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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Parasitismo de larvas de Copturus aguacatae (Coleoptera: Curculionidae) por Heterorhabditis indica (Rhabditida: Heterohabditidae) en laboratorio]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Parasitism of Copturus aguacatae (Coleoptera: Curculionidae) larvae by Heterorhabditis indica(Rhabditida: Heterorhabditidae) in the laboratory]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[To evaluate the potential of the nematode Heterorhabditis indica as a biocontrol agent of the avocado stem weevil, Copturus aguacatae, bioassays were planned with larvae of the pest inside and outside of stems in Jiquilpan, Michoacan (Mexico). Outside of stems, second and third instars larvae were exposed to four nematode concentrations: 1% (2500 nematodes mL-1), 0.1% (250 nematodes mL-1), 0.01% (25 nematodes mL-1) and 0.001% (2.5 nematodes mL-1). The optimal concentrations and the time required to kill 50% of the population (LT50) were estimated. The bioassays inside of stems included four strategies of application: &#8220;baba&#8221; (soap) of nopal, gelatin, water, and water + plastic cover. Sponge strips were soaked in a suspension of 500 nematodes mL-1 plus the corresponding treatment. Avocado stems with larvae of the pest collected in Atapan, Michoacán (Mexico) were covered with the sponges and incubated for 15 days; the study conditions were 25 ± 1 °C. The results showed high virulence of H. indica to larvae of the pest. The estimated LT50 was 28.8 h, whereas the interval required to cause 100% mortality was estimated as 44 h. The optimal concentration was 0.1% (250 nematodes mL-1) with a mortality of 93.3% ± 5.7%. However, strong limitations were detected for H. indica to penetrate and infect C. aguacatae inside of the galleries. Although there was a trend for higher mortality in treatments with respect to the control, juvenile nematodes were only recovered from the treatment water + plastic cover.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[   <font size="2" face="Verdana">    </font>    <p align="center"><font size="4" face="Verdana"><b>Parasitismo de  larvas de <i>Copturus aguacatae </i>(Coleoptera: Curculionidae) por <i>Heterorhabditis  indica </i>(Rhabditida: Heterohabditidae) en laboratorio</b> </font></p>      <p align="center"><b><font size="3" face="Verdana">Parasitism of <i>Copturus aguacatae </i>(Coleoptera: Curculionidae)  larvae by <i>Heterorhabditis indica</i>(Rhabditida: Heterorhabditidae) in the laboratory</font></b></p> <font size="2" face="Verdana">     <p><b>MA. GUADALUPE S&Aacute;NCHEZ-SAAVEDRA<sup>1,2</sup>, HIP&Oacute;LITO CORTEZ-MADRIGAL<sup>1,3</sup>y SALVADOR OCHOA-ESTRADA<sup>1,4</sup></b></p>     <p><sup>1</sup> Centro Interdisciplinario de Investigaci&oacute;n para el Desarrollo Integral Regional-IPN, Unidad Michoac&aacute;n. Justo Sierra # 28, Col. Centro, C.P. 59510, Jiquilpan, Michoac&aacute;n, M&eacute;xico.      <br> <sup>2</sup> Auxiliar de investigaci&oacute;n-M.C.      <br> <sup>3</sup> Profesor-Investigador-Dr., CIIDIR-IPN, Unidad Michoac&aacute;n, <a href="mailto:hcortezm@ipn.mx">hcortezm@ipn.mx</a>, autor para   correspondencia.      <br><sup>4</sup> Profesor-Investigador-M.C., CIIDIR-IPN, Unidad Michoac&aacute;n.</p>     <p>Recibido: 23-mar-2012 -  Aceptado: 28-oct-2012</p>  <hr>     <p><b>Resumen: </b>Para evaluar el potencial del nematodo <i>Heterorhabditis  indica</i> en el control del barrenador de ramas de aguacate, <i>Copturus  aguacatae</i>, se planearon bioensayos con larvas de la plaga fuera y dentro de  ramas en Jiquilpan, Michoac&aacute;n (M&eacute;xico). Fuera de ramas, larvas del segundo y  tercer estadio se expusieron a cuatro concentraciones del nematodo: 1% (2.500  nematodos mL<sup>-1</sup>), 0,1% (250 nematodos mL<sup>-1</sup>), 0,01% (25  nematodos mL<sup>-1</sup>) y 0,001% (2,5 nematodos mL<sup>-1</sup>). Se estim&oacute;  la concentraci&oacute;n &oacute;ptima y el tiempo en que muri&oacute; el 50% de la poblaci&oacute;n (TL<sub>50</sub>). Los  bioensayos dentro de ramas incluyeron cuatro estrategias de aplicaci&oacute;n: &ldquo;baba&rdquo;  (savia) de nopal, gelatina, agua, agua + cubierta pl&aacute;stica. Tiras de esponja se  empaparon con una suspensi&oacute;n de 500 nematodos mL<sup>-1 </sup>m&aacute;s el  tratamiento correspondiente. Ramas de aguacate con larvas de la plaga  colectadas en la regi&oacute;n de Atapan, Michoac&aacute;n (M&eacute;xico) se cubrieron con las  esponjas y se incubaron durante 15 d&iacute;as; la temperatura durante el estudio fue  de 25 &plusmn; 1 &deg;C. Los resultados mostraron alta virulencia de <i>H. indica</i> hacia larvas de la plaga. El TL<sub>50</sub>&nbsp;estimado fue de 28,8 h, mientras que el 100%  de mortalidad se estim&oacute; en 44 h. La concentraci&oacute;n &oacute;ptima fue del 0,1% (250  nematodos mL<sup>-1</sup>) con un 93,3% &plusmn; 5,7% de mortalidad. Sin embargo, se  detectaron fuertes limitaciones de <i>H. indica</i> para penetrar e infectar a <i>C.  aguacatae</i> dentro de las galer&iacute;as. Aunque hubo tendencia a una mayor  mortalidad en los tratamientos respecto al testigo, solo se obtuvieron  nematodos juveniles en el tratamiento agua + cubierta pl&aacute;stica.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Palabras clave:</b> Nematodos entomopat&oacute;genos. Control  biol&oacute;gico. Barrenador de ramas. Aguacate. </p> <hr>     <p><b>Abstract: </b>To evaluate the potential of the nematode <i>Heterorhabditis  indica</i> as a biocontrol agent of the avocado stem weevil, <i>Copturus  aguacatae</i>, bioassays were planned with larvae of the pest inside and  outside of stems in Jiquilpan, Michoacan (Mexico). Outside of stems, second and  third instars larvae were exposed to four nematode concentrations: 1% (2500 nematodes mL<sup>-1</sup>), 0.1% (250  nematodes mL<sup>-1</sup>), 0.01% (25 nematodes mL<sup>-1</sup>) and 0.001%  (2.5 nematodes mL<sup>-1</sup>). The optimal concentrations and the time  required to kill 50% of the population (LT<sub>50</sub>) were estimated. The bioassays  inside of stems included four strategies of application: &ldquo;baba&rdquo; (soap) of nopal,  gelatin, water, and water + plastic cover. Sponge strips were soaked in a  suspension of 500 nematodes mL<sup>-1</sup> plus the corresponding treatment.  Avocado stems with larvae of the pest collected in Atapan, Michoac&aacute;n (Mexico)  were covered with the sponges and incubated for 15 days; the study conditions  were 25 &plusmn; 1 &deg;C. The results showed high virulence of <i>H. indica </i>to larvae  of the pest.