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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Evaluación de aislamientos nativos de Nomuraea rileyi para el control de Spodoptera frugiperda (Lepidoptera: Noctuidae)]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Evaluation of natíve isolates of Nomuraea rileyi for the control of Spodoptera frugiperda (Lepidoptera: Noctuidae)]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The fall armyworm, Spodoptera frugiperda, is the major insect pest of the maize crop. Considering that the country does not nave a registered product based on fungal entomopathogens for the control of S. frugiperda, and given that Nomuraea rileyi is a microorganism that is most frequently found to cause epizootics in the field, our objective was to isolate and select strains of this fungus with high biocontrol activity against S. frugiperda. To do this, the biocontrol activity of 10 isolates of N. rileyi, isolated under laboratory conditions from the Llanos Orientales, at 1x10(7) conidia.ml-1 was evaluated by spraying onto "higuerilla" leaves (Kicinus communis) infested with second instar larvaef A mortality of 94,7, 95 and 100% were obtained with three isolates, the isolate Nm-07 from Villavicencio being selected because it caused 100% mortality and the lowest lethal times (LT50 and LT90) of 6, 2 and 7,9 days, respectively. Afterwards, both the lethal concentrations and doses of this isolate were determined, with LC50, of 9,8 x 10³ conidia.ml-1 at 11 days and LC90 of 2,2 x10(5) conidia.ml-1 at eight days, respectively. To determine the lethal doses 5 ul of N. rileyi suspensions were applied to the thoracic tergum of each larvae, with a LD50 of 44 conidia/larvae after 12 days and a LD90 of 3,380 conidia/larvae after 10 days, respectively. These results offer reference parameters to conduct studies on mass production and formulation directed towards the integrated control of Spodoptera spp.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p align="center"><font size="4"><B>Evaluaci&oacute;n de aislamientos nativos de Nomuraea <I>rileyi</I> para el control de<I> Spodoptera frugiperda </I>(Lepidoptera: Noctuidae) </B></font></P>     <p align="center"><font size="3"><b>Evaluation of nat&iacute;ve isolates of<I> Nomuraea rileyi</I> for the control of<I> Spodoptera frugiperda</I> (Lepidoptera: Noctuidae) </b></font></P>     <p align="center">&nbsp;</P>     <P><b>CARLOS FELIPE BOSA O.<sup>1</sup>, DORA CH&Aacute;VEZ<sup>2</sup>, LISSETTE TORRES<sup>3</sup>, ALEJANDRO PAR&Iacute;S<sup>4</sup>, LAURA VILLAMIZAR<sup>5</sup>, ALBA MARINA COTES<sup>6</sup></b></P>     <P><sup>1</sup> B. Sc. M. Sc. Investigador Laboratorio de Control Biol&oacute;gico. Corpoica. C.I. Tibaitat&aacute;. </P>     <P><sup>2</sup> Bacteri&oacute;loga. Laboratorio de Control Biol&oacute;gico. Corpoica. C.I. Tibaitat&aacute;. </P>     <P><sup>3</sup> B. Sce. Investigadora Laboratorio de Control Biol&oacute;gico. Corpoica. C.I. Tibaitat&aacute;. </P>     <P><sup>4</sup> I. A. Investigador Laboratorio de Control Biol&oacute;gico. Corpoica. C.I. Tibaitat&aacute;. </P>     <P><sup>5</sup> Qu&iacute;mica Farmac&eacute;utica M. Se. Investigadora Laboratorio de Control Biol&oacute;gico. Corpoica. C.I. Tibaitat&aacute;. E-mail: <a href="mailto:laurafernandav@yahoo.es">laurafernandav@yahoo.es</a></P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><sup>6</sup> Autor para correspondencia: Ph. D. Fitopatolog&iacute;a Investigador Principal. Laboratorio de Control Biol&oacute;gico. Corpoica. C.I, Tibaitat&aacute;. Km 14 V&iacute;a Mosquera. Tel&eacute;fono: 3443156. E-mail: <a href="mailto:acotes@corpoica.org.co">acotes@corpoica.org.co</a></P> <hr size="1" /> </font>     <P><font size="2" face="verdana"><B><font size="3">Resumen.</font></B> El gusano cogollero del ma&iacute;z,<I> Spodoptera frugiperda,</I> es la principal plaga de este cultivo. Debido a que en el pa&iacute;s no se cuenta con un producto registrado a base de hongos entomopat&oacute;genos para el control de S.<I> frugiperda</I> y dado que<I> Nomuraea rileyi</I> es un microorganismo que se encuentra con m&aacute;s frecuencia causando epizootias en campo, se plante&oacute; como objetivo aislar y seleccionar cepas de este hongo con alta actividad biocontroladora contra S.