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<journal-title><![CDATA[Revista Colombiana de Ciencias Pecuarias]]></journal-title>
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<publisher-name><![CDATA[Facultad de Ciencias Agrarias, Universidad de Antioquia]]></publisher-name>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Efecto de la heparina y de la concentración espermática sobre el porcentaje de fertilización de oocitos bovinos in vitro]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Heparin and spermatic concentration effect over the percentage of in vitro fertilization of bovine oocites]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Universidad de Córdoba Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia ]]></institution>
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<self-uri xlink:href="http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_arttext&amp;pid=S0120-06902005000200003&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_abstract&amp;pid=S0120-06902005000200003&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_pdf&amp;pid=S0120-06902005000200003&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[El objetivo de este estudio fue evaluar el efecto de diferentes concentraciones de heparina y de semen en el medio de fertilización sobre el porcentaje de oocitos bovinos fertilizados in vitro. En el experimento uno, los oocitos obtenidos de ovarios de matadero fueron madurados in vitro y distribuidos al azar en seis tratamientos para fertilización in vitro, de acuerdo a las concentraciones de heparina (2, 4, 8, 10, 16, 20 µg/ml). En el experimento dos, una vez seleccionada la concentración de heparina en experimento 1, se evaluaron tres dosis de espermatozoides en el medio de fertilización (0.5x10(6) espermatozoides/ml, 1x10(6)espermatozoides/ml y 2x10(6)espermatozoides/ml). En cada experimento se utilizó un diseńo completamente al azar y los datos fueron analizados por ANAVA. La concentración de heparina tuvo efecto (p<0.05) en el porcentaje de oocitos fertilizados encontrándose los mejores resultados en la concentración de 10 µg/ml, con una tasa de penetración del 67%. La concentración espermática afecta la fertilización, encontrándose la mayor proporción de oocitos con fertilización normal (74%) al utilizar concentración 2x10(6) espermatozoides/ml. Sin embargo, no fue significativamente diferente a la concentración de 1x10(6) (p>0.05). Los resultados indican que la tasa de fertilización guarda relación directa con la dosis de heparina y la concentración espermática.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The objective of this study was to evaluate the effect of different heparin concentrations and of the semen in the percentage of bovine oocytes in fertilization medium. In the experiment 1, the obtained oocytes of slaughterhouse ovaries were matured in vitro and distributed at random in six treatments for fertilization in vitro, according to the heparin concentration (2, 4, 8, 10, 16, 20 µg/ ml). In the experiment 2, once selected the heparin concentration from experiment 1, three sperms doses were evaluated in fertilization medium (0.5x10(6) espermatozoas/ml, 1x0(6) espermatozoas/ml and 2x0(6) espermatozoas/ml). In each experiment totally randomized design was used and data were analyzed by ANAVA. The concentration of heparin (p<0.05) affected the percentage of fertilized oocytes being the best results in the concentration of 10 µg/ml, with a rate of penetration of 67%. The spermatic concentration affects the fertilization, the biggest oocytes proportion with normal fertilization (74%) when using concentration 2x10(6) spermatozoas/ml. However, it was not significantly different to the concentration of 1x 10(6) (p>0.05). The results indicate that the fertilization rate keeps direct relationship with the heparine dose and the spermatic concentration.