&nbsp; The estimated LT<sub>50</sub>&nbsp;was 28.8 h, whereas the interval required to  cause 100% mortality was estimated as 44 h. The optimal concentration was 0.1%  (250 nematodes mL<sup>-1</sup>) with a mortality of 93.3% &plusmn; 5.7%. However,  strong limitations were detected for <i>H. indica</i> to penetrate and infect <i>C.  aguacatae</i> inside of the galleries. Although there was a trend for higher  mortality in treatments with respect to the control, juvenile nematodes were  only recovered from the treatment water + plastic cover. </p>     <p><b>Key words:</b> Entomopathogenic nematodes. Biological control.  Stem weevils. Avocado. </p> <hr> </font>     <p><font size="2" face="Verdana"><b><font size="3">Introducci&oacute;n</font></b>  </font> <font size="2" face="Verdana">     <p>Con  una superficie de 121.491 ha cosechadas y una producci&oacute;n de 1230.970 t, el  aguacate es uno de los principales cultivos perennes de M&eacute;xico y hace de este  pa&iacute;s el primer productor mundial (FAOSTAT 2009). En M&eacute;xico, el estado de  Michoac&aacute;n es el principal productor, con una superficie de 98.463 ha y una  producci&oacute;n de 1006.059 t (SAGARPA 2009). Aunque M&eacute;xico es un consumidor  importante de aguacate, gran parte de su producci&oacute;n se exporta a diversos  pa&iacute;ses, donde destaca Estados Unidos con el 41,8% de las exportaciones  (Salazar-Garc&iacute;a <i>et al.</i> 2005; INEGI 2006). Sin embargo, la exportaci&oacute;n de  aguacate est&aacute; limitada por diversos problemas de plagas, donde destaca el  barrenador de ramas <i>Copturus aguacatae </i>Kissinger, 1957 (Coleoptera:  Curculionidae) (NOM-066-FITO-2002 2002). Junto con los barrenadores del hueso <i>Conotrachelus  aguacatae </i>Barber, 1924 y <i>C. persea </i>Barber, 1919 (Coleoptera:  Curculionidae), las p&eacute;rdidas del cultivo fluct&uacute;an de 2 - 3 t/ha; el control de  los tres insectos incluye un poco m&aacute;s del 15% del costo total del cultivo  (SENASICA 2009).</p>     <p><i> C. aguacatae</i> presenta amplia distribuci&oacute;n en las zonas productoras de aguacate de M&eacute;xico  (Talavera y Padilla 2003; Engstrand <i>et al.</i> 2010) y est&aacute; categorizado de  m&aacute;ximo riesgo para su introducci&oacute;n y establecimiento en zonas productoras de  aguacate libres de la plaga (NOM-066-FITO-2002 2002). Su da&ntilde;o inicia con la  oviposici&oacute;n de las hembras bajo la corteza de las ramas y posteriormente, por  la penetraci&oacute;n de las larvas al interior de ellas. La larva barrena la rama  hasta llegar a la m&eacute;dula, causando defoliaci&oacute;n, aborto de flores y marchites de  frutos. En altas infestaciones, las ramas con frutos pueden quebrarse y as&iacute;  perder la producci&oacute;n (Equihua <i>et al.</i> 2007). No obstante su peque&ntilde;o  tama&ntilde;o, el insecto presenta un ciclo biol&oacute;gico largo (215,8 - 285 d&iacute;as),  pasando por cinco estad&iacute;os larvarios en ese periodo. Se reporta una sola  generaci&oacute;n anual (Talavera y Padilla 2003; Coria <i>et al.</i> 2007). </p>     <p> El largo ciclo biol&oacute;gico y el h&aacute;bitat  cr&iacute;ptico de las larvas de <i>C. aguacatae </i>dificulta su control, de manera  que su manejo se basa en la combinaci&oacute;n de estrategias culturales (poda) y la  aplicaci&oacute;n de insecticidas &oacute;rgano-sint&eacute;ticos, principalmente (Coria <i>et al.</i> 2007; Equihua <i>et al.</i> 2007); sin embargo, la poda &ldquo;obligada&rdquo; del aguacate  es decir, de las ramas infestadas, no siempre es deseable, mientras que  depender del control qu&iacute;mico como estrategia principal tiene serias desventajas  principalmente, por la contaminaci&oacute;n, eliminaci&oacute;n de enemigos naturales y por  el desarrollo de resistencia de la plaga (Pimentel y Edwards 1982; Lacey <i>et  al.</i> 2001). Adem&aacute;s las limitaciones impuestas en la aplicaci&oacute;n de productos  qu&iacute;micos en aguacate como producto de exportaci&oacute;n y los h&aacute;bitos cr&iacute;pticos del  barrenador reducen en gran medida la eficacia de los productos qu&iacute;micos  (Equihua <i>et al.</i> 2007). </p>     <p> El control biol&oacute;gico ha sido utilizado de  manera limitada (Coria <i>et al.</i> 2007; Equihua <i>et al.</i> 2007); por  ejemplo, aunque se han identificados diversos parasitoides de larvas de <i>C.  aguacatae </i>(Huerta de la Pe&ntilde;a <i>et al.</i> 1990) poco se ha hecho para  evaluarlos. S&oacute;lo unas especies de hongos entomopat&oacute;genos como, <i>Beauveria  bassiana </i>(Vuill.), han mostrado potencial en el  control de la plaga (Coria <i>et al.</i> 2007; Equihua <i>et al. </i>2007); sin  embargo, se requieren m&aacute;s estudios al respecto. </p>     <p> El uso de entomopat&oacute;genos en el manejo de  plagas es una alternativa que ha cobrado fundamental importancia en los &uacute;ltimos  a&ntilde;os (Lacey <i>et al.</i> 2001) y se reconoce que los insecticidas microbiales  con mayor potencial para el manejo de barrenadores son los basados en nematodos  entomopat&oacute;genos (NEPs) de las familias Steinernernematidae y Heterorhabditidae  (Georgis <i>et al.</i> 2006; Kaya <i>et al.</i> 2006; Shapiro-Ilan <i>et al.</i> 2006). Aunque diversos  estudios con insectos barrenadores demuestran el potencial de los NEPs en el  control de insectos de h&aacute;bitat cr&iacute;pticos (Shapiro-Ilan y McCoy 2000; Unruh  y Lacey 2001; Abbas 2010), solo uno ha sido documentado sobre  el efecto de NEPs en larvas de <i>C. aguacatae </i>dentro de ramas (Huerta  de la Pe&ntilde;a <i>et al.</i> 1990); sin embargo, los resultados  encontrados muestran inconsistencias y se requiere de m&aacute;s estudios. </p>     <p> El nematodo <i>Heterorhabditis indica </i>Poinar,  Karunaka y David, 1992, fue primero descrito en la India por Poinar <i>et al.</i> (1992) y desde entonces ha sido aislado en diferentes pa&iacute;ses, entre ellos  M&eacute;xico (Kaya <i>et al.</i> 2006) y evaluado en m&uacute;ltiples especies de insectos  mostrando buen potencial en varias de ellas (Kaya <i>et al.</i> 2006; Shapiro-Ilan <i>et al.</i> 2009b; Abbas 2010;  Campos-Herrera <i>et al.</i> 2010). </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> Dada la importancia  econ&oacute;mica y social del cultivo del aguacate, el objetivo del estudio fue  evaluar el potencial del nematodo <i>H. indica </i>(poblaci&oacute;n Tab-03) en el  control de larvas de <i>C. aguacatae </i>en condiciones de laboratorio.