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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Comparación de la calidad embrionaria entre fertilización in vitro (FIV) y cultivo intravaginal de ovocitos (INVO) en el Centro Colombiano de Fertilidad y Esterilidad - CECOLFES, Bogotá, Colombia]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Comparing embryo quality between in vitro fertilization (IVF) and intravaginal ovocyte culture (INVO) in the Colombian Centre for Fertility and Sterility - CECOLFES, Bogotá, Colombia]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Objective: Comparing embryo quality and describing implantation, pregnancy and abortion rates regarding in vitro fertilization (IVF) and intravaginal oocyte culture (INVO) techniques. Materials and methods: The study involved historical cohorts of patients undergoing IVF and INVO treatment in the Colombian Fertility and Sterility Centre (Centro Colombiano de Fertilidad y Esterilidad &ndash; Cecolfes) during 2010. It involved 137 aspirated patients, covering four study groups: Group 1 IVF/incubator, Group 2 IVF/INVO, Group 3 ICSI/INVO and Group 4 ICSI/incubator. The patients&rsquo; weight, the number of ovocytes retrieved, mature ovules (M2), implantation rate, pregnancy and abortion rates were measured in each group. The Kruskal-Wallis test was used for statistical analysis; embryo quality was evaluated by multivariate covariance analysis (MANOVA). Results: A significant difference was observed regarding embryo quality between IVF and INVO (p = 0.0388), the INVO technique having higher embryo cleavage rates (µ = 7.35/INVO cf 6.64/ incubator) and lower embryo fragmentation (µ = 4.67/INVO cf 4.59/incubator). INVO groups also had higher percentages concerning their implantation, pregnancy and abortion rates. Conclusion: The INVO technique led to obtaining better quality embryos; implantation, pregnancy and abortion rates were similar to those described for the IVF technique.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2"> <font size="4">    <center><b>Comparaci&oacute;n de la calidad embrionaria entre fertilizaci&oacute;n <i>in vitro </i>(FIV) y cultivo intravaginal de ovocitos (INVO) en el Centro Colombiano de Fertilidad y Esterilidad - CECOLFES, Bogot&aacute;, Colombia</b></center></font>     <p>    <center>    <p>Doris Elena Navarro-Carbonell, BSc, BMr<sup>1</sup>, Carlos Pulido-Torres, MD<sup>2</sup>, &Aacute;ngela Mar&iacute;a Saa-Madri&ntilde;&aacute;n, BSc, BMr<sup>3</sup>, Elkin Lucena-Quevedo MD, BMr<sup>4 </sup></p></center></p>     <p>    <center>    <p>Recibido: noviembre 8/11 &ndash; Aceptado: septiembre 24/12 </p></center></p>     <p><sup>1 </sup>Laboratorio de IVF, Cecolfes, Bogot&aacute;, Colombia. <a href="mailto:navarro.doris@gmail.com">navarro.doris@gmail.com</a> </p>     <p><sup>2 </sup>Ginecolog&iacute;a y Obstetricia. BMR, Cecolfes, Bogot&aacute;, Colombia. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><sup>3 </sup>BSc, BMR. Laboratorio de IVF, Cecolfes, Bogot&aacute;, Colombia. </p>     <p><sup>4 </sup>Centro Colombiano de Fertilidad y Esterilidad (Cecolfes), Bogot&aacute;, Colombia. <a href="mailto:cecolfes@cecolfes.com">cecolfes@cecolfes.com</a></p>     <p><b>RESUMEN </b></p>     <p><b>Objetivo:</b> comparar la calidad embrionaria y describir las tasas de implantaci&oacute;n, embarazo y aborto en las t&eacute;cnicas de fertilizaci&oacute;n <i>in vitro </i>(FIV) y el cultivo intravaginal de ovocitos. </p>     <p><b>Materiales y m&eacute;todos: </b>cohortes hist&oacute;ricas de pacientes con tratamiento de fertilizaci&oacute;n <i>in vitro </i>y el cultivo intravaginal de ovocitos en el Centro Colombiano de Fertilidad y Esterilidad (Cecolfes) durante el a&ntilde;o 2010. Se incluyeron 137 pacientes aspiradas dentro de los cuatro grupos de estudio: Grupo 1, FIV/Incubadora; Grupo 2, FIV/INVO; Grupo 3, ICSI/INVO, y Grupo 4, ICSI/Incubadora. Se midi&oacute; el peso de la paciente, el n&uacute;mero de ovocitos recuperados y &oacute;vulos maduros (MII), la tasa de implantaci&oacute;n y la tasa de embarazo y aborto en cada uno de los grupos. Se realiz&oacute; an&aacute;lisis