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<journal-title><![CDATA[Revista Colombiana de Ciencias Pecuarias]]></journal-title>
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<publisher-name><![CDATA[Facultad de Ciencias Agrarias, Universidad de Antioquia]]></publisher-name>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Prevención y control de la rinoneumonitis equina]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Prevention and control of equine rhinopneumonitis]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Universidad de Antioquia Investigador Asociado Grupo Inmunovirología - BIOGÉNESIS ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Equine rhinopneumonitis is a devastating disease, that can cause great economic lost in a horse&rsquo;s farm and general in the national economy. This disease already has been reported in Colombia and it is fundamental to make an epidemiological diagnosis. It is also very Important to know which are the existing prevention and control strategies on a world wide basis, which principally are in focus on the vaccination programs, on the division and segregation of the horses in isolate group and diminish the entrance and the dissemination of the virus in the farms. For cases in which prevention strategies are not sufficient, it is necessary took right measures as an opportune diagnosis, isolation, quarantine and desinfection and the therapeutic management of individual cases. By this, the objective of the present article is to extend the knowledge about this strategies to adapt them to our means, to diminish the dissemination of the virus around the country and the possible presentation of an epidemy at a national level.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <P><b>Prevenci&oacute;n y control   de la rinoneumonitis equina</b></P >     <P>&nbsp;</P >     <P    >Juli&aacute;n Ruiz S&aacute;enz<Sup><I>1</I></Sup>, MV </P >       <P    ><Sup><I>1</I></Sup>Investigador Asociado Grupo Inmunovirolog&iacute;a - BIOG&Eacute;NESIS, Universidad de Antioquia, AA 1226, Medell&iacute;n, Colombia. </P >       <P    ><a href="mailto:jruiz@virologia.udea.edu.co">jruiz@virologia.udea.edu.co </a></P >       <P    >(Recibido: 1 febrero, 2004; aceptado: 13 diciembre, 2004)</P >       <P    >&nbsp;</P >   <I>Resumen </I>    <P   ><I>La rinoneumonitis equina es una enfermedad devastadora, que puede provocar grandes p&eacute;rdidas econ&oacute;micas en un criadero de caballos y en general en la econom&iacute;a nacional. Esta enfermedad ya ha sido reportada en el pa&iacute;s y por esto, realizar un diagn&oacute;stico epidemiol&oacute;gico certero es primordial; tambi&eacute;n es importante, conocer cuales son las estrategias de prevenci&oacute;n existentes a escala mundial, las cuales se enfocan principalmente al establecimiento y mantenimiento de los programas de vacunaci&oacute;n, que van desde la inmunizaci&oacute;n con ant&iacute;genos virales hasta el uso de las vacunas de DNA; a la divisi&oacute;n y mantenimiento de los caballos en grupos aislados y a impedir la entrada o diseminaci&oacute;n del virus en los criaderos. Para los casos en los cuales la prevenci&oacute;n no es suficiente, se hace necesario tomar medidas de control adecuadas, como lo son el diagn&oacute;stico oportuno, las medidas de aislamiento, cuarentena y desinfecci&oacute;n; y el tratamiento terap&eacute;utico de los casos individuales. El objetivo, por lo tanto, del presente art&iacute;culo, es ampliar el conocimiento acerca de estas estrategias para adaptarlas a nuestro medio con el fin de minimizar la diseminaci&oacute;n del virus en el pa&iacute;s y la posible presentaci&oacute;n de epizootias a nivel nacional. </I></P >    <P   >Palabras clave: <I>aborto, herpesvirus equino, tratamiento, vacunaci&oacute;n.</I></P >       <P   >&nbsp;</P >   <b>Introducci&oacute;n </b>       ]]></body>
<body><![CDATA[<P   >La rinoneumonitis equina o aborto viral equino, es     una de las enfermedades de distribuci&oacute;n mundial m&aacute;s     graves que pueden padecer los equinos; la enfermedad    <br>     es causada por los Herpesvirus equinos tipos 1 y 4     (EHV-1 y EHV-4). Ambos herpesvirus son potenciales     factores de riesgo de enfermedad para caballos de    <br>     todas las edades y categor&iacute;as, especialmente para los     potros (5).</P >       <P   >    En Colombia en el a&ntilde;o 2001, Ram&iacute;rez et al (19) de     la Universidad Nacional de Colombia lograron por     primera vez un aislamiento del EHV. Dicho aislamiento    <br>     fue realizado a partir de muestras tomadas de un feto abortado, proveniente de un criadero de equinos, con     historia de importaci&oacute;n de animales.     El EHV-4 y El EHV-1 son Alfaherpesvirus de doble     cadena entremezclada de DNA (dsDNA). El genoma     completo del EHV-1 se encuentra secuenciado; este     posee 150.223 pb, las cuales codifican para prote&iacute;nas.     Se estima que EHV-4 posee cinco kpb menos que     EHV-1 (145 kpb). Su reconocimiento como virus     distintos se di&oacute; en 1981 cuando se demostr&oacute; que     pose&iacute;an diferentes patrones de restricci&oacute;n de ADN     (2,5).