</p> </font>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>Materiales  y M&eacute;todos</b></font></p> <font size="2" face="Verdana">     <p><b>Material  biol&oacute;gico. </b>Las larvas de <i>C. aguacatae </i>se  colectaron en la regi&oacute;n aguacatera de Atapan, Los Reyes, Michoac&aacute;n (M&eacute;xico)  (Ubicado entre las coordenadas 19&deg;39&rsquo; y 19&deg;40&rsquo;N y entre 103&deg;24&rsquo; y 103&deg;26&rsquo;O),  con altitudes comprendidas entre los 1.600 y 1.800 msnm. Durante marzo, abril,  mayo, junio y octubre 2010 y enero y octubre 2011, ramas de aguacate infestadas  por larvas del barrenador fueron transportadas en una hielera al Laboratorio de  Entomolog&iacute;a del Centro Interdisciplinario de Investigaci&oacute;n para  el Desarrollo Integral Regional del Instituto Polit&eacute;cnico Nacional (CIIDIR-IPN)  en Jiquilpan, Michoac&aacute;n (M&eacute;xico). </p>     <p> Se utiliz&oacute; la especie de nematodo <i>H.  indica</i> poblaci&oacute;n Tab-03 aislada de la regi&oacute;n de Tabasco  (M&eacute;xico) y conservada en el Laboratorio de Entomolog&iacute;a del CIIDIR-IPN en Jiquilpan,  Michoac&aacute;n (M&eacute;xico). El nematodo se multiplic&oacute; en larvas de <i>Galleria  mellonella </i>L, 1758 (Lepidoptera: Pyralidae) y se  conserva a temperatura ambiente en agua, dentro de frascos de cultivo de  tejidos de 160 mL. Los nematodos utilizados fueron siempre de 10 d&iacute;as de  emergidos. </p>     <p><b>Efecto  de <i>H. indica</i> en larvas de <i>C. aguacatae</i></b></p>     <p><b>Bioensayo  preliminar.</b> Las ramas recolectadas en campo se  abrieron mediante navaja y tijeras de podar para obtener las larvas de <i>C.  aguacatae</i>. Dado que fueron poblaciones de campo, la edad de las larvas  vari&oacute;, distingui&eacute;ndose edades desde el primero hasta el tercer estadio,  predominando el segundo y tercer estadio.</p>     <p> En recipientes de pl&aacute;stico de 5 x 6 cm con  una toalla de papel en el fondo, se a&ntilde;adi&oacute; 1 mL de una suspensi&oacute;n conocida de  nematodos (2.500 mL<sup>-1</sup>) con viabilidad &gt; 95%, m&aacute;s 1 mL de agua  para proporcionar humedad favorable al nematodo; inmediatamente, se deposit&oacute;  una larva de <i>C. aguacatae </i>(segundo y tercer estadio) por recipiente y se  coloc&oacute; la tapa, previamente perforada para favorecer el intercambio gaseoso. Se  establecieron tres repeticiones con 10 - 14 larvas por repetici&oacute;n y un testigo  con solo aplicaci&oacute;n de agua para cada repetici&oacute;n. Los recipientes se  mantuvieron a 25 &plusmn; 1 &deg;C sin fotoperiodo. A partir de las 24 h se realizaron  lecturas cada 2 h, y con la finalidad de determinar el tiempo en que muri&oacute; el  50% de la poblaci&oacute;n (TL<sub>50</sub>), la frecuencia de las lecturas se acort&oacute;  conforme aument&oacute; la mortalidad. Los datos se analizaron con base a un an&aacute;lisis  probit, previa transformaci&oacute;n a un modelo cuadr&aacute;tico completo, mediante el  programa estad&iacute;stico SAS (1999). Complementariamente se determin&oacute; el n&uacute;mero de  nematodos juveniles infectivos (JIs) que emergieron por larva de <i>C.  aguacatae</i> (N = 10). </p>     <p><b>Evaluaci&oacute;n  de concentraci&oacute;n.</b> Adem&aacute;s de la concentraci&oacute;n preliminar  evaluada (considerada como 1%), se evaluaron tres concentraciones m&aacute;s: 0,1%  (250 nematodos mL<sup>-1</sup>), 0,01% (25 nematodos mL<sup>-1</sup>) y 0,001%  (2,5 nematodos mL<sup>-1</sup>). La evaluaci&oacute;n se realiz&oacute; de forma similar al  bioensayo preliminar, con tres repeticiones y un testigo sin nematodos para  cada repetici&oacute;n. Los datos se procesaron mediante an&aacute;lisis de varianza (ANOVA)  bajo un dise&ntilde;o completamente al azar (DCA) y la separaci&oacute;n de medias mediante  Tukey (P &lt; 0,05). En el an&aacute;lisis se incluy&oacute; la concentraci&oacute;n del 1% descrita  anteriormente. </p>     <p><b>Bioensayo  preliminar con larvas dentro de ramas. </b>Para determinar el  potencial de <i>H. indica</i> en la mortalidad de <i>C. aguacate</i> dentro de  ramas, se realiz&oacute; un primer bioensayo a dosis de 2.500 nematodos mL<sup>-1</sup>.  Mediante un aspersor manual, la suspensi&oacute;n de nematodos se asperj&oacute; directamente  sobre la rama donde se encontraban las larvas; inmediatamente, las ramas se  introdujeron en bolsas de pl&aacute;stico herm&eacute;ticamente selladas para evitar la  p&eacute;rdida de humedad. Se consideraron tres repeticiones de siete ramas cada una,  m&aacute;s un testigo con solo aplicaci&oacute;n de agua. El experimento se desarroll&oacute; a 25 &plusmn;  1 &deg;C sin fotoperiodo. Despu&eacute;s de 10 d&iacute;as, las ramas se abrieron para registrar  el estado de las larvas. Previa transformaci&oacute;n al arcoseno de la proporci&oacute;n,  los datos se procesaron mediante un ANOVA y la separaci&oacute;n de medias mediante  Tukey (P &le; 0,05), con el programa estad&iacute;stico SAS (1999). </p>     <p><b>T&eacute;cnicas  de aplicaci&oacute;n de <i>H. indica</i> en ramas infestadas. </b>Para  favorecer el ingreso del nematodo a las galer&iacute;as de <i>C. aguacatae</i>, cuatro  estrategias de aplicaci&oacute;n fueron evaluadas: &ldquo;baba&rdquo; (savia) de nopal (100 g 250  mL<sup>-1</sup> de agua) (B), gelatina (21 g 250 mL<sup>-1</sup> de agua) (G),  agua + cubierta de pl&aacute;stico (Bolsipack&reg;, A + P) y agua (A). Cada uno de los  tratamientos incluy&oacute; un testigo sin nematodos. Se prepar&oacute; una suspensi&oacute;n de  nematodos de la especie <i>H. indica</i> a una concentraci&oacute;n de 500 nematodos  mL<sup>-1</sup>. Cintas de esponja de 30 x 5 cm fueron saturadas con 30 mL de  la suspensi&oacute;n de nematodos y una rama de 20 cm infestada con larvas del  barrenador (segundo y tercer estadio) se cubri&oacute; con la esponja. Dos  repeticiones fueron consideradas, con cuatro ramas por repetici&oacute;n. Las ramas se  mantuvieron en bolsas de pl&aacute;stico selladas para evitar la p&eacute;rdida de humedad.  El experimento se desarroll&oacute; a 25 &plusmn; 1 &deg;C sin fotoperiodo. Despu&eacute;s de 15 d&iacute;as se  abrieron las ramas para registrar el estado de las larvas. Se realizaron  observaciones adicionales sobre longitud de las galer&iacute;as, presencia y  viabilidad de los nematodos en el serr&iacute;n de las galer&iacute;as y el estadio larvario  presente. Las larvas muertas se colocaron en trampas White (Woodring y Kaya  1988) para registrar la posible emergencia de los juveniles infectivos (JIs).  Los datos se analizaron mediante estad&iacute;sticas descriptivas. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> Durante octubre  2011 se estableci&oacute; un segundo experimento en ramas con da&ntilde;o inicial del  barrenador (de primer estadio). La metodolog&iacute;a fue similar al anterior  experimento, solo que en este caso se us&oacute; &uacute;nicamente la esponja m&aacute;s la  suspensi&oacute;n de nematodos. Al menos se establecieron tres repeticiones y los  datos se analizaron mediante un ANOVA.</h3>     <p><b>Caracterizaci&oacute;n del serr&iacute;n de galer&iacute;as de <i>C.  aguacatae. </i></b>Dado que las  caracter&iacute;sticas de las galer&iacute;as de diversos barrenadores donde se han aplicado  exitosamente NEPs son diferentes a las de <i>C. aguacatae</i>, en donde la  galer&iacute;a es bloqueada con &ldquo;serr&iacute;n&rdquo; producto de su alimentaci&oacute;n y excreci&oacute;n, no  existen hasta donde sabemos estudios sobre la caracterizaci&oacute;n de ese producto.  