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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Efecto de inhibidores de anhidrasa carbónica en larvas de Anopheles albimanus (Díptera, Culicidae)]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Carbonic anhydrase (CA) catalyzes the reversible conversion of CO2 to bicarbonate and participates in mechanisms of alkalinization in the intestine of mosquitoes. The toxicity of four CA inhibitors (CAI): acetazolamide (AZM), methazolamide (MZM), ethoxolamide (ETX) and dorzolamide (DZA) were evaluated in larvae of Anopheles albimanus by monitoring mortality 24, 48 and 72 hours post application, at a concentration of 50 ug/ml diluted in dimethyl sulfoxide previously. All IAC reduced the population of larvae in variable proportions. ETX showed the highest toxicity, achieving more than 80% mortality after 24 hours and 98% after 72 hours of application. The CAI, AZM, MZM and DZA showed less toxicity (<50% mortality). Our results indicate that the CAI, including ETX in particular, is a worthy candidate as an alternative for the control of An. albimanus, which is considered a primary vector of malaria in Colombia.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font size="2" face="Verdana">    <p align="right"><b>Secci&oacute;n M&eacute;dica Nota cient&iacute;fica</span></b></p> </font>     <p align="center"><font size="4" face="Verdana"><b>Efecto de inhibidores de anhidrasa carb&oacute;nica en larvas de <i>Anopheles albimanus</i></b> <b>(D&iacute;ptera, Culicidae)</b></font></p>      <p align="center"><font size="3" face="Verdana"><b>Effect of carbonic anhydrase inhibitors on <i>Anopheles albimanus </i>larvae (Diptera: Culicidae)</b></font></p> <font size="2" face="Verdana">     <p><b>LEONARDO ROCHA O.<sup>1,2</sup>, CAROLINA TORRES G.<sup>1,3</sup>, MAR&Iacute;A CORENA-McLEOD<sup>4</sup>, IY&Aacute;N D. V&Eacute;LEZ B.<sup>1,5</sup> y SARA M. ROBLEDO R.<sup>1,6</sup></b></p>     <p><sup>1</sup> PECET, Programa de Estudio y Control de Enfermedades Tropicales, Carrera 53 # 61-30, Torre 2 Laboratorio 632, Sede de Investigaci&oacute;n Universitaria, Universidad de Antioqui a, Medell&iacute;n, Antioquia.    <br>   <sup>2</sup> M. Sc. Investigador PECET. <a href="mailto:lrocha94@yahoo.com"><i>lrocha94@yahoo.com</i></a><i>. </i>    <br>   <sup>3</sup> M. Sc. Profesora, Universidad de Antioquia, Medell&iacute;n. <a href="mailto:aniloract@gmail.com"><i>aniloract@gmail.com</i></a><i>. </i>    <br>   <sup>4</sup> Ph. D. Directora World Solutions Against Infectious Diseases-WSAID, 4500 San Pablo Road.Jacksonville, FL 32224. <i><a href="mailto:pilarcorena@ aol.com">pilarcorena@ aol.com</a>. </i>    <br>   <sup>5</sup> Ph. D. Profesor, Universidad de Antioquia, Medell&iacute;n. Director del PECET. <a href="mailto:idvelez@pecet-colombia.org"><i>idvelez@pecet-colombia.org</i></a><i>. </i>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> <sup>6</sup> Post Doc. Profesora, Universidad de Antioquia, Medell&iacute;n. Investigador PECET. <a href="mailto:srobledo@saludpublica.udea.edu.co"><i>srobledo@saludpublica.udea.edu.co</i></a><i>. </i>Autor para correspondencia.