenia, Colombia. Correo electr&oacute;nico: <a href="mailto:gepamol2@uniquind&iacute;o.edu.co">gepamol2@uniquind&iacute;o.edu.co</a></p>     <p><b>RESUMEN </b></p>     <p><b>Objetivos: </b>establecer el punto de corte de una prueba ELISA IgG de avidez casera en el Centro de Investigaciones Biom&eacute;dicas de la Universidad del Quind&iacute;o y correlacionar sus resultados con la fecha de gestaci&oacute;n y resultados de IgM e IgA en sueros de pacientes gestantes, analizadas en el laboratorio para establecer el perfil de uso de la prueba. </p>     <p><b>Materiales y m&eacute;todos: </b>se estudiaron sueros de 17 pacientes con fechas de infecci&oacute;n conocidas, para definir la curva receptor operador (ROC) por la prueba ELISA IgG de avidez anti <i>Toxoplasma</i> y 91 sueros de pacientes embarazadas con resultados de pruebas IgM e IgA anti <i>Toxoplasma</i> analizadas en el mismo laboratorio. </p>     <p><b>Resultados: </b>obtuvimos un punto de corte de avidez menor a 30%, lo que permite una sensibilidad del 100% y una especificidad del 88% para definir si la infecci&oacute;n ten&iacute;a menos de 4 meses de adquirida. En el segundo grupo, de 91 pacientes, encontramos que el 63% ten&iacute;a menos de 16 semanas de gestaci&oacute;n al momento de la prueba y 3 pacientes tuvieron &iacute;ndices de avidez bajo (&lt;30%). Se observa que a la mayor&iacute;a de pacientes se les solicit&oacute; la prueba antes de la semana 16 de gestaci&oacute;n, lo cual es un indicador de buen uso de la prueba. </p>     <p><b>Conclusiones: </b>un punto de corte de 30% para la prueba ELISA de avidez anti <i>Toxoplasma</i> casera en el Centro de Investigaciones Biom&eacute;dicas de la Universidad del Quind&iacute;o, identifica infecciones de menos de 4 meses de adquirida.</p>     <p><b>Palabras clave: </b>toxoplasmosis, IgG de avidez, curva ROC, sensibilidad, especificidad.</p> <font size="4">    <center><b>Evaluating a Toxoplasma IgG avidity ELISA test for diagnostic purposes during pregnancy and correlating it with Toxoplasma IgM and IgA in the Biomedical Research Centre&#39;s laboratory at the Universidad del Quind&iacute;o, 2008</b></center></font>     <p><b>SUMMARY </b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Aims: </b>determining the cut-off value for a homebased ELISA assay for IgG avidity at the Biomedical Research Centre at the Universidad del Quind&iacute;o and correlating the results from pregnant females&#39;serum samples with IgM and IgA test results. </p>     <p><b>Material and methods: </b>17 patients having known infection dates were studied to determine the receptor operator curve (ROC) for a home-made avidity assay. 91 sera samples from pregnant females were also analysed at the same laboratory for IgM and IgA anti Toxoplasma antibodies. </p>     <p><b>Results: </b>100% sensitivity and 88% specificity were obtained by using a 30% avidity cut-off value for identifying infections acquired less than 4 months beforehand. 63% of the 91 pregnant females had less than 16 weeks&#39; gestation at the time of examination and three of the patients had low avidity tests (&lt;30%). Only one case had avidity less than &lt;30% after 8 months&#39; infection. The avidity test was requested before the 16th week of the gestational period for most of the patients. </p>     <p><b>Conclusions: </b>a 30% cut-off identified sera containing infections having less than 4 months&#39; evolution. </p>     <p><b>Key words: </b>toxoplasmosis, avidity test, ROC curve, sensitivity, specificity. </p>     <p><b>INTRODUCCI&Oacute;N </b></p>     <p><i>Toxoplasma gondii </i>es un par&aacute;sito intracelular obligado cosmopolita que causa infecci&oacute;n en humanos por zoonosis o por ingesti&oacute;n de alimentos contaminados y, en pocos casos, por transplantes de &oacute;rganos.<sup>1</sup> En la mayor&iacute;a de pacientes la enfermedad es asintom&aacute;tica pero puede causar grandes complicaciones en individuos inmunosuprimidos o inmunodeficientes, llevando a la encefalitis toxopl&aacute;smica.