</P >       <P    >La infecci&oacute;n por EHV-1 y EHV-4 se caracteriza por una infecci&oacute;n inicial en el tracto respiratorio, que var&iacute;a de moderada a severa seg&uacute;n el estado inmunol&oacute;gico del animal infectado. Los signos caracter&iacute;sticos son: fiebre, letargia, anorexia, linfadenopat&iacute;a submandibular y descarga nasal profusa, la cual puede llegar a ser mucopurulenta (2). La infecci&oacute;n por EHV-1 particularmente, puede diseminarse a trav&eacute;s de la mucosa respiratoria y llegar a causar aborto en los &uacute;ltimos meses de gestaci&oacute;n, debido a una viremia asociada a c&eacute;lulas (linfocitos), resultando en una infecci&oacute;n placentaria e infecci&oacute;n del feto con subsecuente aborto; muerte perinatal de potros, los cuales presentan una neumonitis con disminuci&oacute;n y/o degeneraci&oacute;n de los linfocitos del timo y del bazo, la cual facilita las letales infecciones bacterianas secundarias y en algunas ocasiones, sintomatolog&iacute;a nerviosa diagnosticada como mieloencefalitis en los animales que sobreviven (5). </P >       <P    >En la mayor&iacute;a de los casos, la infecci&oacute;n primaria por EHV-1 y EHV-4 esta seguida por un estado de latencia viral, en el cual los caballos se encuentran cl&iacute;nicamente sanos. Luego de una situaci&oacute;n de estr&eacute;s (transporte, cambio de medio, pre&ntilde;ez etc.) el virus puede reactivarse en estos animales infectados e infectar a otros caballos sanos; llegando a ser enzo&oacute;ticos en muchas poblaciones de caballos dom&eacute;sticos del mundo, en los cuales se desenvuelven en un ciclo ecol&oacute;gico, el cual se desarrolla dentro del caballo (2) (<a href="#f1">v&eacute;ase Figura 1</a>). </P >   <img src="/img/revistas/rccp/v18n1/v18n1a07f01.jpg"><a name="f1"></a>       <P    >&nbsp;</P >       <P    >Para la identificaci&oacute;n de los animales infectados existen gran cantidad de t&eacute;cnicas, siendo la m&aacute;s apropiada el aislamiento viral, seguida de una confirmaci&oacute;n serol&oacute;gica de la entidad. El virus se puede aislar de secreciones nasales, durante la infecci&oacute;n en el tracto respiratorio; tambi&eacute;n de muestras de h&iacute;gado, pulm&oacute;n, bazo o timo de los fetos abortados y de una simple muestra de sangre tomada al animal en la fase aguda de la enfermedad (1,6). </P >   <b>Prevenci&oacute;n y Control de Brotes </b>       <P    >Las medidas m&aacute;s efectivas para prevenir la infecci&oacute;n EHV en una poblaci&oacute;n de caballos, son todas aquellas que minimicen el contacto de los animales con los reservorios biol&oacute;gicos conocidos del virus, los cuales pueden servir como fuente directa de infecci&oacute;n natural para caballos susceptibles; entre estos reservorios est&aacute;n los caballos infectados activos, los cuales liberan progenie viral en las secreciones nasales, los fetos, membranas fetales o secreciones del tracto reproductivo de una yegua, luego de esta haber abortado por EHV (3). </P >    ]]></body>
<body><![CDATA[<P    >Las estrategias, por consiguiente, est&aacute;n dirigidas a: </P >       <P    >1) mantener la vacunaci&oacute;n, logrando un nivel eficaz de resistencia inmunomediada a la infecci&oacute;n por EHV,   2) subdividir y mantener la poblaci&oacute;n equina en peque&ntilde;os grupos de caballos, f&iacute;sica y epidemiol&oacute;gicamente aislados,    3) minimizar los riesgos de introducci&oacute;n ex&oacute;gena de la infecci&oacute;n a los grupos de caballos ya establecidos y 4) reducir las pr&aacute;cticas asociadas con el riesgo de reactivaci&oacute;n del virus en el portador latente, inducida por una condici&oacute;n de estr&eacute;s en un caballo dentro de un grupo aislado (3,24) (<a href="#f2">v&eacute;ase Figura 2</a>). Estas estrategias ser&aacute;n discutidas m&aacute;s adelante. </P >   <img src="/img/revistas/rccp/v18n1/v18n1a07f02.jpg"><a name="f2"></a>       <P    >&nbsp;</P >       <P    ><I>Inmunizaci&oacute;n Profil&aacute;ctica </I></P >       <P    >Grandes brotes de aborto, muerte perinatal de     potros y mieloencefalitis asociada a EHV pueden     ocurrir despu&eacute;s de una rigurosa y regular vacunaci&oacute;n    <br>     con preparaciones comerciales de vacunas anti-EHV. Tales brotes posvacunales pueden ser atribuidos a la     exposici&oacute;n a una cantidad de in&oacute;culo viral suficiente     para sobrepasar la inmunidad vacunal existente, a la     exposici&oacute;n a una cepa particularmente agresiva del     virus (Cepa Hipervirulenta) o al funcionamiento     sub&oacute;ptimo de la actual generaci&oacute;n de vacunas contra     EHV. Sin importar la causa, el potencial presente de     falla en la vacunaci&oacute;n contra EHV debe estar integrado     a los programas de control de la infecci&oacute;n en los hatos,     los cuales no son s&oacute;lo dependientes de los beneficios     de la vacunaci&oacute;n para prevenir la infecci&oacute;n (3).</P >       <P    >Seg&uacute;n Foote <I>et al</I> (7) en un estudio realizado en el a&ntilde;o 2000, s&oacute;lo un 29% de las yeguas y un 47% de los potros vacunados con una vacuna comercial a virus inactivado contra EHV-1 y EHV-4 (Duvaxyn&reg;), respondieron luego de una vacunaci&oacute;n en New South Wales, Australia. Este estudio sugiere un conocimiento del estatus de anticuerpos de la poblaci&oacute;n de caballos a vacunar para direccionar una estrategia de vacunaci&oacute;n m&aacute;s selectiva, llevando a menores perdidas econ&oacute;micas en la industria, representadas en la falta de respuesta a la vacunaci&oacute;n en los animales persistentemente infectados, los cuales pueden llegar a ser el 17% de la poblaci&oacute;n y en los animales con anticuerpos circulantes, los cuales disminuyen su respuesta inmune (7). Resultados similares reportaron Mumford <I>et al</I> (15), demostrando solo un 35% de seroconversi&oacute;n en un hato centinela en Colorado, luego de una vacunaci&oacute;n contra EHV. </P >       <P    >A pesar de la reconocida falta de eficacia en las vacunas de hoy en d&iacute;a contra EHV, la estimulaci&oacute;n regular del sistema inmune del caballo por inmunizaci&oacute;n con ant&iacute;genos virales, permanece siendo el mayor componente de defensa contra la enfermedad (3) (<a href="#t1">v&eacute;ase Tabla 1</a>).  