<?xml version="1.0" encoding="ISO-8859-1"?><article xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance">
<front>
<journal-meta>
<journal-id>0120-0011</journal-id>
<journal-title><![CDATA[Revista de la Facultad de Medicina]]></journal-title>
<abbrev-journal-title><![CDATA[rev.fac.med.]]></abbrev-journal-title>
<issn>0120-0011</issn>
<publisher>
<publisher-name><![CDATA[Universidad Nacional de Colombia]]></publisher-name>
</publisher>
</journal-meta>
<article-meta>
<article-id>S0120-00112008000100003</article-id>
<title-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[DETERMINACIÓN DE LA SUSCEPTIBILIDAD A DROGAS DE PRIMERA LÍNEA EN AISLAMIENTOS DE MYCOBACTERIUM TUBERCULOSIS POR LA TÉCNICA DEL TUBO INDICADOR DE CRECIMIENTO MICOBACTERIANO]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Determining the susceptibility to first-line drugs in M. tuberculosis isolates using the mycobacteria growth indicator tube method]]></article-title>
</title-group>
<contrib-group>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Sierra Parada]]></surname>
<given-names><![CDATA[Claudia Rocío]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A01"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Sánchez Morales]]></surname>
<given-names><![CDATA[Edgar Alberto]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A02"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Henao Riveros]]></surname>
<given-names><![CDATA[Sandra Consuelo]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A03"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Saavedra Rodríguez]]></surname>
<given-names><![CDATA[Alfredo]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A04"/>
</contrib>
</contrib-group>
<aff id="A01">
<institution><![CDATA[,Universidad Colegio Mayor de Cundinamarca  ]]></institution>
<addr-line><![CDATA[ ]]></addr-line>
</aff>
<aff id="A02">
<institution><![CDATA[,Universidad Nacional de Colombia Facultad de Medicina ]]></institution>
<addr-line><![CDATA[Bogotá ]]></addr-line>
</aff>
<aff id="A03">
<institution><![CDATA[,Universidad Nacional de Colombia Facultad de Medicina ]]></institution>
<addr-line><![CDATA[Bogotá ]]></addr-line>
</aff>
<aff id="A04">
<institution><![CDATA[,Universidad Nacional de Colombia Facultad de Medicina ]]></institution>
<addr-line><![CDATA[Bogotá ]]></addr-line>
</aff>
<pub-date pub-type="pub">
<day>00</day>
<month>03</month>
<year>2008</year>
</pub-date>
<pub-date pub-type="epub">
<day>00</day>
<month>03</month>
<year>2008</year>
</pub-date>
<volume>56</volume>
<numero>1</numero>
<fpage>11</fpage>
<lpage>20</lpage>
<copyright-statement/>
<copyright-year/>
<self-uri xlink:href="http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_arttext&amp;pid=S0120-00112008000100003&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_abstract&amp;pid=S0120-00112008000100003&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_pdf&amp;pid=S0120-00112008000100003&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[Antecedentes. La aparición de aislamientos de Mycobacterium tuberculosis resistentes a los medicamentos ha hecho que se busquen métodos más rápidos y confiables para la determinación de la susceptibilidad a las drogas antituberculosas. Objetivo. Determinación de la susceptibilidad a drogas antituberculosas de primera línea en aislamientos de M. tuberculosis utilizando el método del tubo indicador de crecimiento micobacteriano (MGIT). Material y métodos. Se estudiaron 49 aislamientos de M. tuberculosis procedentes del laboratorio de micobacteriología del departamento de Microbiología de la Universidad Nacional de Colombia. Se evaluó y comparó el método MGIT para la determinación de la resistencia o susceptibilidad a rifampicina, isoniacida, etambutol y estreptomicina con la prueba de oro, el método de las proporciones múltiples (PM). Resultados. Por el método de las PM de los 49 aislamientos, 26 (53.0%) fueron sensibles a los cuatro antibióticos, 12 (24.5%) resistentes a un antibiótico y 11 (22.5%) a más de un antibiótico. Por el método MGIT de los 49 aislamientos, 31 (63.3%) fueron sensibles a los cuatro antibióticos, ocho (16.3%) resistentes a un antibiótico y 10 (20.6 %) resistentes a más de un antibiótico. Los porcentajes de concordancia observada oscilaron entre 83.7 y 97.9% y el índice kappa estuvo entre 0.61 y 0.83 para los diferentes antibióticos analizados. La sensibilidad del método MGIT a rifampicina, isoniacida, etambutol y estreptomicina fue de 88.9, 95.2, 62.5 y 58 por ciento respectivamente y la especificidad fue 97.7, 92.3, 98.8 y 98.4 por ciento respectivamente. Por el método MGIT se aislaron cepas resistentes de M. tuberculosis en un tiempo promedio de 7.85 días. Conclusiones. El método MGIT permite la obtención de resultados confiables principalmente a isoniacida y rifampicina que son los antibióticos que determinan la multirresistencia del M. tuberculosis y en menor medida para estreptomicina y etambutol.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Background. The appearance of Mycobacterium tuberculosis isolates resistant to drugs has triggered the search for quicker and more reliable methods to determine the susceptibility to anti-tuberculosis drugs. Objective. To evaluate the susceptibility of M. tuberculosis isolates to anti-tuberculosis first line drugs by Mycobacterium growth indicator tube method (MGIT). Materials and methods. Forty-nine isolates of M. tuberculosis were tested, coming from the Mycobacteriology Laboratory of Microbiology Department of the Universidad Nacional de Colombia. The MGIT method was evaluated and compared in order to determine resistance or susceptibility to rifampicin, isoniazid, ethambutol and streptomycin with the gold standard method, the multiple proportion method (PM). Results. With the PM method, of 49 isolates, 26 (53.0%) were sensitive to all four antibiotics, 12 (24.5%) were resistant to one antibiotic and 