<I> frugiperda. Para</I> ello, a partir de 10 aislamientos provenientes de los llanos orientales, se evalu&oacute; en laboratorio su actividad biocontroladora a una concentraci&oacute;n de 1x10<sup>7</sup> conidios.ml<sup>-1</sup>, mediante la aspersi&oacute;n sobre hojas de higuerilla<I> (Kicinus comunnis) </I>infestadas con larvas de segundo instar del insecto. Con tres aislamientos se obtuvo una mortalidad de 94,7, 95 y 100%, seleccion&aacute;ndose el aislamiento Nm07 procedente de Villavicencio (Meta), ya que ocasion&oacute; el 100% de mortalidad y los tiempos letales menores (TL<sub>50</sub> y TL<sub>90</sub>,) que fueron de 6,2 y 7,9 d&iacute;as, respectivamente. Posteriormente, se determin&oacute; la concentraci&oacute;n y dosis letal de este aislamiento obteni&eacute;ndose una CL<sub>50</sub> de 9,8 x 10<sup>3</sup> conidios.ml<sup>-1</sup> a los 11 d&iacute;as y una CL<sub>90</sub> de 2,2 x 10<sup>5</sup> conidios.ml<sup>-1</sup> a los ocho d&iacute;as, respectivamente. Para la determinaci&oacute;n de las dosis letales se aplicaron 5 &micro;l de cada dosis sobre el dorso tor&aacute;cico de cada larva, determin&aacute;ndose una DL<sub>50</sub> de 44 conidios/larva a los 12 d&iacute;as y una DL<sub>90</sub> de 3,380 conidios/larva a los 10 d&iacute;as, respectivamente. Estos resultados permiten obtener par&aacute;metros de referencia para realizar estudios de producci&oacute;n masiva y formulaci&oacute;n, dirigidos al control integrado de <I>Spodoptera</I> spp. </font></P> <font face="verdana" size="2"></font>     <P><font size="2" face="verdana"><B><font size="3">Palabras clave:</font></B> Entomopat&oacute;geno. Control biol&oacute;gico. Gusano cogollero del ma&iacute;z. </font></P> <font face="verdana" size="2"> <hr size="1" /> </font>     <P><font size="2" face="verdana"><B><font size="3">Summary.</font></B> The fall armyworm,<I> Spodoptera frugiperda,</I> is the major insect pest of the maize crop. Considering that the country does not nave a registered product based on fungal entomopathogens for the control of S.<I> frugiperda,</I> and given that<I> Nomuraea rileyi</I> is a microorganism that is most frequently found to cause epizootics in the field, our objective was to isolate and select strains of this fungus with high biocontrol activity against S.<I> frugiperda.</I> To do this, the biocontrol activity of 10 isolates of<I> N. rileyi,</I> isolated under laboratory conditions from the Llanos Orientales, at 1x10<sup>7</sup> conidia.ml<sup>-1</sup> was evaluated by spraying onto &quot;higuerilla&quot; leaves (Kicinus<I> communis)</I> infested with second instar larvaef A mortality of 94,7, 95 and 100% were obtained with three isolates, the isolate Nm-07 from Villavicencio being selected because it caused 100% mortality and the lowest lethal times (LT<sub>50</sub> and LT<sub>90</sub>) of 6, 2 and 7,9 days, respectively. Afterwards, both the lethal concentrations and doses of this isolate were determined, with LC<sub>50</sub>, of 9,8 x 10<sup>3</sup> conidia.ml-1 at 11 days and LC90 of 2,2 x10<sup>5</sup> conidia.ml<sup>-1</sup> at eight days, respectively. To determine the lethal doses 5 ul of<I> N. rileyi</I> suspensions were applied to the thoracic tergum of each larvae, with a LD<sub>50</sub> of 44 conidia/larvae after 12 days and a LD<sub>90</sub> of 3,380 conidia/larvae after 10 days, respectively. These results offer reference parameters to conduct studies on mass production and formulation directed towards the integrated control of<I> Spodoptera</I> spp. </font></P> <font face="verdana" size="2"></font>     <P><font size="2" face="verdana"><B><font size="3">Key words:</font></B> Entomopathogen. Biological control. Fall army worm. </font></P> <font face="verdana" size="2"> <hr size="1" />     <p><font size="3"><B>Introducci&oacute;n </b></font></p>     <P>Uno de los factores m&aacute;s limitantes en la producci&oacute;n del ma&iacute;z en Colombia lo constituyen los insectos plaga entre los que se destaca el gusano cogollero del<I> ma&iacute;z, Spodoptera frugiperda J.