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <P    ><b>Efecto de la heparina y de la concentraci&oacute;n esperm&aacute;tica sobre el porcentaje de  fertilizaci&oacute;n de oocitos bovinos <I>in vitro</I></b></P >     <P    >&nbsp;</P >     <P    >Roger D Salgado<Sup><I>1,3 </I></Sup>, MVZ,MSc; Clara C Rugeles<Sup><I>2,3</I></Sup>, MVZ,MSc; Jaime Alvarez<Sup><I>1,3 </I></Sup>, MVZ, Esp</P >     <P    ><I><sup>1 2</sup></I> Programa de Reproducci&oacute;n animal Programa de morfofisiolog&iacute;a</P >     <P    ><I><sup>3</sup></I> Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Universidad de C&oacute;rdoba </P >     <P    ><a href="mailto:rodasao@yahoo.es">rodasao@yahoo.es </a></P >     <P    >(Recibido: 21 octubre, 2004; aceptado: 9 junio, 2005)</P >     <P    >&nbsp;</P >     <P    ><I>Resumen </I></P >    <P    ><I>El objetivo de este estudio fue evaluar el efecto de diferentes concentraciones de heparina y de semen en el medio de fertilizaci&oacute;n sobre el porcentaje de oocitos bovinos fertilizados in vitro. En el experimento uno, los oocitos obtenidos de ovarios de matadero fueron madurados in vitro y distribuidos al azar en seis tratamientos para fertilizaci&oacute;n in vitro, de acuerdo a las concentraciones de heparina (2, 4, 8, 10, 16, 20 &micro;g/ml). En el experimento dos, una vez seleccionada la concentraci&oacute;n de heparina en experimento 1, se evaluaron tres dosis de espermatozoides en el medio de fertilizaci&oacute;n (0.5x10</I><Sup><I>6 </I></Sup><I>espermatozoides/ml, 1x10</I><Sup><I>6</I></Sup><I>espermatozoides/ml y 2x10</I><Sup><I>6</I></Sup><I>espermatozoides/ml). En cada experimento se utiliz&oacute; un dise&ntilde;o completamente al azar y los datos fueron analizados por ANAVA. La concentraci&oacute;n de heparina tuvo efecto (p&lt;0.05) en el porcentaje de oocitos fertilizados encontr&aacute;ndose los mejores resultados en la concentraci&oacute;n de 10 &micro;g/ml, con una tasa de penetraci&oacute;n del 67%. La concentraci&oacute;n esperm&aacute;tica afecta la fertilizaci&oacute;n, encontr&aacute;ndose la mayor proporci&oacute;n de oocitos con fertilizaci&oacute;n normal (74%) al utilizar concentraci&oacute;n 2x10</I><Sup><I>6</I></Sup><I> espermatozoides/ml. Sin embargo, no fue significativamente diferente a la concentraci&oacute;n de 1x10</I><Sup><I>6</I></Sup><I> (p&gt;0.05). Los resultados indican que la tasa de fertilizaci&oacute;n guarda relaci&oacute;n directa con la dosis de heparina y la concentraci&oacute;n esperm&aacute;tica. </I></P >    ]]></body>
<body><![CDATA[<P    >Palabras clave: <I>bovino, fertilizaci&oacute;n in vitro, heparina, swim up.</I></P >     <P    >&nbsp;</P > <b>Introducci&oacute;n</b>      <P    >Los espermatozoides mam&iacute;feros no son capaces espermatozoides a trav&eacute;s del tracto reproductivo de fertilizar oocitos inmediatamente despu&eacute;s que son femenino y la reacci&oacute;n acros&oacute;mica cuando los depositados en el tracto reproductivo femenino; espermatozoides se unen a la zona pel&uacute;cida (14,15), ellos primero tienen que sufrir un periodo de mientras que <I>in vitro, </I>una de las formas preparaci&oacute;n llamado capacitaci&oacute;n. Durante la ampliamente utilizadas consiste en la exposici&oacute;n del capacitaci&oacute;n se d&aacute; la alteraci&oacute;n de la membrana semen a la heparina para que puede adquirir la plasm&aacute;tica para permitir al espermatozoide realizar capacidad fertilizante. De esta manera, el objetivo la fusi&oacute;n de la membrana plasm&aacute;tica y membrana de este trabajo fue evaluar diferentes acrosomal externa, denominada reacci&oacute;n concentraciones de heparina y n&uacute;mero variable de acros&oacute;mica. <I>In vivo</I>, la capacitaci&oacute;n esperm&aacute;tica c&eacute;lulas esperm&aacute;ticas para alcanzar &oacute;ptimos es adquirida durante la migraci&oacute;n de los resultados en fertilizaci&oacute;n de oocitos bovinos<I> in vitro</I>.