mediante la prueba de Kruskal-Wallis; la calidad embrionaria fue evaluada con un an&aacute;lisis de covarianza multivariado (MANOVA). </p>     <p><b>Resultados:</b> se observ&oacute; diferencia significativa en la calidad embrionaria entre las dos t&eacute;cnicas FIV e INVO (p = 0,0388). En la t&eacute;cnica INVO se presentaron mayores tasas de divisi&oacute;n embrionaria (&micro; = 7,35/INVO frente a 6,64/Incubadora) y menor fragmentaci&oacute;n (&micro; = 4,67/INVO frente a 4,59/ Incubadora). En cuanto a la tasa de implantaci&oacute;n, embarazo y aborto se obtuvieron m&aacute;s altos porcentajes en los grupos INVO. </p>     <p><b>Conclusi&oacute;n</b>: la t&eacute;cnica INVO se asoci&oacute; a mejor calidad embrionaria. Las tasas de implantaci&oacute;n, embarazo y bajas tasas de aborto son semejantes a las descritas en la t&eacute;cnica FIV. </p>     <p><b>Palabras clave</b>: cultivo intravaginal de ovocitos (INVO), fertilizaci&oacute;n <i>in vitro </i>(FIV), complejo c&uacute;mulus-corona-oocito (CCCO), metafase II (MII). </p> <font size="4">    <center><b>Comparing embryo quality between <i>in vitro </i>fertilization (IVF) and intravaginal ovocyte culture (INVO) in the Colombian Centre for Fertility and Sterility - CECOLFES, Bogot&aacute;, Colombia </b></center></font>     <p><b>ABSTRACT</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Objective:</b> Comparing embryo quality and describing implantation, pregnancy and abortion rates regarding in vitro fertilization (IVF) and intravaginal oocyte culture (INVO) techniques. </p>     <p><b>Materials and methods: </b>The study involved historical cohorts of patients undergoing IVF and INVO treatment in the Colombian Fertility and Sterility Centre (Centro Colombiano de Fertilidad y Esterilidad &ndash; Cecolfes) during 2010. It involved 137 aspirated patients, covering four study groups: Group 1 IVF/incubator, Group 2 IVF/INVO, Group 3 ICSI/INVO and Group 4 ICSI/incubator. The patients&rsquo; weight, the number of ovocytes retrieved, mature ovules (M2), implantation rate, pregnancy and abortion rates were measured in each group. The Kruskal-Wallis test was used for statistical analysis; embryo quality was evaluated by multivariate covariance analysis (MANOVA). </p>     <p><b>Results: </b>A significant difference was observed regarding embryo quality between IVF and INVO (p = 0.0388), the INVO technique having higher embryo cleavage rates (&micro; = 7.35/INVO cf 6.64/ incubator) and lower embryo fragmentation (&micro; = 4.67/INVO cf 4.59/incubator). INVO groups also had higher percentages concerning their implantation, pregnancy and abortion rates. </p>     <p><b>Conclusion:</b> The INVO technique led to obtaining better quality embryos; implantation, pregnancy and abortion rates were similar to those described for the IVF technique. </p>     <p><b>Key words: </b>Intravaginal oocyte culture (INVO), in vitro fertilization (IVF), cumulus-corona oocyte complex (CCOC), metaphase II (MII). </p>     <p><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></p>     <p>La fertilizaci&oacute;n <i>in vitro </i>(FIV) se ha consolidado y practicado alrededor del mundo como tratamiento en parejas con problemas para concebir; actualmente, cerca de dos millones de ni&ntilde;os nacen como resultado de estos tratamientos (1). No obstante, existe una serie de preocupaciones como la tendencia a utilizar condiciones de tratamiento fisiol&oacute;gicas y bajar la tasa de embarazos m&uacute;ltiples mediante la transferencia de un solo embri&oacute;n de buena calidad y buen potencial implantatorio (2-4). Por esta raz&oacute;n, en la actualidad parte de la investigaci&oacute;n est&aacute; dirigida a buscar t&eacute;cnicas para fortalecer la clasificaci&oacute;n morfol&oacute;gica de los embriones con el fin de poder transferir un embri&oacute;n con buen potencial de implantaci&oacute;n (5-7), mejorar las condiciones de cultivo y reducir los costos (2-4). Trabajos como los realizados por Blockeel <i>et al</i>. (8) y Frydman y Ranoux (9) buscan la aplicaci&oacute;n de nuevas tecnolog&iacute;as que acerquen las condiciones de cultivo