</I> E. Smith, el cual puede ocasionar da&ntilde;os directos o indirectos al cultivo pues act&uacute;a como trozador, comedor de follaje y comedor de estructuras (mazorcas). Este insecto est&aacute; distribuido por todo el continente americano y puede encontrarse desde el nivel del mar hasta los 2.600 msnm. Sin embargo, el uso indiscriminado de algunos insecticidas qu&iacute;micos de amplio espectro para el control de esta plaga, tales como el endosulfan, carbofuran, metamidofos y clorpirifos (fosforados, piretroides y carbamatos), ha favorecido la selecci&oacute;n de genes resistentes a estos insecticidas, adem&aacute;s de ocasionar efectos negativos sobre la fauna ben&eacute;fica y de interferir con el equilibrio biol&oacute;gico (Garc&iacute;a <i>et al</i>. 2002). </P>     <P>Seg&uacute;n estad&iacute;sticas del Ministerio de Agricultura (1996), el &aacute;rea sembrada con ma&iacute;z en Colombia asciende a 79.351 ha con un rendimiento promedio de 3.243 kg/ha y con un gasto en insecticidas para el control de esta plaga de $ 4,2 millones de d&oacute;lares por a&ntilde;o aproximadamente, lo cual incide considerablemente en los costos de producci&oacute;n. </P>     <P>Una alternativa promisoria para el control de esta plaga es la utilizaci&oacute;n de hongos entomopat&oacute;genos como<I> Metarhiz&iacute;um anisopliae, Beauueria bass&iacute;ana</I> y<I> Nomuraea rileyi.</I> Su uso presenta varias ventajas frente a los insecticidas qu&iacute;micos, ya que su espectro de acci&oacute;n biol&oacute;gica es menor, disminuyendo el efecto sobre los insectos ben&eacute;ficos o no blanco, adem&aacute;s es posible su producci&oacute;n sobre sustratos econ&oacute;micos y su aplicaci&oacute;n en campo no representa riesgo lexicol&oacute;gico para otros seres vivos como aves, peces y mam&iacute;feros. En trabajos preliminares desarrollados en el C.l. Palmira de Corpoica con hongos entomopat&oacute;genos y productos no convencionales, se obtuvo en campo un 90% de control de larvas de S.<I> frugiperda</I> mediante el uso de una cepa seleccionada del hongo<I> N. rileyi</I> (Garc&iacute;a <i>et al.</i> 2002). </P>     <P>Considerando la importancia de este insecto, los resultados de control obtenidos mediante el uso de entomopat&oacute;genos y aprovechando la experiencia del Laboratorio de Control Biol&oacute;gico de Corpoica, se hace necesario desarrollar estudios encaminados al aislamiento y selecci&oacute;n de cepas de hongos entomopat&oacute;genos, con actividad biocontroladora alta de la plaga con miras a desarrolar preformulados que sean seguros, eficaces y confiables. Por las razones anteriores, los objetivos del presente trabajo fueron aislar y seleccionar aislamientos nativos de<I> nomuraea rileyi </I>con actividad biocontroladora alta contra S. <I>frugiperda;</I> as&iacute; como determinar las concentraciones y dosis letales de los aislamientos seleccionados. </P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="3"><B>Materiales y M&eacute;todos </b></font></p>     <P><b>Aislamiento, selecci&oacute;n y evaluaci&oacute;n de N. rileyi.</b> Se llev&oacute; a cabo una recolecci&oacute;n de insectos con s&iacute;ntomas de infecci&oacute;n en cuatro, lotes sembrados con ma&iacute;z en la zona del piedemonte llanero (Villavicencio, Meta) y en cuatro lotes en la zona de la altillanura (Puerto Qait&aacute;n, Meta). Para el piedemonte llanero se realiz&oacute; el muestreo en tres lotes cultivados con ma&iacute;z del Centro de Investigaciones &quot;La Libertad&quot; de Corpoica; el otro cultivo en donde se realizaron colectas correspondi&oacute; a un lote comercial ubicado en la vereda de Pompeya Baja. En la altillanura, se hicieron mu&eacute;streos en dos de las fincas con las mayores &aacute;reas de cultivo de ma&iacute;z: Panorama y Santana. En cada una de ellas se escogieron dos lotes, teniendo en cuenta su ubicaci&oacute;n y nivel de da&ntilde;o. Las larvas muertas o enfermas, con sintomatolog&iacute;a t&iacute;pica de infecci&oacute;n por hongos o bacterias, se colectaron y se dispusieron individualmente en viales de vidrio. De esta manera, las muestras se transportaron al Laboratorio de Control Biol&oacute;gico del Centro de Investigaciones Tibaitat&aacute; de Corpoica, para su an&aacute;lisis. </P>     <P>A partir de las larvas recolectadas, se realiz&oacute; el aislamiento de los hongos entomopat&oacute;genos potenciales en cajas de Petri con un medio de cultivo codificado como Agarharina de soya (Agar-Soya). Este medio