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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Preformulados para control de la mosca blanca Bemisia tabaci (Hemiptera: Aleyrodidae) en condiciones de laboratorio]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Abstract: The whitefly Bemisia tabaci is an economically important insect due to its worldwide distribution, the damage it causes and the great variety of crops it affects. In Colombia, biological control with biopesticides is emerging as a promising alternative for integrated pest management programs. For this reason, the objective of the present work was to develop and evaluate preformulations based on native entomopathogenic fungi against B. tabaci. Different substrates were evaluated for mass production of the isolates Bv 056 of Beauveria bassiana, Pc 013 of Paecilomyces sp. and Vl 026 of Lecanicillium lecanii. A solid cereal-based substrate was selected because of its higher yield and easy manipulation with a conidia production of 1x109 conidia/g. The active component of the biopesticide, constituting the conidia separated from the culture medium, was microbiologically and physically characterized. The effect of the preformulations was evaluated under laboratory conditions against second instar nymphs on bean plants by spraying a concentration of 1x108 conidia/mL of each isolate. The greatest percent efficacy was produced by the B. bassiana preformulation with 96.5% mortality 14 days after inoculation, followed by the preformulations of Paecilomyces sp. and L. lecanii, with 81.8% and 70%, respectively.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right"><font face="Verdana"size="2">  <b> Secci&ograve;n Agr&igrave;cola</b> </div>  </font>  </div>     <center>        <p><font size="4" face="Verdana"><b>Preformulados para control de la mosca blanca Bemisia tabaci<br />    (Hemiptera: Aleyrodidae) en condiciones de laboratorio </b></font></p> </center>      <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center"><font size="3" face="Verdana"><b>Preformulations for control of the whitefly Bemisia tabaci <br />(Hemiptera: Aleyrodidae) under laboratory conditions</b></font></p>     <p><font face="Verdana"size="2">    <br /> <b>CARLOS ESPINEL<sup>1</sup>, LISSETTE TORRES<sup>2</sup>, ERIKA GRIJALBA<sup>3</sup>, LAURA VILLAMIZAR<sup>4</sup>, ALBA MARINA COTES<sup>5</sup></b></font></p>     <p><font face="Verdana"size="2">  <sup>1</sup> Autor para correspondencia: Bi&oacute;logo. M. Sc. Investigador Laboratorio de Control Biol&oacute;gico, CORPOICA, C.I. Tibaitat&aacute;. Km 14. v&iacute;a Mosquera. Tel&eacute;fono: 4227300 Ext. 1409, Fax: 4227328. <a href="mailto:cespinelc@gmail.com.">cespinelc@gmail.com.</a>    <br />   <sup>2</sup> Bi&oacute;loga. <a href="mailto:lissettetorrestorres@hotmail.com.">lissettetorrestorres@hotmail.com.</a>    <br />   <sup>3</sup> Q. F. Investigadora Laboratorio de Control Biol&oacute;gico, CORPOICA, C.I. Tibaitat&aacute;. <a href="mailto:akirep@tutopia.com">akirep@tutopia.com</a>.   <br />   <sup>4</sup> Q. F. M. Sc. Investigadora Laboratorio de Control Biol&oacute;gico, CORPOICA, C.I. Tibaitat&aacute;. <a href="mailto:laurafernandav@yahoo.es">laurafernandav@yahoo.es</a>.   <br />    <sup>5</sup> Ph. D. Investigadora Laboratorio de Control Biol&oacute;gico, CORPOICA, C.I. Tibaitat&aacute;.<a href="mailto:acotes@corpoica.org.co"> acotes@corpoica.org.co</a>. </font></p> <font face="Verdana"size="2"> <hr size="1" />  </font>      <p align="left"><font size="3" face="Verdana"><b>Resumen:</b></font></p>  <font face="Verdana"size="2">      <p align="left">Bemisia tabaci es una plaga de importancia econ&oacute;mica debido a su amplia distribuci&oacute;n geogr&aacute;fica, al da&ntilde;o que ocasiona, y al gran n&uacute;mero de cultivos que afecta. En Colombia el control biol&oacute;gico mediante el uso de bioplaguicidas surge como una alternativa promisoria para programas de manejo integrado de plagas. Por esta raz&oacute;n, el objetivo del presente trabajo fue desarrollar y evaluar preformulados con base en hongos entomopat&oacute;genos nativos contra B. tabaci. Se evaluaron diferentes sustratos para la producci&oacute;n masiva de los aislamientos Bv 056 de Beauveria bassiana, Pc 013 de Paecilomyces sp. y Vl 026 de Lecanicillium lecanii. Se seleccion&oacute; como el de mayor rendimiento y f&aacute;cil manipulaci&oacute;n un sustrato s&oacute;lido con base en cereales que present&oacute; un rendimiento promedio de 1x109 conidios/g. El principio activo del bioplaguicida consistente en los conidios separados del medio de cultivo fue caracterizado microbiol&oacute;gica y f&iacute;sicamente. Se evalu&oacute; bajo condiciones de laboratorio el efecto de los preformulados sobre ninfas de segundo instar, infestando foliolos de fr&iacute;jol y aplic&aacute;ndolos a una concentraci&oacute;n de 1x108 conidios/mL. Se produjo el mayor porcentaje de eficacia con el preformulado a base de B. bassiana con un 96,5% a los 14 d&iacute;as postaplicaci&oacute;n, seguido por los preformulados de Paecilomyces sp. y L. lecanii, con 81,8% y de 70%, respectivamente.</p>  </font>      <p align="left"> <font size="2" face="Verdana"><b><font size="3">Palabras clave:</font></b> Hongo entomopat&oacute;geno. Preformulaci&oacute;n. Producci&oacute;n masiva. Insecticida microbiano. Control biol&oacute;gico.