11 (22.5%) to more than one antibiotic. Using the MGIT method, of 49 isolates, 31 (63.3%) were sensitive to all four antibiotics, 8 (16.3%) were resistant to one antibiotic and 10 (20.6%) were resistant to more than one antibiotic. The concordance percentages observed oscillated between 83.7% and 97.9% and the kappa index was between 0.61 and 0.83 for the different antibiotics analyzed. The sensitivity of the MGIT method to the rifampicin, isoniazid, ethambutol and streptomycin was of 88.9, 95.2, 62.5 and 58% respectively and specifity was of 97.7, 92.3, 98.8 y 98.4% respectively. Using the MGIT method, isolates resistant to M. tuberculosis were determined in an average time of 7.85 days. Conclusions. The MGIT method permits obtaining reliable results in less time than conventional methods with isoniazid and rifampicin which are the antibiotics that determine the multi-resistance of M tuberculosis and to a lesser degree to streptomycin and ethambutol.]]></p></abstract>
<kwd-group>
<kwd lng="es"><![CDATA[tuberculosis]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[MGIT]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[resistencia bacteriana a drogas]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[susceptibilidad]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[tuberculosis]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[MGIT]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[drug resistance]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[susceptibility]]></kwd>
</kwd-group>
</article-meta>
</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">      <p align="right"><b>INVESTIGACI&Oacute;N ORIGINAL</b></p>     <p align="center"><font size="4"><b>DETERMINACI&Oacute;N DE LA SUSCEPTIBILIDAD    A DROGAS DE PRIMERA L&Iacute;NEA EN AISLAMIENTOS DE MYCOBACTERIUM TUBERCULOSIS    POR LA T&Eacute;CNICA DEL TUBO INDICADOR DE CRECIMIENTO MICOBACTERIANO</b></font></p>     <p align="center"><font size="3"><b>Determining the susceptibility to first-line    drugs in M. tuberculosis isolates using the mycobacteria growth indicator tube method</b></font></p>     <p>Claudia Roc&iacute;o Sierra Parada<sup>1</sup>, Edgar Alberto S&aacute;nchez Morales<sup>2</sup>,  Sandra Consuelo Henao Riveros<sup>3</sup>, Alfredo Saavedra Rodr&iacute;guez<sup>4</sup></p>     <p>1. Profesora C&aacute;tedra, Bacteri&oacute;loga, Universidad Colegio Mayor    de Cundinamarca    <br>   2. Profesor Asistente, Especialista Medicina Interna -Neumolog&iacute;a, Facultad    de Medicina, Universidad Nacional de Colombia, Bogot&aacute;.    <br>   3. Profesora Asistente, Bacteri&oacute;loga, Mag&iacute;ster en Microbiolog&iacute;a,    Facultad de Medicina, Universidad Nacional de Colombia, Bogot&aacute;.    <br>   4. Profesor Asociado, Especialista Medicina Interna -Neumolog&iacute;a, Facultad    de Medicina, Universidad Nacional de Colombia, Bogot&aacute;.</p>     <p>Correspondencia: <a href="mailto:easanchezm@unal.edu.co">easanchezm@unal.edu.co</a></p> <hr size="1">     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Resumen</b></p>     <p><b>Antecedentes.</b> La aparici&oacute;n de aislamientos de Mycobacterium tuberculosis    resistentes a los medicamentos ha hecho que se busquen m&eacute;todos m&aacute;s    r&aacute;pidos y confiables para la determinaci&oacute;n de la susceptibilidad    a las drogas antituberculosas.     <br>   <b>Objetivo.</b> Determinaci&oacute;n de la susceptibilidad a drogas antituberculosas    de primera l&iacute;nea en aislamientos de M. tuberculosis utilizando el m&eacute;todo    del tubo indicador de crecimiento micobacteriano (MGIT).    <br>   <b>Material y m&eacute;todos.</b> Se estudiaron 49 aislamientos de M. tuberculosis    procedentes del laboratorio de micobacteriolog&iacute;a del departamento    de Microbiolog&iacute;a de la Universidad Nacional de Colombia. Se evalu&oacute;    y compar&oacute; el m&eacute;todo MGIT para la determinaci&oacute;n de la resistencia    o susceptibilidad a rifampicina, isoniacida, etambutol y estreptomicina con    la prueba de oro, el m&eacute;todo de las proporciones m&uacute;ltiples (PM).    <br>   <b>Resultados.</b> Por el m&eacute;todo de las PM de los 49 aislamientos, 26    (53.0%) fueron sensibles a los cuatro antibi&oacute;ticos, 12 (24.5%) resistentes    a un antibi&oacute;tico y 11 (22.5%) a m&aacute;s de un antibi&oacute;tico.    Por el m&eacute;todo MGIT de los 49 aislamientos, 31 (63.3%) fueron sensibles    a los cuatro antibi&oacute;ticos, ocho (16.3%) resistentes a un antibi&oacute;tico    y 10 (20.6 %) resistentes a m&aacute;s de un antibi&oacute;tico. Los porcentajes    de concordancia observada oscilaron entre 83.7 y 97.9% y el &iacute;ndice kappa    estuvo entre 0.61 y 0.83 para los diferentes antibi&oacute;ticos analizados.    La sensibilidad del m&eacute;todo MGIT a rifampicina, isoniacida, etambutol    y estreptomicina fue de 88.9, 95.2, 62.5 y 58 por ciento respectivamente y la    especificidad fue 97.7, 92.3, 98.8 y 98.4 por ciento respectivamente. Por el    m&eacute;todo MGIT se aislaron cepas resistentes de M. tuberculosis en un tiempo    promedio de 7.85 d&iacute;as.    <br>   <b>Conclusiones.</b> El m&eacute;todo MGIT permite la obtenci&oacute;n de resultados    confiables principalmente a isoniacida y rifampicina que son los antibi&oacute;ticos    que determinan la multirresistencia del M. tuberculosis y en menor medida para    estreptomicina y etambutol.</p>     <p><b>Palabras clave:</b> tuberculosis, MGIT, resistencia bacteriana a drogas,    susceptibilidad.</p> <hr size="1">     <p><b>Summary</b></p>     <p><b>Background.</b> The appearance of Mycobacterium tuberculosis isolates resistant    to drugs has triggered the search for quicker and more reliable methods to determine    the susceptibility to anti-tuberculosis drugs.     <br>   <b>Objective.