estuvo constituido por salvado de trigo, fr&iacute;jol soya triturado, extracto de levadura, sales minerales y agar. Luego, cada caja de Petri se incub&oacute; a 22&deg;C bajo luz constante; las colonias caracter&iacute;sticas del hongo<I> N. rileyi</I> se purificaron y se conservaron en el medio Agar-Soya. </P>     <P>Con el fin de realizar la evaluaci&oacute;n de la actividad biocontroladora de los diferentes aislamientos nativos de<I> N.rileyi,</I> se hizo una activaci&oacute;n sobre larvas del insecto y se incubaron durante 12 d&iacute;as a 22&deg;C en el medio de cultivo Agar-Soya. Posteriormente, con los conidios producidos por cada aislamiento se obtuvo una suspensi&oacute;n ajustada a una concentraci&oacute;n de 1x10<sup>7</sup> conidios.ml<sup>-1</sup>. Se hizo la aplicaci&oacute;n por medio de un aspersor manual a un volumen de 0,4 mi por el haz y 0,4 mi por el env&eacute;s de hojas de higuerilla<I> (Ricinus communis)</I> previamente sometidas a desinfecci&oacute;n en hipoclorito de sodio al 0,5% y luego tres enjuagues con agua destilada est&eacute;ril por 5 minutos cada uno; posteriormente, cada hoja se infest&oacute; con dos larvas de segundo instar del insecto. Se seleccion&oacute;, como cepa de referencia, un aislamiento de<I> N. rileyi</I> procedente del Centro de Investigaciones Palmira de Corpoica (Valle del Cauca), por haber presentado en estudios previos la actividad bioinsecticida m&aacute;s alta obteni&eacute;ndose un porcentaje acumulado superior al 90%, al ser probada en campo (Garc&iacute;a<I> et al.</I> 2002). </P>     <P>El bioensayo se realiz&oacute; bajo condiciones controladas de 20&deg;C &plusmn; 0,2&deg;C de temperatura y 65% de humedad relativa; se utiliz&oacute; un dise&ntilde;o completamente aleatorio, donde la unidad experimental consisti&oacute; en 2 larvas/hoja para un total de 20 repeticiones y cuarenta individuos por tratamiento. A su vez, se utilizaron testigos tratados (hojas desinfectadas, asperjadas con Tween 80 al 0,1% e infestadas con larvas) y testigos larva (hojas desinfectadas, no tratadas con el hongo e infestadas con larvas). </P>     <P>Las lecturas del bioensayo se realizaron cada 24 h, registrando el porcentaje de mortalidad diaria y determinando el tiempo al cual muere el 50 - 90% de la poblaci&oacute;n (TL<sub>50</sub>, TL<sub>90</sub>) para cada aislamiento. Las larvas muertas -diariamente se colocaron en c&aacute;maras h&uacute;medas para evidenciar si la muerte fue provocada por la infecci&oacute;n del hongo evaluado. Los datos de mortalidad se corrigieron mediante la f&oacute;rmula de Schneider - Orelli (Ciba Geygi 1973), obteni&eacute;ndose el porcentaje de eficacia. Posteriormente, se sometieron a un an&aacute;lisis de varianza y la prueba de comparaci&oacute;n de medias por Tukey (&alpha;=0,05). </P>     <P><B>Determinaci&oacute;n de las concentraciones y dosis letales de los aislamientos seleccionados.</B> Posteriormente, se seleccionaron los aislamientos de este hongo que cumplieron con los criterios de actividad biocontroladora alta sobre larvas del insecto, tiempos letales TL<sub>50</sub> y TL<sub>90</sub> menores y un crecimiento y esporulaci&oacute;n &oacute;ptimas en el medio de cultivo. A estos aislamientos seleccionados se les determin&oacute; la concentraci&oacute;n letal media y noventa (CL50 y CL90) y al mejor de ellos se le determin&oacute; la dosis letal media y noventa (DL<sub>50</sub> y DL<sub>90</sub>). </P>     <P>Las condiciones metodol&oacute;gicas y el dise&ntilde;o experimental de los bioensayos para la determinaci&oacute;n de las concentraciones letales, fueron las mismas descritas anteriormente; para ello se evaluaron cinco concentraciones correspondientes a 1x10<sup>3</sup>, 1x10<sup>4</sup>, 1x10<sup>5</sup>, 1x10<sup>6</sup> y 1x10<sup>7</sup> conidios.ml<sup>-1</sup>. Los datos obtenidos en el experimento se analizaron mediante el programa estad&iacute;stico Probit. </P>     <P>Para determinar la DL<sub>50</sub> y DL<sub>90</sub> del mejor aislamiento de<I> N. rileyi</I> seleccionado, se hizo una aplicaci&oacute;n t&oacute;pica de 5 &micro;l con dosis de 5, 50, 500, 5.000 y 50.000 conidios/larva (las suspensiones de conidios se realizaron en soluci&oacute;n de TWeen 80 al 0,5%). La aplicaci&oacute;n se hizo sobre el dorso tor&aacute;cico de larvas de segundo instar. El dise&ntilde;o experimental para este bioensayo fue igual al descrito anteriormente. De igual forma, los datos obtenidos se analizaron mediante el programa estad&iacute;stico Probit. </P>     <p><font size="3"><B>Resultadosy Discusi&oacute;n </b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><b>Aislamiento, selecci&oacute;n y evaluaci&oacute;n de <I>N. rileyi.