</font></p>  <font face="Verdana"size="2">  <hr size="1" />  </font>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="left"> <font size="2" face="Verdana"><b><font size="3">Abstract:</font></b> The whitefly Bemisia tabaci is an economically important insect due to its worldwide distribution, the damage it causes and the great variety of crops it affects. In Colombia, biological control with biopesticides is emerging as a promising alternative for integrated pest management programs. For this reason, the objective of the present work was to develop and evaluate preformulations based on native entomopathogenic fungi against B. tabaci. Different substrates were evaluated for mass production of the isolates Bv 056 of Beauveria bassiana, Pc 013 of Paecilomyces sp. and Vl 026 of Lecanicillium lecanii. A solid cereal-based substrate was selected because of its higher yield and easy manipulation with a conidia production of 1x109 conidia/g. The active component of the biopesticide, constituting the conidia separated from the culture medium, was microbiologically and physically characterized. The effect of the preformulations was evaluated under laboratory conditions against second instar nymphs on bean plants by spraying a concentration of 1x108 conidia/mL of each isolate. The greatest percent efficacy was produced by the B. bassiana preformulation with 96.5% mortality 14 days after inoculation, followed by the preformulations of Paecilomyces sp. and L. lecanii, with 81.8% and 70%, respectively.</font></p>      <p align="left"> <font size="2" face="Verdana"><b><font size="3">Key words</font></b><font size="3">:</font> Entomopathogen fungi. Preformulation. Massive production. Biopesticide. Biological control. Secci&oacute;n Agr&iacute;cola</font></p>  <font face="Verdana"size="2">  <hr size="1" />  </font>      <p align="left"><font size="3" face="Verdana"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>  <font face="Verdana"size="2">      <p align="left">El complejo mosca blanca cuenta con m&aacute;s de 1.200 especies (L&oacute;pez y Garc&iacute;a 2000). Dentro de &eacute;stas, Bemisia tabaci (Gennadius, 1889) (Hemiptera: Aleyrodidae) es una de las m&aacute;s limitantes debido al gran n&uacute;mero de hospedantes que ataca, a los da&ntilde;os directos e indirectos que ocasiona, a su amplia distribuci&oacute;n geogr&aacute;fica y a la ineficiencia de los insecticidas qu&iacute;micos, debido a su capacidad de generar resistencia a productos organoclorados, organofosforados, carbamatos y piretroides (Rodr&iacute;guez y Cardona 2001).</p>      <p align="left"> La mosca blanca B. tabaci se ha encontrado atacando m&aacute;s de 500 especies de plantas agrupadas en 74 familias, en hospedantes que incluyen, tomate, pepino, habichuela, fr&iacute;jol, papa, man&iacute;, algod&oacute;n, soya, mel&oacute;n, patilla y ornamentales como crisantemo y poinsettia (McAuslane 2000). Los da&ntilde;os ocasionados por el insecto se pueden producir por la succi&oacute;n de savia ocasionando el debilitamiento de la planta y/o manchas clor&oacute;ticas. En ataques intensos se producen s&iacute;ntomas de deshidrataci&oacute;n, disminuci&oacute;n o detenci&oacute;n del crecimiento; de igual forma, la excreci&oacute;n de miel de roc&iacute;o sobre hojas, flores y frutos proporciona el medio adecuado para el establecimiento del hongo Capnodium sp., lo cual ocasiona reducci&oacute;n de la fotos&iacute;ntesis y respiraci&oacute;n de la planta, disminuci&oacute;n en la calidad de la cosecha y mayores gastos de comercializaci&oacute;n. Asimismo, B. tabaci es transmisora de virus patog&eacute;nicos en diversos cultivos, tales como el virus del encrespamiento amarillo de la hoja del tomate, el virus dorado del tomate, el virus moteado del tomate y el virus del mosaico dorado del fr&iacute;jol (Infoagro 2004). En algunos cultivos, tales como tomate, la presencia de un solo adulto de mosca blanca por planta es suficiente para causar el 100% de infecci&oacute;n con geminivirus (Faria y Wraight 2001).</p>      <p align="left"> Los hongos entomopat&oacute;genos Beauveria spp., Paecilomyces spp. y Lecanicillium lecani (Zimm.) han sido reconocidos como importantes agentes de control biol&oacute;gico para plagas de la familia Aleyrodidae, en cultivos tanto en campo como en invernadero, atacando principalmente estados ninfales (Wraight et al.1998; Faria y Wraight 2001). Wraight et al. (1998), registraron niveles de mortalidad sobre ninfas de B. tabaci entre el 68 y el 94%, ocasionados por Paecilomyces fumosoroseus (Wise) Brown &amp; Smith. Herrera et al. (1999) evaluaron aislamientos de Beauveria spp., Metarhizium anisopliae (Metsch.) Sorokin y P. fumosoroseus bajo condiciones de laboratorio, los cuales ocasionaron porcentajes de mortalidad superiores al 50%. Asimismo, en un estudio en el cual se evaluaron 50 aislamientos de Beauveria bassiana (Balsamo) Vuillemin sobre ninfas de B. tabaci se encontraron porcentajes de mortalidad que variaron entre el 10% y el 93% (Vidal et al. 1997).