</b> To evaluate the susceptibility of M. tuberculosis isolates    to anti-tuberculosis first line drugs by Mycobacterium growth indicator tube    method (MGIT).    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   <b>Materials and methods.</b> Forty-nine isolates of M. tuberculosis were tested,    coming from the Mycobacteriology Laboratory of Microbiology Department    of the Universidad Nacional de Colombia. The MGIT method was evaluated and compared    in order to determine resistance or susceptibility to rifampicin, isoniazid,    ethambutol and streptomycin with the gold standard method, the multiple proportion    method (PM).    <br>   <b>Results.</b> With the PM method, of 49 isolates, 26 (53.0%) were sensitive    to all four antibiotics, 12 (24.5%) were resistant to one antibiotic and 11    (22.5%) to more than one antibiotic. Using the MGIT method, of 49 isolates,    31 (63.3%) were sensitive to all four antibiotics, 8 (16.3%) were resistant    to one antibiotic and 10 (20.6%) were resistant to more than one antibiotic.    The concordance percentages observed oscillated between 83.7% and 97.9% and    the kappa index was between 0.61 and 0.83 for the different antibiotics analyzed.    The sensitivity of the MGIT method to the rifampicin, isoniazid, ethambutol    and streptomycin was of 88.9, 95.2, 62.5 and 58% respectively and specifity    was of 97.7, 92.3, 98.8 y 98.4% respectively. Using the MGIT method, isolates    resistant to M. tuberculosis were determined in an average time of 7.85 days.    <br>   <b>Conclusions.</b> The MGIT method permits obtaining reliable results in less    time than conventional methods with isoniazid and rifampicin which are the antibiotics    that determine the multi-resistance of M tuberculosis and to a lesser degree    to streptomycin and ethambutol.</p>     <p><b>Key words:</b> tuberculosis, MGIT, drug resistance, susceptibility.</p> <hr size="1">     <p><font size="3"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>     <p>La tuberculosis es en el mundo una enfermedad infecciosa, con alta tasa de    incidencia y dif&iacute;cil control por parte de los organismos regionales de    salud. Conocida desde la prehistoria, se considera que ha llevado a la muerte    a m&aacute;s personas que cualquier otro pat&oacute;geno microbiano (1). Las    cepas de M. tuberculosis actuales parecen tener un ancestro com&uacute;n originado    cerca de 20.000-15.000 a&ntilde;os atr&aacute;s y los an&aacute;lisis de mutaci&oacute;n    gen&eacute;tica muestran que la actual diversidad gen&eacute;tica se origin&oacute;    en cepas de entre 250 a 1000 a&ntilde;os atr&aacute;s (2). La informaci&oacute;n    actual de la OMS, indica que para el a&ntilde;o 2004 se presentaron 8.9 millones    de casos nuevos (140/100.000), de los cuales 3.9 millones se diagnosticaron    con baciloscopia positiva (62/100.000), se encontraron 741.000 adultos coinfectados    con el virus de la inmunodeficiencia humana (VIH). Se tuvieron 14.6 millones    de casos prevalentes (229/100.000) de los cuales 6.1 millones se diagnosticaron    con baciloscopia. M&aacute;s del 80 por ciento de los casos nuevos de 2004,    provinieron de &Aacute;frica, sur este de Asia y Pac&iacute;fico Occidental.    1.7 millones de personas (27/100.000) murieron de tuberculosis en 2004 este    dato incluye 248.000 personas coinfectadas con VIH (3). Hoy las recomendaciones    de diagn&oacute;stico y manejo de la enfermedad, desde el punto de vista de    programas de control han sido lideradas por la Organizaci&oacute;n Mundial de    la Salud (OMS) con un programa lanzado en 1994, denominado estrategia DOTS (Estrategia    de tratamiento directamente observado) que se mantiene como la intervenci&oacute;n    m&aacute;s costo-efectiva para detectar y curar casos, y prevenir diseminaci&oacute;n    de la tuberculosis multirresistente. La prevenci&oacute;n es la mejor y m&aacute;s    importante herramienta para el control de la tuberculosis multirresistente    (TBC-MR) que se define como la resistencia a isoniacida y rifampicina (4). En    la actualidad se conoce que la resistencia a las drogas antituberculosas no    s&oacute;lo es para los medicamentos de primera l&iacute;nea sino que se ha    extendido a los de segunda l&iacute;nea. As&iacute; en marzo de 2006 el CDC    report&oacute; la aparici&oacute;n de Mycobacterium tuberculosis con resistencia    extendida a drogas de segunda l&iacute;nea de tratamiento (XDR TB) (5). La Tuberculosis    extremadamente resistente (XDR TB) se define como la presencia de tuberculosis    en personas quienes tienen aislados de M. tuberculosis resistentes a isoniacida    y rifampicina m&aacute;s resistencia a cualquier fluoroquinolona y por lo menos    a una de las drogas inyectables de segunda l&iacute;nea (amikacina, kanamicina    o capreomicina) (6).</p>     <p>La presencia o no de tuberculosis resistente a drogas se deriva de varios factores    entre los que intervienen: </p>     <p>1. Inadecuados reg&iacute;menes de tratamiento, sin orientaci&oacute;n, gu&iacute;as,    seguimiento inadecuado y pobre financiaci&oacute;n.     <br>   2. Mala disponibilidad y calidad de los medicamentos antituberculosos, incluyendo    problemas en almacenamiento y fallas en la dosificaci&oacute;n y potencia de    los medicamentos o sus combinaciones.     <br>   3. Inadecuada aceptaci&oacute;n de los medicamentos, poca informaci&oacute;n    al paciente, problemas socioecon&oacute;micos que inciden en la asistencia a    los servicios de salud, efectos adversos, mala absorci&oacute;n y costos de    los mismos (7). </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Datos de la OMS estiman que para el a&ntilde;o 2003 los casos nuevos y de retratamiento    resistentes a drogas pudieron ser 458.000 con intervalo de confianza del 95    por ciento entre 321.000 -689.000. No se conocen con exactitud las cifras de    resistencia a drogas en el mundo y se sabe que &aacute;reas como la China, la    India, Nigeria y la antigua Uni&oacute;n Sovi&eacute;tica presentan el mayor    n&uacute;mero de casos (3). La resistencia a drogas de primera l&iacute;nea    en pacientes nunca tratados y especialmente para estreptomicina e isoniacida    fue de 10.7 por ciento (0-57.1%). La prevalencia media de TBC-MR fue de 1,2    por ciento (0-14.2%). En los pacientes previamente tratados la prevalencia media    de cualquier resistencia fue de 23,3 por ciento (0-82.1%) y de TBC-MR de 7.7    por ciento (0-58.3%).