</I></b> Se recolectaron 37 muestras (larvas muertas de S.<I> frugiperda</I> con s&iacute;ntomas aparentes de infecci&oacute;n por hongos). En la finca Santana (lotes 4 y 5) fue donde se encontr&oacute; el n&uacute;mero mayor de insectos con signos de<I> nomuraea rileyi. Para</I> la zona de la altillanura y del piedemonte llanero, se observ&oacute; una alta incidencia de epizootias causadas por el hongo<I> N. rileyi</I> afectando diferentes instares larvales del insecto. Esto sugiere que las esporas del hongo son f&aacute;cilmente dispersadas y arrastradas por el viento y la lluvia, adhiri&eacute;ndose, germinando, esporulando e infectando nuevos insectos en el campo, comportamiento favorecido por la humedad alta presente en la regi&oacute;n. </P>     <P>A partir de muestras analizadas correspondientes a larvas muertas de S. <I>frugiperda</I> procedentes del departamento del Meta, se obtuvieron diez (10) aislamientos nativos de<I> n. rileyi,</I> los cuales presentaron morfolog&iacute;a t&iacute;pica tanto microsc&oacute;pica como macrosc&oacute;pica del hongo, con algunas diferencias ligeras en cuanto a la tonalidad en el color de la esporulaci&oacute;n. Estos diez aislamientos, se purificaron mediante repiques sucesivos en el medio de cultivo espec&iacute;fico, para su posterior conservaci&oacute;n en cuarto fr&iacute;o a 4&deg;C (<a href="#t1">Tabla 1</a>). </P>     <p align="center"><a name="t1"><img src="img/revistas/rcen/v30n1/v30n1a14t1.gif"></a></p>     <P>El n&uacute;mero limitado de aislamientos nativos obtenidos de <i>Nomuraea rileyi</i> (10), con respecto a la alta cantidad de muestras recolectadas (37), pudo haberse debido a la dificultad en purificar este hongo y a las exigencias nutricionales requeridas para su crecimiento y esporulaci&oacute;n; ya que las muestras biol&oacute;gicas tra&iacute;das de campo presentaron en su superficie muchos microorganismos saprofitos como hongos y bacterias, que interfirieron con el aislamiento y purificaci&oacute;n de &eacute;ste, debido a su crecimiento r&aacute;pido en los medios, en comparaci&oacute;n con los inocules de <i>N. rileyi,</i> que presentan un crecimiento m&aacute;s lento, lo cual conllev&oacute; a una competencia entre estos microorganismos por espacio y por nutrientes en el medio de cultivo. </P>     <P>Si bien es cierto que en la literatura existen medios recomendados para el crecimiento de hongos del g&eacute;nero <i>Nomuraea</i>, &eacute;stos no son los m&aacute;s eficientes para el aislamiento, crecimiento y esporulaci&oacute;n del hongo, debido a que no son selectivos y muchos carecen de los requerimientos nutricionales espec&iacute;ficos para la total esporulaci&oacute;n del hongo. Por tal raz&oacute;n fue necesario mejorar el medio de cultivo semiselectivo descrito por Vimala (1994), que permitiera inicialmente realizar el aislamiento adecuado del hongo a partir de las muestras recolectadas. </P>     <P>El criterio para haber utilizado en todos los ensayos biol&oacute;gicos larvas de segundo instar del insecto, fue motivado porque los primeros estadios de lepid&oacute;pteros (primer y segundo instar) son m&aacute;s susceptibles de controlar en campo que instares avanzados<I>.</I> Adem&aacute;s, en ensayos previos de estandarizaci&oacute;n para comparar la patogenicidad de un aislamiento de <i>Nomuraea</i> utilizando diferentes instares larvales de <i>S. frugiperda,</i> se aplic&oacute; una concentraci&oacute;n de 1x10<sup>7</sup> conidios.ml<sup>-1</sup> sobre hojas de higuerilla, las cuales se infestaron independientemente con larvas de segundo y de cuarto instar del insecto, obteni&eacute;ndose porcentajes de mortalidad del 100 y del 80%, respectivamente. Resultados similares fueron obtenidos por Bustillo y Posada (1986), quienes evaluaron la patogenicidad de un aislamiento de Nomuraea<I> rileyi </I>sobre larvas de tercer instar de S.