</p>      <p align="left"> En trabajos previos, el Laboratorio de Control Biol&oacute;gico del Programa de Manejo Integrado de Plagas de CORPOICA realiz&oacute; investigaciones encaminadas hacia la b&uacute;squeda y selecci&oacute;n de microorganismos entomopat&oacute;genos para el control B. tabaci. Es as&iacute; como se hicieron muestreos en los departamentos de Tolima, Valle del Cauca, Magdalena y Atl&aacute;ntico, seleccionando los aislamientos Bv 056 de B. bassiana, Pc 013 de Paecilomyces sp. por ocasionar porcentajes de mortalidad del 58,6% y 91,7%, respectivamente a los 13 d&iacute;as de aplicaci&oacute;n bajo condiciones de laboratorio (Espinel et al. 2004). Asimismo, el aislamiento Vl 026 de Lecanicillium lecanii (= Verticillium lecanii) previamente seleccionado por ocasionar el 100% de mortalidad sobre ninfas de Trialeurodes vaporariorum (Westwood, 1856) (Garc&iacute;a 1996) fue evaluado contra B. tabaci obteni&eacute;ndose el 47% de eficacia (Espinel et al. 2004). Actualmente, este microorganismo constituye el principio activo de un bioplaguicida que al ser evaluado en un cultivo de habichuela, ocasion&oacute; un porcentaje de infecci&oacute;n del 76,8% y una producci&oacute;n de 11,7 Ton/ha en contraste con 7 Ton/ha obtenidas en el tratamiento en el que se aplicaron insecticidas qu&iacute;micos (Jim&eacute;nez 2002). Este mismo producto al ser evaluado en un cultivo de tomate bajo invernadero produjo un porcentaje de infecci&oacute;n de 68,1% sobre el estado ninfal, porcentaje que fue significativamente diferente con respecto al tratamiento correspondiente a la combinaci&oacute;n del bioplaguicida con insecticidas qu&iacute;micos (36,6%). Asimismo, el tratamiento con el bioplaguicida produjo la mayor producci&oacute;n, siendo &eacute;sta de 68 kg/ha (Garz&oacute;n 2004).</p>      <p align="left"> Debido al impacto econ&oacute;mico ocasionado por B. tabaci y a las dificultades que existen para su control, es necesario usar bioplaguicidas que tengan diferentes microorganismos como principio activo, ya que esto representa un componente central en programas de Manejo Integrado de Plagas. Sin embargo, para garantizar que el bioplaguicida aplicado sea seguro, eficaz y confiable, es necesario cumplir con varias etapas dentro de su desarrollo, tales como la selecci&oacute;n de un medio de producci&oacute;n masiva adecuado, la caracterizaci&oacute;n microbiol&oacute;gica, la determinaci&oacute;n de su estabilidad ante la radiaci&oacute;n ultravioleta y su actividad biocontroladora. Por tal raz&oacute;n, el presente trabajo busc&oacute; seleccionar sustratos de producci&oacute;n masiva para los aislamientos de hongos entomopat&oacute;genos, desarrollar los preformulados a base de los aislamientos de Beauveria bassiana y Paecilomyces sp. y evaluar su actividad biocontroladora bajo condiciones de laboratorio.</p>  </font>      <p align="left"><font size="3" face="Verdana"><b>Materiales y M&eacute;todos</b></font></p>  <font face="Verdana"size="2">      <p align="left"> Selecci&oacute;n de sustratos de producci&oacute;n masiva. Teniendo en cuenta que la producci&oacute;n masiva de hongos entomopat&oacute;genos en medio s&oacute;lido se realiza generalmente empleando como sustrato granos de cereales y leguminosas (Taborsky 1992, citado por Caro et al. 2005), se decidi&oacute; utilizar los sustratos arroz, millo, avena y soya.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="left"> Con el aislamiento Bv056 de Beauveria bassiana, se evaluaron dos sistemas de producci&oacute;n masiva previamente estandarizados en el Laboratorio de Control Biol&oacute;gico de CORPOICA para la producci&oacute;n de otros aislamientos de esta misma especie. El primero consisti&oacute; en arroz precocido est&eacute;ril con un inductor de virulencia (IV) previamente seleccionado, contenidos en bolsas de polietileno de alta densidad y el segundo en avena con el inductor de virulencia (IV) mantenidos en bandejas met&aacute;licas.</p>      <p align="left"> Las bolsas se inocularon con dos fragmentos de 1cm2 de un cultivo del microorganismo mantenido en cajas de Petri con medio PSA (Papa Sacarosa Agar) de 8 d&iacute;as de edad. La inoculaci&oacute;n de cada bandeja se hizo con 5 mL de una suspensi&oacute;n de conidios, ajustada a una concentraci&oacute;n de 1 x 107 conidios/mL.</p>      <p align="left">Cada uno de los sistemas de producci&oacute;n fue incubado a 25&deg;C durante 10 d&iacute;as. Transcurrido este tiempo se evalu&oacute; el rendimiento de conidios por gramo de sustrato mediante recuento en c&aacute;mara de Neubauer, para ello se tom&oacute; 1 g del sustrato mantenido en bolsas y tres muestras de 1 cm&sup2; del sustrato proveniente de bandejas.</p>      <p align="left"> Para el aislamiento Pc013 de Paecilomyces sp., se evaluaron dos sistemas de producci&oacute;n masiva y cuatro sustratos que consistieron en bolsas con arroz o millo y bandejas con soya o avena. Adicionalmente, a cada sustrato se le adicion&oacute; el inductor de virulencia (IV). Las bolsas se inocularon con 2 mL y las bandejas con 5 mL de un prein&oacute;culo de Paecilomyces sp. preparado en medio l&iacute;quido Saboureaud a una concentraci&oacute;n de 1 x 106 conidios/mL. Posteriormente, cada uno de los sistemas de producci&oacute;n fue incubado a 25&deg;C durante ocho d&iacute;as y se determin&oacute; el rendimiento de conidios por gramo de sustrato, de la misma manera descrita anteriormente. El dise&ntilde;o experimental fue completamente al azar y se utilizaron tres unidades experimentales por tratamiento. Los datos se sometieron a un an&aacute;lisis de varianza y a la prueba de Diferencias M&iacute;nimas Significativas (DMS).</p>      <p align="left"> <b>Desarrollo de los preformulados.