</p> </font>    <p><font size="2" face="Verdana">Recibido: 5-jul-2012 - Aceptado: 18-ago-2013</font></p> <font size="2" face="Verdana"><hr /> </font>     <p><font size="2" face="Verdana"><b><font size="3">Resumen: </font></b>La anhidrasa carb&oacute;nica (AC) cataliza la conversi&oacute;n reversible del CO<sub>2</sub> a bicarbonato y participa en mecanismos de alcalinizaci&oacute;n en el intestino de mosquitos. Se eval&uacute;o la toxicidad de cuatro inhibidores de anhidrasa carb&oacute;nica (IAC): acetazolamida (AZM), metazolamida (MZM), etoxzolamida (ETX) y dorzolamida (DZA) en larvas de <i>Anopheles albimanus </i>por monitoreo de mortalidad 24, 48 y 72 horas post aplicaci&oacute;n, a una concentraci&oacute;n de 50 ug/ ml diluido previamente en dimetil sulf&oacute;xido. Todos los IAC redujeron la poblaci&oacute;n de larvas en proporciones variables. La ETX mostr&oacute; la mayor toxicidad que las AZM, MZM y DZA alcanzando una mortalidad superior al 80% despu&eacute;s de 24 horas y del 98% despu&eacute;s de 72 horas de su aplicaci&oacute;n. Nuestros resultados indican que de los IAC, la etoxzolamida, en particular, constituye un candidato valioso como una nueva alternativa de control de formas inmaduras de <i>An. albimanus, </i>considerado el vector primario de malaria en Colombia.</font></p>      <p><font size="2" face="Verdana"><font size="3"><b>Palabras clave: </b></font>Larvicida. Control de mosquitos. Vectores. Paludismo.</font></p> <font size="2" face="Verdana"> <hr /> </font>     <p><font size="2" face="Verdana"><b><font size="3">Abstract: </font></b>Carbonic anhydrase (CA) catalyzes the reversible conversion of CO2 to bicarbonate and participates in mechanisms of alkalinization in the intestine of mosquitoes. The toxicity of four CA inhibitors (CAI): acetazolamide (AZM), methazolamide (MZM), ethoxolamide (ETX) and dorzolamide (DZA) were evaluated in larvae of <i>Anopheles albimanus </i>by monitoring mortality 24, 48 and 72 hours post application, at a concentration of 50 ug/ml diluted in dimethyl sulfoxide previously. All IAC reduced the population of larvae in variable proportions. ETX showed the highest toxicity, achieving more than 80% mortality after 24 hours and 98% after 72 hours of application. The CAI, AZM, MZM and DZA showed less toxicity (&lt;50% mortality). Our results indicate that the CAI, including ETX in particular, is a worthy candidate as an alternative for the control of <i>An. albimanus, </i>which is considered a primary vector of malaria in Colombia.</font></p>      <p><font size="2" face="Verdana"><b><font size="3">Key words: </font></b>Larvicide. Mosquito Control. Vectors. Malaria. </font></p> <font size="2" face="Verdana"> <hr /> </font>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p> <font size="2" face="Verdana">     <p><i>Anopheles (Nyssorhynchus) albimanus </i>(Wiedemann, 1820) (Diptera: Culicidae) es uno de los vectores principales de <i>Plasmodium </i>de humanos en Centro y Sur Am&eacute;rica (Zimmerman 1992; Sinka <i>et al. </i>2010; Montoya-Lerma <i>et al. </i>2011). En Colombia, <i>An. albimanus </i>es considerado vector primario de malaria en &aacute;reas rurales y periurbanas de la Costa Pac&iacute;fica y probablemente en la Costa Caribe (Guti&eacute;rrez <i>et al. </i>2008). En el control de la malaria se presentan algunas limitaciones que incluyen el desconocimiento de actividades adecuadas para la protecci&oacute;n y prevenci&oacute;n de la transmisi&oacute;n; resistencia de algunas poblaciones de <i>Plasmodium </i>a los medicamentos de uso actual para el tratamiento de la malaria; errores en la aplicaci&oacute;n de insecticidas o aun, resistencia de los vectores a los insecticidas; poluci&oacute;n del medio ambiente y efectos adversos de los insecticidas en humanos y otros organismos (Georghiou y Taylor 1977, Olano <i>et al. </i>1997; Hemingway y Ranson 2000; Carmona-Fonseca 2003, 2004; Nauen, 2007). Por esta raz&oacute;n, es fundamental la vigilancia de la resistencia a los insecticidas en uso (Fonseca-Gonz&aacute;lez <i>et al. </i>2010) y la susceptibilidad de los estadios inmaduros a los insecticidas.