La vacunaci&oacute;n debe de iniciarse a los 5 a 6 meses de edad del potro que es la edad m&aacute;s susceptible de infecci&oacute;n (2), ya que la presencia de altos niveles de anticuerpos maternales antes de esta edad puede inhibir la respuesta a la vacunaci&oacute;n (28). Un sistema efectivo de vacunaci&oacute;n incluye dos dosis intramusculares de la vacuna, con un intervalo de tres semanas entre estas; iniciando el esquema antes del destete y realizando revacunaciones cada 6 meses (2). Las yeguas se deben vacunar a los 5, 7 y 9 meses de gestaci&oacute;n con la vacuna indicada, la cual debe ser con virus inactivado. Este plan ha demostrado ser efectivo y presenta grandes beneficios en la disminuci&oacute;n de abortos (26). Actualmente ninguna vacuna protege contra las manifestaciones de la infecci&oacute;n en el sistema nervioso central (2). </P >       <P    ><img src="/img/revistas/rccp/v18n1/v18n1a07t01a.jpg"><a name="t1"></a></P >       <P    ><img src="/img/revistas/rccp/v18n1/v18n1a07t02a.jpg"></P >       ]]></body>
<body><![CDATA[<P    >&nbsp;</P >       <P    ><I>Actuales estrategias vacunales </I></P >    <P    >Actualmente se encuentra bajo estudio una vacuna a virus vivo modificado, con base en el clon C147 de la cepa M8 de un aislamiento alem&aacute;n; este clon es com&uacute;n a EHV-1 y EHV-4 y ha logrado niveles de protecci&oacute;n mayores del 80% contra el aborto causado por EHV-1 con una sola vacunaci&oacute;n intranasal, luego de un reto experimental entre 4 y 6 meses posvacunaci&oacute;n (17). Adem&aacute;s, proporciona protecci&oacute;n contra la enfermedad respiratoria causada por EHV-1 y EHV-4 en grupos de caballos adultos susceptibles, vacunados intranasalmente y protege potros con niveles altos de anticuerpos maternos para EHV-1 y EHV-4 contra enfermedad respiratoria febril causada por EHV-1 luego de una sola dosis intranasal, lo que la postula como una buena alternativa para inmunizar grupos mixtos de caballos y especialmente de potros (18). </P >    <P    >Los objetivos de esta industria manufacturera de vacunas contra EHV-1, siguen siendo: 1) la estimulaci&oacute;n de una efectiva inmunidad celular (c&eacute;lulas T citot&oacute;xicas), la cual no se logra con las vacunas de &ldquo;virus muerto&rdquo; (14,22) y 2) el desarrollo de anticuerpos neutralizantes en las superficies mucosas del tracto respiratorio y anticuerpos neutralizantes a nivel sist&eacute;mico (28). El actual desarrollo de vacunas de ADN provee una gran alternativa en el desarrollo de una fuerte inmunidad contre EHV, debido a la facilidad para utilizar fragmentos virales altamente inmunog&eacute;nicos y con posibilidad de lograr los objetivos planteados (22,23). </P >    <P    >Se ha estudiado en particular, el potencial de vacunas a partir de las glicoprote&iacute;nas de envoltura de EHV-1, usando un modelo murino de enfermedad respiratoria causada por EHV-1. De las glicoprote&iacute;nas analizadas, la glicoprote&iacute;na D de EHV-1 (gD EHV-1) es la que proporciona los niveles m&aacute;s altos de protecci&oacute;n en los modelos murinos evaluados (28). Ruitenberg <I>et al </I>(21), evaluaron el potencial de la inmunizaci&oacute;n mediada por DNA que codifica para la gD de EHV-1 inyectando ratones, los cuales desarrollaron anticuerpos neutralizantes tipo IgG y respuesta de linfocitos T (Th1), produciendo una respuesta protectora ante un reto experimental con el virus (21). Luego Walker <I>et al </I>(27), al inmunizar ratones BALB/c con DNA que codificaba para esta glicoprote&iacute;na de EHV-1, encontraron que la gD de EHV-1 ten&iacute;a un gran potencial como posible vacuna para prevenir el aborto causado por EHV-1. Una estrategia de una primoinmunizaci&oacute;n con DNA codificante para la gD de EHV-1 seguido por una revacunaci&oacute;n con una gD recombinante como prote&iacute;na, lleva a un aumento en los t&iacute;tulos de anticuerpos neutralizantes y a una liberaci&oacute;n m&aacute;s r&aacute;pida de la infecci&oacute;n experimental que con alguna de las dos (la glicoprote&iacute;na recombinante o la gD DNA) individualmente (20,28). </P >    <P    >Los resultados indican que este ant&iacute;geno y la estrategia de primovacunaci&oacute;n pueden ser usados para generar inmunidad protectora contra EHV-1 en caballos; pero a&uacute;n existen pocos reportes del uso y evaluaci&oacute;n de esas prote&iacute;nas recombinantes en caballos. En 1999, Whalley <I>et al</I> (28) reportaron el uso de un Canarypoxvirus que expresaba gB, gC y gD de EHV-1 (Cepa Kentucky D) en caballos, logrando una disminuci&oacute;n en la excreci&oacute;n de virus luego de un reto experimental; estudios previos in Vitro, hab&iacute;an demostrado que cerca del 50% de los caballos adultos con anticuerpos preexistentes anti-EHV-1 y anti-EHV-4 al ser inoculados intramuscularmente con DNA que codifica para la gD de EHV-1, obtienen un aumento importante en los t&iacute;tulos de anticuerpos neutralizantes y de ELISA (20). </P >    <P    >Esta respuesta, a&uacute;n en presencia de anticuerpos circulantes, apoya la idea de que la vacunaci&oacute;n con DNA es capaz de estimular la respuesta inmune en etapas tempranas de vida (20, 28). Esto puede ser muy ventajoso debido a que sabe que los potros pueden infectarse a tempranas edades (10,11), cuando las cuales poseen altos niveles de anticuerpos maternales, los cuales impiden una respuesta adecuada con la vacunaci&oacute;n comercial (20). Un estudio comparativo entre la respuesta inmune generada por la gD EHV y una vacuna comercial a virus inactivado (Duvaxyn&reg;), mostr&oacute; en la evaluaci&oacute;n con el test de ELISA y la neutralizaci&oacute;n de anticuerpos, que la gD de EHV produc&iacute;a un mayor incremento en la respuesta de los anticuerpos que la vacuna comercial (28). </P >    <P    >El uso de subunidades recombinantes de prote&iacute;nas provee una mayor flexibilidad en la formulaci&oacute;n de vacunas, con la posibilidad de usar mezclas de ant&iacute;genos de uno o varios virus, o a&uacute;n otros tipos de pat&oacute;genos. Pueden dise&ntilde;arse cocteles complejos para optimizar la respuesta de las diferentes armas del sistema inmune, con la ventaja de poder distinguir anticuerpos vacunales de anticuerpos posinfecci&oacute;n. </P >    <P    >Adem&aacute;s, puesto que los anticuerpos para gD de EHV-1 tambi&eacute;n neutralizan EHV-4, es posible que alguna respuesta protectora de la gD contra EHV-1 tenga efecto tambi&eacute;n sobre EHV-4 (28). </P >    <P    >Recientemente, Holznagel <I>et al</I> (12), utilizaron la tecnolog&iacute;a de Inmunizaci&oacute;n Epidermal en Polvo (EPI), la cual libera ant&iacute;geno vacunal inactivado intrad&eacute;rmicamente unido a part&iacute;culas de az&uacute;cares, utilizando una &ldquo;pistola de Helio&rdquo;, para inmunizar caballos contra la enfermedad respiratoria causada por EHV-1. Los caballos fueron inmunizados en la regi&oacute;n inguinal, y el ant&iacute;geno preparado a partir la cepa Army 183 de EHV-1; esta estrategia no ha logrado demostrar una eficacia superior al 20% pero permanece en estudio como una posible t&eacute;cnica vacunal, la cual ha logrado previamente inducir altos niveles de anticuerpos sist&eacute;micos espec&iacute;ficos contra EHV-1 en ratones (12). Resultados similares reportaron Kondo <I>et al</I> (13), los cuales usando la misma t&eacute;cnica en la piel abdominal de ratones y una doble inmunizaci&oacute;n, logran alcanzar niveles de protecci&oacute;n contra el reto con el virus silvestre equivalentes o superiores a los obtenidos en ratones inmunizados con otros tipos de vacunas, incluyendo vacunas de gD DNA y las vacunas comerciales inactivadas de uso intramuscular o intranasal. </P >    ]]></body>
<body><![CDATA[<P    ><I>Implementaci&oacute;n de pr&aacute;cticas preventivas de manejo en los hatos </I></P >    <P    ><I>Peque&ntilde;os grupos de caballos f&iacute;sica y epidemiol&oacute;gicamente aislados</I>. Esta estrategia ha resultado ser la m&aacute;s eficiente para controlar los brotes de la enfermedad. El potencial de p&eacute;rdidas durante un brote de EHV est&aacute; directamente relacionado con el tama&ntilde;o del hato. Para una m&aacute;xima protecci&oacute;n, los grupos deben de ser tan peque&ntilde;os como las instalaciones f&iacute;sicas lo permitan, manteniendo cada grupo dentro de condiciones que limiten la transmisi&oacute;n del virus entre los grupos establecidos. En ausencia de la transmisi&oacute;n viral entre los grupos de caballos, se limita la transmisi&oacute;n de la enfermedad. </P >    <P    >Los caballos, de ser posible, deben ser segregados en grupos semejantes que eviten la mezcla de potros con animales adultos, de yeguas en gestaci&oacute;n con yeguas vac&iacute;as, de caballos con burros y mulas, entre otros. En los grupos de yeguas gestantes es importante que los grupos de yeguas a parir se establezcan desde tempranos estados de gestaci&oacute;n para facilitar el establecimiento de jerarqu&iacute;as sociales antes del incremento en la vulnerabilidad al aborto por EHV en el &uacute;ltimo tercio de la gestaci&oacute;n; que estos grupos se formen con base en las fechas esperadas de parto y no combinar yeguas primerizas con yeguas reproductoras de mas partos (3,26). </P >    <P    ><I>Prevenci&oacute;n de la introducci&oacute;n ex&oacute;gena de la infecci&oacute;n a los grupos aislados</I>. El contacto con otros caballos infectados es la fuente de infecci&oacute;n para iniciar un brote de la enfermedad en un grupo cerrado. El procedimiento debe estar enfocado a prevenir cualquier contacto con caballos de fuera del grupo epidemiol&oacute;gico. El riesgo de infecci&oacute;n ex&oacute;gena por EHV se reduce usando barreras de espacio entre los potreros. Este espacio es suficiente para prevenir la transmisi&oacute;n por aerosoles entre grupos. </P >    <P    >El mayor riesgo para la infecci&oacute;n ex&oacute;gena es la introducci&oacute;n de nuevos caballos en los grupos ya establecidos, particularmente los que han tenido posibilidad de estar expuestos a la infecci&oacute;n (exposiciones, ferias, carreras, entrenamientos externos, etc.). Todos los caballos, a&uacute;n los que no presenten signos cl&iacute;nicos de la enfermedad, deben considerarse posibles portadores del EHV, con potencial para diseminar el virus. La adici&oacute;n de nuevos animales en los grupos ya establecidos, deber&aacute; estar precedida por un per&iacute;odo de cuarentena de 21 d&iacute;as. Un caballo que sea temporalmente removido de su grupo para prop&oacute;sitos que involucren transporte prolongado o estar en contacto con otros caballos (reproducci&oacute;n, exhibici&oacute;n, entrenamiento, cuidados veterinarios, ventas etc.) deber&aacute; tambi&eacute;n entrar en un per&iacute;odo de cuarentena de 21 d&iacute;as antes de retornar a su grupo de residencia (3,26). </P >    <P    ><I>Prevenci&oacute;n de la introducci&oacute;n end&oacute;gena de la infecci&oacute;n por EHV en grupos aislados</I>. Debido a la endemicidad de EHV, es frecuente la ocurrencia de la enfermedad cl&iacute;nica en grupos cerrados de caballos, los cuales no han tenido contacto con animales de fuera. Muchos caballos portadores latentes, pueden reclutar a los potros como nuevos hospederos dentro del ciclo biol&oacute;gico de la entidad. La alta prevalencia de portadores latentes imposibilita la pr&aacute;ctica de identificar y separar los portadores latentes del hato. Las medidas de prevenci&oacute;n est&aacute;n enfocadas a minimizar las situaciones de estr&eacute;s