</P >     <P    >&nbsp;</P > <b>Materiales y m&eacute;todos </b>     <P    >Los ovarios fueron obtenidos de vacas sacrificadas en matadero, colocados en soluci&oacute;n salina 9% a una temperatura de 30-35&ordm;C. y transportados al laboratorio en un tiempo de 30 minutos. La colecci&oacute;n de oocitos y la maduraci&oacute;n <I>in vitro</I> (IVM) fueron realizadas por el m&eacute;todo previamente descrito por Chac&oacute;n y Estrada (3). El medio de maduraci&oacute;n consisti&oacute; en: medio-199 con 0.026M de bicarbonato de sodio, pH 7.4; suplementado con 10% (v/v) de suero de vaca en estro recolectado el primer d&iacute;a del estro e inactivado a 56&ordm;C por 30 minutos.; 0.2mM piruvato de sodio, 50mg/ml gentamicina, 80UI/ml HCG, 1mg/ml de 17-&beta; estradiol, y 45mg/ml de FSH porcina. Todos los cultivos fueron realizados con una tensi&oacute;n de 5% CO<Sub>2 </Sub>en aire, a 39&ordm;C y humedad relativa del 90%. </P >    <P    >De los oocitos seleccionados como buenos (complejo cumulus-oocito no expandido y citoplasma granulado y homog&eacute;neo) se seleccionaron grupos de 10-12 oocitos al azar, los cuales fueron transferidos dentro de gotas de 50ml en discos de cultivo est&eacute;riles 60 x 15mm cubiertas con 10 ml de aceite mineral previa estabilizaci&oacute;n de las gotas m&iacute;nimo 2 horas y cultivados en una incubadora por 24 horas a 39 &ordm;C en una atm&oacute;sfera de aire con 5% de CO<Sub>2</Sub> y una humedad relativa del 90 %. </P >    <P    >Despu&eacute;s de la maduraci&oacute;n los oocitos fueron transferidos al medio de fertilizaci&oacute;n donde fueron divididos aleatoriamente en seis tratamientos de acuerdo a la concentraci&oacute;n de heparina en el medio de fertilizaci&oacute;n (4, 8, 10, 16 y 20 mg de heparina/ml). Se realizaron tres r&eacute;plicas por tratamiento con un n&uacute;mero de oocitos alrededor de 20 por r&eacute;plica y en cada r&eacute;plica la concentraci&oacute;n de esperma fue 1x10<Sup>6</Sup> / ml. Despu&eacute;s de 18 horas de fertilizaci&oacute;n los oocitos fueron fijados en una soluci&oacute;n de una parte de &aacute;cido ac&eacute;tico y tres de metanol, por 24 horas, despu&eacute;s fueron te&ntilde;idos con orceina al 2% para evaluaci&oacute;n de fertilizaci&oacute;n. La concentraci&oacute;n de heparina que se seleccion&oacute; fue aquella que produjo el mayor porcentaje de fertilizaci&oacute;n (oocitos con dos o m&aacute;s pron&uacute;cleos). La evaluaci&oacute;n de fertilizaci&oacute;n se realiz&oacute; teniendo en cuenta la descripci&oacute;n de los estados de desarrollo pronuclear realizada por Xu y Greve (20). </P >    <P    >La t&eacute;cnica utilizada para preparar los espermatozoos bovinos para (fertilizaci&oacute;n <I>in vitro</I>) IVF y aumentar el porcentaje de c&eacute;lulas esperm&aacute;ticas m&oacute;viles fue el m&eacute;todo conocido como Swim-up previamente descrito por Parrish <I>et al</I> (13). </P >     <P    >Una vez seleccionada la concentraci&oacute;n de heparina en la primera parte, se evaluaron tres dosis de espermatozoides del eyaculado de un toro de raza holstein (0.5x10<Sup>6</Sup> espermatozoides/ml, 1x10<Sup>6 </Sup>espermatozoides/ml y 2x10<Sup>6</Sup> espermatozoides/ml). A las 18 horas pos- fertilizaci&oacute;n los oocitos fueron fijados en una soluci&oacute;n 1:3 de &aacute;cido ac&eacute;tico y metanol, respectivamente, durante 24 horas. Luego fueron te&ntilde;idos con una soluci&oacute;n de orce&iacute;na al 2% para evaluar la fertilizaci&oacute;n. La concentraci&oacute;n de espermatozoides seleccionada fue aquella que produjo la m&aacute;xima fertilizaci&oacute;n con el m&iacute;nimo de polispermia. Se realizaron un total de tres r&eacute;plicas por tratamiento.