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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Efecto del medio de cultivo en la virulencia de Nomuraea rileyi sobre Spodoptera frugiperda(Lepidoptera: Noctuidae)]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Effect of the culture médium in the virulence of nomuraea rileyi on Spodoptera frugiperda (Lepidoptera: Moctuidae)]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Isolate Nm005 of nomuraea rileyi was selected in a previous study by causíng 95% mortality in the fall armyworm Spodoptera frugiperda, the most important pest in maize crops. In order to produce hígh quality conidia for developing an efficient biopesticide, the objective of the present worK was to determine the effect of the culture médium and some potential virulence inductors on the microbiological characteristics and biocontrol activity of the ¡i. rileyi conidia. The fungus was grown on miliet, rice, oat and soybean substrates. After evaluating yield, germination and biocontrol activity of produced conidia on the substrates, the soybean médium was selected because the conidia presented the best characteristics. In addition, the fungus was grown on yeast-malt extract agar médium supplemented with several potential inductors of virulence that consisted of two proteic inductors, a homogenization of larvae, a non specific inductor, an inductor based on a polymer and a control with no inductor. By using a bioassay, the proteic inductor 1 and polymer inductor 1 were selected because they caused an increase in biocontrol activity. Afterwards, the combined effect of the selected substrate for mass production and the selected potential inductor of virulence on the germination and biocontrol activity of the fungus was evaluated. The polymer inductor 1, combined with the culture médium, liad a positive effect on the characteristics evaluated. The results obtained suggest that the type and composition of the culture médium determines the microbiological characteristics and virulence of the biomass produced.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Bioensayo]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <center><font size="2" face="Verdana">    </font></center>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center"><font size="4" face="Verdana"><b>Efecto del medio de cultivo en la virulencia de <i>Nomuraea rileyi </i>sobre <i>Spodoptera frugiperda</i></b></font><font size="4"><b>(Lepidoptera: Noctuidae)</b></font></p> <font size="2" face="Verdana"></font>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center"><font size="3" face="Verdana"><b>Effect of the culture m&eacute;dium in the virulence of <i>nomuraea rileyi </i>on        <i>Spodoptera frugiperda </i><br />   (Lepidoptera: Moctuidae)</b></font></p>     <center></center><font size="2" face="Verdana">    <p><b>LUISA FERNANDA CARO C.<sup>1</sup>, LAURA FERNANDA VILLAMIZAR R.<sup>2</sup>,    CARLOS ESPINEL C.<sup>3</sup>,ALBA MARINA COTES<sup>4</sup></b></p> </font>     <p><font size="2" face="Verdana"> 1. Estudiante Microbiolog&iacute;a industrial, Pontificia Universidad Javeriana, Bogot&aacute;. E-mail: <a href="mailto:luisa_donald@hotmail.com">luisa_donald@hotmail.com</u></a></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">2. Investigadora. Laboratorio de Control Biol&oacute;gico. Program. MIR C. j. Tibaitat&aacute; - Corpoica. Km 14 v&iacute;a Mosquera. Tel&eacute;fono 4227300 ext 1409. E-mail: <a href="mailto:laurafernandav@yahoo.es">laurafernandav@yahoo.es</u></a></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana"> 3. Investigador. Laboratorio de Control Biol&oacute;gico. Programa MIR C. I. Tibaitat&aacute; - Corpoica. E-mail: <a href="mailto:cespinel@yahoo.com">cespinel@yahoo.com</a></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">4.Ph. D. Fitopatolog&iacute;a. Investigadora. Laboratorio de Control Biol&oacute;gico. Programa MIP. C. I. Tibaitat&aacute; - Corpoica. E-mail <a href="mailto:cotesprado@hotmail.com">cotesprado@hotmail.com</u></a></font></p> <hr size="1" /> <font size="2" face="Verdana"></font>     <p><font size="2" face="Verdana"><b><font size="3">Resumen. </font></b>En un estudio previo en laboratorio, se seleccion&oacute; el aislamiento    Mm005 del hongo por ocasionar una mortalidad del 95% sobre el gusano cogollero    del ma&iacute;z <i>Spodoptera frugiperda, </i>la plaga m&aacute;s importante de este cultivo.    Con miras a la producci&oacute;n de conidios de alta calidad y virulencia que permitan    desarrollar un bioplaguicida eficiente, el objetivo del presente trabajo fue    el de determinar el efecto del medio de cultivo y de algunos potenciales inductores    de virulencia sobre las caracter&iacute;sticas microbiol&oacute;gicas de los conidios de <i>fiomuraea      rileyi </i>y su actividad biocontroladora sobre <i>S. frugiperda. </i>Para tal    fin, el hongo fue crecido en los sustratos millo, arroz, avena y soya. Se evalu&oacute;    el rendimiento de conidios en los sustratos, la germinaci&oacute;n y actividad biocontroladora    de los mismos, seleccion&aacute;ndose el medio a base de soya, en el cual se obtuvieron    los conidios con las mejores caracter&iacute;sticas. Adicionalmente, el hongo fue crecido    en medio extracto de levadura-malta suplementado con potenciales inductores    de virulencia que consistieron en dos inductores proteicos, un homogeneizado    de larvas, un inductor no espec&iacute;fico, un inductor a base de un pol&iacute;mero y un    control sin inductor. Mediante un bioensayo se seleccionaron los inductores    proteico 1 y pol&iacute;mero 1 por causar un aumento en la actividad biocontroladora.    Posteriormente, se evalu&oacute; el efecto combinado del sustrato de producci&oacute;n masiva    y los potenciales inductores de virulencia seleccionados sobre la germinaci&oacute;n    y actividad biocontroladora del hongo. Se encontr&oacute; que el inductor pol&iacute;mero    1, combinado con el medio de producci&oacute;n, present&oacute; un efecto positivo sobre las    caracter&iacute;sticas evaluadas. Los resultados obtenidos sugirieren que el tipo y    composici&oacute;n del medio de cultivo, determinan las caracter&iacute;sticas microbiol&oacute;gicas  y la virulencia de la biomasa producida.</font></p> <font size="2" face="Verdana"></font>     <p><font size="2" face="Verdana"><b><font size="3">Palabras clave: </font></b>Bioensayo. Inductor de virulencia. Patogenicidad. Producci&oacute;n    masiva.</font></p> <hr size="1" /> <font size="2" face="Verdana"> </font>    <p><font size="2" face="Verdana"><b><font size="3">Summary.</font> </b>Isolate Nm005 of <i>nomuraea rileyi </i>was selected in a previous    study by caus&iacute;ng 95% mortality in the fall armyworm <i>Spodoptera frugiperda,    </i>the most important pest in maize crops. In order to produce h&iacute;gh quality    conidia for developing an efficient biopesticide, the objective of the present    worK was to determine the effect of the culture m&eacute;dium and some potential virulence    inductors on the microbiological characteristics and biocontrol activity of    the <i>&iexcl;i. rileyi </i>conidia. The fungus was grown on miliet, rice, oat and    soybean substrates. After evaluating yield, germination and biocontrol activity    of produced conidia on the substrates, the soybean m&eacute;dium was selected because    the conidia presented the best characteristics. In addition, the fungus was    grown on yeast-malt extract agar m&eacute;dium supplemented with several potential    inductors of virulence that consisted of two proteic inductors, a homogenization    of larvae, a non specific inductor, an inductor based on a polymer and a control    with no inductor. By using a bioassay, the proteic inductor 1 and polymer inductor    1 were selected because they caused an increase in biocontrol activity. Afterwards,    the combined effect of the selected substrate for mass production and the selected    potential inductor of virulence on the germination and biocontrol activity of    the fungus was evaluated. The polymer inductor 1, combined with the culture    m&eacute;dium, liad a positive effect on the characteristics evaluated. The results    obtained suggest that the type and composition of the culture m&eacute;dium determines    the microbiological characteristics and virulence of the biomass produced.</font></p> <font size="2" face="Verdana"></font>     <p><font size="2" face="Verdana"><b><font size="3">Key words: </font></b>Bioassay. Inductors of virulence. Pathogenicity. Mass production.</font></p> <hr size="1" /> <font size="2" face="Verdana"></font>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p> <font size="2" face="Verdana"> </font>     <p><font size="2" face="Verdana">El da&ntilde;o ocasionado por el gusano cogollero del ma&iacute;z, SpofJop&iacute;era <i>frugiperda    </i>(J. E. Smith, 1797), es quiz&aacute; uno de los m&aacute;s importantes a nivel econ&oacute;mico,    debido a que es una especie pol&iacute;faga que se encuentra difundida en todos los pa&iacute;ses ame&shy;ricanos, provocando grandes p&eacute;rdidas en los rendimientos de muchos cultivos (Garc&iacute;a 2000). </font></p> <font size="2" face="Verdana">     <p> Durante mucl10s a&ntilde;os,'para reducir los efectos nocivos de S. <i>frugiperda. </i>se ha dependido del uso de insecticidas qu&iacute;micos. uti&shy;lizando el doble o el triple de las dos&iacute;s indicadas (p&eacute;rez 2003). En muchas oca&shy;siones la efectividad ha sido baja, debido a las aplicac&iacute;ones realizadas despu&eacute;s del momento cr&iacute;tico de la plaga y de la etapa fenol&oacute;gica m&aacute;s apropiada del cultivo o cuando los da&ntilde;os son irreversibles; incluso se ha pretendido aminorarla cuando    pr&aacute;cticamente el cultivo alcanza un tama&ntilde;o que imposibilita la entrada de las    m&aacute;quinas al campo; adem&aacute;s, &eacute;ste ha tra&iacute;do como consecuencia el desequilibrio    biol&oacute;gico desde el establecimiento del cultivo (Garc&iacute;a y Pulido 1984).