experimentado por los caballos (3,26) </P >       <P    >Las tres medidas de prevenci&oacute;n, no son medidas aisladas, cada una es una parte esencial dentro del proceso de prevenci&oacute;n y control. La omisi&oacute;n de uno de los procesos interrelacionados puede comprometer todos los dem&aacute;s. La puesta en pr&aacute;ctica de tales medidas de prevenci&oacute;n agrega un valor financiero y cargas de trabajo a las operaciones de manejo, el implementar las precauciones necesarias depende de cada hato, al igual que el rigor de las pol&iacute;ticas del control del EHV. Estas deben ser un compromiso entre el deseo de reducir el riesgo y la factibilidad y viabilidad econ&oacute;mica que se tenga para realizar dichos procedimientos (3). </P >       <P    ><I>Manejo y control durante brotes </I></P >    <P    >Las prioridades para el manejo de un brote de la enfermedad son: </P >    <P    ><I>Establecimiento de un diagn&oacute;stico temprano. </I>EHV se disemina r&aacute;pidamente y requiere intervenci&oacute;n inmediata. La identificaci&oacute;n temprana del agente es necesaria para la r&aacute;pida ejecuci&oacute;n de medidas de control apropiadas. Adem&aacute;s, el &eacute;xito de tales medidas es mayor cuando la intervenci&oacute;n es realizada de manera temprana en la curva epid&eacute;mica. </P >       ]]></body>
<body><![CDATA[<P    >El diagn&oacute;stico puede ser logrado por aislamiento viral en el laboratorio a partir de muestras de: 1) exudados nasofar&iacute;ngeos colectados en una esponja de dacr&oacute;n y mantenidos en un medio de transporte l&iacute;quido o en gel; 2) 15-20 ml de sangre venosa colectada con anticoagulante (EDTA, citrato, heparina). Ambos espec&iacute;menes deben ser tomados en tempranos estados de la enfermedad y transportados inmediatamente al laboratorio en refrigeraci&oacute;n (1,3). El serodiagn&oacute;stico retrospectivo de infecci&oacute;n por EHV puede ser demostrado con un aumento de m&iacute;nimo cuatro veces en los t&iacute;tulos virales, en muestras de suero de la fase aguda y la fase convaleciente determinados por medio de un test de ELISA, fijaci&oacute;n del complemento o neutralizaci&oacute;n viral (1); o por medio de los modernos test de ELISA o PCR los cuales son r&aacute;pidos y sensibles (6,25), y algunos se encuentran comercialmente disponibles (4,30). </P >       <P    ><I>Prevenci&oacute;n de la dispersi&oacute;n del virus.</I> Del caballo infectado a los dem&aacute;s caballos del grupo o a caballos de otros grupos, ambos dentro y fuera del predio afectado, por medio de pr&aacute;cticas de desinfecci&oacute;n, aislamiento y cuarentena de animales. Para aislar el foco de la infecci&oacute;n, los fetos abortados y los mortinatos deben ser colocados en bolsas pl&aacute;sticas selladas y trasportados al laboratorio de manera que se evite la posible contaminaci&oacute;n del medio con el virus. En casos de brotes, algunos animales pueden presentar pirexia, secreciones nasales o anormalidades al paso, estos animales deben aislarse f&iacute;sicamente, lejos del resto de la poblaci&oacute;n. Los espacios f&iacute;sicos donde estuvo el foco original de la infecci&oacute;n tambi&eacute;n deben ser puestos en aislamiento y desinfectados (3). </P >    <P    ><I>Interrupci&oacute;n de las rutas de transmisi&oacute;n</I>. Establecer barreras de espacio y barreras sanitarias alrededor del foco de la infecci&oacute;n, son importantes para controlar la transmisi&oacute;n indirecta del virus por transmisi&oacute;n a&eacute;rea y por objetos inanimados. Tambi&eacute;n es recomendable el uso de desinfectantes qu&iacute;micos para inactivar el virus que se encuentre en el medio, o en objetos inanimados como guantes, botas, instrumentos de aseo de los animales, comederos, bebederos, etc., los cuales sirven como veh&iacute;culos de diseminaci&oacute;n al virus. Despu&eacute;s de un aborto causado por EHV, se debe desinfectar la pesebrera, desinfectar y cambiar la &ldquo;cama&rdquo; del animal, adem&aacute;s los genitales externos de la yegua deben ser lavados y desinfectados antes de ponerla en cuarentena. </P >    <P    >De ser posible el personal debe usar guantes desechables de l&aacute;tex y botas de caucho, que sean posibles de desinfectar. La viruta de la &ldquo;cama&rdquo; del animal infectado debe ser rociada con desinfectantes y descartada en bolsas pl&aacute;sticas. Se debe evitar el tr&aacute;nsito innecesario del personal, veh&iacute;culos etc., a la zona de cuarentena. Todos los caballos expuestos al animal infectado se deben de considerar como posibles infectados y por tanto deben permanecer dentro de una cuarentena de movimiento restringido. Se les debe observar diariamente para detectar posibles signos de enfermedad para proceder a un aislamiento del caso individual. Esta cuarentena debe durar hasta controlar el brote. Las yeguas que han abortado pueden ser servidas de nuevo el segundo estro luego del aborto (3). </P >    <P    ><I>Minimizar el n&uacute;mero de caballos susceptibles a la enfermedad</I>. La restricci&oacute;n del transporte de animales, tanto dentro como fuera del grupo de animales afectados, puede minimizar el n&uacute;mero de animales en riesgo de enfermar. Los potros hu&eacute;rfanos de yeguas que mueren como resultado de la infecci&oacute;n por EHV no deben ser enviados a otros grupos. Crear un &ldquo;cord&oacute;n inmune&rdquo; alrededor del foco de la infecci&oacute;n puede ayudar a reducir el n&uacute;mero de caballos susceptibles; este se logra mediante la administraci&oacute;n de la vacuna a las yeguas sin vacunar, expuestas y no expuestas, adem&aacute;s de revacunaciones en las gestantes. Debido a la posibilidad de exacerbaci&oacute;n de los signos neurol&oacute;gicos causada