</P >     <P    >&nbsp;</P > <b>Resultados</b>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P    >En las <a href="#t1">tablas 1 </a>y <a href="#t2">2</a> se observan la evaluaci&oacute;n de la capacidad fertilizante del semen seg&uacute;n la concentraci&oacute;n de heparina y la concentraci&oacute;n esperm&aacute;tica. El mayor porcentaje de oocitos penetrados, 67% se present&oacute; cuando el medio de fertilizaci&oacute;n fue suplementado con una concentraci&oacute;n 10 mg/ml de heparina (p&lt; 0.05). La mayor proporci&oacute;n de oocitos fertilizados 68% (n=55), con la menor presentaci&oacute;n de poliespermia, 12%, se obtuvo con dosis seminales de 1 x 10<Sup>6 </Sup>espermatozoides. En <a href="#f1">la figura 1</a> se observa la presencia de pron&uacute;cleos en Oocitos bovinos fertilizados <I>in vitro</I> y te&ntilde;idos con una soluci&oacute;n de Orce&iacute;na al 2%. </P >     <P    ><img src="/img/revistas/rccp/v18n2/v18n2a03t01.jpg"><a name="t1"></a></P >     <P    ><img src="/img/revistas/rccp/v18n2/v18n2a03t02.jpg"><a name="t2"></a></P >     <P    ><img src="/img/revistas/rccp/v18n2/v18n2a03f01.jpg"><a name="f1"></a></P >     <P    >&nbsp;</P >     <P    ><b>Discusi&oacute;n </b></P >     <P    >La proporci&oacute;n de penetraci&oacute;n (67%) que se obtuvo con una concentraci&oacute;n de 10 mg/ml es similar al valor reportado en la literatura, el cual oscila entre 2- 100 mg/ml, siendo la concentraci&oacute;n de 10 g/ml la m&aacute;s com&uacute;nmente usada (19). Estas diferencias se deben a que el efecto de la heparina es dosis dependiente y var&iacute;a para cada toro, como lo demuestran Parrish <I>et al</I> (13,14), Saeki <I>et al</I> (18) y Niwa y Ohgoda (11), y adem&aacute;s puede estar relacionado con la mayor producci&oacute;n de prote&iacute;nas fijadoras de heparina en el semen. De acuerdo con Kim (7), la presencia de prote&iacute;nas fijadoras de heparina se relaciona con porcentajes de fertilidad de 67 a 87% y su funcionamiento es afectado por la osmolalidad del medio empleado. </P >    <P    >La mayor proporci&oacute;n de oocitos con fertilizaci&oacute;n normal (74%) fue obtenida con una concentraci&oacute;n de 2x10<Sup>6 </Sup>espermatozoides/ml, pero al mismo tiempo produjo el mayor porcentaje de polispermia. Entretanto esta concentraci&oacute;n de esperma no fue significativamente diferente a la de 1x10<Sup>6</Sup> (p&gt; 0.05). Estos resultados concuerdan con los reportados por Hern&aacute;ndez -ledezma <I>et al</I> (6); Saeki <I>et al </I>(18); Van Inzen <I>et al</I> (21); Lu KH, Seidel GE Jr. (10), los cuales encontraron que la concentraci&oacute;n &oacute;ptima de semen fue de 1x10<Sup>6 </Sup>espermatozoides/ml y adem&aacute;s reportaron que a medida que se aumentaba la concentraci&oacute;n de espermatozoides en el medio de fertilizaci&oacute;n se incrementaba la incidencia de poliespermia, contrario a lo reportado por Kurtu <I>et al</I> (8) quienes no encontraron este efecto (p&lt; 0.05) al aumentar la dosis  seminales por encima de 0.5x10<Sup>6</Sup> espermatozoides/ml, cuando utilizaron el mismo toro. Por otro lado la incidencia de poliesperrmia, seg&uacute;n Saeki <I>et al</I> (18), podr&iacute;a relacionarse con la presencia de prote&iacute;nas s&eacute;ricas al suplementar el medio con suero de vaca en estro. </P >    <P    >Saeki <I>et al</I> (18), Van Inzen <I>et al</I> (21), Lu KH, Seidel GE Jr (10), reportan concentraciones fertilizantes de por lo menos 1x10<Sup>6 </Sup>espermatozoides/ml, si consideramos que trabamos con gotas de 50 ul para grupos de 10 a 12 oocitos, la concentraci&oacute;n de la dosis final ser&iacute;a de 50.000 espermatozoides /gota. </P >    <P    >Otros autores como Pinyopummintr y Bavister (16), Ferry <I>et al</I> (5), Rieger <I>et al</I> (17), Leven K <I>et al</I> (9) y Camargo <I>et al</I> (1, 2) trabajaron con una concentraci&oacute;n esperm&aacute;tica superior, de 1.8 y de 2x10<Sup>6</Sup>, sin reportar el alto grado de polispermia. Camargo (2) con sistema de co-cultivo reporta un 87% de oocitos divididos y 37.5% de blastocitos eclosionados, con dosis esperm&aacute;tica de 1.8 x10<Sup>6</Sup>, sin embargo recomienda el uso de dosis fertilizante de concentraciones a partir de 1 x10<Sup>6</Sup>. </P >     ]]></body>