</p>     <p>Colombia report&oacute; para el Proyecto Mundial de Vigilancia de la Resistencia    a las Drogas Antituberculosas dirigido por la OMS y la UICTER una    resistencia global del 15.6 por ciento y multirresistencia del 1.5 por ciento;    cuando se tuvieron en cuenta todos los medicamentos evaluados fue del 28.2 por    ciento; se encontr&oacute; resistencia a pirazinamida en 9.3 por ciento, a isoniacida    9.5 por ciento y la m&aacute;s alta a estreptomicina en 11.5 por ciento, mientras    las m&aacute;s bajas fueron etambutol 0.8 por ciento, rifampicina 1.7 por ciento,    tioacetazona 2.6 por ciento y etionamida 6.2 por ciento. Al compararse con el    estudio de 1992 respecto a la resistencia global no hubo diferencia significativa,    (15.6% en el 2002 mientras 14.1% en 1992). Al compararse con otros pa&iacute;ses    se encontr&oacute; una resistencia global superior a la media encontrada en    otros miembros de la UICTER, lo mismo que multirresistencia de 1.0 por ciento    (8,9). La posibilidad de resistencia a un medicamento o la multirresistencia    se incrementa si el paciente ha recibido tratamientos previos (10).</p>     <p>El diagn&oacute;stico de la resistencia o multirresistencia    a nivel de laboratorio se puede obtener por diversas t&eacute;cnicas que implican    m&eacute;todos de genotipificaci&oacute;n y fenotipificaci&oacute;n. El m&eacute;todo    de las proporciones m&uacute;ltiples es la prueba de oro para la determinaci&oacute;n    de la susceptibilidad a los medicamentos antituberculosos.    T&eacute;cnica propuesta por Canetti y colaboradores y adoptada por la Organizaci&oacute;n    Mundial de la Salud desde 1969 que sigue vigente para pa&iacute;ses en v&iacute;a    de desarrollo. Es la metodolog&iacute;a m&aacute;s usada en el mundo para determinar    la relaci&oacute;n entre el n&uacute;mero de bacilos que crecen en medio s&oacute;lido    con antibi&oacute;tico y el n&uacute;mero de bacilos que crecen en medio libre    o sin antibi&oacute;tico, indicando la proporci&oacute;n de bacilos de M. tuberculosis    resistentes al f&aacute;rmaco en una poblaci&oacute;n bacteriana, obteni&eacute;ndose    resultados entre cuatro y seis semanas (11). En la actualidad, para la obtenci&oacute;n    de resultados oportunos y que permitan intervenir en tiempo real en el tratamiento    del paciente, se han encaminado esfuerzos para la implementaci&oacute;n    de nuevas metodolog&iacute;as que superen a &eacute;sta en tiempo y costo beneficio.</p>     <p>Este trabajo est&aacute; dirigido fundamentalmente a la determinaci&oacute;n    de la susceptibilidad a drogas de primera l&iacute;nea en aislamientos de M.    tuberculosis mediante la utilizaci&oacute;n de una de las t&eacute;cnicas de    fenotipificaci&oacute;n como es el tubo indicador de crecimiento micobacteriano    (MGIT) el cual es &uacute;til en el diagn&oacute;stico r&aacute;pido de la tuberculosis    y detecta la resistencia a drogas antituberculosas de primera y segunda    l&iacute;nea en presencia de concentraciones cr&iacute;ticas de los antibi&oacute;ticos    (12,13). </p>     <p><font size="3"><b>Material y m&eacute;todos</b></font></p>     <p><b>Aislamientos bacterianos</b></p>     <p>Se evaluaron un total de 49 aislamientos de M. tuberculosis procedentes de    diferentes hospitales y entidades de salud de Bogot&aacute; D.C. existentes    en el Laboratorio de Micobacteriolog&iacute;a del Departamento de Microbiolog&iacute;a    de la Universidad Nacional de Colombia. Estos aislamientos fueron recuperados    para el estudio en medio de cultivo de Lowenstein Jensen. Los cultivos fueron    incubados a 37&deg;C por un tiempo de cuatro semanas con observaci&oacute;n    semanal. Al evidenciar crecimiento bacteriano se realiz&oacute; coloraci&oacute;n    de Ziehl Neelsen para la confirmaci&oacute;n de bacilos &aacute;cido alcohol    resistentes. La identificaci&oacute;n fenot&iacute;pica consisti&oacute; en    la realizaci&oacute;n de una serie de pruebas bioqu&iacute;micas que incluyeron:    detecci&oacute;n de niacina, detecci&oacute;n de actividad de catalasa a temperatura    ambiente y a 68&deg;C y reducci&oacute;n de nitratos.</p>     <p><font size="3"><b>M&eacute;todo de las proporciones m&uacute;ltiples (PM)</b></font></p>     <p><b>Preparaci&oacute;n del In&oacute;culo</b></p>     <p>La masa bacilar del M. tuberculosis se tom&oacute; a partir del medio Lowenstein    Jensen, mediante raspado con una esp&aacute;tula de madera por toda la superficie    sembrada. Esta masa bacilar se coloc&oacute; en frascos tapa rosca debidamente    marcados con el n&uacute;mero del aislamiento, que conten&iacute;a 1ml de agua    destilada est&eacute;ril y perlas de vidrio. Inmediatamente se homogenizaron    en agitador Vortex por 30 segundos, la suspensi&oacute;n fue calibrada nefelometricamente    con el tubo n&uacute;mero tres de la escala Mac Farland.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Preparaci&oacute;n de los antibi&oacute;ticos</b></p>     <p>Para el m&eacute;todo de las proporciones m&uacute;ltiples se utiliz&oacute;    el medio s&oacute;lido de Lowenstein Jensen, al cual se le adicionaron los medicamentos    a probar a una concentraci&oacute;n cr&iacute;tica por mililitro antes de ser    coagulados a 80&deg;C. La proporci&oacute;n cr&iacute;tica ya establecida de    cada medicamento, se obtuvo por diluci&oacute;n de soluciones madre preparadas    el mismo d&iacute;a que fueron adicionadas al medio. A partir de las soluciones    madre se prepararon las soluciones de trabajo, descritas por Canetti et al (11)    para cada uno de los antibi&oacute;ticos. Las concentraciones cr&iacute;ticas    fueron: isoniacida (I): 0.2 ug/ml, estreptomicina (S): 4 ug/ml, etambutol (E):    2 ug/ml y rifampicina (R): 40 ug/ml.