por la vacunaci&oacute;n, no se recomienda revacunar cohortes de animales afectados por mieloencefalopat&iacute;a causada por EHV (3) (v&eacute;ase Figura 2). </P >       <P    ><I>Tratamiento terap&eacute;utico de los casos cl&iacute;nicos individuales. </I>Las estrategias terap&eacute;uticas para el manejo de la infecci&oacute;n por EHV deben enfocarse a cada paciente, guiados por la severidad y rango de los signos cl&iacute;nicos, adem&aacute;s de las expectativas del propietario. Los objetivos de la terapia est&aacute;n dirigidos a: disminuir los signos cl&iacute;nicos de la infecci&oacute;n viral; mantenimiento de la hidrataci&oacute;n y aporte diario de las necesidades cal&oacute;ricas de los animales afectados; y minimizar las complicaciones, producto de las infecciones bacterianas secundarias y de la dispersi&oacute;n sist&eacute;mica del virus (2). </P >       <P    >Dos terapias de mantenimiento para animales con rinoneumonitis equina sin complicaciones son: Usar antipir&eacute;ticos para reducir la fiebre y antiinflamatorios no esteroideos para disminuir la inflamaci&oacute;n del tracto respiratorio. Estos dos requerimientos pueden ser suministrados con la aplicaci&oacute;n de un medicamento que posea ambas propiedades farmacol&oacute;gicas (p.e. Fenilbutazona 3 mg/kg PO cada 12 a 24 horas o Flunixin meglumine 1.1 mg/kg IM cada 12 a 24 horas) (2). </P >       <P    >Cuando el epitelio respiratorio se encuentra lesionado por la replicaci&oacute;n de EHV-1 o EHV-4 ocurren casos de rinofaringitis bacteriana la cual se puede tratar con una soluci&oacute;n de Trimetoprim/Sulfa (30 mg/kg PO cada 24 horas) administrada durante 7 - 10 d&iacute;as. Esta es una excelente terapia antibacterial de amplio espectro de primera opci&oacute;n debido a su facilidad de administraci&oacute;n con solo una dosis diaria (2). </P >       <P    >En potros (neonatos) infectados cong&eacute;nitamente o en caballos j&oacute;venes, en los cuales los signos cl&iacute;nicos de la infecci&oacute;n bacteriana son severos, progresivos o involucran las v&iacute;as a&eacute;reas inferiores, los antimicrobiales opcionales para realizar el tratamiento incluyen: Amikacina (20 mg/kg, IM cada 24 horas), Penicilina G proca&iacute;nica (20.000 UI/kg, IM cada 12 horas), Ceftiofur (2.2 mg/kg, IM cada 12 horas), Ticarcil&iacute;n (44 mg/kg, IV cada 8 horas), y Ceftazidine (25 mg/kg, IV cada 8 horas) (2). </P >    <P    >Las manifestaciones extrapulmonares de la infecci&oacute;n, presentan mayores retos para el manejo terap&eacute;utico. Los caballos incapaces de comer o beber pueden requerir una terapia de reemplazo de fluidos y electrolitos, con soluciones isot&oacute;nicas que contengan dextrosa, administradas intravenosamente. En potros reci&eacute;n nacidos que presenten disfunci&oacute;n respiratoria e hipoxemia, est&aacute; bien indicada una terapia intranasal con ox&iacute;geno humidificado. El tratamiento est&aacute;ndar para caballos con par&aacute;lisis asociada a EHV-1 incluye la administraci&oacute;n de Dimetil Sulf&oacute;xido (3 ml/kg, cada 24 horas) v&iacute;a nasog&aacute;strica, junto con la administraci&oacute;n parenteral de un corticosteroide (Dexametasona 0.1 mg/kg, IV cada 24 horas). Los caballos con par&aacute;lisis de la pared o el esf&iacute;nter de la vejiga, asociada con mieloencefalitis por EHV-1 requieren generalmente cateterizaci&oacute;n urinaria, una vez cateterizada, lavar la vejiga con una soluci&oacute;n de Yodopovidona y realizar tratamiento antibi&oacute;tico para cistitis. Los caballos que presentan recumbencia por enfermedad neurol&oacute;gica debida a EHV-1 requieren cuidados intensivos y vigilancia las 24 horas del d&iacute;a, ligera sedaci&oacute;n, una cama gruesa y frecuente reubicaci&oacute;n del lado recumbente, limpieza diaria y cuidado t&oacute;pico de las ulceras dec&uacute;bito y el escaldado producido por la orina. La ayuda con cinchas mec&aacute;nicas por cortos per&iacute;odos de tiempo, puede ayudar en algunos casos (2,3). </P >    ]]></body>
<body><![CDATA[<P    >La eutanasia debe ser considerada en caballos recumbentes laterales, en animales que no muestran mejor&iacute;a en pocos d&iacute;as a pesar de la ayuda mec&aacute;nica o en animales que desarrollen complicaciones sist&eacute;micas severas, debidas a la recumbencia (2). </P >    <P    >En algunos casos (Infecci&oacute;n neonatal por EHV-1, estados tempranos de un brote de aborto o mieloencefalitis etc.), las drogas antivirales ofrecen un nuevo y relativamente inexplorado, pero potencialmente promisorio, modo de tratamiento para casos individuales o para limitar la dispersi&oacute;n de la infecci&oacute;n epizo&oacute;tica (3,8,16), usado a dosis de 10 mg/ kg v&iacute;a oral, 5 veces al d&iacute;a por un periodo de 3-4 d&iacute;as (29). </P >    <P    >En caballos en entrenamiento, caballos de trabajo y en general, es necesario tener en cuenta que una importante ayuda para el tratamiento activo es el descanso temporal (2). </P >       <P    >Otra alternativa para el tratamiento la ofrece el Dr. Gaggl (9), el cual presenta el uso de la acupuntura como terapia en casos de infecci&oacute;n cr&oacute;nica por herpesvirus en equinos (9), aunque esta requiera de un entrenamiento previo. </P >   <b>Manejo posbrote </b>       <P    >Las medidas a tomar luego de finalizado un brote de infecci&oacute;n por EHV incluyen: 1) liberaci&oacute;n de la cuarentena, 2) dispersi&oacute;n de los caballos afectados, 3) descontaminaci&oacute;n final de los predios y 4) volver a las pr&aacute;cticas de manejo preventivo para evitar la recurrencia (3). </P >    <P    >El tiempo adecuado para la cuarentena debe de ser tres veces el tiempo usual de dispersi&oacute;n del virus en un caballo adulto (3 