</p>     <p>El control de inmaduros es una estrategia m&aacute;s factible que el de los adultos, dado que limita la capacidad de dispersi&oacute;n de los mosquitos (Blanco <i>et al. </i>2002). El control de formas inmaduras de anofelinos, requiere el conocimiento de las condiciones de calidad de agua que puede ocupar una especie (Sinka <i>et al. </i>2010). Adem&aacute;s, se debe conocer aspectos biol&oacute;gicos b&aacute;sicos que permitan el descubrimiento de blancos necesarios para el desarrollo de nuevos y mejores larvicidas. Un aspecto fundamental en larvas de mosquitos es la alcalinizaci&oacute;n, la cual es indispensable para la supervivencia (Co-rena <i>et al. </i>2004). Las enzimas relacionadas con este proceso pertenecen a la familia de las anhidrasas carb&oacute;nicas (AC), las cuales catalizan la conversi&oacute;n reversible del CO<sub>2</sub> a bicarbonato (Corena <i>et al. </i>2002; Smith <i>et al. </i>2007). La AC es inac-tivada por dos clases de compuestos: aniones complejos de metales y sulfonamidas no sustituidas, las cuales se unen al i&oacute;n de zinc de las AC. Algunos de estos compuestos, como la acetazolamida (AZM) y metazolamida (MZM), en larvas de mosquitos como <i>Aedes aegypti, Ae. albopictus, Culex quin-quefasciatus, Cx. nigripalpus, Ochlerotatus taeniorhynchus, An. quadrimaculatus, </i>ocasionan un efecto letal variable de acuerdo con la especie (Corena <i>et al. </i>2004). Sin embargo, hasta el momento se desconoce el efecto de estos compuestos en larvas de <i>An. albimanus. </i>El objetivo de este trabajo fue evaluar el efecto letal de cuatro IAC en larvas de esta especie, bajo condiciones de laboratorio.</p> </font>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>Materiales y m&eacute;todos</b></font></p> <font size="2" face="Verdana">     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Mosquitos. </b>Larvas de <i>An. albimanus, </i>cepa Cartagena (Carrillo <i>et al. </i>1981), donada por el Instituto Nacional de Salud de Colombia, fueron criadas y mantenidas en el insectario del PECET, Programa de Estudio y Control de Enfermedades Tropicales. En la cr&iacute;a se usaron bandejas pl&aacute;sticas con agua reposada y una combinaci&oacute;n de levadura y peletizado para peces (1:1) como alimento. Los experimentos se desarrollaron a 27 &plusmn; 2 &deg;C, ciclo de luz/oscuridad 12:12 y 75 &plusmn; 10% humedad relativa.</p>     <p><b>Compuestos. </b>Los IAC: acetazolamida (AZM), matazolami-da (MZM), etoxzolamida (ETX) (Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, EEUU) y dorzolamida (DZA) (Merck Sharp &amp; Doh-me, Chibret, Francia) se obtuvieron comercialmente. Estos son medicamentos de uso humano empleados principalmente como diur&eacute;ticos y en el tratamiento de enfermedades como el glaucoma. Todos los IAC se prepararon en dimetil sulf&oacute;xi-do (DMS&Uuml;) al 0,5% (Sigma-Aldrich) (Corena <i>et al. </i>2005). Como control positivo se incluy&oacute; un grupo de larvas tratadas con temefos (Abate&reg; 1SG granulado) al 1%.</p>     <p><b>Bioensayos. </b>Se realizaron de acuerdo con las gu&iacute;as establecidas para evaluaci&oacute;n de larvicidas en laboratorio y campo &Uuml;MS (2005). Veinte larvas de III estadio tard&iacute;o o IV temprano se transfirieron a recipientes que conten&iacute;an 100 ml de agua destilada. El experimento se repiti&oacute; tres veces en d&iacute;as distintos empleando una concentraci&oacute;n de 50 ng/ml para cada IAC. Esta concentraci&oacute;n fue seleccionada de acuerdo con trabajos de Corena <i>et al. </i>(2004). Los controles utilizados consistieron en un grupo tratado con temefos a 50 ng /ml (control positivo), un grupo con DMS&Uuml; al 0,5% (diluyente de los IAC) y un grupo sin tratamiento (control negativo). La lectura de la mortalidad se realiz&oacute; a las 24, 48 y 72 horas post aplicaci&oacute;n.