</b>A partir de los sistemas de producci&oacute;n masiva seleccionados para los aislamientos Bv056 de B. bassiana y Pc013 de Paecilomyces sp., se obtuvo la biomasa f&uacute;ngica mediante lavado del sustrato colonizado con una soluci&oacute;n de Tween 80 al 0,5% y posteriormente el l&iacute;quido de lavado se centrifug&oacute; a 4.500 rpm por 30 minutos. Al sedimento constituido por los conidios de cada uno de los entomopat&oacute;genos, se le determin&oacute; el porcentaje de germinaci&oacute;n antes y despu&eacute;s de adicionarse los auxiliares de formulaci&oacute;n previamente seleccionados, los cuales incluyeron filtros UV, diluentes, adherentes y tensioactivos.</p>      <p align="left">Una vez realizada la mezcla de los conidios de cada uno de los microorganismos con los auxiliares de formulaci&oacute;n, &eacute;sta se liofiliz&oacute; durante 24 horas. Posteriormente, el producto seco fue triturado y tamizado en una malla con tama&ntilde;o de poro de 100 micras. Los preformulados fueron caracterizados, determinando su germinaci&oacute;n mediante la suspensi&oacute;n de 0,1 g de cada uno de ellos en 10 mL de Tween 80 al 0,5% y se realizaron las diluciones 10-1 y 10-2, de las cuales fueron sembrados 100 microlitros en medio Agar–Extracto de Malta por triplicado, mantenido en cajas de Petri. &Eacute;stas se incubaron a 25&deg;C durante 18 y 24 horas y posteriormente se determin&oacute; el porcentaje de germinaci&oacute;n para cada tiempo, mediante la observaci&oacute;n de 10 campos &oacute;pticos por repetici&oacute;n, en un microscopio de luz en el que se cont&oacute; el n&uacute;mero de conidios germinados y no germinados. Para cada diluci&oacute;n se utilizaron tres r&eacute;plicas. As&iacute; mismo, se determinaron la concentraci&oacute;n del producto mediante recuento en c&aacute;mara de Neubauer, el contenido de humedad en una balanza de humedad Ohaus Modelo MB 45 y el tama&ntilde;o de part&iacute;cula por microscop&iacute;a seg&uacute;n la metodolog&iacute;a descrita por Helman (1982). Cada caracter&iacute;stica fue determinada por triplicado utilizando tres muestras de cada preformulado.</p>      <p align="left"> <b>Determinaci&oacute;n de la actividad biocontroladora</b>.Para esta evaluaci&oacute;n, la infestaci&oacute;n del material vegetal se hizo tomando plantas de fr&iacute;jol variedad ICA-Calima, las cuales se sembraron en materas pl&aacute;sticas de 10 cm de di&aacute;metro, mantenidas bajo condiciones de laboratorio a una temperatura de 25 + 5&ordm;C y con una humedad relativa de 70 + 10%. Estas plantas con un trifolio formado, se infestaron recluyendo 20 adultos de B. tabaci en jaulas pinza por 36 horas para asegurar suficiente oviposici&oacute;n. Posteriormente, los adultos se retiraron y se hicieron observaciones diarias hasta evidenciar la presencia del segundo instar ninfal.</p>      <p align="left">Una vez observado el estado de desarrollo de la plaga requerido, se aplicaron los tratamientos que consistieron en los preformulados ajustados a la concentraci&oacute;n de 1 x 107 conidios/ mL, mediante un microaspersor con una presi&oacute;n de 50 psi y un volumen de 3 ml por trifolio. Conjuntamente con los preformulados desarrollados a base de B. bassiana y Paecilomyces sp. se evalu&oacute; el insecticida microbiano a base de Lecanicillium lecanii debido a que presenta porcentajes de infecci&oacute;n superiores al 68% sobre Trialeurodes vaporariorum bajo condiciones de campo, desconoci&eacute;ndose su efecto sobre B. tabaci; adem&aacute;s, se podr&iacute;a contar con una alternativa de control en aquellos cultivos en los que haya presencia de las dos especies de mosca blanca. De igual forma se aplicaron los tres microorganismos sin formular y producidos en el sustrato de producci&oacute;n masiva seleccionado, asimismo se cont&oacute; con un testigo absoluto, en el cual no se le hizo ninguna aplicaci&oacute;n a los foliolos con ninfas de mosca blanca.</p>      <p align="left">Al sexto d&iacute;a post aplicaci&oacute;n se realiz&oacute; el conteo de las ninfas totales y ninfas enfermas que presentaron cambio de coloraci&oacute;n y p&eacute;rdida de turgencia, evidenciada por un aplastamiento corporal. Al d&iacute;a 14 se contaron los adultos emergidos, evidenciados por las exuvias presentes. Se utiliz&oacute; un dise&ntilde;o experimental completamente al azar con siete repeticiones por tratamiento. Se determin&oacute; el porcentaje de eficacia de cada uno de los aislamientos, mediante la f&oacute;rmula de Schneider-Orelli (Zar 1999):<a href="#(form1)">form 1 </a></p>      <p align="center"><a name="(form1)"><img src="img/revistas/rcen/v34n1/v34n1a02form1.gif"></a></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="left"> Donde <b>b</b> equivale al porcentaje de individuos muertos en el tratamiento y <b>k</b> equivale al porcentaje de individuos muertos en el testigo absoluto. Adicionalmente se realiz&oacute; un an&aacute;lisis de varianza y una prueba de diferencias m&iacute;nimas significativas (DMS).