x 7 d&iacute;as = 21 d&iacute;as) una vez que no haya ning&uacute;n suceso posible de enfermedad (3). </P >    <P    >Para la desinfecci&oacute;n terminal de los sitios se deben usar los desinfectantes de tipo fen&oacute;licos o yod&oacute;foros. Los instrumentos que requieren desinfecci&oacute;n final incluyen las pesebreras, establos, &ldquo;cama&rdquo; usada, comederos y bebederos, botas y ropas, utensilios para realizar tratamientos y de limpieza de los animales, y el interior de los veh&iacute;culos de transporte de los caballos. La inactivaci&oacute;n de los sitios contaminados puede ocurrir naturalmente con el paso del tiempo, para esta un per&iacute;odo de 21 d&iacute;as sin la presencia de animales, se puede considerar seguro para la repoblaci&oacute;n sin riesgo de infecci&oacute;n (3). </P >   <b>Permanencia de las medidas de control </b>       <P    >Existen tres importantes aspectos que no se deben descuidar luego de un brote epizo&oacute;tico de enfermedad por EHV: 1) an&aacute;lisis y evaluaci&oacute;n pos-epizootia de la eficacia de las medidas de control tomadas durante la presentaci&oacute;n, 2) implementaci&oacute;n de medidas preventivas en los predios afectados, con el objetivo de evitar que se repitan los brotes de la infecci&oacute;n (<a href="#f2">v&eacute;ase Figura 2</a>) y 3) reportar la presencia de la enfermedad y la experiencia obtenida en su manejo y control, con el fin de beneficiar a otros colegas, criadores, propietarios etc. (3). </P >       <P    >Esta informaci&oacute;n debe servir como base de trabajo, tanto como para cl&iacute;nicos, como para criadores, entes oficiales etc., los cuales deber&aacute;n permanecer alertas ante cualquier presentaci&oacute;n de casos, para as&iacute; tomar las medidas m&aacute;s adecuadas, siempre pensando en la rentabilidad de la industria equina colombiana. Adem&aacute;s, se realiza un llamado a los entes nacionales de cr&iacute;a y apoyen la investigaci&oacute;n epidemiol&oacute;gica de la producci&oacute;n equina (Asociaciones de criadores, enfermedad y los programas de prevenci&oacute;n y control criaderos, hip&oacute;dromos etc.) para que fomenten y que oportunamente se promulguen. </P >       <P    >&nbsp;</P >   <b>Agradecimientos </b>       ]]></body>
<body><![CDATA[<P   >El autor quiere agradecer al Grupo de Inmunovirolog&iacute;a - Biog&eacute;nesis por la formaci&oacute;n y el apoyo brindado y al Grupo de Estudio Sobre Equinos (G.E.S.E.) de la Universidad de Antioquia por el respaldo incondicional.</P >       <P   >&nbsp;</P >       <p><I>Summary </I></p>       <p><I>Prevention and control of equine rhinopneumonitis </I></p>       <P   ><I>Equine rhinopneumonitis is a devastating disease, that can cause great economic lost in a horse&rsquo;s farm and general in the national economy. This disease already has been reported in Colombia and it is fundamental to make an epidemiological diagnosis. It is also very Important to know which are the existing prevention and control strategies on a world wide basis, which principally are in focus on the vaccination programs, on the division and segregation of the horses in isolate group and diminish the entrance and the dissemination of the virus in the farms. For cases in which prevention strategies are not sufficient, it is necessary took right measures as an opportune diagnosis, isolation, quarantine and desinfection and the therapeutic management of individual cases. </I></P >    <P   ><I>By this, the objective of the present article is to extend the knowledge about this strategies to adapt them to our means, to diminish the dissemination of the virus around the country and the possible presentation of an epidemy at a national level. </I></P >       <P   >Key words: <I>abortion, equine herpesvirus, treatment, vaccination</I>.</P >       <P   >&nbsp;</P >   <b>Referencias </b>       <!-- ref --><P   >1. Allen GP, Equine Rhinoneumonitis en: Truszczynski M,     Pearson JE, Edwards S and Schmitt B, (eds). OIE Manual of     standars for diagnostic test and vaccines, 4th ed, OIE press,     Paris 2000; 565-75.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0120-0690200500010000700001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   > 2. Allen GP, Respiratory Infections by Equine Herpesvirus     Types 1 and 4, In: Equine Respiratory Diseases,     Lekeux P. (Eds) International Veterinary Information Service,     Ithaca NY, 2002; En: <a href="http://www.ivis.org/special_books/ Lekeux/allen/IVIS.pdf" target="_blank">http://www.ivis.org/special_books/     Lekeux/allen/IVIS.pdf </a> (revisado en 2004).</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0120-0690200500010000700002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   > 3. Allen GP. Epidemic disease caused by equine herpesvirus-1:     recommendations for prevention and control. Equine Vet Educ     2002; 14:136-42.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0120-0690200500010000700003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   > 4. Crabb BS, MacPherson CM, reubel GH, Browning GF,     Studdert MJ, et al. A type-specific serological test to distiguish     antibodies to equine herpesvirus 4 and 1. Arch Virol 1995;     140:245-58.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0120-0690200500010000700004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   > 5. Crabb BS, Studdert MJ. Equine Rhinoneumonitis (equine     Herpesvirus 4) and Equine Abortion (equine Herpesvirus 1)     En: Studdert MJ (ed.) Virus Infections of Equines. Holanda     ELSEVIER 1996; 356 p.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0120-0690200500010000700005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >6. Daly P, Doyle S. The development of a competitive PCRELISA     for the detection of equine herpesvirus-1. J Virol   Methods 2003; 107:237-44.