</p> </font><font size="2" face="Verdana">     <p>La creciente necesidad de reducir el uso de agroqu&iacute;micos para el control fitosanitario    de los cultivos, hace necesario desarrollar tecnolog&iacute;as que permitan de forma    pr&aacute;ctica, econ&oacute;mica y efectiva obtener productos a partir de microorganismos,    insectos o nern&aacute;todos con calidad y en cantidades suficientes para su aplicaci&oacute;n    masiva en las zonas cultivadas (Ferrer 2001).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><i>S. frugiperda </i>es atacado por una gran diversidad de enemigos naturales    como parasitoides, depredadores y pat&oacute;genos, entre los cuales se destaca el    hongo <i>Nomuraea rileyi </i>(Farlow) Samson (Hiphomycetes). Este hongo entomopat&oacute;geno    se encuentra distribuido en amplios agroeco-sistemasy zonas geogr&aacute;ficas, donde    juega <i>un </i>papel importante en la regulaci&oacute;n de las poblaciones, no s&oacute;lo    del cogollero sino de otras especies de importancia econ&oacute;mica como: <i>Atiticarsia    gernmatalis </i>(Hubner) (Lepidoptera: Noctuidae), <i>Pseudoplusia includens    </i>(Walker) (Lepidoptera: Noctuidae), <i>TYichoplusia ni </i>(Hubner) (Lepidoptera:    noctuidae) y <i>Helicoverpa uirescens </i>(F.) (Lepidoptera: Noctuidae), lo    cual hace que este hongo se pueda aprovechar como agente biocontrolador potencializando    su virulencia (Le&oacute;n y Pulido 1991).</p>     <p>En el laboratorio de Control Biol&oacute;gico del Programa de Manejo Integrado de    Plagas de Corpoica, Centro de Investigaciones Tibaitat&aacute;, se estandarizaron diferentes    sustratos de producci&oacute;n masiva para la cepa de <i>r&iacute;. rileyi </i>Mm012, la cual    fue seleccionada por su alta eficiencia para el control de 5. <i>frugiper&uacute;a    </i>(Arriero 2001). Sin embargo, este aislamiento present&oacute; disminuci&oacute;n en la    actividad biocontroladora, al ser cultivado en medios de producci&oacute;n masiva y    al ser sometido a procesos de formulaci&oacute;n, adem&aacute;s de ser un aislamiento muy    variable en su crecimiento. Por tales razones, fue necesario iniciar los estudios    de desarrollo con otro aislamiento de /Y. <i>rileyi </i>codificado como Nm005,    el cual caus&oacute; porcentajes de mortalidad altos del insecto bajo condiciones de    laboratorio (95% mortalidad acumulada) y es una cepa de menor variabilidad (Villamizar    <i>et al. </i>2002).</p>     <p>Para continuar con las investigaciones tendientes al desarrollo de un bioplaguicida    con este aislamiento, el objetivo del presente trabajo fue el de seleccionar    un medio eficiente para la producci&oacute;n masiva de conidios y determinar su efecto    sobre la actividad biocontroladora de este aislamiento, as&iacute; como buscar potenciales    inductores de virulencia, con miras a la producci&oacute;n de conidios de alta calidad    que permitan desarrollar un bioplaguicida eficiente.</p> </font>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>Materiales y M&eacute;todos</b></font></p> <font size="2" face="Verdana">     <p>Se utiliz&oacute; el aislamiento de <i>nomuraea rileyi </i>codificado como Mm005,    presente en el Banco de Germoplasma de Microorganismos del Laboratorio de Control    Biol&oacute;gico de Corpoica, procedente de un cultivo de ma&iacute;z en la finca Panorama,    Puerto Qait&aacute;n (Meta) aislado a partir de larvas de <i>Spodoptera frugiperda    </i>infectadas naturalmente en campo y conservado en tubos con agar extracto    de levadura - extracto de Malta (YM) inclinado; se realizaron subcultivos del    hongo y se conservaron en el mismo medio.</p>       <p><b>Producci&oacute;n masiva de <i>Nomuraea rileyi.</i></b></p>       <p>Se evaluaron los sustratos millo, arroz, soya molida y avena para la producci&oacute;n    masiva de /Y. <i>rileyi. </i>Estos se prepararon y suplementaron siguiendo    metodolog&iacute;as previamente estandarizadas en el Laboratorio de Control Biol&oacute;gico    de Corpoica para la inducci&oacute;n de esporuiacion de aislamientos de <i>ri. rileyi    </i>(Arriero 2001).</p>       <p>En bandejas de l&aacute;mina galvanizada se pesaron 150 g de matriz s&oacute;lida (millo,    arroz) y se humedecieron con 150 mi de hidrolizado de prote&iacute;na al 8%. Para    el medio de soya se pesaron 200 g de soya molida y se humedecieron con 200 mi    de hidrolizado de prote&iacute;na al 8%. Para el medio con avena, se utiliz&oacute; 67% de    avena en hojuelas y 33% de fuente de prote&iacute;na y se adicionaron 350 mi de agua,    esta mezcla fue licuada hasta su total homogeneizaci&oacute;n y se adicionaron 250    g de la mezcla en cada bandeja. &Eacute;stas se esterilizaron durante 20 minutos a    119 &deg;C y 15 libras de presi&oacute;n y cada bandeja se inocul&oacute; con 20 mi de suspensi&oacute;n    de conidios, la cual se prepar&oacute; en una soluci&oacute;n de TWeen 80 al 0,1% y se ajust&oacute;    a una concentraci&oacute;n de lxlO<sup>6 </sup>conidios.mi<sup>-1</sup>, a partir de    un cultivo en caja en medio YM incubado durante 15 d&iacute;as. Las bandejas se incubaron    a 25&deg;C y 55% de humedad relativa, con luz constante directa durante 10 d&iacute;as.    Terminado el tiempo de incubaci&oacute;n se evaluaron par&aacute;metros microbiol&oacute;gicos como    germinaci&oacute;n, rendimiento y actividad biocontroladora.</p>       <p><b>Germinaci&oacute;n. </b>Se tomaron 0,1 g de conidios puros y se llevaron a un volumen    de 10 mi con Tween 80 al 0,1%. A partir de esta suspensi&oacute;n se realizaron dos    diluciones seriadas y se sembraron en cajas de Petri con medio YM. Transcurrido    el tiempo de incubaci&oacute;n (24 h), se agreg&oacute; una gota de azul de lactofenol con    el prop&oacute;sito de te&ntilde;ir los conidios del hongo. En el microscopio con un aumento    de 40X, se realiz&oacute; la lectura del n&uacute;mero de conidios totales (germinados y no    germinados) en 10 campos &oacute;pticos seleccionados aleatoriamente, expresando los    resultados como porcentaje de conidios germinados.</p> </font>    <p><font size="2" face="Verdana"><b>Rendimiento de conidios en los medios de producci&oacute;n masiva. </b>Seg&uacute;n la    metodolog&iacute;a utilizada por Arriero (2001) para evaluar el rendimiento de conidios    en las bandejas, se tomaron tres muestras de 1 cm<sup>2</sup> de medio de producci&oacute;n    masiva esporulado de manera diagonal para cada unidad experimental. Los tres fragmentos    por bandeja se homogeneizaron en 300 mi de Tween 80 al 0,1% con una batidora    Hamilton Beach Scovill por 10 min a velocidad m&aacute;xima. Posteriormente, la cantidad    de conidios se evalu&oacute; mediante recuento en c&aacute;mara de rieubauer y se expres&oacute;    el resultado como conidios.mi&quot;<sup>1</sup>. Cada valoraci&oacute;n se realiz&oacute;    por triplicado, utilizando tres unidades experimentales (tres bandejas) por    tratamiento.</font></p>   <font size="2" face="Verdana">   </font>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana"><b>Evaluaci&oacute;n del efecto de los diferentes sustratos de producci&oacute;n masiva en    la actividad biocontroladora de los conidios de <i>Nomuraea rileyi </i>NmOO5.</b></font></p>   <font size="2" face="Verdana">    <p>Se realizaron bioensayos en condiciones de laboratorio a 25&deg;C y 70% de    humedad relativa. Se utilizaron los tratamientos: conidios producidos en millo,    arroz, soya y avena, un testigo absoluto y un testigo tratado, consistente en    Tween 80 al 0,1%. Para tal fin, se prepar&oacute; una suspensi&oacute;n madre tomando las    esporas de cada sustrato con un pincel est&eacute;ril; a partir de esta suspensi&oacute;n    se realizaron diluciones ajustando la concentraci&oacute;n a 1 x 10<sup>7 </sup>conidios.mi<sup>1</sup>,    la cual, seg&uacute;n estudios previos, correspondi&oacute; a la CL90 para el aislamiento    rimO 12 (Bosae&iacute;a/. 2002). Se aplic&oacute; un volumen de 1,2 mi de cada tratamiento    sobre el haz y el env&eacute;s de hojas de higuerilla <i>(Ricinus communis) </i>previamente    desinfectadas con una soluci&oacute;n de hipoclorito de sodio al 0,5%. En cubetas pl&aacute;sticas    de 16 onzas se coloc&oacute; una servilleta h&uacute;meda, una hoja de higuerilla asperjada    con el tratamiento y una larva de 5. <i>frugiperda </i>en tercer instar, proveniente    de una cr&iacute;a del Instituto de Biotecnolog&iacute;a de la Universidad nacional, cada    recipiente constituy&oacute; una unidad experimental. El dise&ntilde;o experimental fue completamente    al azar con treinta repeticiones por tratamiento. Se llev&oacute; a cabo el registro    de mortalidad a partir de las lecturas realizadas los d&iacute;as cuarto, sexto y d&eacute;cimo    hasta obtener el 100% de mortalidad en alguno de los tratamientos. Con el fin    de evidenciar la presencia del hongo, las larvas muertas se colocaron en c&aacute;maras    h&uacute;medas.</p>       <p>Los resultados se corrigieron calculando el porcentaje de eficacia mediante    la f&oacute;rmula de Schneider - Orelli (Ciba - Qeigv 1973)</p>       <p>Eficacia (%) = </p>       <p>Donde:</p>       <p>b= % de individuos muertos en el tratamiento</p>       <p>k= % de individuos muertos en el testigo</p>       <p><b>Efecto de los potenciales inductores de virulencia en la velocidad de crecimiento    de <i>N. rileyi </i>Nm005. </b>Se prepararon medios suplementados con los potenciales    inductores de virulencia, utilizando tres cajas de Petri por tratamiento donde    cada una constituy&oacute; una unidad experimental. Con un sacabocados de 4 mm de di&aacute;metro se tomaron fragmentos de un medio de cultivo con agar YM crecido    por el hongo durante 15 d&iacute;as <i>y </i>se coloc&oacute; un fragmento esporulado en el    centro de caja de Petri con los medios suplemen<i>tados. las cajas se incubaron por 9 d&iacute;as a </i>25&deg;C. La lectura se realiz&oacute;    en los d&iacute;as tres, seis y nueve de incubaci&oacute;n midiendo el di&aacute;metro de la colonia    formada. El resultado se inform&oacute; en mil&iacute;metros.