<sup>1</sup> Otro grave problema es la toxoplasmosis cong&eacute;nita, que ocurre cuando la mujer adquiere una infecci&oacute;n durante la gestaci&oacute;n. La infecci&oacute;n aguda en embarazadas no se evidencia en alrededor del 90% de los casos.<sup>2-5</sup> En general los signos y s&iacute;ntomas de infecci&oacute;n aguda son tan insignificantes que no se resaltan en la historia cl&iacute;nica o no se recuerdan por la gestante. Cuando la gestante es inmunosuprimida por VIH, linfomas o corticoterapia, la transmisi&oacute;n cong&eacute;nita puede ocurrir a&uacute;n cuando tenga historia pasada de infecci&oacute;n por <i>Toxoplasma gondii </i>y presente un perfil serol&oacute;gico de infecci&oacute;n cr&oacute;nica.<sup>3</sup> </p>     <p>A pesar de la existencia de marcadores de infecci&oacute;n aguda como IgM o IgA, la persistencia de ellos hasta por dos a&ntilde;os, luego de ocurrida la infecci&oacute;n, hace que la interpretaci&oacute;n y evaluaci&oacute;n del riesgo de transmisi&oacute;n durante el embarazo sea incierta.<sup>3</sup> Una alternativa es medir la avidez funcional del ant&iacute;geno y el anticuerpo, lo que permite estimar el tiempo de adquisici&oacute;n de la infecci&oacute;n. La prueba de anticuerpos IgG de avidez<sup>6 </sup>se basa en la distinta fuerza o afinidad que existe en la uni&oacute;n ant&iacute;geno-anticuerpo. La t&eacute;cnica de avidez de IgG antitoxopl&aacute;smica permite diferenciar una infecci&oacute;n aguda o primaria de una cr&oacute;nica. En los primeros meses de una infecci&oacute;n, el hospedero responde con la producci&oacute;n de anticuerpos de la clase IgG de baja afinidad, la cual aumenta a medida que transcurre el tiempo de infecci&oacute;n. </p>     <p>El an&aacute;lisis de la estabilidad de la uni&oacute;n del complejo ant&iacute;geno-anticuerpo se puede hacer a trav&eacute;s de una adaptaci&oacute;n de la prueba ELISA IgG para medir la avidez del anticuerpo. Se basa en que los anticuerpos producidos durante la fase aguda de la infecci&oacute;n tienen una menor avidez<sup>7</sup>. La ruptura de la uni&oacute;n entre el ant&iacute;geno y el anticuerpo, en el caso de los anticuerpos de baja avidez, se puede realizar f&aacute;cilmente con un agente desnaturalizante como la urea. En este estudio buscamos establecer una curva de madurez de avidez, seg&uacute;n el tiempo de adquisici&oacute;n de la infecci&oacute;n, en sueros con fecha de inicio de s&iacute;ntomas conocidos, para una prueba ELISA IgG casera de avidez para <i>Toxoplasma</i> en el Centro de Investigaciones Biom&eacute;dicas de la Universidad del Quind&iacute;o. De otra parte, buscamos examinar la edad gestacional en la cual se est&aacute; utilizando la prueba y su correlaci&oacute;n con los resultados de esta IgG de avidez con la IgM e IgA anti-<i>Toxoplasma</i>. </p>     <p><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS </b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Dise&ntilde;o: </b>estudio de corte transversal, estandarizaci&oacute;n de prueba diagn&oacute;stica. </p>     <p><b>Poblaci&oacute;n (pacientes y sueros)</b></p>     <p>Utilizamos un primer grupo de sueros de 17 pacientes con fechas conocidas de infecci&oacute;n y s&iacute;ntomas de toxoplasmosis ganglionar(diagnosticados en la consulta especializada del centro de salud de la Universidad del Quind&iacute;o) con el fin de definir una curva de evoluci&oacute;n del porcentaje de avidez de la prueba IgG anti-<i>Toxoplasma</i>. La hip&oacute;tesis de asociaci&oacute;n se realiz&oacute; entre el n&uacute;mero de meses desde la fecha estimada de infecci&oacute;n (por signos y s&iacute;ntomas cl&iacute;nicos obtenidos durante la elaboraci&oacute;n de la historia cl&iacute;nica) y los resultados del porcentaje de avidez de la prueba ELISA para IgG anti <i>Toxoplasma</i>. La prueba de avidez busca determinar el tiempo de evoluci&oacute;n de la infecci&oacute;n y discriminar entre dos grupos de pacientes: aquellos con menos de 4 meses de adquirida la infecci&oacute;n y aquellos con m&aacute;s de 4 meses de adquirida la infecci&oacute;n. </p>     <p>Un segundo grupo analizado fue el de los sueros de 91 pacientes embarazadas atendidas en