embrionario <i>in vitro </i>a las que se dan <i>in vivo</i>, con lo que, aseguran, se pueden obtener embriones de buena calidad para la transferencia embrionaria (TE) (8, 9). Ellos proponen la generaci&oacute;n de un medioambiente de cultivo natural eliminando las incubadoras empleadas en FIV donde las condiciones ambientales son sub&oacute;ptimas para los gametos y el embri&oacute;n en desarrollo (5); se sabe que la calidad embrionaria se ve influenciada por los factores intr&iacute;nsecos (calidad de los gametos) y extr&iacute;nsecos (condiciones <i>in vitro</i>), los cuales pueden producir da&ntilde;os en los embriones a nivel celular, metab&oacute;licos y moleculares afectando la calidad y viabilidad del embri&oacute;n junto con las tasa de embarazo (5, 10). </p>      <p>La t&eacute;cnica INVO (cultivo intravaginal de ovocitos) permite la inseminaci&oacute;n y el cultivo del embri&oacute;n utilizando un dispositivo que aprovecha las condiciones fisiol&oacute;gicas de la vagina para proveer la temperatura y el CO<Sub>2 </Sub>requerido para el desarrollo del embri&oacute;n, generando un medioambiente de cultivo natural sin necesidad de una incubadora (9). Este estudio tiene como objetivo comparar la calidad embrionaria entre las dos t&eacute;cnicas: la FIV cl&aacute;sica (Incubadora) e INVO, y adem&aacute;s describir tasas de implantaci&oacute;n, embarazo y aborto en cada una de ellas. </p>      <p><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS </b></p>     <p>Estudio de cohorte retrospectivo donde se incluyeron parejas a las cuales se les realiz&oacute; tratamiento con FIV o INVO en el Centro Colombiano de Fertilidad y Esterilidad (Cecolfes) entre enero-diciembre del 2010. Cecolfes es un centro privado de tratamientos para la reproducci&oacute;n humana asistida ubicado en Bogot&aacute;, Colombia. Este estudio fue aprobado por el comit&eacute; de &eacute;tica de Cecolfes y se cont&oacute; con los consentimientos informados de las pacientes. </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Todas las pacientes sometidas a aspiraci&oacute;n folicular fueron tenidas en cuenta y asignadas a un grupo de estudio seg&uacute;n criterio m&eacute;dico: Grupo 1, FIV/Incubadora; Grupo 2, FIV/INVO; Grupo 3, ICSI/INVO, y Grupo 4, inyecci&oacute;n intracitoplasm&aacute;tica de espermatozoides (ICSI)/Incubadora. Estas fueron sometidas a un protocolo de est&iacute;mulo suave MILD con citrato de clomiceno (CC) (OMIFIN&reg; 50-100 mg/d&iacute;a) y hormona fol&iacute;culo-estimulante (FSH) (Fostimon&reg; 75-150 mg/d&iacute;a) hasta obtener fol&iacute;culos de 14-16 mm, momento donde se bloque&oacute; la paciente con acetamicina (Baydol&reg;) 180 mg/d&iacute;a; se aplicaron 10000 UI de gonadotrofina cori&oacute;nica humana (hCG), y 36 horas despu&eacute;s se realiz&oacute; la aspiraci&oacute;n folicular. </p>      <p>La t&eacute;cnica de capacitaci&oacute;n esperm&aacute;tica fue <i>Swimm up</i> con medio IVF de VitroLife; se utilizaron 35.000 espermatozoides (spz) para la inseminaci&oacute;n (incubadora o INVO). Se utiliz&oacute; G2 PLUS&reg; versi&oacute;n 5 de VitroLife como medio de cultivo hasta las 72 horas, en los casos de FIV solo se inseminaron ovocitos grado 1, y para el ICSI ovocitos en metafase II (MII), estos fueron colocados en el INVOcell&reg; e inmediatamente despu&eacute;s el dispositivo fue introducido en la cavidad vaginal; todos los cultivos (en el INVO o en incubadora) se realizaron hasta las 72 h. La clasificaci&oacute;n morfol&oacute;gica de los embriones se hizo teniendo en cuenta n&uacute;mero, forma de las blast&oacute;meras y grado de fragmentaci&oacute;n (5, 11). La transferencia embrionaria (TE) se realiz&oacute; bajo gu&iacute;a ecogr&aacute;fica abdominal con un ec&oacute;grafo Hitachi (EUB-405) y cat&eacute;ter de transferencia blando (<i>ultra soft frydman set echo&reg;, </i>Laboratorie CCD, Par&iacute;s, Francia), la fase l&uacute;tea de las pacientes fue soportada con 4 mg de valerianato de estradiol (Shering Colombiana, S.A) y 600 mg/d&iacute;a de progesterona microrrizada (Ultrogestan, Besins International<i>&reg;</i>) desde el d&iacute;a