</p>     <p><b>Procedimiento</b></p>     <p>Se realizaron diluciones en base 10 de la suspensi&oacute;n bacteriana, se    tomaron los tubos de las diluciones 10-3, 10-5 y 10-6 y se    inocularon 0.2 ml en dos tubos sin antibi&oacute;tico para cada diluci&oacute;n    como control de viabilidad; con la diluci&oacute;n 10-3 y 10-5 se    sembr&oacute; un tubo para cada uno de los antibi&oacute;ticos antituberculosos    de primera l&iacute;nea. Luego se incubaron a una temperatura de 37&deg;C,    en atm&oacute;sfera aer&oacute;bica durante cuatro semanas, cuando se hizo la    primera lectura; luego se incubaron por dos semanas m&aacute;s al cabo de las    cuales se obtuvieron resultados definitivos de la prueba. Se utiliz&oacute;    la cepa de M. tuberculosis H37Rv como referencia.</p>     <p><font size="3"><b>M&eacute;todo del tubo indicador de crecimiento micobacteriano    (MGIT)</b></font></p>     <p><b>Preparaci&oacute;n del in&oacute;culo</b></p>     <p>Se obtuvo la masa bacilar de igual manera que para el m&eacute;todo de las    proporciones m&uacute;ltiples. La suspensi&oacute;n bacteriana se ajust&oacute;    nefelom&eacute;tricamente al tubo n&uacute;mero 0.5 de la escala de Mac    Farland y a partir de all&iacute; se realiz&oacute; una diluci&oacute;n 1:5    en soluci&oacute;n salina.</p>     <p><b>Preparaci&oacute;n de los antibi&oacute;ticos</b></p>     <p>La proporci&oacute;n cr&iacute;tica de cada medicamento se obtuvo por diluciones    de soluciones madre preparadas el mismo d&iacute;a que fueron adicionadas al    medio. A partir de las soluciones madre se prepararon las soluciones de trabajo    cuyas concentraciones cr&iacute;ticas fueron para isoniacida (I): 0.1 ug/ml,    estreptomicina (S): 0.8 ug /ml, etambutol, (E): 3.5 ug /ml y rifampicina (R):1    ug/ml.</p>     <p><b>Procedimiento</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Se utilizaron cinco tubos en total por aislamiento, un tubo para el control    de viabilidad y uno por cada antibi&oacute;tico a analizar. A los tubos MGIT    que conten&iacute;an medio Middlebrook modificado 7H9 se les adicion&oacute;    suplemento antibi&oacute;tico PANTA (polimixina B, anfotericina B, &aacute;cido    nalidixico, trimetropin, y azlocilina) que a su vez se reconstituy&oacute; con    OADC (&aacute;cido oleico, alb&uacute;mina bovina, dextrosa y catalasa) y finalmente    se adicion&oacute; el antimicobacteriano para dejar en cada tubo la concentraci&oacute;n    cr&iacute;tica respectiva de cada medicamento. Luego se agreg&oacute; a cada    tubo una concentraci&oacute;n de la suspensi&oacute;n bacteriana y se llev&oacute;    a incubar en el equipo automatizado BACTEC MGIT 960 (Becton Dickinson Microbiology    Systems).</p>     <p>Las lecturas de los tubos del MGIT se realizaron diariamente a partir del segundo    d&iacute;a de incubaci&oacute;n (14). A los tubos con crecimiento bacteriano    se les realiz&oacute; coloraci&oacute;n de Zielh Neelsen. Los tubos con posible    contaminaci&oacute;n bacteriana se sembraron en agar sangre. Como control del    m&eacute;todo se utiliz&oacute; un control positivo preparado con sulfito de    sodio al 0.4 por ciento y un control negativo para cada bloque de pruebas. Se    utiliz&oacute; la cepa de M. tuberculosis H37Rv como referencia.</p>     <p><font size="3"><b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</b></font></p>     <p>Se utilizaron pruebas de rendimiento operativo como la sensibilidad (la habilidad    para detectar la verdadera resistencia a los antibi&oacute;ticos), especificidad    (la habilidad para detectar la verdadera susceptibilidad a los antibi&oacute;ticos).    Se obtuvo la concordancia observada y la concordancia por &iacute;ndice kappa.    El valor del &iacute;ndice kappa fue interpretado as&iacute;: menor de 0.2 malo;    0.21 a 0.4 bajo; 0.41-0.6 moderado; 0.61-0.8 bueno, 0.8 -1.0 muy bueno (15,16).    Para corregir el tama&ntilde;o de la muestra se utiliz&oacute; un procedimiento    similar a la correcci&oacute;n de Yates (17).</p>     <p><font size="3"><b>Resultados</b></font></p>     <p>Para evaluar la susceptibilidad de los aislamientos de Mycobacterium tuberculosis    a cuatro antibi&oacute;ticos de primera l&iacute;nea (isoniacida, rifampicina,    estreptomicina y etambutol) se utiliz&oacute; el m&eacute;todo del tubo indicador    de crecimiento micobacteriano (MGIT) y la prueba de oro de las proporciones    m&uacute;ltiples (PM). Por el m&eacute;todo MGIT se obtuvieron diferentes patrones    de resistencia y susceptibilidad; de los 49 aislamientos fueron sensibles a    los cuatro antibi&oacute;ticos 31 (63.3%), resistentes a un antibi&oacute;tico    ocho (16.3%) y resistentes a m&aacute;s de un antibi&oacute;tico 10 (20.6%).    Por el patr&oacute;n de oro de las proporciones m&uacute;ltiples, de los 49    aislamientos, 26 (53.0%) fueron sensibles a los cuatro antibi&oacute;ticos,    12 (24.5%) resistentes a un antibi&oacute;tico y 11 (22.5%) a m&aacute;s de    un antibi&oacute;tico. Se encontr&oacute; un mayor n&uacute;mero de aislamientos    de M. tuberculosis resistentes a estreptomicina (38.8%). En la <a href="#tabla 1">tabla 1</a> se observa    el n&uacute;mero de aislamientos susceptibles a cada uno de los antibi&oacute;ticos,    los susceptibles por PM y resistentes por el m&eacute;todo MGIT, los resistentes    por PM y susceptibles por MGIT, aislamientos que fueron resistentes por las    dos metodolog&iacute;as y los porcentajes de concordancia observada y de concordancia    aplicando el &iacute;ndice kappa para los dos m&eacute;todos y para cada uno    de los antibi&oacute;ticos analizados. En la <a href="#tabla 2">tabla 2</a> se muestran los indicadores    epidemiol&oacute;gicos de la prueba.