el programa de control de embarazo de la ciudad de Armenia y Calarc&aacute; (estratos socioecon&oacute;micos seg&uacute;n SISBEN de 1 a 3) y sueros remitidos de Bucaramanga (estratos socioecon&oacute;micos seg&uacute;n SISBEN de 3 a 6) con edad gestacional conocida; con el cual se busc&oacute; determinar a qu&eacute; momento de la gestaci&oacute;n se estaban solicitando las pruebas de avidez. La selecci&oacute;n fue por muestreo secuencial de conveniencia. Se excluyeron los sueros de gestantes en los cuales no se contaba con los datos de las semanas de gestaci&oacute;n. </p>     <p><b>ELISA para IgG </b></p>     <p>Se utiliz&oacute; la t&eacute;cnica <i>HUMAN ELISA TOXO</i> IgG (Alemania). En la primera etapa de incubaci&oacute;n, los anticuerpos anti-<i>Toxoplasma</i> contenidos en la muestra y en el control suministrado en el estuche, se fijaron espec&iacute;ficamente a los ant&iacute;genos inmovilizados. Al final de la incubaci&oacute;n, los componentes excesivos fueron eliminados con soluci&oacute;n de lavado. Se a&ntilde;adi&oacute; posteriormente un conjugado anti IgG (anticuerpo-anti IgG humana, marcado con peroxidasa) que se fij&oacute; espec&iacute;ficamente a los anticuerpos IgG, form&aacute;ndose inmunocomplejos t&iacute;picos. Despu&eacute;s de eliminar el conjugado excesivo con la soluci&oacute;n de lavado, se a&ntilde;adi&oacute; el substrato TMB, el cual forma un color azul que se transforma en amarillo despu&eacute;s de parar la reacci&oacute;n. La intensidad de este color es directamente proporcional a la cantidad d eanticuerpo anti-TOXO IgG en la muestra. La lectura se realiz&oacute; en un lector de ELISA Dynatech (USA) MR5000 a 450 nm y con filtro de referencia a 630 nm. </p>     <p>Los resultados se expresaron en unidades internacionales por mililitro (UI/ml). Los sueros de un mismo paciente se analizaron simult&aacute;neamente y fueron diluidos si anteriormente hab&iacute;an sido mayor o igual a 300 UI/ml (l&iacute;mite de cuantificaci&oacute;n de la prueba). Cuando los sueros presentaron resultados de densidades &oacute;pticas mayores a 3,00 se realiz&oacute; diluci&oacute;n 1:100. </p>     <p><b>ELISA para IgG de avidez </b></p>     <p>Se sigui&oacute; una t&eacute;cnica modificada, descrita por Peyron, et al.<sup>8</sup> Se utiliz&oacute; el estuche comercial de la marca <i>HUMAN ELISA TOXO</i> IgG para la avidez; cada suero se hizo en duplicado. En la primera etapa del lavado uno de los pozos se lav&oacute; 3 veces durante 5 minutos con 300 ml de urea 6 molar por lavado. El otro pozo se lav&oacute; 5 veces durante 30 segundos con tamp&oacute;n de lavado que suministra el estuche. La urea se prepara con la soluci&oacute;n tamp&oacute;n de lavado del estuche. Los resultados se expresaron en porcentaje de avidez<sup>9</sup> as&iacute;: </p>     <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center><img src="img/revistas/rcog/v59n3/a04fig.jpg"></center></p>     <p>Absorbancia despu&eacute;s de lavar con urea % avidez = X 100% Absorbancia despu&eacute;s de lavar con tamp&oacute;n PBS. </p>     <p><b>ELISA para IgM, IgA </b></p>     <p>Para el an&aacute;lisis de los anticuerpos IgM se utiliz&oacute; el estuche comercial de <i>HUMAN</i> (Alemania) y t&eacute;cnica de imnunoensayo enzim&aacute;tico de captura para la determinaci&oacute;n de anticuerpos IgA de <i>DIAPRO</i> (Italia). Los resultados se expresaron en absorbancias (unidades de densidad &oacute;ptica obtenidas al leer las muestras en el espectrofot&oacute;metro). </p>     <p><b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico </b></p>     <p>Los datos y gr&aacute;ficas se organizaron en Excel y el an&aacute;lisis estad&iacute;stico se realiz&oacute; con el programa SPSS versi&oacute;n 14 (SPSS Inc. Chicago, USA). Se prob&oacute; la normalidad de distribuci&oacute;n de los datos con el test de Kolmogorov Smirnov y luego se realiz&oacute; un an&aacute;lisis de correlaci&oacute;n entre los meses de infecci&oacute;n y el porcentaje de avidez. Se calcul&oacute; la sensibilidad y especificidad de diferentes porcentajes de avidez para determinar si la