de la aspiraci&oacute;n hasta la prueba de embarazo, 12 d&iacute;as postransferencia (&beta;-hCG cuantitativa). </p>      <p>Se evaluaron las siguientes variables: tasa de implantaci&oacute;n (TS = N&deg; sacos gestacionales/N&deg; embriones transferidos X 100), embarazo (TEm = N&deg; transferencias/N&deg; sacos gestacionales X 100) y aborto (TA = N&deg; sacos gestacionales observados/ N&deg; sacos perdidos X 100). </p>     <p><b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</b>: se utiliza estad&iacute;stica descriptiva para tasa de implantaci&oacute;n, tasa de embarazo y tasa de aborto. Las variables de peso corporal de las pacientes, ovocitos recuperados por aspiraci&oacute;n y ovocitos en MII se analizaron por test de Kruskal-Wallis ya que los datos no ten&iacute;an una distribuci&oacute;n normal. La calidad de los embriones fue evaluada mediante un an&aacute;lisis de covarianza multivariado (MANOVA) con dos variables de clasificaci&oacute;n F1, m&eacute;todo de fertilizaci&oacute;n (inseminaci&oacute;n &ndash; ICSI) y F2, forma de incubaci&oacute;n (INVO-incubadora); la variable dependiente fue la calidad embrionaria teniendo en cuenta que para el programa el n&uacute;mero m&aacute;s alto <i>(5) </i>se le asign&oacute; a los embriones grado I, 4 a los embriones grado II, 3 a los grado III, y as&iacute; sucesivamente; las edades de los pacientes (hombres, mujeres) fueron las <i>covariables</i>, todas las pruebas se realizaron teniendo un valor p &lt; 0,05. </p>     <p><b>RESULTADOS</b></p>     <p>Durante el periodo de estudio se realizaron 137 ciclos; nueve de estas pacientes fueron asignadas al grupo 1 (FIV/Incubadora), 46 al grupo 2 (FIV/INVO), 47 al grupo 3 (ICSI/INVO) y 37 al grupo 4 (ICSI/Incubadora). El promedio de edad de las pacientes fue de 35,3 a&ntilde;os y la de los hombres fue 38,2 a&ntilde;os; en el an&aacute;lisis de varianza (MANOVA) no se encontraron diferencias significativas para estos par&aacute;metros entre los grupos de estudio (<a href="/img/revistas/rcog/v63n3/v63n3a05t1.jpg" target="_blank">tabla 1</a>). El n&uacute;mero de ovocitos recuperados por paciente, n&uacute;mero de &oacute;vulos en MII y peso corporal, no mostraron diferencias significativas entre los grupos (<a href="/img/revistas/rcog/v63n3/v63n3a05t1.jpg" target="_blank">tabla 1</a>).</p>     <p>Un total de 395 embriones fueron clasificados y se transfirieron 315 (79,7%) en 132 transferencias con un promedio de 2,3 embriones por paciente; 82,2% (325/395) de los embriones tuvieron un desarrollo adecuado (&ge; 6 c&eacute;lulas) y se consideraron aptos para TE; solo 17,73% (70/395) presentaron un desarrollo bajo (2-4 c&eacute;lulas) con una prevalencia en el grupo 1 (36%, 9/25) (<a href="#Tabla2">tabla 2</a>). Las mejores tasas de desarrollo se presentaron en los grupos INVO –el 54,71% (178/325) de los embriones–, quedando el 27,56% (147/325) representados por los grupos de incubadora. Al comparar las dos t&eacute;cnicas de incubaci&oacute;n (incubadora frente a INVO) por medio de MANOVA, se observ&oacute; diferencia significativa en la calidad embrionaria entre las dos t&eacute;cnicas FIV e INVO (p = 0,0388). En la t&eacute;cnica INVO se presentaron mayores tasas de divisi&oacute;n embrionaria (&micro;  = 7,35/ INVO frente a 6,64/Incubadora) y menor fragmentaci&oacute;n (&micro;  = 4,67/INVO frente a 4,59/Incubadora). En cuanto al porcentaje de fragmentaci&oacute;n, forma y tama&ntilde;o de las blast&oacute;meras, el 72,4% (286/395) de los embriones se clasificaron como grado I, el 21,7% grado II, los embriones grado III y IV se presentaron con una prevalencia baja, 4,8 y 1,1% respectivamente; no se observaron embriones grado V. En todos los grupos se observ&oacute; una gran incidencia de embriones grado I siendo estos los m&aacute;s favorecidos para la transferencia embrionaria (<a href="#Tabla3">tabla 3</a>). El an&aacute;lisis de varianza MANOVA mostr&oacute; que no hubo diferencias en cuanto a la calidad de los gametos obtenida con relaci&oacute;n al uso FIV o Icsi (p = 0,0990). En cuanto a las covariables (edad de los pacientes) tampoco se observ&oacute; diferencia significativa entre los cuatro grupos de estudio (tabla 1). La tasa de embarazo fue de 32,5% (43/132) con el 23,2% (10/43) de embarazo m&uacute;ltiple. El 17,1% (54/315) fue la tasa de implantaci&oacute;n, siendo mayores los porcentajes en los grupos INVO (<a href="#Tabla4">tabla 4</a>). Por &uacute;ltimo, la tasa de aborto fue 14,1% (8/54) hallando los porcentajes m&aacute;s altos en los grupos de incubadora (<a href="#Tabla4">tabla 4</a>).