</p>     <p><b>Criterio de toxicidad y an&aacute;lisis estad&iacute;stico. </b>La toxicidad de los IAC sobre las larvas se calcul&oacute; de acuerdo con el porcentaje de mortalidad observada, y sus respectivos intervalos de confianza al 95%, en cada tiempo de evaluaci&oacute;n. Se realiz&oacute; correcci&oacute;n por f&oacute;rmula de Abbot, cuando se encontr&oacute; mortalidad en los controles entre el 5 y 20%. Se hizo una prueba de Shapiro Wilk para determinar normalidad y un test de Kruskal-Wallis para establecer si hab&iacute;a diferencias significativas en los promedios de mortalidad entre los tratamientos. Luego, se aplicaron pruebas no param&eacute;tricas de comparaciones m&uacute;ltiple mediante el test de Tukey. Los niveles de significancia correspondieron con un valor P &lt; 0.05. Se utiliz&oacute; el programa Graph Pad Prism 5.</p> </font>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>Resultados</b></font></p> <font size="2" face="Verdana">     <p>El tratamiento de larvas <i>An. albimanus </i>con los IAC produjo una toxicidad variable siendo ETX el que mostr&oacute; mayor toxicidad y mortalidad. &Eacute;sta fue mayor al 80% despu&eacute;s de 24 horas de aplicaci&oacute;n y despu&eacute;s de 48 y 72 horas alcanz&oacute; su valor m&aacute;ximo de 98% (<a href="#(fig1)">Fig. 1</a>). Este porcentaje fue significantemente diferente (P &lt; 0,0001), con respecto a los otros IAC y el control sin tratamiento. En contraste, las mortalidades con AZM, MZM y DZA fueron menores al 60%. El control con DMS&Uuml; no arroj&oacute; diferencias estad&iacute;sticamente significativas con respecto al control. El control positivo registr&oacute; una mortalidad de 100% en larvas 24 horas despu&eacute;s de la aplicaci&oacute;n (datos no mostrados).</p>     <p align="center"><a name="(fig1)"><img src="img/revistas/rcen/v39n2/v39n2a09fig1.gif"></a></p> </font>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>Discusi&oacute;n</b></font></p> <font size="2" face="Verdana">     <p>El efecto de mortalidad de algunos IAC sobre estadios inmaduros de insectos ha sido estudiado en pocas especies como <i>Ae. aegypti, An. quadrimaculatus, Cx. quinquefasciatus, Cx. nigripalpus, Oc. taeniorhynchus </i>y <i>Ae. albopictus </i>(Corena <i>et al. </i>2004). Nuestros hallazgos indican que la MZM produjo el menor efecto t&oacute;xico (&lt; 40% mortalidad), contrario a lo encontrado por Corena <i>et al. </i>(2004), donde MZM caus&oacute; una mortalidad del 80% en larvas del mismo g&eacute;nero a una concentraci&oacute;n similar a la utilizada en el presente estudio (10<sup>-4 </sup>M). La mortalidad en larvas se atribuye al desequilibrio en el pH del intestino medio y la inhibici&oacute;n de los procesos de transporte de iones (Corena <i>et al. </i>2004). Las diferencias en el porcentaje de mortalidad para cada especie, pueden obedecer a un mecanismo de respuesta espec&iacute;fico o la presencia de una familia particular de AC (Corena <i>et al. </i>2004). Una de las formas de comprender mejor el efecto de los IAC, es el an&aacute;lisis de los productos de excreci&oacute;n liberados en el agua. Si bien este aspecto no se incluy&oacute; en este trabajo, ser&iacute;a interesante considerarlo para estudios futuros dado que se pueden esperar variaciones de acuerdo no solo con la especie sino con el estadio evaluado (Corena <i>et