infecci&oacute;n ten&iacute;a menos de 4 meses de adquirida y se realiz&oacute; una curva operador receptor (ROC). Para esta evaluaci&oacute;n no hubo prueba de oro y los verdaderos positivos (pacientes con menos de 4 meses de infecci&oacute;n) y verdaderos negativos (pacientes con m&aacute;s de 4 meses de infecci&oacute;n) fueron establecidos de acuerdo con la fecha de inicio de los s&iacute;ntomas. La edad gestacional se estableci&oacute; de acuerdo con las semanas de amenorrea, el &iacute;ndice de avidez se estableci&oacute; en porcentaje y los valores de IgA e IgM en valores de absorbancia. </p>     <p><b>RESULTADOS </b></p>     <p><b>Establecimiento de punto de corte de acuerdo a curva ROC </b></p>     <p>El grupo I constituido por 17 pacientes con toxoplasmosis ganglionar fue dividido en 2 subgrupos; el primero con 8 pacientes menores a 4 meses de infecci&oacute;n y el segundo con 9 pacientes mayores a 4 meses de infecci&oacute;n. A todos los pacientes se les realiz&oacute; IgG, IgM, IgA e IgG de avidez. En los pacientes con menos de 4 meses de infecci&oacute;n, el t&iacute;tulo de IgG estuvo comprendido entre 98,5 y &gt;300 UI/ml, el &iacute;ndice de absorbancia de IgM entre 0,96 y 3; y el porcentaje de IgG de avidez entre 8,7% a 26,3%. </p>     <p>En los pacientes mayores a 4 meses de infecci&oacute;n, el t&iacute;tulo de IgG estuvo comprendido entre 181,5 y &gt;300 UI/ml, el &iacute;ndice de absorbancia de IgM entre 0,380 y 1,37; y el porcentaje de IgG de avidez entre 24,9% a 75,7%. La mediana del porcentaje de avidez para los pacientes con menos de 4 meses de infecci&oacute;n fue de 21 (rango 8,7-26) y en la de los pacientes con m&aacute;s de 4 meses de infecci&oacute;n fue de 55 (rango 24-75). Como la prueba de Kolmogorov Smirnov mostr&oacute; que los datos de meses de infecci&oacute;n no ten&iacute;an una distribuci&oacute;n param&eacute;trica, se calcul&oacute; el coeficiente de correlaci&oacute;n de Spearman entre la duraci&oacute;n en meses de la infecci&oacute;n y el porcentaje de avidez obtenido por la prueba ELISA para la avidez de IgG anti-<i>Toxoplasma</i>. El porcentaje de correlaci&oacute;n de Spearman fue de 0,87 p = 0,000 (<a href="#Figura1">figura 1</a>). Al realizar la curva ROC con sueros de pacientes colombianos y fechas conocidas de infecci&oacute;n, se encontr&oacute; que teniendo como punto de corte una avidez menor a 30%, se tiene una sensibilidad del 100% (IC95% 100-100) y una especificidad del 88% (IC95% 68-100) para identificar infecciones adquiridas menores a 4 meses (<a href="#Figura2">figura 2</a>). Se compararon varias marcas de urea, s&oacute;lo se obtuvo una buena correlaci&oacute;n de porcentajes de avidez cuando se us&oacute; la de marca Sigma (Ref: U1250). De manera interesante, en estos pacientes con fecha conocida de infecci&oacute;n, la IgM fue positiva en todos hasta el mes 24 y la IgA fue positiva s&oacute;lo en pacientes con menos de 4 meses de infecci&oacute;n, aunque en uno de ellos la prueba fue negativa, es decir que hubo 87% de positividad en infecciones menores de 4 meses para la IgA (<a href="#Figura3">figura 3</a>). </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>    <center><img src="img/revistas/rcog/v59n3/a04f1.jpg"><a name="Figura1"></a></center></p>     <p>    <center><img src="img/revistas/rcog/v59n3/a04f2.jpg"><a name="Figura2"></a></center></p>     <p>    <center><img src="img/revistas/rcog/v59n3/a04f3.jpg"><a name="Figura3"></a></center></p>     <p>En un grupo de sueros de pacientes con resultados positivos para IgG y para los cuales se solicit&oacute; la prueba de avidez, se determin&oacute; si se est&aacute; solicitando la prueba durante el primer trimestre de gestaci&oacute;n, durante el cual los resultados de avidez pueden tener una utilidad cl&iacute;nica importante. Para esto se revisaron los datos de pacientes a quienes se les realiz&oacute; prueba de avidez en el Centro de Investigaciones Biom&eacute;dicas y se analiz&oacute; la relaci&oacute;n entre las semanas de gestaci&oacute;n en las cuales se hicieron la prueba de avidez (<a href="#Figura4">figura 4</a>). Se