</p>     <p>    <center><a name="Tabla2"></a><img src="/img/revistas/rcog/v63n3/v63n3a05t2.jpg"></center></p>     <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center><a name="Tabla3"></a><img src="/img/revistas/rcog/v63n3/v63n3a05t3.jpg"></center></p>     <p>    <center><a name="Tabla4"></a><img src="/img/revistas/rcog/v63n3/v63n3a05t4.jpg"></center></p>     <p><b>DISCUSI&Oacute;N</b></p> </font>    <p><font size="2" face="verdana">En este estudio se observ&oacute; una clara diferencia en   la calidad embrionaria entre las metodolog&iacute;as FIV e   INVO, siendo m&aacute;s eficiente esta &uacute;ltima, lo cual apoya   los trabajos donde se dice que el medioambiente en   el cual se pone el ovocito y se desarrollan posteriormente   los embriones tiene una gran influencia;   asimismo, niveles de pH, presi&oacute;n de ox&iacute;geno (pO2)   y presi&oacute;n del CO2 (pCO2) influyen en la calidad y   el desarrollo de los embriones (12). En este trabajo   se evidenci&oacute; c&oacute;mo los embriones cultivados en concentraciones   bajas de ox&iacute;geno (INVO) mostraron una   mejor&iacute;a en cuanto a sus par&aacute;metros morfol&oacute;gicos.   En este trabajo se evidenci&oacute; que los embriones cultivados   en concentraciones bajas de ox&iacute;geno (INVO)   mostraron una mejor&iacute;a en cuanto a sus par&aacute;metros   morfol&oacute;gicos, potencial de implantaci&oacute;n, embarazo   y bajas tasas de aborto. La tasa de implantaci&oacute;n es   menos del 20% por ciclo de FIV y de 10-15% en   embriones de d&iacute;a 3 (13). En el caso del grupo FIV/   Incubadora la paciente ten&iacute;a 43 a&ntilde;os, edad en la que   la probabilidad de un aborto es muy alta, pues se ha   descrito que en el primer trimestre de embarazo   un total del 10-15% de los embarazos reconocidos   cl&iacute;nicamente finalizan en un aborto (14).   </font></p>     <p><font size="2" face="verdana">El cultivo embrionario se efect&uacute;a en una incubadora     con concentraciones altas de ox&iacute;geno (20%)     exponiendo a los embriones a especies reactivas de ox&iacute;geno (ROS), lo que trae como consecuencia la detenci&oacute;n de su desarrollo y la inducci&oacute;n a la apoptosis (15). El ROS causa estr&eacute;s oxidativo, el cual desequilibra los mecanismos antioxidantes de la c&eacute;lula (16) mediante la acumulaci&oacute;n de este originada por la cadena respiratoria mitocondrial, causando da&ntilde;o en el ADN, aumento del citocromo C (17), da&ntilde;o en los tel&oacute;meros (2) y sulfoxidaci&oacute;n de las prote&iacute;nas (18). Las alteraciones en el medioambiente del embri&oacute;n en desarrollo ocurren <i>in vitro</i>, modificando la activaci&oacute;n o inactivaci&oacute;n de factores de transcripci&oacute;n que generan consecuencias en el desarrollo de la descendencia; la FIV se aleja de las condiciones <i>in vivo</i> sobre todo por las concentraciones de O<Sub>2</Sub> empleadas para el cultivo de los embriones (19), varios m&eacute;todos se han probado con el fin de eliminar el ROS <i>in vitro</i>, como por ejemplo, el cultivo en bajas concentraciones de O<Sub>2</Sub>, adici&oacute;n de antioxidantes y nuevas t&eacute;cnicas de cultivo que simulen las condiciones <i>in vitro</i> a las <i>in vivo </i>(8). La metodolog&iacute;a INVO presenta una gran ventaja en cuanto a las condiciones medioambientales (naturales) ya que reduce la concentraci&oacute;n de ox&iacute;geno (7-5%) (20) en el cultivo e indirectamente puede disminuir los posibles da&ntilde;os ocasionados por la acumulaci&oacute;n de ROS. </font></p> <font face="verdana" size="2">    <p>Una limitaci&oacute;n del cultivo intravaginal ser&iacute;a la incapacidad de controlar o