al. </i>2004). El efecto t&oacute;xico de ETX (mortalidad cercana al 100%) despu&eacute;s de 24 horas, es un resultado importante, comparable al efecto larvicida logrado por compuestos como el temefos&reg;, utilizado en el control de <i>Ae. aegypti </i>y <i>An. nueztovari </i>en condiciones laboratorio y campo (Gonz&aacute;lez y Palacio Mosquera, 2009; Maestre <i>et al. </i>2009). La inclusi&oacute;n del temefos sirvi&oacute; exclusivamente como un control positivo y no con el prop&oacute;sito de establecer comparaciones con los IAC. ETX posee propiedades inhibitorias sobre el dominio soluble de la alfa-ACl que se encuentra en <i>Ae. aegypti, </i>mostrando afinidad a nivel nanomolar (Fisher <i>et al. </i>2006). Es muy probable que un dominio hom&oacute;logo exista en <i>An. albimanus </i>y, por tanto, el efecto de ETX en larvas se observe en mayor medida. Adem&aacute;s, de acuerdo con las propiedades f&iacute;sicas de la ETX, se indica que es un compuesto pr&aacute;cticamente insoluble en el agua, hecho que favorece su permanencia en la superficie del agua, lugar donde se alimentan y permanecen la mayor parte del tiempo las larvas del g&eacute;nero <i>Anopheles </i>logrando de esta forma una mayor mortalidad.</p>     <p>Por otro lado, la ETX en los insectos produce un desequilibrio en el pH del intestino y adem&aacute;s causa la inhibici&oacute;n de procesos de transporte de iones (Corena <i>et al. </i>2004). Las propiedades letales de la ETX sobre la fisiolog&iacute;a de las larvas propende su uso en el control, no sin antes considerar su efecto en organismos no blanco.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Seg&uacute;n nuestros resultados la ETX es un compuesto importante que puede ser utilizado como una estrategia complementaria con las medidas de control. El alto porcentaje de mortalidad observado en larvas expuestas a ETX, se&ntilde;ala que podr&iacute;a considerarse como un compuesto promisorio en la b&uacute;squeda de nuevos blancos larvicidas para <i>An. albimanus.</i></p> </font>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>Agradecimientos</b></font></p> <font size="2" face="Verdana">     <p>A Evencio Mosquera por su valiosa ayuda en la cr&iacute;a del material biol&oacute;gico empleado en este estudio, a Mar&iacute;a Fernanda Fl&oacute;rez, Mar&iacute;a Alejandra Duque, Catalina Mar&iacute;n y Esteban Mar&iacute;n por su colaboraci&oacute;n en la ejecuci&oacute;n de los bioensayos. Este trabajo fue financiado por Colciencias y la Universidad de Antioquia.</p> </font>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>Literatura citada</b></font></p> <font size="2" face="Verdana">     <!-- ref --><p>BLANCO CASTRO, S. D.; COLOMBI, E.; FLORES, L. N. CANALES, D. 2002. Aplicaci&oacute;n del biolarvicida <i>Bacillus sphaeri-</i>cus-2362 (Griselesf) para el control de la malaria en un &aacute;rea de salud de la Rep&uacute;blica de Honduras. Revista Cubana de Medicina Tropical 54: 134-141.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000037&pid=S0120-0488201300020000900001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>CARMONA-FONSECA, J. 2003. La malaria en Colombia, Antioquia y las zonas de Urab&aacute; y Bajo Cauca. Parte 1. Iatreia 16: 299-317.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000039&pid=S0120-0488201300020000900002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>CARMONA-FONSECA, J. 2004. La malaria en Colombia, Antioquia y las zonas de Urab&aacute; y Bajo Cauca. Parte 2. Iatreia 17: 34-53.