</p>   <font size="2" face="Verdana">       <p><b>Evaluaci&oacute;n del efecto de potenciales inductores de virulencia sobre la actividad    biocontroladora de los conidios de <i>N. rileyi </i>Nm005. </b><i>ri. rileyi    </i>fue cultivado en cajas de Petri con medio semisint&eacute;tico YM, el cual se suplemento    con los potenciales inductores de virulencia a una concentraci&oacute;n de 0,5% P/R    Los Inductores se adicionaron en forma de polvo con un tama&ntilde;o de part&iacute;cula inferior    a 150 (i y estos consistieron en inductor proteico 1, inductor proteico 2, un    homogeneizado de larvas de S. <i>frugiperda, </i>un inductor no espec&iacute;fico,    inductor pol&iacute;mero 1. Tambi&eacute;n se realiz&oacute; un cultivo en medio YM sin inductor    como tratamiento control. Cada caja se inocul&oacute; con 0,1 mi de una suspensi&oacute;n    de conidios ajustada a una concentraci&oacute;n de 1 x &#93;O<sup>6</sup> conidios.mi&quot;',    provenientes de un cultivo en caja en medio YM de 15 d&iacute;as de edad. Se incubaron    durante 15 d&iacute;as a 25&deg;C y con luz constante directa. Con los conidios provenientes    de cada tratamiento se prepararon suspensiones y se realizaron bioensayos siguiendo    la metodolog&iacute;a descrita anteriormente, utilizando una concentraci&oacute;n subletal    del bongo equivalente a la concentraci&oacute;n letal 50 encontrada en un estudio previo    (10<sup>5</sup> conidios.mi<sup>1</sup>), para poder evidenciar un posible efecto    inductor de virulencia (Bosa <i>et al. </i>2004).</p>       <p><b>Efecto combinado del sustrato de producci&oacute;n masiva </b>y <b>el potencial    inductor de virulencia sobre las caracter&iacute;sticas de /Y. <i>rileyi </i>(Nm005).    </b>Se evalu&oacute; el efecto combinado del sustrato de producci&oacute;n masiva escogido    por su mayor rendimiento, suplementado con el inductor de virulencia seleccionado    sobre la actividad biocontroladora mediante un bioensayo realizado con la metodolog&iacute;a    descrita previamente y utilizando la concentraci&oacute;n subletal 10<sup>3</sup> conidios.mi'.    El medio de producci&oacute;n masiva sin inductor constituy&oacute; el tratamiento control.    Tambi&eacute;n se determin&oacute; el efecto combinado del sustrato con el inductor sobre    la germinaci&oacute;n y el rendimiento de conidios empleando las t&eacute;cnicas descritas    anteriormente.</p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Dise&ntilde;o experimental. </b>Para todas las pruebas se utiliz&oacute; un dise&ntilde;o completamente    al azar con tres repeticiones por tratamiento. Los resultados se sometieron    a diferentes pruebas estad&iacute;sticas, as&iacute;: a) un an&aacute;lisis de varianza y una prueba    de Kruskal-Wallis para la germinaci&oacute;n y el rendimiento cuando se seleccion&oacute;    el sustrato de producci&oacute;n masiva, b) un an&aacute;lisis de varianza y una prueba de    Kruskal-Wallis</p>       <p>para determinar el efecto combinado del sustrato de producci&oacute;n masiva y el    potencial inductor de virulencia, c) la prueba de diferencia m&iacute;nima significativa    para el rendimiento y actividad biocontroladora cuando se evalu&oacute; el efecto combinado    del <i>sustrato de producci&oacute;n masiva y el potencial </i>inductor de virulencia    seleccionados y d) la prueba de Tukey para evidenciar el efecto de los potenciales    inductores de virulencia en la velocidad de crecimiento y actividad biocontroladora    de <i>&ntilde;. rileyi, </i>utilizando una significancia de 0,05.</p> </font>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>Resultados y Discusi&oacute;n</b></font></p>   <font size="2" face="Verdana">       <p><b>Selecci&oacute;n de un medio de cultivo s&oacute;lido para la producci&oacute;n masiva de conidios    de <i>Nomuraea rileyi </i>Nm005</b></p>   </font>    <p><font size="2" face="Verdana"><b>Germinaci&oacute;n. </b>Al evaluar la germinaci&oacute;n de los conidios de <i>n. rileyi    </i>producidos en los diferentes sustratos de producci&oacute;n masiva, se observ&oacute;    germinaci&oacute;n desuniforme, aunque despu&eacute;s de 48 h de incubaci&oacute;n se obtuvo una    germinaci&oacute;n mayor al 95% con todos los tratamientos, con valores de 99,33, 97,83,    97,77 y 99,35% para las c&eacute;lulas provenientes de los sustratos millo, arroz,    avena y soya, respectivamente (<a href="#(fig1)">Fig. 1</a>). Estos resultados indican que los conidios    provenientes de todos los sustratos de producci&oacute;n masiva presentaron una germinaci&oacute;n    alta, la cual no se vio influenciada por el tipo matriz s&oacute;lida utilizada.    La prueba de Kruskal -Wallis (a 0,05) no detect&oacute; diferencias significativas    entre las germinaciones de los conidios producidos en las diferentes matrices    de producci&oacute;n valoradas. Este comportamiento podr&iacute;a atribuirse a que todos los    sustratos evaluados le proporcionaron al hongo lo necesario para su desarrollo    y la formaci&oacute;n de las reservas end&oacute;genas necesarias para la posterior germinaci&oacute;n de los conidios, corno lo informaron    La&ntilde;e y Trinci en 1991, quienes afirman que las diferencias en la germinaci&oacute;n    de esporas de <i>Beauueria bassiana </i>depende de sus respectivas reservas    end&oacute;genas. Estos au<i>tores observaron un aumento de la </i>germinaci&oacute;n de    los conidios de <i>B. bassiana </i>cuando se produjeron en un medio con fuente    de nitr&oacute;geno limitado, sugiriendo que al manipular las condiciones de crecimiento    se pueden mejorar caracter&iacute;sticas de las esporas como longevidad y germinaci&oacute;n.    Los autores tambi&eacute;n observaron que las esporas cosechadas en fase estacionaria    despu&eacute;s de 80 h de incubaci&oacute;n en un cultivo con fuente de nitr&oacute;geno limitada,    contienen m&aacute;s reservas end&oacute;genas (glic&oacute;geno y l&iacute;pidos) que las cosechadas en    un cultivo con fuente de carbono limitada, lo cual determina su capacidad de    germinaci&oacute;n.</font></p>     <p>        <center>     <a name="(fig1)"><img src="img/revistas/rcen/v31n1/v31n1a14fig1.gif"></a>    </center> </p>   <font size="2" face="Verdana">    <p>La germinaci&oacute;n alta de los conidios de todos los tratamientos tambi&eacute;n podr&iacute;a    atribuirse a un posible lavado de los autoinhibidores de germinaci&oacute;n durante    la preparaci&oacute;n de las diluciones, las cuales se realizaron en todos los casos    en una soluci&oacute;n de Tween 80 al 0,1%, efecto que ha sido registrado por autores    como Kuo (1999), quien observ&oacute; que al lavar las esporas de <i>Colleto-trichum    gloeosporioides </i>previamente a la evaluaci&oacute;n de su germinaci&oacute;n, obten&iacute;a porcentajes    superiores a los logrados con las esporas que no hab&iacute;an sido sometidas al proceso    de lavado. Este fen&oacute;meno lo atribuy&oacute; a un posible lavado de los autoinhibidores    de germinaci&oacute;n: gleosporona y la micosporina.</p>       <p>El Tween 80 tambi&eacute;n ha sido considerado como un estimulador de la germinaci&oacute;n    de conidios de <i>Metarhizium anisopliae,</i>actividad que se considera podr&iacute;an tener diferentes detergentes ani&oacute;nicos (Milner  <i>et al. </i>1990).</p>       <p>El hecho de que se haya presentado la misma capacidad de germinaci&oacute;n en todos    los sustratos de producci&oacute;n masiva, podr&iacute;a atribuirse a que los conidios producidos    ten&iacute;an la misma edad al momento de evaluarse la germinaci&oacute;n, factor que ha demostrado    ser determinante en la capacidad de desarrollo de los mismos (Qriffin 1981).    Se ha observado que la germinaci&oacute;n de los conidios tambi&eacute;n puede verse influenciada    por factores como la composici&oacute;n del medio de cultivo en el cual se eval&uacute;e este    par&aacute;metro, como lo inform&oacute; Milner <i>et al. </i>1990. En el presente estudio    la germinaci&oacute;n de /Y. <i>rileyi </i>fue valorada en el medio semisint&eacute;tico YM,    cuya composici&oacute;n principalmente incluye: extracto de levadura, extracto de malta,    dextrosa y peptona, los cuales probablemente le proporcionaron al microorganismo    los nutrientes ex&oacute;genos necesarios para germinar. Milner e&iacute; ai. (1990) observaron    que los conidios de <i>M. anisopliae </i>germinaban pobremente en ausencia de    nutrientes ex&oacute;genos, y determinaron que la glucosa estimulaba su germinaci&oacute;n,    al igual que amino&aacute;cidos simples como la Lalanina y detergentes ani&oacute;nicos como    el TWeen 80. De igual forma, otros autores corno Dillon y Charnley (1990) observaron    un aumento en la capacidad de germinaci&oacute;n de los conidios de <i>M. anisopliae,    </i>al adicionar al medio de cultivo Lalanina y Nacetylglu-cosamina. Estos    autores, determinaron un aumento en la germinaci&oacute;n del hongo, al incubar la    muestra en agua destilada durante 20 h antes de la inoculaci&oacute;n en cajas de Fetri,    fen&oacute;meno que atribuyeron a una iniciaci&oacute;n de la fase de preturgencia de los    conidios, previa a la germinaci&oacute;n de los mismos.</p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Bidochka y Khachatourians (1990) tambi&eacute;n observaron el efecto de fuentes de    carbono, nitr&oacute;geno o f&oacute;sforo presentes en el medio de evaluaci&oacute;n, sobre la germinaci&oacute;n    de los conidios y registraron que al adicionar 0,5 mg/ml r\H<sub>2</sub>P0<sub>4</sub>    a un medio de quitina crudo se incrementa la germinaci&oacute;n del hongo del 10 al    43% despu&eacute;s de 48 h.