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0120-0690200500010000700006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   > 7. Foote CE, Love DN, Gilkerson JR, Whalley JM. Serological     responses of mares and weanlings following vaccination with     an inactivated whole virus equine herpesvirus 1 and equine     herpesvirus 4 vaccine. Vet Microbiol 2002; 88:13-25.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0120-0690200500010000700007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   > 8. Friday PA, Scarratt WK, Elvinger F, Timoney PJ, Bonda A.     Ataxia and paresis with equine herpesvirus type 1 infection     in a herd of riding school horses. J Vet Intern Med 2000; 14:197-201.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0120-0690200500010000700008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   > 9. Gaggl G. Equine Herpesvirus infection. Acase report. Komvet     1998; 2.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0120-0690200500010000700009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   > 10. Gilkerson JR, Love DN, Drummer HE, Studdert MJ, Whalley     JM. Seroprevalencce of equine herpesvirus 1 in Thoroughbred     foals before and after weaning. Aust Vet J 1998; 76:677-82.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0120-0690200500010000700010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   > 11. Gilkerson JR, Whalley JM, Drummer HE, Studdert MJ, Love     DN. Epidemiology of EHV-1 and EHV-4 in the mare and foal     populations on a Hunter Valley study farm: are the mares the source of EHV-1 for unweaned foals. Vet Microbiol 1999;     65:27-34.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0120-0690200500010000700011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   > 12. Holznagel D, Lunn DP, Breathnach C. Immune response to     an inactivated equine herpesvirus-1 vaccine by epidermal     powder immunization. SRP Biology 2002:39-42; En: <a href="http://www.wisc.edu/cbe/srp-bio/pdf/holznagel_compressed.pdf" target="_blank">http://www.wisc.edu/cbe/srp-bio/pdf/holznagel_compressed.pdf</a>    (revisado en 2004)</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0120-0690200500010000700012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   > 13. Kondo T, McGregor M, Chu Q, Chen D, Horimoto T, et al. A     protective effect of epidermal powder immunization in a mouse     model of equine herpesvirus-1 infection. Virol 2004; 318: 414- 19.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0120-0690200500010000700013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   > 14. Kydd JH, Wattrang E, Hannant D. Pre-infection frequencies     of equine herpesvirus-1 specific, cytotoxic T lymphocytes     correlate with protection against abortion following     experimental infection of pregnant mares. Vet Immunol     Immunopathol 2003; 96:207-17.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0120-0690200500010000700014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   > 15. Mumford EL, Traub-Dargatz JL, Carman J, Callan RJ, Collins     JK, Goltz KL, et al. Occurrence of infectious upper     respiratory tract disease and response to vaccination in horses     on six sentinel premises in northern Colorado. Equine Vet J     2003; 35:72-7.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0120-0690200500010000700015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   > 16. Murray MJ, Del Piero F, Jeffrey SC, Davis MS, Furr MO, et     al. Neonatal equine herpesvirus type 1 infection on a     thoroughbred-breeding farm. 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Ruitenberg KM, Love DN, Gilkerson JR, Wellington JE,     Whalley JM. Equine herpesvirus 1 (EHV-1) glycoprotein D DNA inoculation in horses with pre-existing EHV-1/EHV-4     antibody. Vet Microbiol 2000; 76:117-27.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0120-0690200500010000700020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   > 21. Ruitenberg KM, Walker C, Wellington JE, Love DN, Whalley     JM. Potencial of DNA-mediated vaccination for equine herpesvirus 1. 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Vet Microbiol 2000; 76:211-20.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0120-0690200500010000700027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   > 28. Whalley JM, Love DN. Improved vaccine strategies for     management of equine herpesviruses. Rural Industries     Research and Development Corporation. Sydney, 2002; 28p.    </P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0120-0690200500010000700028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >29. Wilkins PA, Henninger H, Reed SM and F. Del Piero.     Acyclovir as Treatment for EHV-1 Myeloencephalopathy.     In: Proceedings of 49th Annual Convention of the American     Association of Equine Practitioners, 2003, New Orleans,     Louisiana, (Ed.); En: <a href="http://www.ivis.org/proceedings/AAEP/2003/wilkins/IVIS.pdf" target="_blank">http://www.ivis.org/proceedings/AAEP/2003/wilkins/IVIS.pdf</a> (revisado en 2004).</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0120-0690200500010000700029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   > 30. Yasunaga S, Maeda K, Matsumura T, Kai K, Iwata H, et al.     Diagnosis and sero-epizootiology of equine Herpesvirus type     1 and type 4 infections in Japan using a type specific ELISA.     J Vet Med Sci 1998; 60:1133-37.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0120-0690200500010000700030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><P   >&nbsp;</P >      ]]></body><back>
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