</p>  </font>      <p align="left"> <font size="3" face="Verdana"><b>Resultados y Discusi&oacute;n</b></font></p>  <font face="Verdana"size="2">      <p align="left"> <b>Selecci&oacute;n de sustratos de producci&oacute;n masiva</b>. En los dos sistemas de producci&oacute;n masiva de B. bassiana hubo colonizaci&oacute;n completa del sustrato con abundante micelio blanco y posterior esporulaci&oacute;n pulverulenta de color casta&ntilde;o. Seg&uacute;n la prueba DMS, no se presentaron diferencias significativas en los rendimientos con los dos sustratos de producci&oacute;n, posiblemente debido a que las dos matrices s&oacute;lidas presentaron un alto contenido de nutrientes que permitieron un desarrollo similar. En arroz, el rendimiento fue de 1.5 x 109 conidios/g y en avena fue de 2,5 x 109 conidios/g. De igual manera, no hubo diferencias significativas en la producci&oacute;n masiva de Paecilomyces sp. con los sustratos evaluados; los rendimientos fueron de 1,19 x 109 conidios/g en arroz, 1,44 x 109 conidos/g en avena, 8,43 x 108 conidos/g en millo y de 1,16 x 109 conidios/g en soja. Esto indica que Paecilomyces sp. se desarrolla igualmente con cualquiera de los cuatro sustratos. En la elaboraci&oacute;n del bioplaguicida s&oacute;lido la separaci&oacute;n de la biomasa se hizo por v&iacute;a h&uacute;meda, siendo en este caso m&aacute;s adecuado trabajar con arroz y millo debido a que se facilit&oacute; dicho proceso pues los conidios del hongo presentaron mayor hidrofilicidad, facilit&aacute;ndose su lavado. Sin embargo, finalmente se decidi&oacute; emplear como matriz de producci&oacute;n el arroz mantenido en bolsas de polietileno, debido a que su inferior costo al del millo y a que presenta mayor producci&oacute;n de conidios por gramo.</p>      <p align="left"> Seg&uacute;n Samsinakova y Kalalova (1980), las principales condiciones que se deben tener en cuenta para la producci&oacute;n de microorganismos entomopat&oacute;genos son la selecci&oacute;n de cepas capaces de producir esporas altamente virulentas, un medio adecuado para la producci&oacute;n &oacute;ptima de estos conidios a bajo costo, y procesos de formulaci&oacute;n y almacenamiento adecuados. En el trabajo desarrollado por estos autores se emplearon sorbitol y peptona como fuentes de carbono y nitr&oacute;geno para la producci&oacute;n masiva de B. bassiana obteniendo rendimientos de 1 x 1010 conidios/cm2; sin embargo, estos sustratos son costosos y su utilizaci&oacute;n para la producci&oacute;n masiva resulta poco rentable. Caso contrario a lo obtenido en el presente estudio donde hubo rendimientos inferiores pero utilizando sustratos m&aacute;s econ&oacute;micos. Estas diferencias en los rendimientos, podr&iacute;an deberse a caracter&iacute;sticas propias de cada aislamiento o al efecto del medio de cultivo, ya que la asimilaci&oacute;n de carbono en el sorbitol es m&aacute;s baja que en los sustratos arroz y avena, los cuales son ricos en almid&oacute;n. Asimismo, la alta concentraci&oacute;n de fuente de carbono en el medio avena podr&iacute;a haber afectado negativamente la esporulaci&oacute;n, ya que como lo report&oacute; Humphreys et al. (1989), la concentraci&oacute;n de este nutriente est&aacute; directamente relacionada con la producci&oacute;n de micelio e inversamente relacionada con la esporulaci&oacute;n.</p>      <p align="left"><b>Desarrollo de los preformulados.</b> El producto formulado con base en B. bassiana consisti&oacute; en un polvo mojable suspendido en un concentrado emulsificable para aplicaci&oacute;n foliar y present&oacute; caracter&iacute;sticas adecuadas para este tipo de producto. La germinaci&oacute;n de los conidios contenidos en el preformulado fue del 95% y la prueba DMS (P &gt; 0,001) no encontr&oacute; diferencias estad&iacute;sticas con respecto a la germinaci&oacute;n de las c&eacute;lulas antes de formular, siendo &eacute;sta del 98%. Este resultado sugiere que el proceso de formulaci&oacute;n no afect&oacute; la viabilidad de las c&eacute;lulas y el producto seco present&oacute; una germinaci&oacute;n adecuada para asegurar su efectividad en campo. Por otra parte, la concentraci&oacute;n del producto fue de 1010 conidios/g y la humedad del 4,8%, la cual cumple con lo recomendado por diferentes autores (Butt et al. 2001).</p>      <p align="left">El tama&ntilde;o de part&iacute;cula de este preformulado fue de 45 micr&oacute;metros, el cual facilita su suspensi&oacute;n en el volumen de reconstituci&oacute;n, disminuyendo la velocidad de sedimentaci&oacute;n de las mismas y evitando el taponamiento de las boquillas de los equipos, cuando sea aplicado en campo.</p>      <p align="left">El preformulado con base en Paecilomyces sp. se elabor&oacute; de igual forma como un polvo mojable suspendido en un concentrado emulsificable para aplicaci&oacute;n foliar. Los conidios de la formulaci&oacute;n presentaron un porcentaje de germinaci&oacute;n del 80%, siendo estad&iacute;sticamente diferente al obtenido con los conidios antes de formular, el cual fue del 97%. Los resultados sugieren que la germinaci&oacute;n del hongo se vio afectada por el proceso de separaci&oacute;n o formulaci&oacute;n o por alguno de lo auxiliares de formulaci&oacute;n empleados, por lo que surge la necesidad de evaluar otros excipientes para la formulaci&oacute;n que no afecten la viabilidad del microorganismo. Este efecto posiblemente se debi&oacute; al filtro U.V, el cual demostr&oacute; en pruebas preliminares tener un efecto negativo sobre la germinaci&oacute;n de los conidios. As&iacute; mismo, el excipiente utilizado como protector de secado y/o la proporci&oacute;n de &eacute;ste, posiblemente no fueron los indicados para garantizar la viabilidad de los conidios en esta etapa tecnol&oacute;gica.