</p>       <p>Los resultados obtenidos en el presente estudio no mostraron diferencias significativas    en cuanto a la germinaci&oacute;n de los conidios provenientes de los diferentes sustratos    de producci&oacute;n masiva. Este comportamiento posiblemente se debi&oacute; a que estas    matrices en su composici&oacute;n incluyen fuentes de carbono, nitr&oacute;geno, prote&iacute;na,    l&iacute;pidos, macroy microelementos, que probablemente permitieron al microorganismo    realizar la reserva end&oacute;gena de nutrientes necesarios para formar el tubo germinal;    como lo registraron Butt <i>et al. </i>(2001), quienes demostraron que la composici&oacute;n    del medio de cultivo determina la formaci&oacute;n de reservas end&oacute;genas en las c&eacute;lulas    de las cuales depende su germinaci&oacute;n, viabilidad y patogenicidad. La importancia de las reservas end&oacute;genas en la germinaci&oacute;n y posterior desarrollo    del tubo germinal se ha atribuido a que &eacute;stas son utilizadas como fuente de    energ&iacute;a en el proceso de germinaci&oacute;n y promueven el subsecuente crecimiento    y desarrollo del microorganismo (Pascual 1998 citado por Butt e&iacute; ai. 2001).    Cotter e&iacute; ai. (2000) afirman que s&oacute;lo se requiere agua y ox&iacute;geno para la germinaci&oacute;n    de esporas que contienen su propia energ&iacute;a en forma de nutrientes end&oacute;genos    ricos en carbono y nitr&oacute;geno.</p>       <p><b>Rendimiento de conidios de <i>Nomuraea rileyi </i>cultivados en los diferentes    medios de producci&oacute;n masiva</b></p>       <p>El efecto del medio de cultivo en la capacidad de esporulaci&oacute;n del hongo se    evalu&oacute; mediante la cuantificaci&oacute;n de la producci&oacute;n de conidios por unidad de    &aacute;rea.</p>       <p>Las unidades experimentales se inocularon con 10 mi de una suspensi&oacute;n de conidios    ajustada a una concentraci&oacute;n de 1 x 10&deg; conidios.mi<sup>1</sup>; es decir,    cada bandeja se inocul&oacute; con lxlO<sup>7</sup> conidios, lo que equivale a 1,4    x 10<sup>4</sup> conidios.cm<sup>2</sup>. Despu&eacute;s de 19 d&iacute;as de incubaci&oacute;n se    obtuvieron rendimientos de 2,3 x 10<sup>s</sup> conidios.cm<sup>2</sup> en el    sustrato millo, 4,5 x 10<sup>&ntilde;</sup> conidios.cm<sup>2</sup> y 2,0 x 10<sup>8</sup>    conidios.cm<sup>2</sup> en los sustratos soya y arroz, respectivamente y la    menor producci&oacute;n de conidios en el sustrato avena, con un recuento de 4,7 x    10<sup>7</sup> conidios.cm<sup>2</sup>. Como se puede observar en los resultados    obtenidos, con el sustrato avena se obtuvo 1.000 veces el n&uacute;mero de conidios    inoculados, con los sustratos millo y arroz se obtuvo aproximadamente 10.000    veces m&aacute;s, y con el sustrato soya se alcanz&oacute; un rendimiento que equivali&oacute; a    20.000 veces lo inoculado.</p>   </font></font>       <p><font size="2" face="Verdana">El an&aacute;lisis no param&eacute;trico de Kruskal-Wallis (a 0,05) indic&oacute; que el rendimiento    de los&nbsp;conidios del microorganismo producido en sustrato soya fue significativamente superior con respecto al obtenido en el sustrato avena, pero no present&oacute; diferencias significativas con los rendimientos obtenidos en los sustratos millo y arroz. El rendimiento en estos dos &uacute;ltimos sustratos </font><font size="2" face="Verdana">tampoco present&oacute; diferencias estad&iacute;sticas con el resultado obtenido en el medio a base de avena (<a href="#(fig2)">Fig. 2</a>). Estos resultados sugieren que la composici&oacute;n del medio de cultivo tiene un efecto determinante en la esporulaci&oacute;n del microorganismo</font></p>        <center>     <a name="(fig2)"><img src="img/revistas/rcen/v31n1/v31n1a14fig2.gif"></a>    </center>     <p></p>       <p><font size="2" face="Verdana">A pesar de no encontrarse diferencias significativas entre      los resultados obtenidos con los sustratos soya, millo y arroz, se observa una      tendencia num&eacute;rica a una I&quot; mayor producci&oacute;n en el sustrato soya, adem&aacute;s de que en este medio se observ&oacute; un &gt; crecimiento uniforme en todas las      bandejas y una abundante esporulaci&oacute;n en las tres unidades experimentales. Adicionalmente, los conidios producidos en el <sup>e</sup> sustrato soya presentaron      un aspecto <sup>e</sup> polvoso, desprendi&eacute;ndose f&aacute;cilmente del <sup>:_</sup> sustrato y facilit&aacute;ndose su separaci&oacute;n para <sup>e</sup> la evaluaci&oacute;n microbiol&oacute;gica;      caracter&iacute;stica <sup>:s</sup> deseable en la industria de bioplaguicidas <sup>n</sup> (Butt e&iacute; ai. 2001). Lo contrario ocurri&oacute; con <sup>n</sup> los medios de producci&oacute;n      masiva de millo, y arroz y avena, en los cuales se obtuvieron a conidios muy    h&uacute;medos y adheridos a la )- parte superficial del sustrato, haciendo,dif&iacute;cil su separaci&oacute;n.</font></p>       <p><font size="2" face="Verdana">En el medio avena se observ&oacute; un crecimiento poco uniforme,    debido probablemente a que &eacute;ste no tiene una estructura <sub>)Z</sub> de grano sino una consistencia semis&oacute;lida.  Este hecho podr&iacute;a haber generado    una &oacute; tasa de evaporaci&oacute;n elevada que caus&oacute; la 0 cristalizaci&oacute;n del sustrato,    afectando el desarrollo del microorganismo obteni&eacute;ndose una esporulaci&oacute;n escasa.    En los deis m&aacute;s sustratos millo, arroz y soya se &gt;s mantuvo la humedad y    el hongo coloniz&oacute; completamente la matriz y esporul&oacute; abundantemente.</font></p>   <font size="2" face="Verdana">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El crecimiento vigoroso de <i>&ntilde;. rileyi </i>en el sustrato soya, probablemente    se debi&oacute; a que este medio en su composici&oacute;n inclu&iacute;a el hidrolizado de prote&iacute;na,    el cual es una fuente de nitr&oacute;geno org&aacute;nico indispensable para la conidiog&eacute;nesis    de este microorganismo (Riba y Qlandar 1980), adem&aacute;s de ser una fuente de vitaminas    y l&iacute;pidos, cofactores de crecimiento que inducen esporulaci&oacute;n (Villamizar 1998).</p>   </font>    <p><font size="2" face="Verdana">La esporulaci&oacute;n menor en los sustratos avena y arroz podr&iacute;a deberse a que estos    cereales poseen un alto.contenido de carbohidratos, lo cual favorece el crecimiento    micelial del hongo y no su esporulaci&oacute;n (Humphereys 1989 citado por Villamizar    1998). Por el contrario, el sustrato millo fue utilizado en forma de grano,    el cual est&aacute; recubierto por la cubierta seminal, que posiblemente ocasion&oacute; una    escasa disponibilidad de nutrientes que favorecieron la esporulaci&oacute;n de <i>N.    rileyi, </i>ya que se ha registrado que las condiciones de estr&eacute;s nutricional    favorecen la esporulaci&oacute;n (Griffin 1981). Sin embargo, en este &uacute;ltimo sustrato    los conidios presentaron una alta humedad y se encontraron muy adheridos al    sustrato, lo que dificult&oacute; su separaci&oacute;n v&iacute;a seca. En el caso del sustrato soya,    este grano present&oacute; un escaso contenido de carbohidratos (10,10% P/P) y un alto contenido de prote&iacute;nas (41,33% P/P) que pudieron haber favorecido la esporulaci&oacute;n    del microorganismo. La importancia del nitr&oacute;geno para la conidiaci&oacute;n de <i>&ntilde;,    rileyi </i>fue se&ntilde;alada por Riba y Clandard (1980), quienes evaluaron medios    l&iacute;quidos que conten&iacute;an concentraciones de extracto de levadura de 0,5, 1 y 2%    y encontraron que al aumentar la concentraci&oacute;n de la fuente de nitr&oacute;geno se    increment&oacute; la esporulaci&oacute;n del hongo, ya que dicho compuesto adem&aacute;s de aportar    fuente de nitr&oacute;geno, es una fuente de vitaminas y l&iacute;pidos.</font></p>   <font size="2" face="Verdana">   </font>       <p><font size="2" face="Verdana">Al expresar los resultados del presente trabajo como conidios producidos por    gramo de sustrato, se obtuvieron rendimientos de 1 xlO<sup>9</sup> conidios.g<sup>_l</sup>    para millo, de 1,5 x 10<sup>9</sup> conidios.g-' para soya, de 1,5 x 10<sup>e    </sup>conidios.g-<sup>1</sup> para avena y 8,8 x 10<sup>8</sup> conidios. g<sup>-1</sup>    cuando la producci&oacute;n se hizo en arroz, resultados similares a los obtenidos    por Arriero (2001), quien evalu&oacute; el rendimiento expresado como conidios producidos    por gramo de medio de cultivo esporulado, empleando como sustrato de producci&oacute;n    salvado de trigo suplementado con diferentes fuentes de prote&iacute;na. El autor    obtuvo un rendimiento de 1,2 x 10<sup>9 </sup>conidios.g-' para el medio suplementado    con el hidrolizado de soya, 8,9 x 10<sup>8 </sup>conidios.g&quot;<sup>1</sup>    cuando utiliz&oacute; hidrolizado de levadura y 1,4 x 10&deg; conidios.g~' en el salvado    enriquecido con soluci&oacute;n de malta. Vimala-Devi (1994) evalu&oacute; diferentes sustratos    para la producci&oacute;n masiva de <i>f&iacute;. rileyi, </i>en los cuales los rendimientos    fueron similares a los obtenidos en el presente estudio, con una producci&oacute;n    de 1,4 x 10<sup>a</sup> conidios.g-<sup>1</sup> de sustrato, en un medio de sorgo triturado    y suplementado con una soluci&oacute;n de extracto de levadura al 1%.