Para una mejor interpretaci&oacute;n de los resultados de los bioensayos con larvas  dentro de ramas, se consider&oacute; conveniente llevar a cabo una caracterizaci&oacute;n de  ese producto. Se consideraron las propiedades f&iacute;sicas y qu&iacute;micas. </p>     <p><b>An&aacute;lisis  granulom&eacute;trico de part&iacute;culas.</b> Con la finalidad de  permitir el tamizado, una muestra de 10 g de serr&iacute;n obtenido de galer&iacute;as de <i>C.  aguacatae</i> fue secada en estufa a 120 &deg;C durante 2 h. El serr&iacute;n se tamiz&oacute;  durante 10 minutos, empleando los juegos de mallas especificados en la  descripci&oacute;n de las cribas (2,38; 1,19; 0,50; 0,4318; 0,149 y 0,177 mm);  mediante una balanza anal&iacute;tica (Sartorius&reg;) se pes&oacute; el material tamizado en  cada una de las cribas, incluyendo el fondo o base de los tamices. Para conocer  el tama&ntilde;o de las part&iacute;culas se realizaron mediciones del largo por ancho de dos  maneras: para las part&iacute;culas de las dos primeras cribas se utiliz&oacute; un vernier  bajo el estereoscopio, y los valores se expresaron en mm; para las &uacute;ltimas  cribas debido al diminuto tama&ntilde;o de las part&iacute;culas, la medici&oacute;n se realiz&oacute;  mediante un micr&oacute;metro adaptado al microscopio compuesto (40X) y las unidades  oculares obtenidas fueron transformadas a micr&oacute;metros. Los pesos del material  de cada criba fueron transformados a porcentaje relativo del total del peso de  la muestra. </p>     <p><b>Determinaci&oacute;n del contenido de  humedad. </b>Se pes&oacute; 1 g de muestra, se sec&oacute; a 103 &ordm;C durante 24  h, inmediatamente despu&eacute;s se pas&oacute; al desecador por 24 h y se peso la muestra,  una vez anotado el peso de los crisoles, se llev&oacute; nuevamente a la estufa por 24  h, despu&eacute;s de este tiempo se pas&oacute; al desecador. Se repitieron las operaciones  anteriores hasta obtener peso constante. </h4>     <p><b>Determinaci&oacute;n  del pH y conductividad el&eacute;ctrica (C.E.).</b> Se emplearon los  m&eacute;todos citados por Roffael <i>et al.</i> (2000). Se tom&oacute; 1 g de material de la  porci&oacute;n fina obtenida del an&aacute;lisis granulom&eacute;trico de las part&iacute;culas, se  introdujeron en un matraz, se mezclaron con 10 mL de agua destilada, y se  agitaron durante 4 h. Finalizado el tiempo, parte del sobrenadante se utiliz&oacute; para  determinar el pH mediante un potenci&oacute;metro (ThermoOrion&reg;). Adem&aacute;s se tom&oacute; la  lectura de la C.E, utilizando para este caso un conduct&iacute;metro (Hanna&reg;) para  obtener el valor correspondiente.</p> </font>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>Resultados</b></font>   <font size="2" face="Verdana">   </h2>   </font> <font size="2" face="Verdana">     <p><b>Susceptibilidad  de larvas de <i>C. aguacatae</i> frente a <i>H. indica</i></b><i>. </i>El nematodo <i>H. indica</i> caus&oacute; alta mortalidad en  larvas de <i>C. aguacatae</i>. A pesar de su peque&ntilde;a talla (4,9-10 mm) las  larvas del barrenador resultaron adecuadas para el desarrollo del nematodo,  registr&aacute;ndose una emergencia de juveniles que fluctu&oacute; de 386 a 3.426,66 JIs por  larva (<a href="#(fig1)">Fig. 1</a>). En el testigo no se registr&oacute; mortalidad.     <p align="center"><a name="(fig1)"><img src="img/revistas/rcen/v38n2/v38n2a07fig1.jpg"></a></p>      <p> Con base al an&aacute;lisis probit, previa  transformaci&oacute;n a un modelo cuadr&aacute;tico completo (P = 0,0001), el tiempo estimado  en que muri&oacute; el 50% de la poblaci&oacute;n (TL<sub>50</sub>) con una concentraci&oacute;n de  2.500 nematodos mL<sup>-1</sup> (1%) fue de 28,8 h (27,2 - 29,7 h), mientras  que el 100% con esa misma dosis se alcanz&oacute; a las 44 h (43,9 - 45,9 h) (<a href="#(fig2)">Fig. 2</a>).  De las cuatro concentraciones evaluadas, las del 1% y 0,1% fueron las que  causaron la mayor mortalidad de larvas (<a href="#(tab1)">Tabla 1</a>). </p>      <p align="center"><a name="(fig2)"><img src="img/revistas/rcen/v38n2/v38n2a07fig2.jpg"></a></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="(tab1)"><img src="img/revistas/rcen/v38n2/v38n2a07tab1.jpg"></a></p>      <p><b>Mortalidad dentro de ramas mediante aspersi&oacute;n.</b> Despu&eacute;s de 10 d&iacute;as de incubaci&oacute;n la mortalidad media  registrada en el tratamiento fue de 9,85 &plusmn; 6,77%, significativamente mayor (P =  0,008) que la del testigo (0%) (<a href="#(fig3)">Fig. 3</a>). Sin embargo, los cad&aacute;veres del  tratamiento no mostraron la sintomatolog&iacute;a caracter&iacute;stica de muerte por NEPs  del g&eacute;nero <i>Heterorhabditis </i>(rojo &oacute;xido) y en ning&uacute;n caso hubo emergencia<b> </b>de juveniles. </p>      <p align="center"><a name="(fig3)"><img src="img/revistas/rcen/v38n2/v38n2a07fig3.jpg"></a></p>     <p><b>Estrategias  de aplicaci&oacute;n de <i>H. indica</i> en ramas.</b> Quince d&iacute;as  despu&eacute;s de la aplicaci&oacute;n de los nematodos, en todos los tratamientos se  registr&oacute; mortalidad de <i>C. aguacatae, </i>la que fluctu&oacute; del 75% al 100%; sin  embargo, solo en el tratamiento agua + cubierta pl&aacute;stica los cad&aacute;veres tratados  presentaron la sintomatolog&iacute;a caracter&iacute;stica de muerte por nematodos del g&eacute;nero <i>Heterorhabditis</i>; en el 25% de las larvas se recuperaron juveniles que  mostraron patogenicidad hacia larvas de <i>G. mellonella. </i>Con excepci&oacute;n del  tratamiento a base de baba de nopal sin nematodos, en ninguno de los testigos  se registr&oacute; mortalidad de larvas (<a href="#(fig4)">Fig. 4</a>). A diferencia del experimento  preliminar, en este caso el tama&ntilde;o de las larvas fue mayor (8 a 10 mm),  correspondiendo al tercer y cuarto estadio del barrenador; el da&ntilde;o alcanz&oacute;  desde 4 hasta 10 mm de longitud y las galer&iacute;as estuvieron totalmente cubiertas  por excreciones del insecto (&ldquo;serr&iacute;n&rdquo;). </p>      <p align="center"><a name="(fig4)"><img src="img/revistas/rcen/v38n2/v38n2a07fig4.jpg"></a></p>     <p> Un experimento posterior con larvas del  primer estadio dentro de ramas constat&oacute; los resultados anteriores. La  mortalidad en el tratamiento fue de 65,92 &plusmn; 17,6%, significativamente mayor (P  = 0,035) que la del testigo (11,11%, <a href="#(fig5)">Fig. 5</a>). </p>      <p align="center"><a name="(fig5)"><img src="img/revistas/rcen/v38n2/v38n2a07fig5.jpg"></a></p>     <p> Al igual que en los casos anteriores, las  larvas muertas en el tratamiento no presentaron la sintomatolog&iacute;a  caracter&iacute;stica del g&eacute;nero del nematodo y tampoco se obtuvieron juveniles a  partir de los cad&aacute;veres. Es importante se&ntilde;alar que en algunos