</p>      <p align="left"> La concentraci&oacute;n en el producto fue de 2,45 x 1010 conidios/g y se encuentra dentro del l&iacute;mite preestablecido en el Laboratorio de Control Biol&oacute;gico para los bioplaguicidas desarrollados. Esta concentraci&oacute;n fue similar a la registrada por Villamizar y Cotes (2004), para un insecticida microbiano a base de L. lecanii para el control de la mosca blanca Trialeurodes vaporariorum, la cual fue de 1 x 1010 conidios/g. El porcentaje de humedad fue menor al 5%, valor que se encuentra entre el l&iacute;mite de aceptaci&oacute;n para estos productos biol&oacute;gicos, puesto que bajo estas condiciones de humedad el metabolismo de los hongos se hace m&aacute;s lento, lo que contribuye a aumentar su estabilidad y por tanto su vida &uacute;til (Butt et al. 2001).</p>      <p align="left"> <b>Determinaci&oacute;n de la actividad biocontroladora</b>. Al determinar la actividad biocontroladora de los productos a base de B. bassiana, Paecilomyces sp. y L. lecanii, se encontr&oacute; que a los seis d&iacute;as post aplicaci&oacute;n el mayor porcentaje de mortalidad lo caus&oacute; el preformulado a base de B. bassiana con un 76,5%; la prueba DMS no encontr&oacute; diferencias significativas con la mortalidad ocasionada por los conidios sin formular, el cual produjo el 66,5%; pero s&iacute; present&oacute; diferencias significativas con el resto de los tratamientos. Cuando se evalu&oacute; el aislamiento de Paecilomyces sp., se encontr&oacute; un comportamiento similar al obtenido con el de B. bassiana, debido a que el mayor porcentaje de mortalidad se present&oacute; con los conidios formulados en comparaci&oacute;n con los no formulados, siendo estos del 52,1% y 42,8%, respectivamente. Caso contrario ocurri&oacute; con el aislamiento de L. lecanii, cuyos conidios sin formular produjeron una mayor mortalidad que los formulados, siendo de 56,2% y de 40,9% respectivamente <a href="#(fig1)">(Fig. 1).</a></p>      <p align="center"><a name="(fig1)"><img src="img/revistas/rcen/v34n1/v34n1a02fig1.gif"></a></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="left">A los 14 d&iacute;as post aplicaci&oacute;n, no se presentaron diferencias significativas entre los porcentajes de eficacia producidos por el preformulado con base en B. bassiana y los conidios sin formular de Paecilomyces y L. lecanii, los cuales fueron del 96,5%, 95,2% y 92,9%, respectivamente. Adicionalmente, no se presentaron diferencias significativas entre los porcentajes de eficacia alcanzados por los conidios sin formular de B. bassiana y los preformulados con base en Paecilomyces y<br />    L. lecanii <a href="#(fig2)">(Fig. 2)</a>.</p>      <p align="center"><a name="(fig2)"><img src="img/revistas/rcen/v34n1/v34n1a02fig2.gif"></a></p>      <p align="left">Al comparar los resultados del presente estudio con los registrados por Espinel et al. (2004) en el cual se seleccionaron estos mismos aislamientos, los porcentajes de eficacia presentaron un incremento del 3,59%, 29,1% y 45,9% para los mismos aislamientos de Paecilomyces sp., B. bassiana y L. lecanii respectivamente, para el d&iacute;a 14 de evaluaci&oacute;n. Esto podr&iacute;a estar relacionado con un efecto del medio de crecimiento del microorganismo sobre su actividad biocontroladora; debido a que en el ensayo de selecci&oacute;n de aislamientos los microorganismos se sembraron en medio de cultivo YDB (Espinel et al. 2004) y en el presente estudio para la selecci&oacute;n de preformulados se utilizaron sustratos de producci&oacute;n masiva los cuales pudieron activar algunos factores determinantes en el mecanismo de acci&oacute;n de los microorganismos. Tal es el caso de un mejoramiento en la capacidad de adherencia de las c&eacute;lulas, ya sea por modificaci&oacute;n en la carga de la pared celular o por un aumento en la producci&oacute;n de muc&iacute;lago que media el proceso de adhesi&oacute;n a la cut&iacute;cula del insecto. Tambi&eacute;n po- dr&iacute;an haber aumentado la velocidad de germinaci&oacute;n de los conidios, la producci&oacute;n de enzimas como quitinasas o la producci&oacute;n de toxinas que determinan la capacidad de virulencia del microorganismo (Lezama 1994).</p>      <p align="left">Por otra parte, hubo una reducci&oacute;n significativa en los porcentajes de eficacia producidos por el aislamiento de Paecilomyces sp. sin formular con respecto al preformulado, los cuales fueron del 95,29% y 81,8% respectivamente, al d&iacute;a 14 de la evaluaci&oacute;n. Este mismo efecto se observ&oacute; para el caso del aislamiento de L. lecanii, pero no fue significativo. En contraste, se observ&oacute; un incremento significativo en los porcentajes de eficacia ocasionados por el preformulado con base en el aislamiento de B. bassiana, en comparaci&oacute;n con los conidios no formulados.