</font></p>   <font size="2" face="Verdana">    <p><b>Evaluaci&oacute;n del efecto de los diferentes sustratos de producci&oacute;n masiva en    la actividad biocontroladora de los conidios de <i>Nomuraea rileyi </i>Nm005</b></p>       <p>Al evaluar la actividad biocontroladora de los conidios de <i>n. rileyi </i>provenientes    de los diferentes sustratos de producci&oacute;n masiva sobre larvas de S. <i>frugiperda,    </i>se obtuvo un 100% de mortalidad a los 10 d&iacute;as despu&eacute;s de iniciado el ensayo,    con los conidios provenientes de todas las repeticiones de los tratamientos,    utilizando una concentraci&oacute;n de 1 x 10<sup>7</sup> conidios, mi, concentraci&oacute;n    letal 90 determinada para el aislamiento de <i>N. rileyi </i>(<a href="#(fig3)">Fig. 3</a>) (Bosa    <i>et al. </i>2002). El testigo absoluto no present&oacute; mortalidad, confirmando    que la muerte de los insectos en los tratamientos se debi&oacute; a la actividad biocontroladora    del microorganismo y no a condiciones ambientales o estr&eacute;s en los individuos.</p>     <p>        <center>     <a name="(fig3)"><img src="img/revistas/rcen/v31n1/v31n1a14fig3.gif"></a>    </center> </p>       <p>Todos los sustratos utilizados tuvieron el mismo efecto sobre la actividad    biocontroladora del microorganismo. Sin embargo, se observ&oacute; una cierta tendencia    de los conidios producidos en el sustrato soya a ejercer m&aacute;s r&aacute;pidamente su    efecto biocontrolador.</p>   </font>    <p><font size="2" face="Verdana">Debido a la falta de variabilidad entre los resultados de las r&eacute;plicas de cada    tratamiento, no fue necesario aplicar una prueba estad&iacute;stica para determinar    diferencias entre los mismos. Se observ&oacute; que los conidios cultivados en los    cuatro sustratos evaluados presentaron la misma virulencia y el medio de cultivo    no tuvo efecto sobre la patogenicidad, pudi&eacute;ndose utilizar cualquiera de ellos    para la multiplicaci&oacute;n del hongo. Este resultado se podr&iacute;a atribuir a que posiblemente    todos los sustratos le proporcionaron al hongo los nutrientes necesarios para su desarrollo.</font></p>   <font size="2" face="Verdana">    <p>Con el prop&oacute;sito de seleccionar un sustrato de producci&oacute;n masiva se determin&oacute;    el tiempo letal medio (TL<sub>M</sub>) de los conidios de <i>ri. rileyi </i>cultivados    en los diferentes sustratos de producci&oacute;n masiva, obteni&eacute;ndose valores de 5,6    d&iacute;as para soya, 6,6 d&iacute;as para avena y millo, 7 d&iacute;as para arroz y 7,7 d&iacute;as para    los conidios cultivados en medio YM.</p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La prueba estad&iacute;stica de Kruskal-Wallis no detect&oacute; diferencias significativas    entre los tiempos letales de todos los tratamientos (<a href="#(tab1)">Tabla 1</a>), confirmando que    los conidios producidos en todos los sustratos son igualmente virulentos. Sin    embargo, el tiempo letal medio m&aacute;s bajo fue obtenido con los conidios provenientes    del cultivo en sustrato soya, lo cual indica que posiblemente en este sustrato    se obtienen conidios que ejercen su actividad biocontroladora m&aacute;s r&aacute;pidamente    en comparaci&oacute;n con los conidios de los dem&aacute;s tratamientos.</p>     <p>        <center>     <a name="(tab1)"><img src="img/revistas/rcen/v31n1/v31n1a14tab1.gif"></a>    </center></p>       <p>El tiempo letal menor obtenido con los conidios cultivados en el sustrato soya    posiblemente se debi&oacute; a una activaci&oacute;n por parte del sustrato de algunas de las etapas determinantes en el mecanismo    de acci&oacute;n de este microorganismo. Por ejemplo, pudo haber mejorado la capacidad    de adherencia de las c&eacute;lulas, ya sea por la modificaci&oacute;n en la carga de la pared    celular de los mismos o por un aumento en la producci&oacute;n de muc&iacute;lago que media    el proceso de adhesi&oacute;n. Tambi&eacute;n el sustrato podr&iacute;a haber aumentado la capacidad    de germinaci&oacute;n de los conidios, sus sistemas enzim&aacute;ticos o la producci&oacute;n de    toxinas, que determinan la virulencia del microorganismo (Lezama 1994).</p>       <p>El fr&iacute;jol soya tiene un contenido proteico de 41,3% que sumado al 49,46% de    prote&iacute;na contenido en el hidrolizado, constituyeron la fuente de nitr&oacute;geno org&aacute;nico    para el microorganismo, la cual se encontr&oacute; en alta concentraci&oacute;n, mientras    que la disponibilidad de carbohidratos en este medio de producci&oacute;n masiva fue    limitada. Esta mayor disponibilidad de nitr&oacute;geno y escasa de carbono, adem&aacute;s    de favorecer la esporulaci&oacute;n del hongo, pudo haber jugado <i>un </i>papel importante,    en la patogenicidad. Las enzimas f&uacute;ngicas que han sido se&ntilde;aladas como determinantes    en el mecanismo de acci&oacute;n, tienen un mecanismo de represi&oacute;n catab&oacute;lica por exceso    de fuente de carbono (St Leger. <i>et al. </i>1986 a,b,c) y por lo tanto con    este medio con fuente de carbono limitada, podr&iacute;an haberse activado dichos sistemas    enzim&aacute;ticos, obteni&eacute;ndose conidios m&aacute;s virulentos. En el caso de los dem&aacute;s sustratos,    los mayores tiempos letales obtenidos posiblemente se debieron a que en su composici&oacute;n    incluyen una mayor cantidad de carbohidratos que de prote&iacute;na, ya que por ejemplo    el arroz contiene un 8,22% de prote&iacute;na y un 55,15% de carbohidratos, la avena    12,5% de prote&iacute;na, 53,84% de carbohidratos, el millo 13,35% de prote&iacute;na y 46%    de carbohidratos (Caro 2003). Esla disponibilidad mayor de carbono y menor de    nitr&oacute;geno con respecto a la soya, posiblemente gener&oacute; una represi&oacute;n catab&oacute;lica    de enzimas en los conidios producidos en estos sustratos, obteni&eacute;ndose en consecuencia    que el proceso infeccioso se desarrollara m&aacute;s lentamente (St. Leger <i>et </i>a/.    1986 a, b, c).</p>       <p>El contenido end&oacute;geno de las c&eacute;lulas depende de la composici&oacute;n del medio de    cultivo y es inversamente proporcional a la disponibilidad ci&eacute; nutrientes en    el mismo (Griffin 1981). En el presente trabajo posiblemente el sustrato soya,    el cual ocasion&oacute; el menor tiempo letal, pudo haber generado una mayor reserva    end&oacute;gena en los conidios, permitiendo que el proceso de infecci&oacute;n se desarrollara    m&aacute;s r&aacute;pido. Este efecto ha sido registrado para <i>Ulocladium atrum, </i>hongo    para el ctial se manipularon sus reservas end&oacute;genas, pudi&eacute;ndose modificar su    capacidad de establecimiento sobre las hojas y su actividad biocontroladora    de <i>Botrytis cin&eacute;rea </i>(Frey y Magan 1998; registrados por Butt <i>et al.    </i>2001).</p>       <p>Los resultados obtenidos permitieron seleccionar el sustrato soya como el m&aacute;s    adecuado para la producci&oacute;n de conidios del aislamiento de /Y. <i>rileyi </i>rlmOOS,    ya que con este medio se obtuvo el mayor rendimiento de conidios, los cuales    mostraron una alta germinaci&oacute;n y actividad biocontroladora, adem&aacute;s de ser el    &uacute;nico sustrato que se obtuvo una esporulaci&oacute;n abundante y de apariencia pulverulenta    que facilitar&iacute;a su separaci&oacute;n v&iacute;a seca, caracter&iacute;sticas deseables en la industria    de bioplaguicidas.</p>       <p><b>Efecto de los potenciales inductores de virulencia en la velocidad de crecimiento    de N. <i>ri&iacute;eyi </i>Nm005</b></p>       <p>La capacidad de desarrollo del microorganismo es un factor determinante de    la virulencia y por lo tanto cualquier manipulaci&oacute;n que permita mejorar la velocidad    de crecimiento de un hongo entornopat&oacute;geno, podr&iacute;a tambi&eacute;n mejorar su actividad    biocontroladora. Con el fin de evaluar el fecto de diferentes potenciales inductores    de virulencia sobre la actividad biocontroladora de /Y. <i>rileyi </i>y relacionar    dicha actividad con par&aacute;metros determinantes del mecanismo de acci&oacute;n, como la    capacidad de desarrollo del hongo, se evalu&oacute; el efecto de dichas sustancias    en la velocidad de crecimiento del microorganismo.</p>       <p>En los resultados obtenidos en este estudio se observ&oacute; la mayor tasa de crecimiento    cuando el microorganismo se cultiv&oacute; en medio YM suplementado con el inductor    pol&iacute;mero 1. Para este tratamiento la velocidad fue de 1,29 rnm/d&iacute;a, seguido    por el inductor proteico 2 con 1,20 mm/d&iacute;a, el homogeneizado de larvas con 1,11    mm/ d&iacute;a, el medio YM utilizado como tratamiento control con 0,91 mm/d&iacute;a, el    inductor proteico 1 con 0,88 mm/d&iacute;a y por &uacute;ltimo el inductor no espec&iacute;fico que    alcanz&oacute; una velocidad de 0,87 mm/d&iacute;a (<a href="#(tab2)">Tabla 2</a>; <a href="#(fig4)">Fig. 4</a>).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>        <center>     <a name="(tab2)"><img src="img/revistas/rcen/v31n1/v31n1a14tab2.gif"></a>    </center></p>      <p>        <center>     <a name="(fig4)"><img src="img/revistas/rcen/v31n1/v31n1a14fig4.gif"></a>    </center> </p>       <p>La comparaci&oacute;n de medias de T&uuml;key (o 0,05) no detect&oacute; diferencias en la tasa    de crecimiento del hongo en medio YM suplementado con los diferentes potenciales    inductores de virulencia, resultado que sugiere que ninguna de las sustancias    evaluadas tuvo un efecto Inductor en la capacidad de crecimiento del microorganismo.</p>       <p>Este resultado probablemente se debi&oacute; a la baja concentraci&oacute;n de los inductores    (0,5% P/F) utilizada para suplementar el medio YM. Dicha concentraci&oacute;n no hizo    un aporte nutricional significativo en los diferentes medios suplementados,    por lo que no hubo un efecto en la velocidad de crecimiento, ya que como lo    se&ntilde;al&oacute; Qriffin (1981) este par&aacute;metro depende de la composici&oacute;n del medio de    cultivo.