casos el serr&iacute;n  se observ&oacute; h&uacute;medo y con presencia de nematodos en &eacute;l, lo que indica que <i>H.  indica</i> intent&oacute; penetrar las galer&iacute;as y alcanzar en algunos casos al insecto  y matarlo, tal como ocurri&oacute; en el tratamiento agua + cubierta pl&aacute;stica. </p>     <p> El an&aacute;lisis f&iacute;sico-qu&iacute;mico del serr&iacute;n de  las galer&iacute;as de <i>C. aguacatae</i> permiti&oacute; saber que los valores de humedad  fueron del 7,13%, el pH registrado fue de 7,37 y la conductividad el&eacute;ctrica  (C.E.) de 1.179 dS m<sup>-1</sup>. Por otra parte, las observaciones  granulom&eacute;tricas del serr&iacute;n indicaron part&iacute;culas de diferentes tama&ntilde;os,  predominando las de 0,7 x 0,4 a 1,4 x 0,8 mm con un 33,3% del peso total de las  part&iacute;culas. Las que mostraron la menor proporci&oacute;n fueron las de 1,30 x 1,56 a  2,0 x 1,56 &micro;m con solo el 0,44% del peso total (<a href="#(tab2)">Tabla 2</a>). </p>      <p align="center"><a name="(tab2)"><img src="img/revistas/rcen/v38n2/v38n2a07tab2.jpg"></a></p> </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="3" face="Verdana"><b>Discusi&oacute;n</b></font></p> <font size="2" face="Verdana">     <p>Los  s&iacute;ntomas de los insectos parasitados por el nematodo fueron los caracter&iacute;sticos  para el g&eacute;nero: disminuci&oacute;n en su movilidad y posteriormente la muerte;  ausencia de olor y coloraci&oacute;n rojo &oacute;xido y posteriormente emergencia de JIs  (Woodring y Kaya 1988). Los tiempos de mortalidad <i>in vitro </i>de larvas de <i>C.  aguacatae</i> tratadas con <i>H. indica </i>sugieren una alta susceptibilidad  de la plaga hacia el nematodo pues el tiempo de mortalidad (44 h) est&aacute; dentro  del indicado para insectos susceptibles a NEPs, ubicado entre 24 - 48 h. La  baja concentraci&oacute;n requerida (250 JIs mL<sup>-1 </sup>por larva) para matar las  larvas sustenta dicha aseveraci&oacute;n. <i>Conotrachelus psidii</i> Marshall, 1922  (Coleoptera: Curculionidae), una especie de similar tama&ntilde;o, fue tambi&eacute;n  susceptible frente a <i>H. indica</i>; sin embargo, solo se logr&oacute; un 68,3% de  mortalidad con una concentraci&oacute;n de 500 JIs por larva y un TL<sub>50 </sub>de  6,5 - 10,6 d&iacute;as) (Dolinsky <i>et al.</i> 2006). </p>     <p> Otros estudios han documentado la efectividad de <i>H.  indica</i> en diferentes especies de insectos plaga (Kaya <i>et al.</i> 2006).  Por ejemplo, McCoy <i>et al.</i> (2000) registraron m&aacute;s del 40% de mortalidad  en larvas de <i>Diaprepes abbreviatus </i>(L.) despu&eacute;s de 35 d&iacute;as de haber  aplicado <i>H. indica</i> en c&iacute;tricos de Florida. De igual manera, de siete  especies de nematodos evaluados, <i>H. indica</i> fue de los m&aacute;s virulentos  hacia siete especies de insectos entre los que se mencionan <i>D. abbreviatus</i> y <i>Plodia interpunctella </i>H&uuml;bner, 1813 (Shapiro-Ilan <i>et al.</i> 2009b). Sin embargo, &eacute;ste es el primer estudio  donde se documenta la patogenicidad de <i>H. indica</i> hacia larvas de <i>C.  aguacatae</i>.</h3>     <p><b><i> </i></b>No obstante lo  anterior, en las condiciones de estudio los resultados mostraron fuertes  limitantes para que <i>H. indica</i> penetrase e infectase larvas de <i>C.  aguacate</i> dentro de las galer&iacute;as, lo que parece estar altamente influenciado  por la t&eacute;cnica de aplicaci&oacute;n empleada y la presencia del serr&iacute;n dentro de las galer&iacute;as. As&iacute;, cuando se emple&oacute; la t&eacute;cnica de  aspersi&oacute;n, aun cuando las larvas del barrenador se encontraban a poca  profundidad, no se registr&oacute; parasitismo por el nematodo. Al poco tiempo de  asperjar la suspensi&oacute;n de nematodos se observ&oacute; escurrimiento del agua y con  ello el arrastre de juveniles lo que probablemente redujo el n&uacute;mero disponible  para entrar en la galer&iacute;a. Aunque la aspersi&oacute;n es ampliamente utilizada en la  aplicaci&oacute;n de NEPs al suelo, para insectos barrenadores han sido m&aacute;s eficientes  estrategias de aplicaci&oacute;n dirigidas, incluida la inyecci&oacute;n en los orificios de  entrada de la plaga (Shapiro-Ilan <i>et al.</i>, 2006; Abbas, 2010). En nuestro  caso, utilizamos la t&eacute;cnica de aspersi&oacute;n solo como un referente de comparaci&oacute;n  con las otras t&eacute;cnicas de aplicaci&oacute;n empleadas. </p>     <p> Resultados similares a los aqu&iacute;  encontrados han sido reportados para otros curculionidos barrenadores. Por  ejemplo, el picudo de la palma roja <i>Rhynchophorus ferrugineus </i>Olivier, 1790 fue altamente susceptible en condiciones de  laboratorio a <i>S. abbasi </i>Elawad, Ahmad y Reid, 1997 y <i>H. indica</i>,  en concentraciones tan bajas como 100 y 200 IJs por larva, y aunque la  mortalidad fue alta, solo 11,5% y 8,6% de los cad&aacute;veres produjeron juveniles  infectivos (Abbas 2010). Contrariamente, Huerta de la Pe&ntilde;a <i>et al.</i> (1990)  se&ntilde;alaron haber obtenido mortalidad de larvas de <i>C. aguacatae</i> dentro de  ramas mediante la aspersi&oacute;n de <i>Steinernema bibiones </i>(<i>= feltiae</i>)Filipjev, 1934 y<i> H. heliothidis </i>Khan, Brooksy Hirschmann, 1976 a concentraciones de 500 y 1000  NEPs mL<sup>-1</sup>. Despu&eacute;s de 5 d&iacute;as, la mortalidad fluctu&oacute; del 5% al 37,5%,  dependiendo de la especie, donde <i>Heterorhabditis</i> fue superior; sin  embargo, los resultados no fueron consistentes con las concentraciones  evaluadas ni se indicaron detalles del estudio, tales como edad de la larva,  profundidad de la galer&iacute;a y emergencia de juveniles, aspectos que pudieran  indicar la capacidad de penetraci&oacute;n de los nematodos. </p>     <p> A diferencia de los plaguicidas  &oacute;rgano-sint&eacute;ticos, diversas estrategias de aplicaci&oacute;n han sido sugeridas para  los NEPs; entre las que podemos citar en el agua de riego, aspersores manuales  y motorizados, cad&aacute;veres de larvas infectadas e inoculaci&oacute;n directamente en las  galer&iacute;as (Kaya <i>et al.</i> 2006; Georgis <i>et al.</i> 2006; Shapiro-Ilan <i>et  al.</i> 2006); Por lo tanto, es probable que la evaluaci&oacute;n de otros  coadyuvantes y t&eacute;cnicas de aplicaci&oacute;n pudieran mejorar la acci&oacute;n de <i>H.  indica </i>en el control de<i> C. aguacatae.</i> El hecho de haber recuperado  JIs a partir de larvas de las ramas tratadas con nematodos en agua + cubierta  pl&aacute;stica as&iacute; lo sugieren. </p>     <p> Los NEPs son habitantes del suelo y con  algunas excepciones, las galer&iacute;as de insectos barrenadores no son su h&aacute;bitat  natural (Kaya <i>et al.