</p>      <p>    <center><a name="tabla 1"><img  src="img/revistas/rfmun/v56n1/v56n1a03t1.gif"></a></center></p>     <p>    <center><a name="tabla 2"><img src="img/revistas/rfmun/v56n1/v56n1a03t2.gif"></a></center></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El tiempo establecido por la t&eacute;cnica de oro de las proporciones m&uacute;ltiples para    el informe de los resultados fue entre 28 a 42 d&iacute;as y por el m&eacute;todo MGIT el    promedio en d&iacute;as para informar resistencia a cualquier antibi&oacute;tico fue de 7.85    d&iacute;as, oscilando entre 4-17 d&iacute;as.</p>     <p><font size="3"><b>Discusi&oacute;n</b></font></p>     <p>La detecci&oacute;n r&aacute;pida y oportuna de la susceptibilidad del Mycobacterium tuberculosis    a las drogas antituberculosas es de vital importancia en el tratamiento de enfermos,    permitiendo que una terapia adecuada interrumpa la cadena de transmisi&oacute;n de    la enfermedad y prevenga la posibilidad de tener cepas resistentes que lleven    al fracaso de tratamientos y, peor a&uacute;n, la aparici&oacute;n y transmisi&oacute;n de cepas    multirresistentes en la comunidad. De esta manera, la vigilancia de la resistencia    a los antibi&oacute;ticos permite evaluar los programas contra la TBC. Es claro que    el diagn&oacute;stico eficiente de un enfermo de tuberculosis y la realizaci&oacute;n de pruebas    de resistencia a los medicamentos son factores que mejoran los programas de    control de la TBC.</p>     <p>Este estudio evalu&oacute; la susceptibilidad de aislamientos de M. tuberculosis a    cuatro antibi&oacute;ticos de primera l&iacute;nea como son rifampicina, isoniacida, etambutol    y estreptomicina por el m&eacute;todo de el tubo indicador de crecimiento micobacteriano    (MGIT) y se compar&oacute; con el patr&oacute;n de oro de las proporciones m&uacute;ltiples (PM).    Tradicionalmente se ha estudiado la susceptibilidad a las drogas antituberculosas    con el m&eacute;todo de las PM, que muestra ser una prueba confiable al detectar la    proporci&oacute;n de bacilos resistentes en una poblaci&oacute;n de bacilos tuberculosos (11).    En el presente estudio se encontr&oacute; que el tiempo promedio para la detecci&oacute;n    de la resistencia por el m&eacute;todo MGIT fue de 7.85 d&iacute;as, mientras que con el m&eacute;todo    de las proporciones m&uacute;ltiples se detect&oacute; la resistencia entre los 28-42 d&iacute;as,    tiempos muy similares a los encontrados por Walters y Hanna (18) y Rüsch-Gerdes    y col (19) en una evaluaci&oacute;n multic&eacute;n¬trica del MGIT para examinar susceptibilidad    a drogas antituberculosas. En la prueba de estudio los aislamientosson resistentes    si el crecimiento es detectado en el tubo control y en el tubo que contiene    la droga que se detecta por la emisi&oacute;n de fluorescencia.</p>     <p>La concordancia observada para los dos m&eacute;todos, es decir la posibilidad de    que ambos detecten aislamientos resistentes o susceptibles en la prueba fue    para rifampicina de 97.9 por ciento, isoniacida 93.9 por ciento, etambutol 93.9    por ciento y estreptomicina de 83.7 por ciento mostrando que la t&eacute;cnica MGIT    fue buena para detectar la resistencia y la susceptibilidad a las drogas en    los aislamientos examinados. El nivel de concordancia estimado por el &iacute;ndice    kappa fue muy bueno para isoniacida y rifampicina y bueno para etambutol y estreptomicina.</p>     <p>Para rifampicina la sensibilidad fue del 88.9 por ciento con una especificidad    del 97,7 por ciento, como lo han mostrado los estudios de Rüsch-Gerdes y col    (19), Bergmann y col (20), Goloubeva y col (21), y Bemer y col (22). Los datos    obtenidos permiten establecer que el m&eacute;todo de MGIT es una prueba confiable    para la detecci&oacute;n de la resistencia a rifampicina, como se encontr&oacute; en aislamientos    de muestras cl&iacute;nicas en el trabajo de Piffardi y col en Chile (23).</p>     <p>En cuanto a isoniacida la sensibilidad encontrada en el estudio fue del 95.2    por ciento con una especificidad de 92.3 por ciento, indicando que el m&eacute;todo    de MGIT es bueno para detectar los aislados verdaderamente resistentes a isoniacida    cuando se compara con la prueba de oro de las proporciones m&uacute;ltiples, datos    que fueron encontrados por otros autores confirmando as&iacute; que el m&eacute;todo MGIT    es confiable para la detecci&oacute;n de la multirresistencia en aislamientos cl&iacute;nicos    y de labora¬to¬¬¬rio (19-25). Para¬ etam¬butol los resultados mostraron una    variaci&oacute;n importante con respecto a los anteriores, la sensibilidad de la prueba    fue del 62.5 por ciento y la especificidad del 98.8 por ciento lo que indica    que la detecci&oacute;n de verdaderos resistentes por el m&eacute;todo del MGIT no es suficiente    y puede tener resultados falsos negativos. El etambutol es considerado un medicamento    dif&iacute;cil de analizar; posiblemente por los mecanismos de acci&oacute;n al ser bacteriost&aacute;tico    en lugar de bactericida, a la interferencia con algunos de los componentes del    sistema MGIT (indicador fluorescente) o a los mecanismos de resistencia al medicamento;    en varios estudios se encuentran valores de sensibilidad bajos que podr&iacute;an llevar    a un sub registro de la resistencia al medicamento (22,26). Sin embargo, la    especificidad de la prueba fue alta a etambutol, indicando que estamos ante    aislamientos susceptibles al medicamento. Existen trabajos que utilizan diferentes    concentraciones de etambutol en las pruebas de resistencia y esto ha hecho que    a concentraciones bajas, se detecte mayor cantidad de aislados resistentes.    