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000041&pid=S0120-0488201300020000900003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>CARRILLO, M. P.; SU&Aacute;REZ, M. F.; MORALES, A.; ESPINAL, C. A. 1981. Colonizaci&oacute;n y mantenimiento de una cepa colombiana de <i>Anopheles albimanus, </i>Wiedemann, 1820 (Diptera: Culicidae). Biom&eacute;dica 1: 64-66.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000043&pid=S0120-0488201300020000900004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>CORENA, M. P.; SERON, T. J; LEHMAN, H. K.; OCHRIETOR, J. D.; KOHN, A.; TU, C.; LINSER, P. J. 2002. Carbonic anhydrase in the midgut of larval <i>Aedes aegypti: </i>cloning, localization and inhibition. The Journal of Experimental Biology 205: 591-602.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000045&pid=S0120-0488201300020000900005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>CORENA, M. P.; FIEDLER, M. M.; VANEKERIS, L.; TU, C.; SILVERMAN, D. N.; LINSER, P. J. 2004. Alkalization of larval mosquito midgut and the role of carbonic anhydrase in different species of mosquitoes. Comparative Biochemistry and Physiology Part C: Toxicology &amp; Pharmacology 137 (3): 207-225.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000047&pid=S0120-0488201300020000900006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>CORENA, M.; VANEKERIS, L.; SALAZAR, M. I.; BOWERS, D.; FIEDLER, M. M.; SILVERMAN, D.; TU, C.; LINSER, P. J. 2005. Carbonic anhydrase in the adult mosquito midgut. The Journal of Experimental Biology 208: 3263-3273.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000049&pid=S0120-0488201300020000900007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>FISHER, S. Z.; TARIKU, I.; CASE, N. M.; TU, C.; SERON, T.; SILVERMAN, D. N.; LINSER, P. J.; MCKENNA, R. 2006.Expression, purification, kinetic, and structural characterization of an alpha-class carbonic anhydrase from <i>Aedes aegypti </i>(AaCAl). Biochimica et Biophysica Acta 1764 (8): 1413-1419.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000051&pid=S0120-0488201300020000900008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>FONSECA, I.; C&Aacute;RDENAS, R.; G&Oacute;MEZ, W.; SANTACOLOMA, L.; BROCHERO, H.; OCAMP&Oacute;, C. B.; SALAZAR, M.; MCALLISTER, J.; BROGDON, W.; QUI&Ntilde;ONEZ, M. 2010. Dosis diagn&oacute;sticas para vigilar la resistencia a insecticidas de los vectores de malaria en Colombia. Revista Colombiana de Entomolog&iacute;a 36: 54-61.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000053&pid=S0120-0488201300020000900009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>GEORGHIOU, G. P.; TAYLOR, C. E. 1977. Genetic and biological influences in the evolution of insecticide resistance. Journal of Economic Entomology 70 (3): 319-23.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000055&pid=S0120-0488201300020000900010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>GONZ&Aacute;LEZ, R.; PALACIO MOSQUERA, J. D. 2009. Evaluaci&oacute;n de la susceptibilidad y persistencia de los insecticidas Temephos (Abate) y Temephos (Instarphos), con exposici&oacute;n de larvas de <i>Aedes aegypti </i>y <i>Anopheles nu&ntilde;eztovari </i>(Diptera: Culicidae). Vectors and Pest Magazine 1: 23-26.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000057&pid=S0120-0488201300020000900011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>GUTI&Eacute;RREZ, L. A.; NARANJO, N.; JARAMILLO, L. M.; MUS-KUS, C.; LUCKHART, S.; CONN J. E.; CORREA, M. M. 2008. Natural infectivity of <i>Anopheles </i>species from the Pacific and Atlantic regions of Colombia. Acta Tr&oacute;pica 107 (2): 99-105.