</i> 2006). Al igual que en el suelo, las  caracter&iacute;sticas f&iacute;sico-qu&iacute;micas del sustrato son determinantes en la actividad  de los NEPs. De acuerdo con el an&aacute;lisis f&iacute;sico-qu&iacute;mico practicado al serr&iacute;n de  las galer&iacute;as de <i>C. aguacatae</i>, no parecieron existir limitantes de  car&aacute;cter qu&iacute;mico para que <i>H. indica</i> lograse ser eficaz dentro de las  galer&iacute;as. Por ejemplo, aunque los valores de humedad del serr&iacute;n fueron bajos  (7,13%) respecto a los requeridos por los nematodos para su movilidad, se han  encontrado nematodos en suelos con 10% de humedad (Giayetto y  Chich&oacute;n 2006). Adem&aacute;s, la humedad puede ser proporcionada artificialmente, tal  como fue documentado por Unruh y Lacey (2001), quienes mediante suplementos de humedad antes de la aplicaci&oacute;n del nematodo <i>S.  carpocapsae</i> contra larvas diap&aacute;usicas de la palomilla de la manzana <i>Cydia  pomonella </i>L., 1758 indujeron  mayor mortalidad que cuando no se adicion&oacute; humedad; la mortalidad alcanz&oacute; el  100% cuando la humedad se proporcion&oacute; antes y despu&eacute;s de la aplicaci&oacute;n.</p>     <p> El pH (7,37) del  serr&iacute;n tambi&eacute;n est&aacute; dentro de los l&iacute;mites (4 - 8) para los NEPs, aunque puede  variar de acuerdo con la especie (Stuart <i>et al.</i> 2006). Por su parte, la  baja conductividad el&eacute;ctrica (1,179 dS m<sup>-1</sup>) pudiera permitir ensayar  aplicaciones del nematodo con mayores concentraciones de sales, buscando con  ello reducir la p&eacute;rdida de humedad. Al respecto, se sabe que las especies del  g&eacute;nero <i>Heterorhabditis</i> toleran altas concentraciones de sales e incluso  pueden prolongar su viabilidad (Griffin <i>et al.</i> 1994). </p>     <p> A diferencia de las caracter&iacute;sticas  qu&iacute;micas del serr&iacute;n, las caracter&iacute;sticas f&iacute;sicas como la variabilidad en tama&ntilde;o  y forma de part&iacute;culas pudieran limitar la movilidad de los NEPs tal como fue  registrado en el presente estudio. Mas del 46% de las part&iacute;culas del serr&iacute;n de <i>C.  aguacatae</i> se clasificaron como part&iacute;culas de tama&ntilde;o grande (0,7 - 1,1 x 0,4  - 2,3 mm) y aunado a su forma laminar e irregular constituir&iacute;an una limitante  para el ingreso y desplazamiento de los nematodos, aun para <i>H. indica</i> considerada una de las especies de menor talla (528 x 20 &micro;m) (Poinar <i>et al.</i> 1992; Stock y Kaya 1996) y cuya b&uacute;squeda mediante &ldquo;rastreo&rdquo; le permitir&iacute;a  localizar hospederos de h&aacute;bitat cr&iacute;ptico (Georgis <i>et al.</i> 2006; Lewis <i>et  al.</i> 2006) como lo es <i>C. aguacatae</i>. Adem&aacute;s, es probable que el serr&iacute;n  de las galer&iacute;as interfiera con las se&ntilde;ales qu&iacute;micas, tan importantes para la  localizaci&oacute;n del hospedero por NEPs con esa estrategia de b&uacute;squeda que ocurre  en los Heterorhabditidos (Georgis <i>et al.</i> 2006; Lewis <i>et al.</i> 2006;  Ramos-Rodr&iacute;guez <i>et al.</i> 2007). Aunque otras estrategias para la  localizaci&oacute;n del hospedero, incluidas se&ntilde;ales el&eacute;ctricas, han sido mencionadas  para los NEPs, <i>H. indica</i> no mostr&oacute; respuesta a ese tipo de se&ntilde;ales  (Shapiro-Ilan <i>et al.</i> 2012). </p>     <p> Hasta donde sabemos no existen estudios  previos sobre la caracterizaci&oacute;n del sustrato de insectos barrenadores y la  mayor&iacute;a de los trabajos sobre el efecto del suelo en los NEPs se han enfocado  m&aacute;s a la textura (la composici&oacute;n de los s&oacute;lidos del suelo por rangos del tama&ntilde;o  de part&iacute;culas) que a la estructura del suelo (el arreglo de las part&iacute;culas del  suelo en agregados de tama&ntilde;o variable, geometr&iacute;a y porosidad), no obstante que  la estructura del espacio poroso es determinada en gran medida por el tama&ntilde;o y  arreglo de los agregados, lo que afecta finalmente el movimiento de agua, aire  y organismos del suelo (Stuart <i>et al.</i> 2006). </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> No obstante la baja recuperaci&oacute;n de JIs a  partir de larvas de <i>C. aguacatae</i> dentro de ramas, el hecho de haber  encontrado una tendencia de mayor mortalidad donde se aplicaron los nematodos  sugiere que adem&aacute;s del efecto directo del nematodo, otros mecanismos pudieran  estar involucrados en la mortalidad de larvas de <i>C. aguacatae. </i>Resultados  similares fueron obtenidos por Huerta de la Pe&ntilde;a <i>et al.</i> (1990) con NEPs  de los g&eacute;neros Steinernema y Heterorhabditis, sin proponer explicaciones sobre  ello. Con base a los resultados obtenidos hasta el momento es dif&iacute;cil proponer  alguna explicaci&oacute;n sobre la mayor mortalidad de larvas ocurrida dentro de ramas  donde se aplic&oacute; <i>H. indica</i>, aun cuando los cad&aacute;veres no presentaron los  s&iacute;ntomas caracter&iacute;sticos de muerte por NEPs y no se hayan recuperado JIs.  Estudios futuros deben dilucidar ese fen&oacute;meno.</p>     <p> Basados en los resultados obtenidos parece  ser que el potencial de los NEPs para el manejo del barrenador de las ramas del  aguacate <i>C. aguacatae</i> es amplio; por un lado, la eficiencia directa del  nematodo dentro de las galer&iacute;as pudiera incrementarse mediante diversas  estrategias de aplicaci&oacute;n, en donde la conservaci&oacute;n de la humedad debe ser  prioritaria. Basados en la alta tolerancia a las sales de los nematodos de la  familia Heterorhabditidae (Griffen <i>et al.</i> 1994), la utilizaci&oacute;n de  suspensiones de NEPs con diferentes concentraciones de sales pudieran ser  evaluadas; de igual forma, el uso de coadyuvantes para favorecer la  conservaci&oacute;n de la humedad y consecuentemente la infectividad del nematodo han  mostrado diferentes grados de &eacute;xito (Kaya <i>et al.</i> 2006; Shapiro-Ilan <i>et  al.</i> 2006; Abbas, 2010). Aplicaciones preventivas del nematodo <i>S.  carpocapsae </i>durante la oviposici&oacute;n del barrenador del durazno <i>Synanthedon  exitosa </i>Say, 1823 proporcionaron una reducci&oacute;n del  da&ntilde;o similar a la proporcionada por los insecticidas qu&iacute;micos recomendados  (Shapiro-Ilan <i>et al.</i> 2009a). Estrategias similares pudieran evaluarse  para <i>C. aguacatae</i>; sin embargo, es necesario un conocimiento m&aacute;s preciso  de la biolog&iacute;a del insecto que nos permita aplicar oportunamente los nematodos. </p>     <p> Por  otro lado, la exploraci&oacute;n del potencial de las bacterias asociadas a los  nematodos ser&iacute;a una l&iacute;nea interesante de explorar en el manejo de <i>C.  aguacatae</i>. Investigaciones recientes en China y La India han demostrado la  actividad antibi&oacute;tica e insecticida de metabolitos producidos por los g&eacute;neros <i>Phothorabdus </i>y <i>Xenorhabdus</i> asociadas a los NEPs de los g&eacute;neros <i>Heterorhabditis </i>y <i>Steninernema</i>, respectivamente. Por ejemplo, en larvas de <i>Plutella  xylostella </i>L., 1758 (Lepidoptera: Plutellidae) y <i>Phthorimaea  operculella </i>Zeller, 1873 (Lepidoptera: Gelechiidae) se  registr&oacute; hasta un 100% de mortalidad 48 h despu&eacute;s de aplicarles un filtrado de  un cultivo de las bacterias. De igual manera, larvas de <i>Helicoverpa arm&iacute;gera </i>H&uuml;bner, 1808 y <i>Spodoptera litura </i>Fabricius, 1775 (Lepidoptera: Noctuidae) presentaron un 58% y  49% de mortalidad, respectivamente (Kaya <i>et al.