encontr&oacute; que el 63% ten&iacute;a menos de 16 semanas (4 meses) al momento de la prueba, de ellas 3 tuvieron &iacute;ndices de avidez bajo (&lt;30%). Todas las cuatro pacientes con &iacute;ndices de avidez por debajo de 30% fueron IgM positivas pero ELISA IgA negativas. El &uacute;nico caso en el cual las IgM e IgA fueron positivas tuvo un &iacute;ndice de avidez de 61% a las 12 semanas de gestaci&oacute;n, indicando que la infecci&oacute;n ocurri&oacute; 4 meses antes, es decir fue preconcepcional. </p>     <p>    <center><img src="img/revistas/rcog/v59n3/a04f4.jpg"><a name="Figura4"></a></center></p>     <p><b>DISCUSI&Oacute;N </b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Se observ&oacute; una relaci&oacute;n entre la duraci&oacute;n de la infecci&oacute;n y los porcentajes de avidez en los sueros con fechas conocidas de infecci&oacute;n. En nuestra prueba, un porcentaje de avidez menor a 30% indica infecciones adquiridas hace menos de 4 meses. Esto es un resultado id&eacute;ntico para el punto de corte del estudio de Maekelt, et al.<sup>10</sup> S&oacute;lo encontramos un caso con avidez menor de 30% y evoluci&oacute;n de 8 meses; esto apunta a una avidez baja persistente, fen&oacute;meno ya reportado en la literatura.<sup>8, 11</sup> El resultado de la curva ROC es tambi&eacute;n en todo similar a lo reportado en la literatura para esta prueba.<sup>8</sup> Se confirma la utilidad, como se preconiza en la Gu&iacute;a Nacional para Toxoplasmosis,<sup>12</sup> de realizar la avidez antes de la semana 16, as&iacute; en un caso con IgM e IgA positivas el resultado de la avidez orienta a una infecci&oacute;n preconcepcional con muy bajo riesgo de transmisi&oacute;n. Nuestra curva tambi&eacute;n mostr&oacute; que la prueba ELISA IgA fue positiva s&oacute;lo en infecciones menores de 4 meses y que algunos pacientes no desarrollan IgA en una primoinfecci&oacute;n. Esto muestra que la prueba ELISA IgA es menos sensible pero m&aacute;s espec&iacute;fica y confirma su utilidad y l&iacute;mites para la orientaci&oacute;n diagn&oacute;stica.<sup>13</sup> Igualmente, nuestros resultados ponen en evidencia el hecho de que, si se hacen pruebas de avidez luego de la semana 16, las infecciones adquiridas al inicio de la gestaci&oacute;n pueden no diagnosticarse. En el caso de los sueros analizados en nuestro laboratorio, se observa que la mayor&iacute;a se hacen antes de la semana 16 (63%) lo cual es un indicador positivo, pues se est&aacute; solicitando la prueba tempranamente. </p>     <p>El presente trabajo corrobora la observaci&oacute;n de otros autores de que la prueba de avidez ELISA para IgG anti-<i>Toxoplasma</i> puede ser una valiosa ayuda para distinguir mejor entre una infecci&oacute;n por <i>Toxoplasma</i> reciente (menor de 4 meses) y una cr&oacute;nica. La confirmaci&oacute;n de un diagn&oacute;stico de infecci&oacute;n por <i>Toxoplasma</i> reciente es crucial para la cl&iacute;nica en la toma de decisi&oacute;n terap&eacute;utica precoz, especialmente en embarazadas con primoinfecciones e infecciones cong&eacute;nitas asintom&aacute;ticas. La fortaleza de este estudio es que se utilizaron muestras con fechas conocidas de infecci&oacute;n, las cuales son de dif&iacute;cil obtenci&oacute;n; en nuestro caso se requirieron m&aacute;s de dos a&ntilde;os para obtener este grupo de casos. La debilidad del estudio es el bajo n&uacute;mero de muestras utilizadas, lo cual genera un intervalo de confianza amplio para el valor de sensibilidad obtenido. </p>     <p><b>CONCLUSIONES </b></p>     <p>Un punto de corte de 30% para la prueba ELISA de avidez anti <i>Toxoplasma</i> casera en el Centro de Investigaciones Biom&eacute;dicas de la Universidad del Quind&iacute;o, identifica infecciones de menos de 4 meses de adquirida. </p>     <p><b>REFERENCIAS </b></p>     <!-- ref --><p>1. Nissapatorn V, Lee C, Kia F, Lleong C, Mahmud R, Abdullah KA. Toxoplasmosis in HIV/AIDS patients: a current situation. Jpn J Infect Dis 2004; 57:160-5. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0034-7434200800030000400001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2. Wong SY, Remington JS. Toxoplasmosis in pregnancy. Clin Infect Dis 1994;18:853-62. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0034-7434200800030000400002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3. Montoya JG, Liesenfeld O. Toxoplasmosis. Lancet 2004;363:1965-76. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0034-7434200800030000400003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4. Remington JS, McLeod R, Thulliez P, Desmonts G. Toxoplasmosis. En: Remington JS, Wilson CB, Baker CJ. Klein JO. (eds.) Infectious diseases of the fetus and newborn infant. 6th ed. Philadelphia: WB Saunders; 2006. p. 947-1092. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0034-7434200800030000400004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5. Rosso F, Agudelo A, Isaza A, Montoya JG. Toxoplasmosis cong&eacute;nita: aspectos cl&iacute;nicos y epidemiol&oacute;gicos de la infecci&oacute;n durante el embarazo. Colomb Med 2007;38:316-37. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0034-7434200800030000400005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6. Hedman K, Lappalainen M, Seppala I, M&auml;kel&auml; O. Recent primary toxoplasma infection indicated by a low avidity of specific IgG. J Infect Dis 1989; 159:736-9. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0034-7434200800030000400006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7. Remington J, Thulliez P, Montoya J. Recent developments for diagnosis of toxoplasmosis. J Clin Microbiol 2004;42:941-5. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0034-7434200800030000400007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8. Cozon GJ, Ferrandiz J, Nebhi H, Wallon M, Peyron F. Estimation of the avidity of immunoglobuling for routine diagnosis of chronic <i>Toxoplasma</i><i> gondii </i>infection in pregnant women. J Clin Microbiol Infect Dis 1998;17:32-6. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0034-7434200800030000400008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9. Camargo ME, Silva SM, Leser PG, Granato CH. Avidez de anticorpos IgG espec&iacute;ficos como marcadores de infec&ccedil;&acirc;o primaria recente pelo <i>Toxoplasma gondii</i>. Rev Inst Med Trop Sao Paulo 1991;33:213-8. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0034-7434200800030000400009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10. Maekelt A, Mauriello L, Diaz MP. Evaluaci&oacute;n de la prueba ELISA-Avidez-IgG como inmunodiagn&oacute;stico serol&oacute;gico de la infecci&oacute;n toxoplasm&oacute;sica reciente. RFM 2000;23:149-56. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0034-7434200800030000400010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11. Montoya JG, Huffman HB, Remington JS. Evaluation of the immunoglobulin G avidity test for diagnosis of toxoplasmic lymphadenopathy. J Clin Microbiol 2004;42:4627-31. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0034-7434200800030000400011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12. G&oacute;mez JE, Ruiz B, Silva P, Beltr&aacute;n S, Cort&eacute;s J, Montoya J, et al. Gu&iacute;a de pr&aacute;ctica cl&iacute;nica para toxoplasmosis durante el embarazo y toxoplasmosis cong&eacute;nita en Colombia. Infectio 2007;11:1-13. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0034-7434200800030000400012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13. Montoya MT, G&oacute;mez Mar&iacute;n JE, Loango N, Casta&ntilde;o JC, Marx C, Foudrinier F, et al. Utilidad de dos pruebas serol&oacute;gicas para IgA humana antitoxoplasma como pruebas de referencia para toxoplasmosis materna reciente. Acta Med Colomb 1998;23:275-82. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0034-7434200800030000400013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p><b>Conflicto de intereses:</b> los autores declaran no haber recibido salarios ni beneficios de parte de las empresas distribuidoras o fabricantes de los estuches utilizados en este estudio.</p> </font>      ]]></body><back>
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