ajustar los niveles de gas, sin embargo, nuestros resultados sugieren que el INVOcell es capaz de mantener una estabilidad ambiental comparable a la lograda con los gases empleados en las incubadoras (21). El procedimiento INVO se ha utilizado en todo el mundo y los resultados de ciclos realizados por los centros de pa&iacute;ses como Francia, Alemania, Pa&iacute;ses Bajos, Inglaterra, EE.UU. y Jap&oacute;n se han publicado ya que los obtenidos con el INVOcell pueden ser comparados con los obtenidos mediante las t&eacute;cnicas cl&aacute;sicas de FIV, con la ventaja que con el INVO hay un beneficio psicol&oacute;gico que se crea al involucrar los pacientes en el proceso de fertilizaci&oacute;n y el desarrollo embrionario temprano, lo que genera un alto nivel de aceptaci&oacute;n del procedimiento (21). </p>      <p><b>CONCLUSI&Oacute;N</b></p>      <p>El cultivo de embriones mediante la t&eacute;cnica INVO mejora la calidad embrionaria. Esta t&eacute;cnica puede ser una buena opci&oacute;n para el tratamiento de parejas con problemas para concebir. </p>      <p><b>REFERENCIAS</b></p>         ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>1. Conard J, Plu-Bureau G, Horellou MH, Samama MM, Gompel A. Thrombosis and assisted reproductive techniques (ART). J Mal Vasc 2011;36:145-54.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000053&pid=S0034-7434201200030000500001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->            </p>          <!-- ref --><p>2. Betts D, Madan P. Permanent embryo arrest: molecular and cellular concepts. Mol Hum Reprod 2008;14:8:445-453.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000055&pid=S0034-7434201200030000500002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->          </p>            <!-- ref --><p>3. Brezinova J, Oborna I, Svobodova M, Fingerova, H. Evaluation of day one embryo quality and IVF outcome - a comparison of two scoring systems. RB &amp; E 2009;7:9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000057&pid=S0034-7434201200030000500003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>         <!-- ref --><p>4. Favetta L, Madan P. Mastromonaco, G, St John EJ, King WA, Betts DH. The oxidative stress adaptor p66Shc is required for permanent embryo arrest in vitro. BMC Developmental Biology 2007;7:132.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000059&pid=S0034-7434201200030000500004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->          </p>         <!-- ref --><p>5. Ragione T, Verheyen G, Papanikolaou E, van Landuyt L, Devroey P, van Steirteghem A. Developmental stage on day-5 and fragmentation rate on day-3 can influence the implantation potential of top-quality blastocysts in IVF cycles with single embryo transfer. RB &amp; E 2007;5:2.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000061&pid=S0034-7434201200030000500005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->          </p>         ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>6. Qian YL, Ye YH, Xu CM, Jin F, Huang HF. Accuracy of a combined score of zygote and embryo morphology for selecting the best embryos for IVF. J Zhejiang U Sci B 2008;9:649-55.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000063&pid=S0034-7434201200030000500006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->          </p>         <!-- ref --><p>7. Paternot G, Devroe J, Debrock S, D'Hooghe TM, Spiessens C. Intra-and Inter-observer analysis in the morphological assessment of early-stage embryos. Reprod Biol Endocrinol 2009;7:105.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S0034-7434201200030000500007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->          </p>         <!-- ref --><p>8. Blockeel C, Mock P, Verheyen G, Bouche N, Le Goff P, Heyman Y, et al. An in vivo culture system for human embryos using an encapsulation technology a pilot study. Hum Reprod 2009;24:790-6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0034-7434201200030000500008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->          </p>         <!