</i> 2006). </p>     <p><b><font size="3">Conclusiones</font></b>     <p>Con base al tiempo requerido para  matar el 50% y el 100% de la poblaci&oacute;n de larvas, el nematodo <i>H. indica</i> mostr&oacute; alta eficacia frente a larvas de <i>C. aguacate </i>fuera de ramas en  condiciones de laboratorio. Sin embargo, bajo las condiciones de estudio, los  resultados indican fuertes limitaciones de <i>H. indica</i> para penetrar e  infectar a <i>C. aguacate</i> dentro de las galer&iacute;as, lo que fue altamente  influenciado por las caracter&iacute;sticas f&iacute;sicas del serr&iacute;n dentro de las galer&iacute;as  y la t&eacute;cnica de aplicaci&oacute;n empleada.</p> </font>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>Agradecimientos</b></font></p> <font size="2" face="Verdana">     <p>A  la Secretar&iacute;a de Investigaci&oacute;n y Postgrado del Instituto Polit&eacute;cnico Nacional  por el apoyo econ&oacute;mico otorgado para la realizaci&oacute;n del proyecto SIP-20110238.  A la junta local de Sanidad Vegetal de Atapan, Michoac&aacute;n (M&eacute;xico). Al  Arquitecto Fabi&aacute;n Villalpando Barrag&aacute;n por el apoyo en la edici&oacute;n de las  figuras. A los evaluadores an&oacute;nimos del presente escrito.</p> </font>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>Literatura  citada</b></font></p> <font size="2" face="Verdana">     <!-- ref --><p>ABBAS, M. S. T. 2010. IPM of the red palm weevil, <i>Rhynchophorus  ferrugineus. </i>p. 209-233. En: Ciancio, A.; Mukerji, K. G. (eds.). Integrated  management of arthropod pests and insect borne diseases. Springer. Londres-New  York. 266 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0120-0488201200020000700001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>CAMPOS-HERRERA, R.; STUART, R. J.; EL-BORAI, F.;  GUTIERREZ, C.; DUNCAN, L. 2010. Entomopathogenic nematode ecology and  biological control in Florida citrus orchards. p. 101-123. En: Ciancio, A.;  Mukerji, K. G. (Eds.). Integrated management of arthropod pests and insect  borne diseases. Springer. Londres-New York. 366 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0120-0488201200020000700002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>CORIA, V.; PESCADOR,  A.; L&Oacute;PEZ, E.; LEZAMA, R.; SALGADO, R.; L&Oacute;PEZ, M.; VIDALS, A.; MU&Ntilde;OZ, J. 2007.  Autoecolog&iacute;a del barrenador de ramas del aguacate <i>Copturus aguacate </i>Kissinger  (Coleoptera: Curculionidae) en Michoac&aacute;n, M&eacute;xico. Proceedings VI World Avocado Congress. Vi&ntilde;a del Mar,  Chile. 11 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0120-0488201200020000700003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>DOLINSKI, C.; DEL VALLE, E.;  STUART, R. J. 2006. Virulence of entomopathogenic nematodes to larvae of the  guava weevil, <i>Conotrachelus psidii </i>(Coleoptera: Curculionidae), in  laboratory and greenhouse experiments. Biological  Control 38: 422-427.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0120-0488201200020000700004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>EQUIHUA M., A.; ESTRADA  V., E.; GONZ&Aacute;LEZ H., H.; GASCA C., L.; SALINAS C., A.; GONZ&Aacute;LEZ A., J.; MORA  A., G.; TELIZ O., D. 2007. Plagas. pp. 135-146. En: T&eacute;liz-Ortiz, D.; Mora A.,  A. (Eds.). El aguacate y su manejo integrado. Mundi-Prensa. M&eacute;xico. 321 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0120-0488201200020000700005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>ENGSTRAND, R. C.;  CIBRIAN T., J.; CIBRIAN-JARAMILLO, A.; KOLOKOTRONISI, S. O. 2010. Genetic  variation in avocado stem weevils <i>Copturus aguacatae</i> (Coleoptera:  Curculionidae) in Mexico. Mitochondrial DNA 21 (S1): 38-43.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0120-0488201200020000700006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>FAOSTAT.  2009. Avocados production. Disponible en:  <a href="http://www.faostat.fao.org/site/567/desktopdefault.­aspx?PageID=567#ancor" target="_blank"> http://www.faostat.fao.org/site/567/desktopdefault.­aspx?PageID=567#ancor</a>.  Fecha revisi&oacute;n: 23 noviembre 2011.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0120-0488201200020000700007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>GEORGIS, R.;  KOPPENH&Ouml;FER, A.; LACEY, L.; BALAIR, G.; DUNCAN, L.; GREWAL, P.; SAMISH, M.;  TAN, L.; TORR, P.; TOL, R. 2006. Successes  and failures in the use of parasitic nematodes for pest control. Biological  Control 38: 103-123.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0120-0488201200020000700008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>GIAYETTO,  A. L.; CHICH&Oacute;N, L. I. 2006. Distribuci&oacute;n, gama de hu&eacute;spedes y especificidad de  cinco poblaciones de <i>Heterorhabditis bacteriophora</i> (Nematoda:  Heterorhabditidae) del alto Valle de Rio Negro y Neuqu&eacute;n, Argentina. Revista de  Investigaci&oacute;n Agropecuaria 35 (002): 163-183.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0120-0488201200020000700009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>GRIFFEN, C. T.;  FINNEGAN, M. M.; DOWNES, M. J. 1994. Environmental tolerances and the dispersal of Heterorhabditis: survival  and infectivity of European <i>Heterorhabditis</i> following prolonged  immersion in seawater. Fundamental and Applied Nematology 17  (5): 415-421.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0120-0488201200020000700010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>HUERTA DE LA PE&Ntilde;A, A.;  TRUJILLO, J.; EQUIHUA, A.; CARRILLO, J. 1990. Enemigos naturales y evaluaci&oacute;n  preliminar de dos nematodos para biocontrol de <i>Copturus aguacatae </i>(Coleoptera:  Curculionidae), en Atlixco, Puebla, M&eacute;xico. Agrociencia 1 (3): 47-56.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0120-0488201200020000700011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p> </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">INEGI. 2006. Aguacate Hass: Exportaciones Nacionales.  