</p>       <p>A pesar de no encontrarse diferencias estad&iacute;sticas entre los tratamientos evaluados,    se observ&oacute; una tendencia num&eacute;rica a una mayor tasa de crecimiento cuando el    medio se suplemento con el inductor pol&iacute;mero 1 con respecto a los dem&aacute;s tratamientos,    lo que indica que el pol&iacute;mero 1 posiblemente estimul&oacute; el crecimiento del hongo.    La tasa de crecimiento de muchos hongos depende del microorganismo y de las    condiciones ambientales. Se ha indicado que la disminuci&oacute;n en la tasa de crecimiento    es causada probablemente por el suministro limitado de nutrientes y es directamente    proporcional al tiempo (Qriffin 1981).</p>       <p>La velocidad de crecimiento micelial continuamente presenta variaciones que    presumiblemente se deben a un sistema de control polig&eacute;nico. ya que se ha observado    que la tasa de crecimiento est&aacute; asociada con diferentes regiones cromosomales    (Larraya <i>et al. </i>2002). En el presente estudio los resultados obtenidos    no presentaron diferencias entre s&iacute;, posiblemente porque en todos los tratamientos los genes implicados con la tasa de    crecimiento se expresaron de la misma forma, lo cual podr&iacute;a deberse a las diferencias    m&iacute;nimas en la composici&oacute;n de los medios.</p>   </font>       <p><font size="2" face="Verdana">La velocidad de crecimiento de algunos hongos se ha relacionado con las reservas    end&oacute;genas presentes en las c&eacute;lulas, particularmente polioles como el glicerol    que pueden servir como fuente de energ&iacute;a y ser utilizados como promotores del    crecimiento y desarrollo (Butt et al. 2001). Las tasas de crecimiento obtenidas    en este trabajo con los potenciales inductores de virulencia no presentaron    diferencias estad&iacute;sticas entre s&iacute;, posiblemente debido a que el fragmento colonizado    con el hongo y utilizado para la inoculaci&oacute;n de los medios suplementados proven&iacute;a    del mismo cultivo en caja de Petri con medio YM; raz&oacute;n por la cual los prop&aacute;gulos    utilizados para inocular posiblemente ten&iacute;an unas reservas end&oacute;genas similares    que les permitieron crecer a velocidades similares.</font></p>       <p><font size="2" face="Verdana"><b>Evaluaci&oacute;n del efecto de potenciales inductores de virulencia sobre la actividad    biocontroladora de los conidios de <i>Nommraea rileyi </i>NmOO5</b></font></p>   <font size="2" face="Verdana">   </font>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana">Los conidios de <i>&ntilde;. rileyi </i>crecidos en presencia de potenciales inductores    de virulencia ocasionaron los mayores porcentajes de mortalidad sobre larvas    de S. <i>frugiperda </i>con los tratamientos inductor pol&iacute;mero 1 e inductor    proteico &#93;, con 93,10 y 96,55%, respectivamente; seguidos por los obtenidos    con el homogeneizado de larvas con un 89,65%, el inductor proteico 2 con 89,65    %, el inductor no espec&iacute;fico con 75,86% y por &uacute;ltimo, la menor mortalidad se obtuvo con el tratamiento control YN con un valor de 65,46% (<a href="#(fig5)">Fig. 5</a>).</font></p>      <p>        <center>     <a name="(fig5)"><img src="img/revistas/rcen/v31n1/v31n1a14fig5.gif"></a>    </center> </p>   <font size="2" face="Verdana">    <p>Los datos se sometieron a un an&aacute;lisis de varianza (AMAVA) y a una comparaci&oacute;n    de medias de Tukey (u 0,05). La actividad biocontroladora de los conidios provenientes    del tratamiento control YM sin inductor fue significativamente inferior a las    obtenidas con el microorganismo cultivado en el medio suplementado con el inductor    proteico 1, el inductor pol&iacute;mero 1, el homogeneizado de larvas y el inductor    proteico 2, no encontr&aacute;ndose diferencias entre estos &uacute;ltimos. Los resultados    obtenidos con estos inductores no presentaron diferencias estad&iacute;sticas con el    presentado por el inductor no espec&iacute;fico, el cual tampoco fue significativamente    diferente del tratamiento control (YM) sin suplementar. Estos resultados sugieren    que los inductores proteico 1, proteico 2, pol&iacute;mero 1 y homogeneizado de larvas    tuvieron un efecto inductor sobre la actividad biocontroladora, lo cual posiblemente    podr&iacute;a atribuirse a una activaci&oacute;n por parte del sustrato de alguna de las etapas    del mecanismo de acci&oacute;n, como los sistemas enzim&aacute;ticos que son indispensables    en la penetraci&oacute;n de la cut&iacute;cula o en la producci&oacute;n de toxinas.</p>       <p>La relaci&oacute;n de la actividad enzim&aacute;tica con la patogenicidad ha sido registrada    por autores como El- Sayed <i>et al. </i>(1989) citado por Lezama (1994), quienes    compararon la virulencia de <i>&Iacute;1. rileyi </i>sobre la base de la actividad    quitinol&iacute;tica de dos cepas virulentas y una no virulenta contra <i>Trichoplusia    ni, </i>trabajo en el que encontraron de 10 a 17 veces m&aacute;s actividad enzim&aacute;tica    en las cepas virulentas que en las no virulentas.</p>       <p>El efecto del inductor proteico 1 podr&iacute;a deberse a una inducci&oacute;n de enzimas    proteol&iacute;ticas que han sido establecidas como determinantes en el mecanismo de    penetraci&oacute;n de la cut&iacute;cula, debido a que est&aacute; compuesta en un 70% de prote&iacute;na    (Clarkson y Charnley 1996).</p>   </font>    <p><font size="2" face="Verdana">En el caso del inductor pol&iacute;mero 1 pudo ocurrir una inducci&oacute;n de enzimas hidrol&iacute;ticas    como proteasas, esterasas y quitinasas, como M-acetilglucosamlnidasa, la cual    es muy importante en el proceso de penetraci&oacute;n. Algunos autores han relacionado    la inducci&oacute;n de quitinasas con la composici&oacute;n del medio de cultivo, es el caso    de Bosa <i>et al. </i>(2001) quienes observaron un aumento en la actividad de    esta enzima al cultivar la bacteria <i>Serratia marcescens </i>en presencia    de un homogeneizado de su hospedero <i>Tecia sotanivora, </i>insecto que tiene    un alto contenido de quitina proveniente de su cut&iacute;cula. Los autores adicionalmente    informaron que al aumentarse la actividad de esta enzima tambi&eacute;n se increment&oacute;    la patogenicidad del microorganismo.</font></p>   <font size="2" face="Verdana">    <p>El inductor proteico 1 mejor&oacute; la velocidad de crecimiento del microorganismo,    lo que posiblemente se podr&iacute;a relacionar con el aumento en la actividad biocontroladora    del mismo, debido a que &eacute;ste podr&iacute;a haber desarrollado m&aacute;s r&aacute;pidamente el proceso    de infecci&oacute;n.</p>       <p>Los inductores proteico 1 y el pol&iacute;mero 1 ptidieron tener efectos en otras    etapas del mecanismo de acci&oacute;n como la adherencia y la germinaci&oacute;n. Este efecto    fue registrado por Villamizar <i>et al. </i>(2001), quienes observaron un aumento    en la germinaci&oacute;n, adherencia e hidrofobicidad de los conidios de <i>Metaihizium    anisopliae </i>cuando &eacute;ste se cultiv&oacute; en un medio suplementado con potenciales    inductores de virulencia, vi&eacute;ndose relacionado con la actividad biocontroladora    de la langosta llanera <i>Rhatnmatocerus schistocercoides.</i></p>       <p>El inductor no espec&iacute;fico no tuvo un efecto significativo en la actividad biocontroladora    del hongo, lo que podr&iacute;a atribuirse a que este inductor tiene un bajo contenido    proteico que no permiti&oacute; que se activaran los sistemas enzim&aacute;ticos implicados    en la hidr&oacute;lisis de estos componentes, los cuales como se mencion&oacute; anteriormente    est&aacute;n estrechamente relacionados con la virulencia de los hongos entornopat&oacute;genos    (Clarkson y Charnley 1996).</p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En el caso del homogeneizado de larvas, este inductor tuvo un efecto significativo    sobre la virulencia de <i>11. rileyi, </i>ya que el sustrato consisti&oacute; en el    insecto hospedero de dicho hongo, como lo registraron Bidochka y Khachatourians    (1992), quienes observaron un aumento en la virulencia de <i>B. bassiana </i>cuando    se cultiv&oacute; en presencia de componentes cuticulares de su hospedero <i>Melanoplus    sanguinipes </i>(Orthoptera: Acrididae).</p>   </font>       <p><font size="2" face="Verdana">Debido a que con el inductor pol&iacute;mero 1 y el inductor proteico 1 se alcanzaron    los mayores porcentajes de mortalidad, estos inductores se seleccionaron para utilizar    en combinaci&oacute;n con el medio de producci&oacute;n masiva seleccionado (soya) para la    producci&oacute;n de conidios de N. <i>rileyi.</i></font></p>   <font size="2" face="Verdana">       <p><b>Efecto combinado del sustrato de producci&oacute;n masiva </b>y <b>ei potencial    inductor de virulencia sobre las caracter&iacute;sticas de N. <i>rileyi </i>Mm005</b></p>       <p><font size="2">Se evalu&oacute; el efecto de cultivar el hongo en el medio de producci&oacute;n masiva seleccionado,    sup&iacute;ementado con los potenciales inductores de virulencia que presentaron los    mejores resultados. Para tal fin se utiliz&oacute; el sustrato soya sup&iacute;ementado con    el inductor pol&iacute;mero 1 y con el inductor proteico 1.</font></p>       <p><font size="2">Despu&eacute;s de 40 h de incubaci&oacute;n en medio YM, los conidios provenientes del sustrato    soya sup&iacute;ementado con inductor pol&iacute;mero I presentaron porcentajes de germinaci&oacute;n    de 99,49%, siendo superiores a los porcentajes de germinaci&oacute;n obtenidos con    los conidios provenientes del medio suplementado con el inductor proteico 1    y del sustrato sin suplementar, los cuales presentaron una germinaci&oacute;n del 76,54    y del 61,31%, respectivamente (<a href="#(fig6)">Fig. 6</a>). Estos resultados no se ajustaron a una    curva normal y no presentaron homogeneidad de varianzas, raz&oacute;n por la cual se    realiz&oacute; un an&aacute;lisis no param&eacute;trico utilizando la prueba de Kruskal-Wallis con    una significancia de 0,05.