En este estudio se utiliz&oacute; la concentraci&oacute;n recomendada por la OMS de 3.5 ug/ml    con lo cual los resultados son similares a otros estudios. Sin embargo, se requieren    trabajos que comparen suficientes aislamientos de M. tuberculosis con resistencias    conocidas y diferentes concentraciones del antibi&oacute;tico y as&iacute; poder tener una    mejor seguridad en la detecci&oacute;n de los verdaderos resistentes (24).</p>     <p>Por &uacute;ltimo, el etambutol ha sido considerado un medicamento de dif&iacute;cil evaluaci&oacute;n,    con resultados poco reproducibles, bajos valores de sensibilidad y altos de    especificidad en los estudios de susceptibilidad de la OMS (22).</p>     <p>Con la estreptomicina, la primera droga antituberculosa descubierta y la cual    presenta los m&aacute;s altos &iacute;ndices de resistencia, se encontr&oacute; en el presente estudio    una sensibilidad para el m&eacute;todo MGIT de 58 por ciento con una especificidad    de 98.4 por ciento, lo cual indica que el m&eacute;todo MGIT no fue lo suficientemente    bueno para detectar la resistencia de los aislamientos a estreptomicina. Sin    embargo, se debe aclarar que es necesario realizar estudios con mayor cantidad    de aislamientos y pruebas con diferentes concentraciones cr&iacute;ticas del medicamento    para obtener resultados m&aacute;s confiables (19,27).</p>     <p><font size="3"><b>Conclusiones</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La b&uacute;squeda de la resistencia a las drogas antituberculosas de primera l&iacute;nea    es una herramienta indispensable para el manejo de los enfermos tuberculosos    y m&aacute;s a&uacute;n, nos permite, a trav&eacute;s de un tratamiento mejor planeado disminuir    los casos de multirresistencia a nivel local y regional. Se concluye que el    m&eacute;todo de tubo indicador de crecimiento micobac¬teriano es una herramienta de    laboratorio que detecta el crecimiento micobacteriano de forma r&aacute;pida y permite    el estudio de la resistencia a drogas antituber¬culosas de primera l&iacute;nea especialmente    a isoniacida y rifampicina. Es importante recalcar que basados en la concordancia    de las dos pruebas podr&iacute;a ser utilizada la t&eacute;cnica del MGIT en lugar de las    proporciones m&uacute;ltiples cuando se requieran resultados con celeridad. Aunque    es un m&eacute;todo con mayor costo que el de las PM, tiene la ventaja de ser m&aacute;s sencillo    en su implementaci&oacute;n y bueno para la detecci&oacute;n de la multirresistencia, que    en la pr&aacute;ctica cl&iacute;nica es de utilidad.</p>     <p>A pesar del bajo porcentaje de aislamientos resistentes a los medicamentos    en la muestra examinada se present&oacute; buena concordancia comparada con la prueba    de las PM. Nuestros resultados sugieren que la prueba del tubo indicador de    crecimiento micobacteriano (MGIT) para la determinaci&oacute;n de la susceptibilidad    a etambutol y estreptomicina por este m&eacute;todo no es tan eficaz, como para isoniacida    y rifampicina. Es necesario realizar estudios adicionales donde se analice una    mayor proporci&oacute;n de aislamientos de M. tuberculosis tanto resistentes como susceptibles    para la evaluaci&oacute;n de las drogas de primera y segunda l&iacute;nea antituberculosa.</p>     <p><b>Financiaci&oacute;n</b></p>     <p>Divisi&oacute;n de Investigaci&oacute;n Sede Bogot&aacute;. Universidad Nacional de Colombia.</p>     <p><b>Agradecimientos</b></p>     <p>Divisi&oacute;n de Investigaciones de la sede Bogot&aacute; Universidad Nacional de Colombia.    Dr. Manuel Alfonso Patarroyo Director Grupo Funcional Biolog&iacute;a Molecular y TBC.    Fundaci&oacute;n Instituto de Inmunolog&iacute;a de Colombia (FIDIC).</p>     <p><font size="3"><b>Referencias</b></font></p>     <!-- ref --><p>1. Daniel TM. The history of tuberculosis. Respiratory Medicine (2006), doi:10.1016/j.rmed.2006.08.006.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0120-0011200800010000300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>2. Cave AJE. The evidence for the incidence of tuberculosis in ancient Egypt.    Br. J Tubercl. 1939;33:142 -52.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0120-0011200800010000300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>3. Global Tuberculosis Control: Surveillance, Planning, Financing. WHO report    2006. Geneva, World Health Organization. (WHO/HTM/TB2006.362).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0120-0011200800010000300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>4. Espinal MA, The global situation of MDR-TB. Tuberculosis. 2003;83:44-51.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0120-0011200800010000300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>5. Centers for Disease Control and Prevention. Emergence of Mycobacterium tuberculosis    with extensive resistance to second-line drugs – worldwide, MMWR Morb Mortal    Wkly Rep. 2006;55:301-305.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0120-0011200800010000300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <p>6. Migliori GB, Loddenkemper R, Blasi F, Raviglione MC. 125 years after Robert    Koch's discovery of the tubercle bacillus: the new XDR-TB threat. Is «science»    enough to tackle the epidemic? Eur Respir. J. 2007;29:423-427.</p>     <p>7. Raviglione MC, Espinal MA. Towards optimization of surveillance resistence    to antituberculosis drug resistance. Eurosurveilance Monthly 2000;10:103-104</p>     <p>8. Espinal MA, Laszlo A, Simonsen L, Boulahbal F, Kim SJ, Reiniero A. Global    trends in resistance to antituberculosis drugs. N Engl J Med. 2001;344: 1294-1303.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>9. Le&oacute;n CI, Sierra CR, Naranjo ON, Garz&oacute;n MC, Guerrero MI. Segundo estudio    nacional de resistencia primaria del Mycobacterium tuberculosis a las drogas.INFECTIO.2002;6:83.