<I> frugiperda,</I> encontrando que &eacute;stas fueron muy susceptibles al hongo, con un mortalidad de 83,7%. De otro lado. Mu&ntilde;era<I> et al.</I> (1999) determinaron que larvas de primer instar de<I> Erinnyis ello</I> (Lepidoptera: Sphingidae) fueron m&aacute;s susceptibles a la patogenicidad de un aislamiento de<I> B. bassiana</I> obteni&eacute;ndose el 87,5% de mortalidad, a diferencia del 27,5% de mortalidad obtenido cuando se utilizaron larvas de quinto instar del insecto. </P>     <P>Este comportamiento podr&iacute;a atribuirse a diferentes mecanismos de defensa presentes en los estadios larvales de los insectos; seg&uacute;n Watanabe (1987) &eacute;stos pueden ser de &iacute;ndole cuticular cuando se lleva a cabo la penetraci&oacute;n de los hongos, tambi&eacute;n factores en la hemolinfa contra el crecimiento del pat&oacute;geno y la resistencia por parte del insecto a los metabolitos t&oacute;xicos producidos por los hongos. Por otra parte, lanada y Kaya (1993) afirman que la composici&oacute;n de los amino&aacute;cidos de la superficie del integumento de las larvas, var&iacute;a seg&uacute;n el estadio larval en que se encuentren las larvas y el tiempo antes de la muda; lo anterior podr&iacute;a explicar, la mayor susceptibilidad del segundo instar de <i>S. frugiperda </i>a<i> N. rileyi </i>al suponer que la composici&oacute;n de su integumento en un momento dado, permiti&oacute; la efectiva penetraci&oacute;n y por lo tanto una mayor mortalidad que la obtenida con el cuarto instar del insecto. </P>     <P>De otra parte, con el fin de simular las aplicaciones en campo, las suspensiones de conidios de los diferentes aislamientos se asperjaron sobre hojas de higuerilla (utilizadas como alimento) y no sobre las lar-vas del insecto; ya que si las aspersiones se realizaban sobre las hojas y sobre los insectos, se estar&iacute;a propiciando la patogenicidad de los microorganismos en los insectos bajo condiciones obligadas, lo que conllevar&iacute;a a obtener falsos positivos. Adem&aacute;s, autores como Mu&ntilde;era<I> et al.</I> (1999), en ensayos realizados en laboratorio, cuando compararon dos m&eacute;todos de inoculaci&oacute;n de conidios de un aislamiento de <I>Beauveria bassiana</I> contra larvas de <I>Erinnys ello,</I> aspersi&oacute;n directa sobre las larvas contra aspersi&oacute;n sobre el sustrato de alimentaci&oacute;n, no encontraron diferencias significativas en los porcentajes de mortalidad. </P>     <P>Al cabo de los 10 d&iacute;as de haber hecho la aplicaci&oacute;n, el aislamiento que ocasion&oacute; la actividad biocontroladora mayor (100%) fue el codificado como Nm-07 procedente de la finca Panorama (Puerto Qait&aacute;n, Meta), esta actividad fue seguida por la producida por el aislamiento Nm-06-4 (proveniente de Puerto Qait&aacute;n -Meta) con el 95% de mortalidad, y por los aislamientos Nm-016 y Nm-10 (provenientes de Villavicencio Meta) con una mortalidad del 95%. Las actividades biocontroladoras de estos cuatro aislamientos no fueron significativamente diferentes entre s&iacute;, ni diferentes con la actividad obtenida con la cepa de referencia de<I> riomuraea rileyi</I> Nm-004, procedente de Palmira, con la cual se obtuvo tambi&eacute;n el 100% de mortalidad (<a href="#t2">Tabla 2</a>). </P>     <p align="center"><a name="t2"><img src="img/revistas/rcen/v30n1/v30n1a14t2.gif"></a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Teniendo en cuenta los criterios para la selecci&oacute;n de aislamientos expuestos en la metodolog&iacute;a, se seleccionaron, para el ensayo posterior, los aislamientos nativos Nm-07 y Nm-06-4 por presentar la actividad biocontroladora m&aacute;s alta correspondiente al 100 y 95% de mortalidad, respectivamente. Adem&aacute;s, estos aislamientos exhibieron tiempos letales 50 y 90 bajos, correspondientes a 6,2 d&iacute;as y 7,9 d&iacute;as, respectivamente, para el aislamiento Nm07 y de 6 d&iacute;as, 7 horas y 9 d&iacute;as, para el aislamiento Nm-06-04; en comparaci&oacute;n con la cepa de referencia (<a href="#t2">Tabla 2</a>), con la que los tiempos letales 50 y 90 fueron de 6,8 y 8,4 d&iacute;as, respectivamente. </P>     <P>As&iacute; mismo, estos aislamientos produjeron una esporulaci&oacute;n polvosa en el medio de cultivo, lo que permiti&oacute; la f&aacute;cil recolecci&oacute;n y manipulaci&oacute;n de los conidios del medio, a diferencia de la cepa de referencia que, en el medio de cultivo, present&oacute; una esporulaci&oacute;n algodonosa (con presencia de micelio) lo que dificult&oacute; la recolecci&oacute;n de los conidios. </P>     <P><B>Determinaci&oacute;n de las concentraciones y dosis letales de los aislamientos seleccionados.