</p>      <p align="left">Cabe destacar que los preformulados fueron evaluados en condiciones de laboratorio, en las que no hay factores ambientales negativos que podr&iacute;an influenciar la viabilidad de los entomopat&oacute;genos. Bajo estas condiciones, se encontr&oacute; que los excipientes utilizados en el desarrollo del preformulado con base en B. bassiana podr&iacute;an haber favorecido su actividad biocontroladora contra B. tabaci, contrario a lo sucedido con Paecilomyces sp. y L. lecanii. El incremento en la mortalidad cuando el microorganismo es formulado concuerda con estudios realizados por G&oacute;mez et al. (2005), quienes al evaluar virus de la granulosis formulados sobre Tecia solanivora (Povolny, 1973), encontraron porcentajes de eficacia entre el 88% y 100%, resultados significativamente diferentes a los obtenidos por los aislamientos sin formular con un porcentaje de eficacia entre el 36% y 86%. En contraste, Villamizar et al. (2004), al evaluar diferentes prototipos de formulaci&oacute;n de Nomuraea rileyi para el control de Spodoptera frugiperda (J. E. Smith, 1797) (Lepidoptera: Noctuidae), encontraron una disminuci&oacute;n en el porcentaje eficacia hasta del 57% en comparaci&oacute;n con este mismo microorganismo sin formular, indicando en este &uacute;ltimo caso que la formulaci&oacute;n afect&oacute; la actividad biocontroladora.</p>      <p align="left">Otro aspecto por considerar es que a pesar de no ser objetivo del trabajo, se debe tener en cuenta la influencia que puede ejercer la planta hospedante sobre los resultados de eficacia de los hongos entomopat&oacute;genos. Santiago-&Aacute;lvarez et al. (2006), encontraron diferencias en la mortalidad de B. bassiana sobre B. tabaci y T. vaporariorum cuando &eacute;stas se criaron sobre tabaco, pepino, tomate, fr&iacute;jol, repollo, mel&oacute;n, piment&oacute;n y algod&oacute;n. A los siete d&iacute;as despu&eacute;s de la inoculaci&oacute;n la mortalidad tuvo un rango entre el 52,3% al 91,8%.</p>      <p align="left"> Por esta raz&oacute;n es importante evaluar los prototipos desarrollados en condiciones de campo, ya que es bajo condiciones ambientales dr&aacute;sticas en que se podr&iacute;an apreciar las ventajas de la formulaci&oacute;n. Tal es el caso de una formulaci&oacute;n desarrollada a base del hongo entomopat&oacute;geno Metarhizium anisopliae para el control del la langosta llanera Rhammatocerus schistocercoides (Rhen, 1906) (Orthoptera: Acrididae), la cual al evaluarse bajo condiciones de campo ocasion&oacute; una mortalidad del 67,8% en comparaci&oacute;n con los conidios del hongo sin formular con los que la mortalidad fue del 9,5% (Espinel et al. 1998).</p>  </font>      <p align="left"><font size="3" face="Verdana"><b>Literatura citada</b></font></p>  <font face="Verdana"size="2">      <!-- ref --><p align="left"> BUTT, T.; JACKSON, C.; MAGAN, N. 2001. Fungi as biocontrol agents, progress, problems and potential. CABI Publishing, UK, 259 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000051&pid=S0120-0488200800010000200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="left"> CARO, L.; VILLAMIZAR, L.; ESPINEL, C.; COTES, A. 2005. Efecto del medio de cultivo en la virulencia de Nomuraea rileyi sobre Spodoptera frugiperda (Lepidoptera: Noctuidae). Revista Colombiana de Entomolog&iacute;a 31 (1): 79-88.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000052&pid=S0120-0488200800010000200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="left"> ESPINEL, C.; EBRATT, E.; COTES, A. 1998. Evaluaci&oacute;n de cepas nativas de Metarhizium anisopliae para el control de Rhammatocerus schistocercoides (Orthoptera: Acrididae). Revista Colombiana de Entomolog&iacute;a 24 (1-2): 1-6.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000053&pid=S0120-0488200800010000200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="left"> ESPINEL, C.; TORRES, L.; GARC&Iacute;A, J.; GONZ&Aacute;LEZ, V.; COTES, A. 2004. Aislamiento y selecci&oacute;n de hongos entomopat&oacute;genos para el control de Bemisia tabaci (Homoptera: Aleyrodidae). En: Res&uacute;menes del XXXI Congreso de la Sociedad Colombiana de Entomolog&iacute;a. Bogot&aacute;. pp. 99.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000054&pid=S0120-0488200800010000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="left"> FARIA, M.; WRAIGHT, S. 2001. Biological control of Bemisia tabaci with fungi. Crop protection 20: 767-778.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000055&pid=S0120-0488200800010000200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="left"> GARC&Iacute;A, J. 1996. Evaluaci&oacute;n de cepas nativas de Verticillium lecanii (Zimm.) Viegas en el control de la mosca blanca de los invernaderos Trialeurodes vaporariorum (Westwood). Trabajo de grado Ingenier&iacute;a Agron&oacute;mica. Facultad de Agronom&iacute;a. Universidad Nacional de Colombia. 121 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000056&pid=S0120-0488200800010000200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="left"> GARZ&Oacute;N, I. 2004. Evaluaci&oacute;n de un bioplaguicida a base de Lecanicillium lecanii aplicado con un equipo neum&aacute;tico, para el control de Trialeurodes vaporariorum (Homoptera: Aleyrodidae). Trabajo de grado. Ingenier&iacute;a Agron&oacute;mica. Facultad de Agronom&iacute;a. Universidad Nacional de Colombia. 48 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000057&pid=S0120-0488200800010000200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="left"> G&Oacute;MEZ, J., VILLAMIZAR, L., ESPINEL, C., COTES, A. 2005. Evaluaci&oacute;n de tres virus de la granulosis nativos aislados a partir de Tecia solanivora en el departamento de Cundinamarca. En: Res&uacute;menes del XXXII Congreso de la Sociedad Colombiana de Entomolog&iacute;a. Ibagu&eacute;. pp. 81.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000058&pid=S0120-0488200800010000200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="left"> HELMAN, H.1982. Farmacot&eacute;cnia te&oacute;rica y pr&aacute;ctica. Segunda edici&oacute;n. Editorial Continental. Ciudad de M&eacute;xico. p 1685-1750.