</p>     <p>10. Guidelines for the programmatic management of drug-resistant tuberculosis.    Geneva, World Health Organization (WHO/HTM/TB2006.361</p>     <p>11. Canetti G, Froman F, Grosset J, Hauduroy P, Langerova M, Meisser G, Mitchison    DA, Sula L. Mycobacteria: Laboratory methods for testing drug sensitivity and    resistance. Bull WHO. 1963;29;565-578.</p>     <p>12. Palomino JC. Newer diagnostics for tuberculosis and multi-drug resistant    tuberculosis. Curr Opin Pulm Med 2006;12:172-178.</p>     <p>13. Robledo JR, Mejia GI. Actualidad en el diagn&oacute;stico de la tuberculosis por    el laboratorio. INFECTIO. 2001;5:251-258.</p>     <p>14. Becton Dickinson Microbiology Systems. BACTEC MGIT 960 System product and    procedure manual. USA, 2001.</p>     <p>15. Echeverry J, Ardila E. Pruebas diagn&oacute;sticas y proceso diagn&oacute;stico. En:    Estrategias de Investigaci&oacute;n en medicina cl&iacute;nica. Bogot&aacute;: Editorial Manual Moderno.    2001.</p>     <p>16. Altman DG. Inter-rater agreement. In Practical Statistics for Medical Research,    London, Chapman & Hall/CRC. 1999: 403-409.</p>     <p>17. Pagano M, Gauvreau K. Principles of Biostatistics. Contingency tables.    Editorial Duxbury Press, California. 1993: 311-337.</p>     <p>18. Walters SB, Hanna B.A. Testing of Susceptibility of Mycobacterium tuberculosis    to Isoniazid and Rifampicin by Mycobacterium Growth Indicator Tube Method. J    Clin Microbiol. 1996;34:1565-1567.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>19. Rusch-Gerdes S, Domehl C, Nardi G, Gismondo MR, Welscher HM, Pfyffer G.    Multicenter Evaluation of the Mycobacteria Growth Indicador Tube for Testing    Susceptibility of Mycobacterium tuberculosis to First. Line Drugs. J Clin Microbiol.    1999;37:45-48.</p>     <p>20. Bergmann J, Fish G, Woods G. Evaluation of the BBL MGIT (Mycobacterial    Growth Indicador Tube) AST SIRE System for Antimycobacterial Susceptibility    Testing of Mycobacterium tuberculosis to 4 Primary Antituberculous Drugs. Arch    Pathol Lab Med. 2000;124:82-86.</p>     <p>21. Goloubeva V, Lecocq M, Lassowsky P, Matthys F, Portaels F, Bastian I. Evaluation    of Mycobacteria Grow Indicator Tube for direct and indirect drug susceptibility    testing of Mycobacterium tuberculosis from respiratory specimens in a Siberian    prison hospital. J Clin Microbiol. 2001;39:1501-150</p>     <p>22. Bemer P, Palicova F, Rusch-Gerdes S, Drugeon HB, Pfyffer G. Multicenter    Evaluation of Fully Automates BACTEC Mycobacteria Growth Indicador Tube 960    System for Susceptibility Testing of. Mycobacterium tuberculosis. J Clin Microbiol.    2002;40:150-154.</p>     <p>23. Piffardi S, Luna A, Sakurada A, Lepe R. Evaluaci&oacute;n comparativa del m&eacute;todo    automatizado BACTER MGIT con el m&eacute;todo de las proporciones para determinar susceptibilidad    a drogas antituberculosas en Chile. Rev Chil Enf Respir. 2004;20:139-143.</p>     <p>24. Koskela KA, Katila ML. Susceptibility Testing with the Manual Mycobacteria    Growth Indicator Tube (MGIT) and the MGIT 960 System Provides Rapid and Reliable    Verification of Multidrug-Resistant Tuberculosis. J Clin Microbiol. 2003;41(3):1235-1239.</p>     <p>25. Mengatto L, Chiani Y,Imaz MS. Evaluation of rapid alternative method for    drug susceptibility testing in clinical isolates of Mycobacterium Tuberculosis.    Mem Inst Oswualdo Cruz, Rio de Janeiro. 2006; 10: 535-542.</p>     <p>26. Piersimoni C, Nista D, Bornigia S, De Sio G. Evaluation of a New Method    for Rapid Drug Susceptibility Testing of Mycobacteruim avium Complex Isolates    by Using the Mycobacteria Growth Indicator tube. J Clin Microbiol. 1998;3:64-67.</p>     <p>27. Bergmann J, Woods G. Reliability of Mycobacteria Growth Indicador Tube    for Testing Susceptibility of Mycobacterium tuberculosis to Ethambutol y Streptomycin.    J Clin Microbiol. 1997;35:3325-3327.</p> </font>       ]]></body><back>
<ref-list>
<ref id="B1">
<label>1</label><nlm-citation citation-type="">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[TM]]></surname>
<given-names><![CDATA[Daniel]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[The history of tuberculosis]]></source>
<year></year>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B2">
<label>2</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Cave]]></surname>
<given-names><![CDATA[AJE]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[The evidence for the incidence of tuberculosis in ancient Egypt]]></article-title>
<source><![CDATA[Br. J Tubercl]]></source>
<year>1939</year>
<volume>33</volume>
<page-range>142 -52</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B3">
<label>3</label><nlm-citation citation-type="book">
<source><![CDATA[Global Tuberculosis Control: Surveillance, Planning, Financing]]></source>
<year></year>
<publisher-loc><![CDATA[Geneva ]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[World Health Organization]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B4">
<label>4</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Espinal]]></surname>
<given-names><![CDATA[MA]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[The global situation of MDR-TB]]></article-title>
<source><![CDATA[Tuberculosis]]></source>
<year>2003</year>
<volume>83</volume>
<page-range>44-51</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B5">
<label>5</label><nlm-citation citation-type="journal">
<collab>Centers for Disease Control and Prevention</collab>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Emergence of Mycobacterium tuberculosis with extensive resistance to second-line drugs - worldwide]]></article-title>
<source><![CDATA[MMWR Morb Mortal Wkly Rep]]></source>
<year>2006</year>
<volume>55</volume>
<page-range>301-305</page-range></nlm-citation>
</ref>
</ref-list>
</back>
</article>