</B> Para la determinaci&oacute;n de las concentraciones letales de los aislamientos seleccionados, se evaluaron cinco concentraciones: IxlO3, 1x10<sup>4</sup>, 1x10<sup>5</sup>, 1x10<sup>6</sup> y 1x10<sup>7</sup> conidios.ml<sup>-1</sup>. Las lecturas de los tratamientos se realizaron diariamente hasta los 15 d&iacute;as despu&eacute;s de aplicaci&oacute;n. </P>     <P>El an&aacute;lisis estad&iacute;stico Probit determin&oacute; para el aislamiento Nm-07 una concentraci&oacute;n letal media (CL<sub>50</sub>) de 9,8 x 10= conidios.ml<sup>-1</sup> y una concentraci&oacute;n letal noventa (CL<sub>90</sub>) de 2.2x10<sup>5</sup> conidios ml<sup>-1</sup></P> Para el aislamiento Nm 06-04, el an&aacute;lisis Probit determin&oacute; una CL<sup><sub>50</sub></sup> de 1,3 x 10<sup>4</sup>conidios.ml<sup>-1</sup> y una CL<sub>90</sub> de 7,9 x 105 conidios.ml<sup>-1</sup>, valores que fueron ligeramente mayores a los obtenidos con el aislamiento Nm-07 (<a href="#t3">Tabla 3</a>). Teniendo en cuenta que el aislamiento nativo Nm07 fue el que obtuvo una menor CL<sub>50</sub> y CL<sub>90</sub> se seleccion&oacute; para determinarle la dosis letal media y la dosis letal noventa (DL<sub>50</sub> DL<sub>90</sub>).     <p align="center"><a name="t3"><img src="img/revistas/rcen/v30n1/v30n1a14t3.gif"></a></p>     <P>Los valores de CL<sub>50</sub> y CL<sub>90</sub>, obtenidos en este estudio, sugieren que la cepa seleccionada es virulenta y altamente promisoria para el control de larvas de S. <I>frugiperda</I> en campo, si se comparan estos resultados con los de autores como Vimala (1994) y Qonz&aacute;les et<I> al.</I> (1996), quienes mencionaron que aislamientos de<I> n. rileyi</I> evaluados sobre larvas de segundo instar de<I> S. littura,</I> tuvieron un rango de CL<sup><sub>50</sub></sup>que vari&oacute; entre 9,3 x 10<sup>6</sup> y 1x10<sup>8</sup> conidios.ml<sup>-1</sup>. </P>     <P>Al determinarse la DL<sub>50 </sub>y DL  <sub>90</sub> se observ&oacute; que los porcentajes de mortalidad menores se obtuvieron cuando se aplicaron las dosis de cinco y cincuenta conidios sobre cada larva, con estas dosis letales s&oacute;lo hasta el noveno d&iacute;a se present&oacute; mortalidad en las larvas, la cual fue de 2,5 y 20% respectivamente; y se incrementaron hasta obtenerse el 22,5 y el 50% de mortalidad respectivamente, al cabo de los quince d&iacute;as de realizado el ensayo. </P>     <P>De otra parte, los porcentajes de mortalidad mayores se obtuvieron cuando se aplicaron las dosis de 500, 5.000 y 50.000 conidios/larva. Con estas tres dosis a partir del quinto d&iacute;a se obtuvo el 5% de mortalidad, y se increment&oacute; en un 22,5, 32,5 y 60%, respectivamente, al cabo de los siete d&iacute;as post aplicaci&oacute;n. A los quince d&iacute;as de realizado el ensayo, se obtuvo una mortalidad acumulada del 85% con la dosis de 500 conidios/larva; de 92,5% de mortalidad con la dosis de 5.000 conidios/larva y de 95% de mortalidad con la dosis de 50.000 conidios/larva. Estos resultados demuestran que con las dosis m&aacute;s altas de 5.000 y 50.000 conidios/larva se obtuvo una mortalidad similar en larvas del insecto correspondientes al 92,5 y 95%, respectivamente (<a href="#f1">Fig. 1</a>). </P>     <p align="center"><a name="f1"><img src="img/revistas/rcen/v30n1/v30n1a14f1.gif"></a></p>     <P>En la determinaci&oacute;n de las dosis letales cincuenta y noventa del aislamiento Nm07 de<I> N. rileyi,</I> se estableci&oacute; una DL<sub>50</sub> de 44 conidios/larva necesarios para matar el 50% de la poblaci&oacute;n y una DL<sub>90</sub> de 3.380 conidios/larva necesarios para matar el 90% de las larvas utilizadas. Estos resultados indicar&iacute;an que para controlar la poblaci&oacute;n de la plaga en campo se necesitar&iacute;a aplicar concentraciones bajas del hongo; lo que significar&iacute;a un ahorro de tiempo y dinero en las etapas de producci&oacute;n masiva y formulaci&oacute;n, necesarias para el desarrollo de un bioplaguicida. </P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="3"><B>Conclusiones </b></font></p>     <P>&bull; Las mayores actividades biocontroladoras se obtuvieron con cuatro aislamientos de<I> n. rileyi</I> (Nm 01-06, Nm-10, Nm 06-04 y Nm-07) ocasionando mortalidades entre 94,73 y 100%.