</font></p>       <p>        <center>     <a name="(fig6)"><img src="img/revistas/rcen/v31n1/v31n1a14fig6.gif"></a>    </center> </p>       <p><font size="2">El an&aacute;lisis estad&iacute;stico encontr&oacute; que los conidios provenientes del sustrato    soya sup&iacute;ementado con el inductor pol&iacute;mero 1 presentaron una germinaci&oacute;n significativamente    superior a la obtenida con los conidios provenientes del sustrato suplementado    con el inductor proteico y sin suplementar, lo que indica que esta sustancia    tuvo un efecto inductor de la germinaci&oacute;n de los conidios producidos. Lo que    podr&iacute;a deberse, como se mencion&oacute; anteriormente, a la activaci&oacute;n por parte del    pol&iacute;mero 1 de genes relacionados con la germinaci&oacute;n (Kothe y Free 1998).</font></p>       <p><font size="2">La germinaci&oacute;n de los conidios cultivados en la soya suplementada con el inductor    proteico 2 no present&oacute; diferencias estad&iacute;sticas con la germinaci&oacute;n de los conidios    cultivados en el sustrato soya sin suplementar. Resultado que sugiere que este    inductor al ser combinado con el medio de producci&oacute;n masiva no tiene un efecto    inductor de la germinaci&oacute;n de N. <i>rileyi.</i></font></p>       <p><font size="2">Al evaluar el rendimiento de conidios en el sustrato soya sup&iacute;ementado con    los potenciales inductores de virulencia seleccionados, se encontraron valores    de 3,9 x 10<sup>8 </sup>conidios.cm<sup>2</sup> para el sustrato soya suplementado    con el inductor proteico 1; 1,0 x io<sup>s</sup> conidios.cm<sup>2</sup> para    el sustrato soya sup&iacute;ementado con ei inductor pol&iacute;mero 1 y de 4,0 x 10<sup>8</sup>    conidios.cm<sup>2</sup> para el sustrato soya sin suplementar (<a href="#(fig7)">Fig. 7</a>). Los    resultados se sometieron a un an&aacute;lisis de varianza (ANAVA) y a una comparaci&oacute;n    de medias de diferencia m&iacute;nima significativa (a 0,05). Se encontr&oacute; que el rendimiento    de conidios en el sustrato soya sup&iacute;ementado con el inductor pol&iacute;mero 1 fue    significativamente inferior a los obtenidos con los otros tratamientos, resultado    que indica que el pol&iacute;mero 1 al ser combinado con el medio soya, disminuy&oacute; la    capacidad de esporular del microorganismo.</font></p>        ]]></body>
<body><![CDATA[<p>        <center>     <a name="(fig7)"><img src="img/revistas/rcen/v31n1/v31n1a14fig7.gif"></a>    </center> </p>   <font size="2" face="Verdana">   </font>       <p><font size="2" face="Verdana">Los resultados de germinaci&oacute;n obtenidos con el sustrato soya sup&iacute;ementado con    el inductor proteico 1 y el sustrato soya sin suplementar no presentaron diferencias    estad&iacute;sticas entre s&iacute;, lo que indica que el inductor proteico 1 no afect&oacute; la    conidio g&eacute;nesis del microorganismo. En el presente trabajo a pesar de haberse    utilizado una concentraci&oacute;n baja de inductores (0,5%), si se observ&oacute; un efecto    del pol&iacute;mero 1, posiblemente porque &eacute;ste fue distribuido homog&eacute;neamente sobre toda la superficie del medio de producci&oacute;n donde fue cultivado    el hongo.</font></p>   <font size="2" face="Verdana">    <p>La eficacia biocontroladora obtenida con una concentraci&oacute;n subletal de los    conidios cultivados en el medio de producci&oacute;n masiva a base de soya sup&iacute;ementado    con el inductor pol&iacute;mero 1 fue de 62,07%, para los cultivados en el sustrato    de soya sin suplementar, que constituye el tratamiento control, fue de 48,27    y de 44,83% para aquellos crecidos en el sustrato soya sup&iacute;ementado con el inductor    proteico 1 (<a href="#(fig8)">Fig. 8</a>).</p>       <p>        <center>     <a name="(fig8)"><img src="img/revistas/rcen/v31n1/v31n1a14fig8.gif"></a>    </center> </p>   </font>       <p><font size="2" face="Verdana">La comparaci&oacute;n de medias mediante la prueba de diferencia m&iacute;nima significativa    (LSD) con (a 0,05) determin&oacute; que la actividad biocontroladora de los conidios    cultivados en el sustrato soya sup&iacute;ementado con el inductor pol&iacute;mero 1 fue significativamente superior a la obtenida con    el hongo crecido en el sustrato soya sin suplementar y en el sustrato soya    suplementado con el inductor proteico 1. Este resultado confirma que el pol&iacute;mero    1 s&iacute; ejerce un efecto Inductor de la virulencia de este microorganismo, el cual    no se vio afectado por la combinaci&oacute;n con el medio de producci&oacute;n masiva. Los    resultados obtenidos con el inductor proteico 1 no presentaron diferencias significativas    con respecto a los obtenidos con el tratamiento control, sugiriendo que el inductor    proteico i no tiene un efecto sobre la virulencia del microorganismo cuando    &eacute;ste es combinado con el sustrato de producci&oacute;n masiva a base de soya, mientras    que si hubo una inducci&oacute;n de virulencia cuando fue combinado con el medio YM.    Este resultado podr&iacute;a deberse a una represi&oacute;n catab&oacute;lica de las enzimas implicadas    en el mecanismo de acci&oacute;n por exceso de fuente de carbono en el medio soya.    Posiblemente si fueron activadas por el inductor proteico 1 eri el medio YM    que tiene <i>un </i>menor contenido de carbohidratos.</font></p>   <font size="2" face="Verdana">    <p>El aumento en la actividad biocontroladora del microorganismo cuando se cultiv&oacute;    en el medio soya con el inductor pol&iacute;mero 1, podr&iacute;a estar relacionado con el    incremento en la capacidad de germinar de los mismos, ya que como lo registr&oacute;    Lezama (1994), estos dos factores est&aacute;n estrechamente relacionados. El autor    determin&oacute; que la agresividad de una cepa de <i>Conidiobolus obscurus </i>estuvo    en funci&oacute;n de la velocidad con la cual fue capaz de germinar el microorganismo.</p>   </font>    <p><font size="2" face="Verdana">Los resultados de este trabajo permitieron seleccionar el sustrato soya suplementado con el inductor pol&iacute;mero 1 para la producci&oacute;n eficiente de conidios de <i>ri.    rileyi </i>Nm005 de alta calidad, con un alto nivel patog&eacute;nico que permitir&iacute;a    elaborar un bioplaguicida de calidad que permitir&iacute;a reducir las dosis de aplicaci&oacute;n,    minimizando el impacto ambiental y disminuyendo los costos de producci&oacute;n al    agricultor, ya que se requerir&iacute;a menos producto para la aplicaci&oacute;n.</font></p>   <font size="2" face="Verdana"></font>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>Conclusiones</b></font></p>   <font size="2" face="Verdana">       ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&bull;&nbsp; Los conidios de <i>riomuraea rileyi </i>(Nm005) obtenidos en todos    los sustratos de producci&oacute;n masiva evaluados presentaron alta actividad biocontroladora    bajo condiciones de laboratorio.</p>       <p>&bull;&nbsp; La composici&oacute;n del medio de cultivo afect&oacute; las caracter&iacute;sticas microbiol&oacute;gicas    y de actividad biocontroladora de <i>riomuraea rileyi </i>&lt;Nm005).</p>       <p>&bull;&nbsp; Se seleccion&oacute; el sustrato soya por producir el mayor rendimiento de    conidios, los cuales presentaron una germinaci&oacute;n alta y ocasionaron el tiempo    letal menor sobre larvas de <i>Spodoptera frugiperda.</i></p>       <p>&bull;&nbsp; &nbsp;El inductor proteico 1 y el pol&iacute;mero 1 mejoraron la velocidad    de crecimiento y la actividad biocontroladora de <i>riomuraea rileyi </i>Mm005.</p>       <p>&bull;&nbsp; La producci&oacute;n de conidios de <i>riomuraea rileyi </i>en el medio soya    suplementado con el pol&iacute;mero 1 mejor&oacute; la germinaci&oacute;n y la actividad biocontroladora.</p>   </font>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>Literatura citada</b></font></p>   <font size="2" face="Verdana">   </font>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">ARRIERO, C. 2001. Producci&oacute;n y caracterizaci&oacute;n    de principios activos de un bioplaguicida a base de <i>Nomuraea rileyi </i>para    el control de <i>Spodoptera frugiperda. </i>Bogot&aacute;. Trabajo de grado (Microbi&oacute;loga    Industrial). Pontificia Universidad Javeriana. Facultad de Ciencias. Carrera    de Microbiolog&iacute;a industrial. 122 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S0120-0488200500010001400001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>   <font size="2" face="Verdana">     <!-- ref --><p>BIDOCHKA, M.; KHACMATOURIANS, G. 1990. <i>Beaiweria bassiana </i>submerged    conidia production in a defined m&eacute;dium containing chitin, two hexosamines or    glucose. Applied Microbiology and Biotechnology 33:641-647.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000131&pid=S0120-0488200500010001400002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>        ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>BIDOCHKA, M.; KHACHATOURIANS, G. 1992. Growth of the entomopathogenic fungus    <i>Beauueria bassiana </i>on cuticular components from the migratory grasshopper,    <i>Melanoplus sanguinipes. </i>Journal of lnvertebrate Pathology 59:165-173.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000133&pid=S0120-0488200500010001400003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>        <!-- ref --><p>BOSA, F.; COTES, A. 2001. Efecto de las condiciones de cultivo sobre la actividad    enzim&aacute;tica de <i>Serrada marcescens </i>contra Tecia <i>solaniuora </i>(Lepidoptera:    Gelechiidae). Revista Colombiana de Entomolog&iacute;a 30 (1): 79-85.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000135&pid=S0120-0488200500010001400004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>BOSA, E; CHAVEZ. D.; TORRES, L.; PAR&Iacute;S, A.; VILLAMIZAR, L.; COTES, A. 2004.    