Instituto Nacional de Estad&iacute;stica Geograf&iacute;a e Inform&aacute;tica (INEGI). M&eacute;xico. 3 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0120-0488201200020000700012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->   </h2> </font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">KAYA, H. K.; AGUILLERA M., M.; ALUMAI, A.; CHOO, H. Y.; DE  LA TORRE, M.; FODOR, A.; GANGULY, S.; HAZAR, S.; LAKATOS, T.; PYE, A.; WILSON,  M.; YAMANAKA, S.; YANG, H.; EHLERS, R. U. 2006. Status of entomopathogenic  nematodes and their symbiotic bacteria from selected countries or regions of  the world. Biological Control 38: 134-155.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0120-0488201200020000700013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->   </h2> </font></p> <font size="2" face="Verdana">     <!-- ref --><p>LACEY, L. A.; FRUTOS, R.; KAYA, H. K.; VAIL, P. 2001.  Insect pathogens as biological control agents: Do they have a future?  Biological Control 21: 230-248.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0120-0488201200020000700014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>LEWIS, E. E.; CAMPBELL, J.; GRIFFIN, C.; KAYA, H.;  PETERS, A. 2006. Behavioral ecology of entomopathogenic nematodes. Biological  Control 38: 66-79.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0120-0488201200020000700015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>McCOY, C. W.; SHAPIRO,  D. I.; DUNCAN, L. W.; NGUYEN, K. 2000. Entomopathogenic nematodes and other natural enemies  as mortality factors for larvae of <i>Diaprepes abbreviatus </i>(Coleoptera:  Curculionidae). Biological Control 19: 182-190.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0120-0488201200020000700016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>NOM-066-FITO-2002.  2002. Especificaciones para el manejo fitosanitario y movilizaci&oacute;n del  aguacate. Disponible en: <a href="http://www.senasica.gob.mx/?doc=696" target="_blank">www.senasica.gob.mx/?doc=696</a>. Fecha de  revisi&oacute;n: 20 octubre 2011.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0120-0488201200020000700017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>PIMENTEL, D.; EDWARDS, C. A. 1982. Pesticides and  ecosystems. BioScience 32 (7): 595-600.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0120-0488201200020000700018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>POINAR, G. O.; KARUNAKAR, G. K.; DAVID, H. 1992. <i>Heterorhabditis  indicus</i> n. sp. (Rhabditida: Nematoda) from India: separation of <i>Heterorhabditis</i> spp. by infective juveniles. Fundamental and Applied Nematology 15: 467-472.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0120-0488201200020000700019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>RAMOS-RODRIGUEZ, O. R.; CAMPBELL, J. F.; LEWIS, E. E.;  SHAPIRO-ILAN, D. I.; RAMASWAMY, S. B. 2007. Dynamics of carbon dioxide release  from insects infected with entomopathogenic nematodes. Journal of Invertebrate  Pathology 94: 64-69.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0120-0488201200020000700020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref -->&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0120-0488201200020000700021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p>SAGARPA. 2009. Plan  Rector Nacional Sistema Producto Aguacate. Secretar&iacute;a de Agricultura,  Ganader&iacute;a, Desarrollo Rural, Pesca y Alimentaci&oacute;n (SAGARPA). M&eacute;xico. 43 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0120-0488201200020000700022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>SALAZAR-GARCIA, S.;  ZAMORA-CUEVAS, L.; VEGA-LOPEZ, R. 2005. Actualizaci&oacute;n sobre la Industria del  Aguacate en Michoac&aacute;n, M&eacute;xico. California  Avocado Society, Yearbook 87: 45-54.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0120-0488201200020000700023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>SAS. 1999. SAS Software for Windows Version 4.10. SAS  Institute, Cary N.C., USA.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S0120-0488201200020000700024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref -->&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0120-0488201200020000700025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </h2>     <!-- ref --><p>SHAPIRO-ILAN, D. I.; McCOY, C. W. 2000. Susceptibility  of <i>Diaprepes abbreviatus</i> (Coleoptera: Curculionidae) larvae to different  rates of entomopathogenic nematodes in the greenhouse. Florida Entomologist 83  (1): 9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0120-0488201200020000700026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>SHAPIRO-ILAN, D. I.; GOUGE, D. H.; PIGGOTT, S. J.;  FIFE, J. P. 2006. Application technology and environmental considerations for  use of entomopathogenic nematodes in biological control. Biological Control 38:  124-133.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0120-0488201200020000700027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>SHAPIRO-ILAN, D. I.; COTTRELL, T. E.; MIZELL, R. F.;  HORTON, D. L.; DAVIS, J. 2009a. A novel approach to biological control with  entomopathogenic nematodes: Prophylactic control of the peach tree borer, <i>Synanthedon  exitiosa</i>. Biological Control 48: 259-263.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0120-0488201200020000700028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref -->&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000124&pid=S0120-0488201200020000700029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>SHAPIRO-ILAN, D. I.; LEWIS, E. E.; CAMPBELL, J. F.;  KIM-SHAPIRO, D. B. 2012. Directional movement of entomopathogenic nematodes in  response to electrical field: effects of species, magnitude of voltage, and  infective juvenile age. Journal of Invertebrate Pathology 109: 34-40.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S0120-0488201200020000700030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>STOCK, P. S.; KAYA, H. K. 1996. A multivariate  analysis of morphometric characters of <i>Heterorhabditis</i> species (Nemata:  Heterorhabditidae) and the role of morphometrics in the taxonomy of species of  the genus. The Journal of Parasitology 82 (5): 806-813.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S0120-0488201200020000700031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>STUART, R. J.; BARBERCHECK, M. E.; GREWAL, P. S.;  TAYLOR, R. A. J.; HOY, C. W. 2006. Population biology of entomopathogenic  nematodes: Concepts, issues, and models. Biological Control 38: 80-102.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S0120-0488201200020000700032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>TALAVERA C., M.;  PADILLA C., M. 2003. Reconsideraciones t&eacute;cnicas al ciclo biol&oacute;gico del  barrenador de ramas del aguacate (<i>Copturus aguacatae</i>, Kissinger). Proceedings V World Avocado Congress. Pp. 445-448.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000131&pid=S0120-0488201200020000700033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
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