</P>     <P>&bull; Con el aislamiento Nm-07 se obtuvieron los menores valores de concentraci&oacute;n y dosis letal.</P>     <P>&bull; Teniendo en cuenta su virulencia alta y la mortalidad causada bajo condiciones de  laboratorio sobre larvas de S.<I> frugiperda, </I>el aislamiento Nm-07 de<I> n. rileyi</I> fue seleccionado como el m&aacute;s promisorio para hacer estudios de formulaci&oacute;n y la posterior evaluaci&oacute;n bajo condiciones de campo. </P>     <P><font size="3"><B> Literatura citada </b></font></P>     <!-- ref --><P>BUSTILLO, A.; POSADA, F. 1986. Patogenicidad de un aislamiento de<I> Nomuraea rileyi</I> sobre larvas del cogollero del ma&iacute;z Spodop&iacute;era<I> frugiperda.</I> Revista Colombiana de Entomolog&iacute;a 12 (1): 5-15.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000058&pid=S0120-0488200400010001400001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>CIBA GEYOI. 1973. Manual de ensayos de campo. 215 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000059&pid=S0120-0488200400010001400002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>GARC&Iacute;A, F.; MOSQUERA, M.; VARGAS, C.; ROJAS, L. 2002. Control biol&oacute;gico, microbiol&oacute;gico y f&iacute;sico de Spodop&iacute;era<I> frugiperda </I>(Lepidoptera: Noctuidae), plaga del ma&iacute;z y otros cultivos en Colombia. Revista Colombiana de Entomolog&iacute;a 28 (1): 53-60.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000060&pid=S0120-0488200400010001400003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   align="" >GONZ&Aacute;LES, H.; CARBALLO, M.; BLANCO, H.1996. Efecto de cepas de<I> Beauveriabassiana</I> (Bals.) Vuill sobre la mortalidadde<I> Ecdytolopha torticornis</I> (Meyrick) (Lep:Tortricidae) en macadamia. <a href="http://www.catie_ac.cv/-cicmip/rev40hgonz40" target="_blank">http://www.catie_ac.cv/-cicmip/rev40hgonz40</a>.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000061&pid=S0120-0488200400010001400004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>MINISTERIO DE AGRICULTURA Y DESARROLLO RURAL. 1996. Anuario estad&iacute;stico del sector agropecuario y pesquero. Oficina de informaci&oacute;n y Estad&iacute;stica. Bogot&aacute;. 206 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000062&pid=S0120-0488200400010001400005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P> MU&Ntilde;ERA, D.; DE LOS R&Iacute;OS J.; BELLOTTI, A. 1999. Patogenicidad sobre<I> Erinnys ello</I> (Lepidoptera: Sphingidae) en condiciones de laboratorio por hongos entorno pat&oacute;genos recolectados en cultivos comerciales de yuca,<I> Manihot escalenta</I> en el Valle del Cauca, Colombia. Revista Colombiana de Entom&oacute;logo 25 (3-4). 161-167.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000063&pid=S0120-0488200400010001400006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P> TAMADA, Y.; KAYA, H. 1993. Insect pathology.  Academic Press INC. New York. 666 p. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000064&pid=S0120-0488200400010001400007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P> VIMALA, P. 1994. Conidia production of the  entomopathogenic fungus<I> Nomureae rileyi</I> and its evaluation for control of <I>Spodoptera litura</I> (Fab.) on<I> Ricinus </I> communis. Journal of Invertebrate Pathology 63: 145-150. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S0120-0488200400010001400008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P> WATANABE, H. 1987. The host population. Epizootiology of insect. diseases. John Wiley and Sons. USA. 555 p. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000066&pid=S0120-0488200400010001400009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><P>&nbsp;</P>     <P>Recibido: Abr. 22/2003 &bull; Aceptado: Ago. 07/ 2003 </P> </font>      ]]></body><back>
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