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000059&pid=S0120-0488200800010000200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="left"> HERRERA, F.; CARBALLO, M.; SHANNON, P. 1999. Eficacia de cepas nativas de hongos entomopat&oacute;genos sobre Bemisia tabaci en el laboratorio. &lt;<a href="http://web.catie.ac.cr/informacion/RMIP/rmip54/art6-a.htm" target="blank">http://web.catie.ac.cr/informacion/RMIP/rmip54/art6-a.htm</a>&gt;. [Fecha &uacute;ltima revisi&oacute;n: 5 noviembre 2005].&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000060&pid=S0120-0488200800010000200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="left"> HUMPHREYS, A.; MATEWELE, P.; TRINCI, B.; GILLESPIE, A. 1989. Effects of water activity on morphology, growth and blastospore production on M. anisopliae, B. bassiana and P. farinosus in batch and fed batch culture. Mycological Research 92: 257-264.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000061&pid=S0120-0488200800010000200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="left"> INFOAGRO. 2004. M&eacute;todos de control de la mosca blanca Bemisia tabaci. &lt;<a href="http://www.infoagro.com/abonos/moscablanca.htm" target="blank">http://www.infoagro.com/abonos/moscablanca.htm</a>&gt;. Fecha &uacute;ltima revisi&oacute;n: 19 octubre 2005. [Fecha &uacute;ltimo acceso: 27 octubre 2005].&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000062&pid=S0120-0488200800010000200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="left"> JIM&Eacute;NEZ, L. 2002. Evaluaci&oacute;n de t&eacute;cnicas de aplicaci&oacute;n de un bioplaguicida a base de Verticillium lecanii, para el control de la mosca blanca de los invernaderos Trialeurodes vaporariorum en un cultivo de habichuela. Trabajo de grado Ingenier&iacute;a Agron&oacute;mica. Facultad de Agronom&iacute;a. Universidad Nacional de Colombia. 83 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000063&pid=S0120-0488200800010000200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="left"> LEZAMA, R. 1994. Patogenicidad de hongos par&aacute;sitos de insectos. En: I Seminario Patolog&iacute;a. FCBA. U de Tecom&aacute;n, Colima. pp. 47-69.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000064&pid=S0120-0488200800010000200014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="left"><font size="2" face="Verdana"> L&Oacute;PEZ, A.; GARC&Iacute;A, J. 2000. Manejo Integrado sostenible de moscas blancas como plagas y vectores de virus en los tr&oacute;picos. 1. Reconocimiento, diagn&oacute;stico y caracterizaci&oacute;n de moscas blancas como plagas en el tr&oacute;pico alto de Am&eacute;rica Latina. Informe final. Convenio Danida - Corpoica. CIAT. 43 p.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S0120-0488200800010000200015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="left"> McAUSLANE, H. 2000. Sweet potato whitefly B Biotype or silverleaf whitefly. &lt;<a href="http://www.nysaea.cornell.edu/ent/biocontrol/parasitoids/whitefly" target="blank">http://www.nysaea.cornell.edu/ent/biocontrol/parasitoids/whitefly</a>&gt;. Fecha &uacute;ltima revisi&oacute;n: 10 octubre 2005. 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Mass production of Beauveria bassiana for regulation of Leptinotarsa decemlineata populations. Journal of Invertebrate Pathology 38: 169-174.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0120-0488200800010000200018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="left"> SANTIAGO- &Aacute;LVAREZ, C.; MARANHAO, E.; MARANHAO, E.; QUESADA-MORAGA, E. 2006. Host plant influences pathogenicity of Beauveria bassiana and its sporulation on cadavers. Bicontrol 51: 519-532.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0120-0488200800010000200019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="left"> VIDAL, C.; LACEY, L.; FARGUE, J. 1997. Pathogenicity of Paecilomyces fumosoroseus (Deuteromycotina: Hyphomycetes) against Bemisia argentifolli (Homoptera: Aleyrodidae) with a description of a bioassay method. Journal of Economic Entomology 90: 765-772.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0120-0488200800010000200020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="left"> VILLAMIZAR, L.; ARRIERO, C.; BOSA, F.; COTES, A. 2004. Desarrollo de preformulados a base de Nomuraea rileyi para el control de Spodoptera frugiperda (Lepidoptera: Noctuidae). Revista Colombiana de Entomolog&iacute;a 30 (1): 99-105.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0120-0488200800010000200021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="left"> VILLAMIZAR, L.; COTES, A. 2004. Desarrollo de un bioplaguicida a base de Verticillium lecanii para el control de la mosca blanca Trialeurodes vaporariorum (Homoptera: Aleyrodidae). En: Res&uacute;menes del XXXI Congreso de la Sociedad Colombiana de Entomolog&iacute;a. 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Biostatistical analysis. Cuarta edici&oacute;n. Prentice Hall. New Jersey. 663 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0120-0488200800010000200024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p><font face="Verdana"size="2"><font face="Verdana"size="2">Recibido: 25-mar-2006&bull; Aceptado: 13-mar-2008 </font></font></p>      ]]></body><back>
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