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000059&pid=S0120-0488201300020000900012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>HEMINGWAY, J.; RANSON, H. 2000. Insecticide resistance in insect vectors of human disease. Annual Review of Entomology 45: 371-391.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000061&pid=S0120-0488201300020000900013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>MAESTRE, R.; REY, G.; DE LAS SALAS, J.; VERGARA, S. C.; SANTACOLOMA, L.; GOENAGA, S.; CARRASQUILLA, M. C. 2009. Susceptibilidad de <i>Aedes aegypti </i>(Diptera: Culicidae) a temefos en Atl&aacute;ntico-Colombia. Revista Colombiana de Entomolog&iacute;a 35 (2): 202-205.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000063&pid=S0120-0488201300020000900014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>MONTOYA-LERMA, J.; SOLARTE, Y. A.; GIRALDO-CALDE-R&Oacute;N, G. I.; QUI&Ntilde;ONES, M. L.; RUIZ-L&Oacute;PEZ, F.; WILKER-SON, R. C.; GONZ&Aacute;LEZ, R. 2011. Malaria vector species in Colombia - A Review. Mem&oacute;rias do Instituto Oswaldo Cruz 106 (suppl. I): 223-238.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S0120-0488201300020000900015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>NAUEN, R. 2007, Insecticide resistance in disease vectors of public health importance. Pest Managment Science 63 (7): 628-633.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0120-0488201300020000900016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>OLANO, V.; CARRASQUILLA, G.; M&Eacute;NDEZ, F. 1997. Transmisi&oacute;n de la malaria urbana en Buenaventura, Colombia: aspectos entomol&oacute;gicos. Revista Panamericana de Salud P&uacute;blica 1 (4): 287-294.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0120-0488201300020000900017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>ORGANIZACION MUNDIAL DE LA SALUD (WORLD HEALTH ORGANIZATION) OMS. 2005. Guidelines for laboratory and field testing of mosquito larvicides. WHO/CDS/ WHOPES/GCDPP/2005.3.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0120-0488201300020000900018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>SINKA, M. E.; RUBIO-PALIS, Y.; MANGUIN, S.; PATIL, A. P.; TEMPERLEY, W. H.; GETHING, P. W.; VAN BOECKEL, T.; KABARIA, C. W.; HARBACH, R. E.; HAY, S. I. 2010.The dominant Anopheles vectors of human malaria in the Americas: occurrence data, distribution maps and bionomic pr&eacute;cis. Parasites &amp; Vectors 3: 1-34.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0120-0488201300020000900019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>SMITH, K. E.; VANEKERIS, L. A.; LINSER, P. J. 2007.Cloning and characterization of AgCA9, a novel W-carbonic anhydrase from <i>Anopheles gambiae </i>Giles sensustricto (Diptera: Culicidae) larvae. Journal of Experimental Biology 210: 3919-3930.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0120-0488201300020000900020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>ZIMMERMAN, R. H. 1992. Ecology of malaria vectors in the Americas and future directions. Mem&oacute;rias do Instituto Oswaldo Cruz 87 (suppl. III): 371-383.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0120-0488201300020000900021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <p>Citaci&oacute;n sugerida:</p>     <p>ROCHA O., LEONARDO; CAROLINA TORRES G.; MAR&Iacute;A CORENA-McLEOD; IV&Aacute;N D. V&Eacute;LEZ B. y SARA M. ROBLEDO R. 2013. Efecto de inhibidores de anhidrasa carb&oacute;nica en larvas de <i>Anopheles albimanus </i>(Diptera, Culicidae). Revista Colombiana de Entomolog&iacute;a 39 (2): 226-228.</p> </font>      ]]></body><back>
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