-- ref --><p>9. Frydman R, Ranoux C. INVO: a simple, low cost effective assisted reproductive technology. ESHRE Monogr 2008;1:85-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0034-7434201200030000500009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>         <!-- ref --><p>10. Leese HJ, Baumann CG, Brison DR, McEvoy TG, Sturmey RG. Metabolism of the viable mammalian embryo: quietness revisited. Mol Hum Reprod 2008;14: 667-72.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0034-7434201200030000500010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>         ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>11. Veeck L. An atlas of human gametes and conceptuses.   New York: Parthenon Publishing Group; 1999.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0034-7434201200030000500011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>         <!-- ref --><p>12. Fukuda M, Fukuda K, Ranoux C. Unexpected low   oxygen tension of intravaginal culture. Hum Reprod   1996;6:1293-5.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0034-7434201200030000500012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>         <!-- ref --><p>13. Kushnir V, Frattarelli J. Aneuploidy in abortuses   following IVF and ICSI. J Assist Reprod Genet   2009;26(2-3):93-7.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0034-7434201200030000500013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>         <!-- ref --><p>14. Mohamad M, Fischer- Hammadeh C, Ali K. Assisted     hatching in assisted reproduction: a state of the art.     Assist Reprod Genet 2010;28:119-28.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0034-7434201200030000500014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>         <!-- ref --><p>15. Bain NT, Madan P, Betts DH. The early embryo   response to intracellular reactive oxygen species   is developmentally regulated. Reprod Fertil Dev   2011;23:561-75.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0034-7434201200030000500015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>         ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>16. Agarwal A, Saleh RA, Bedaiwy MA. Role of reactive   oxygen species in the pathophysiology of human   reproduction. Fertil Steril 2003;79:829-43.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0034-7434201200030000500016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>         <!-- ref --><p>17. Gertz M, Fischer F, Leipelt M, Worlters D, Steegborn   C. Identification of peroxiredoxin 1 as a novel interaction   partner for the lifespan regulator protein p 66   Shc. Aging (Albany NY) 2009;1:254-65.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0034-7434201200030000500017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>         <!-- ref --><p>18. Fujii J, Iuchi Y, Okada F. Fundamental roles of reactive   oxygen species and protective mechanisms in the   female reproductive system. Reprod Biol Endocrinol   2005;3:43.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0034-7434201200030000500018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>         <!-- ref --><p>19. Harvey A. The role of oxygen in ruminant preimplantation   embryo development and metabolism. Anim   Reprod Sci 2007;98:113-28.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0034-7434201200030000500019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>         <!-- ref --><p>20. Urbina M. Fertilidad y reproducci&oacute;n asistida. Caracas:   Panamericana; 2008.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0034-7434201200030000500020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>         ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>21. Lucena E, Saa A, Navarro D, Pulido C, Lombana O,     Moran A. INVO Procedure: minimally invasive IVF as     an alternative treatment option for Infertile couples.     Scientific World Journal 2012;2012:571-96.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0034-7434201200030000500021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->    </p>         <p><b>Conflicto de intereses:</b> ninguno declarado. </p> </font>      ]]></body><back>
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