Evaluaci&oacute;n de aislamientos nativos de <i>tiomuraea rileyi </i>para el control    de <i>Spodopiera frugiperda </i>J. E. Smith (Lepidoptera: lioctuidae). Revista    Colombiana de Entomolog&iacute;a 30 (1): 93-97.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000137&pid=S0120-0488200500010001400005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>        <!-- ref --><p>B&Uuml;TT, T.; JACKSON, C: MAGAN, N. 2001. Fungi as biocontrol agents. CABI publishing.    p. 239-287.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000139&pid=S0120-0488200500010001400006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>CARO, L. F. 2003. Efecto de la composici&oacute;n del medio de cultivo en la virulencia    de <i>riomuraea rileyi </i>sobre el gusano cogollero del ma&iacute;z <i>Spodoptera    frugiperda </i>(Lepidoptera: Moctuidae). Trabajo de grado (Microbiolog&iacute;a industrial).    Pontificia Universidad Javeriana. 149 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000141&pid=S0120-0488200500010001400007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>   </font>       ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">CIBA - GEIGY. 1973. Como realizar un bioensayo. Manual de ensayos de campo,    p. 2-10.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000143&pid=S0120-0488200500010001400008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>   <font size="2" face="Verdana">     <!-- ref --><p>CLARKSOM, J.; CHARNLEY, A. K. 1996. New insights into the mechanisms of fungal    pathogenesis in insects. Trends in Microbiology. 4 (5): 197-202.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000145&pid=S0120-0488200500010001400009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>        <!-- ref --><p>COTTER, D. A.; MAHADEO, D.; CERVI. D.; KISHI, Y.; SANDS, T; SAMESHIMA, M. 2000.    &#91;On line&#93; Environmental regulation of pathways controlling sporulation, dormancy    and germination utilizes bacterial - like signaling complexes in <i>Dictyostelium    discoideum. </i>Protist 151: 111-126. &#91;Consulta Septiembre 2003&#93;    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000147&pid=S0120-0488200500010001400010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>   </font>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">DILLON, R. J.; CHARNLEY, A. K.1990. Initiation    of germination in conidia of the entomopathogenic fungus, <i>Metarhizium anisopliae.    </i>Mycological research 94 (3): 299- 304.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000149&pid=S0120-0488200500010001400011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>   <font size="2" face="Verdana">     <!-- ref --><p>FERRER, F. 2001. Biological control of agricultural insect pests in Venezuela;    Advances, Achievements, and Future Perspectives. Biocontrol News and Information    22 (3): 67-74.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000151&pid=S0120-0488200500010001400012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>GARC&Iacute;A, F. 2000. Manejo integrado del gusano cogollero del ma&iacute;z, <i>Spodoptera    frugiperda. </i>En: Memorias I Curso Taller Internacional Control Biol&oacute;gico.    Componente fundamental del MIP en agricultura sostenible. Programa MIP Bogot&aacute;    - Colombia. p. 156- 161.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000153&pid=S0120-0488200500010001400013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>GARC&Iacute;A R.; PULIDO, F. J. 1984. El gusano cogollero del ma&iacute;z <i>Spodoptera frugiperda    </i>(J. E. Smith), su control y perspectivas para su manejo. En: XI Reuni&oacute;n    de maiceros de la zona andina. II Reuni&oacute;n latinoamericana de ma&iacute;z. Ministerio    de Agricultura. Instituto Colombiano Agropecuario. Programa nacional del Ma&iacute;z    y Sorgo. Colombia diciembre 2-7.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000155&pid=S0120-0488200500010001400014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>GRIFFIN, D. 1981. Fungal Physiology, A while -Interscience Publication, USA.    New York. p. 102-127. p. 260-279.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000157&pid=S0120-0488200500010001400015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>KOTHE, G.; PREE, S. J. 1998. The isolation and caharacterization of nrc -    I and nrc -2, two genes encoding protein kinases that control growth and developmenl    in <i>rieurospora crassa. </i>Genetics. Endocrinologyand Metabolism 149: 117-    130.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000159&pid=S0120-0488200500010001400016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>KUO, K. 1999. Germination and appressorium formation in <i>Colletotrichum gloesporioides.    </i>Proc. Nati. Sci. Counc. Vol 23 (3): 126-132&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000161&pid=S0120-0488200500010001400017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">LANE, B.; TRINCI, A. 1991. Influence of cultural    conditions on the virulence of conidia and blastospores of <i>Beauveria bassiana    </i>to the green leafhopper, <i>Hephotettix virens. </i>Mycol. Res. Gran Breta&ntilde;a.    95 (7): 829-833.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000162&pid=S0120-0488200500010001400018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>   <font size="2" face="Verdana">     <!-- ref --><p>LARRAYA, L. M.; IDARETA, E.; ARANA, D.; RITTER, E.; PISABARRO, A. G. 2002.    Quantitative trait loci controlling vegetative growth rate in the edible Basidiomycete    <i>Pleurotos ostreatus. </i>Applied and Environmental Microbiology 68: 1 109-1    I 14.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000164&pid=S0120-0488200500010001400019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>LE&Oacute;N M., G. A.; PULIDO, J. L. 1991. Importancia del control natural del cogollero    <i>Spodoptera frugiperda </i>J. E. Smith. En: Memorias seminario <i>Spodoptera    frugiperda </i>(El gusano cogollero) en sorgo, ma&iacute;z y otros cultivos. Cali,    Colombia, p. 78-82.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000166&pid=S0120-0488200500010001400020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>LEZAMA, R. 1994. Patogenicidad de hongos par&aacute;sitos de insectos. En: I Seminario    Patolog&iacute;a. PCBA. U de C. Tecom&aacute;n, Colima. p. 47-69 .    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000168&pid=S0120-0488200500010001400021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>        <!-- ref --><p>MILNER, R.; NUPFATZ, R.; SWARIS, S. 1990. A new method for assessment of germination    of <i>Metarhizium </i>conidia. Journal of Invertebrate Pathology Notes, p. 121.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000170&pid=S0120-0488200500010001400022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>   </font>       <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">P&Eacute;REZ, M. 2003. Control biol&oacute;gico de <i>Spodoptera frugiperda </i>Smith en    ma&iacute;z. Departamento de manejo de plagas, INISAV. &#91;On line&#93; Playa Ciudad de la    Habana, Cuba.  <a href="http://www.cied.org/bae/bae71/b71e.htm" target="_blank">http://www.cied.org/bae/bae71/b71e.htm</u></a>    - Consulla Marzo 10, 2003.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000172&pid=S0120-0488200500010001400023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>   <font size="2" face="Verdana">       <!-- ref --><p>RIBA, G.; GLANDARD, A. 1980. Mise au point d' un inilieu nutritif pour la culture    profonde du champignon entomopathogene <i>Nomuraea rileyi. </i>Entomophaga    25 (3): 317-322.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000174&pid=S0120-0488200500010001400024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>St. LEGER, R.; CMAMLEY, A.; COOPER, R. 1986a. Cuticle - degrading enzymes of    entomopathogenic fungi: synthesis in culture on cuticle. Journal of Invertebrate    Pathology 48: 85-95.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000176&pid=S0120-0488200500010001400025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>   </font>    <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">St. LEGER, R.; CHAMLEY, A.; COOPER, R. 1986b. Cuticle - degrading enzymes of    entomopa-thogenic fungi: mechanism of interaction between pathogen enzymes and    &iexcl;nsect cuticle. 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Relaci&oacute;n entre la actividad    enzim&aacute;tica y la virulencia de <i>rletharhizium anisopliae </i>sobre la langosta    llanera <i>Rliammatocerus schistocercoides </i>(Orthoptera: Acrididae) Revista    Colombiana de Entomolog&iacute;a 27 (3 - 4): 107-1 14.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000184&pid=S0120-0488200500010001400029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>VILLAMIZAR, L.; ARRIERO, C; COTES, A. 2004. Desarrollo de preformulados a base    de <i>nomuraea rileyi </i>para el control de <i>Spodoptera frugiperda. </i>Revista    Colombiana de Entomolog&iacute;a 30 (1): 99-105.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000186&pid=S0120-0488200500010001400030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>   </font>       <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">VIMALA - DEVI. P S. 1994. Conidia production of the entomopathogenic fungus    <i>Nomuraea rileyi </i>its evaluation for control of Spodoptera &iacute;i&iacute;ura (Pab)    on <i>Ricinus communis. </i>Journal Invertebrate Pathology 63: 145-150.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000188&pid=S0120-0488200500010001400031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>   <font size="2" face="Verdana">    <p>&nbsp;</p>       <p>Recibido: Dic. 15/2003 Aceptado: Oct. 10/2004</p>   </font> </font>     ]]></body><back>
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