<body><![CDATA[<P    >De acuerdo a los resultados encontrados en este estudio podemos concluir que las concentraciones de heparina de 10 ug/ml y de semen de 1x10<Sup>6</Sup> esp./ml arrojaron las mejores tasas de penetraci&oacute;n de oocitos bovinos <I>in vitro</I>, cuando se utiliza la t&eacute;cnica de swim up. Por lo tanto se recomienda el uso de esta concentraci&oacute;n de heparina en la suplementaci&oacute;n del medio de fertilizaci&oacute;n y de esta dosis inseminante, para alcanzar buenas tasas de fertilizaci&oacute;n con bajos porcentajes de poliespermia.</P >     <P    >&nbsp;</P >     <P   ><I>Summary </I></P >    <P   ><I>Heparin and spermatic concentration effect over the percentage of in vitro fertilization of bovine oocites. </I></P >    <P   ><I>The objective of this study was to evaluate the effect of different heparin concentrations and of the semen in the percentage of bovine oocytes in fertilization medium. In the experiment 1, the obtained oocytes of slaughterhouse ovaries were matured in vitro and distributed at random in six treatments for fertilization in vitro, according to the heparin concentration (2, 4, 8, 10, 16, 20 &micro;g/ ml). In the experiment 2, once selected the heparin concentration from experiment 1, three sperms doses were evaluated in fertilization medium (0.5x10</I><Sup><I>6</I></Sup><I> espermatozoas/ml, 1x0</I><Sup><I>6 </I></Sup><I>espermatozoas/ml and 2x0</I><Sup><I>6</I></Sup><I> espermatozoas/ml). In each experiment totally randomized design was used and data were analyzed by ANAVA. The concentration of heparin (p&lt;0.05) affected the percentage of fertilized oocytes being the best results in the concentration of 10 &micro;g/ml, with a rate of penetration of 67%. The spermatic concentration affects the fertilization, the biggest oocytes proportion with normal fertilization (74%) when using concentration 2x10</I><Sup><I>6</I></Sup><I> spermatozoas/ml. However, it was not significantly different to the concentration of 1x 10</I><Sup><I>6</I></Sup><I> (p&gt;0.05). The results indicate that the fertilization rate keeps direct relationship with the heparine dose and the spermatic concentration. </I></P >    <P   >Keywords: <I>bovine, fertilization in vitro, heparin, swim up.</I></P >     <P   >&nbsp;</P > <b>Referencias</b>      <!-- ref --><P   >1. Camargo LS, S&aacute; W, Ferreira AM, Viana JH. Efeito de sistema   de cultivo, c&eacute;lula som&aacute;tica e soro em co-cultura sobre o   desenvolvimento de embrioes bovinos fecundados in vitro.   Arq Bras Med Vet Zootec 2001; 23:78-83.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000040&pid=S0120-0690200500020000300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   > 2. Camargo LS, S&aacute; W, Ferreira AM, Viana JH, Freitas C.   Concentrac&atilde;o esperm&aacute;tica na fecundac&atilde;o in vitro, com semen   de touro da raca Guzar&aacute;. Arq Bras Med Vet Zootec 2000;   52:59-64.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000041&pid=S0120-0690200500020000300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   > 3. Chacon LJ, Estrada JL. Evaluaci&oacute;n de diferentes compuestos   en la estandarizaci&oacute;n de la t&eacute;cnica de fertilizaci&oacute;n in vitro en   bovinos. Tesis para Msc. Universidad Nacional Colombia   (1997).</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000042&pid=S0120-0690200500020000300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   > 4. Eyestone W, First N. Co-culture of early cattle embryos to   the blastocyst stage with oviductal tissue or in conditioned   medium. J Reprod Fertil 1989; 85:715-720.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000043&pid=S0120-0690200500020000300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   > 5. Ferry L, Mermillod P, Massip A, Dessy F. Bovine embryos   culture in serum-poor oviduct-conditioned medium need   cooperation to reach the blastocist stage. Theriogenology   1994; 42: 445-453.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000044&pid=S0120-0690200500020000300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   > 6. Hern&aacute;ndez Ledezma JJ, Villanueva C, Sikes JD, Roberts   RM. Effects of CZB versus mediuim 199 and of conditioning   cultura media with either bovine oviductal epithelial cells or   buffalo rat liver cells on the development of bovine zygotes   derived by in vitro maduretion-in vitro fertilization   procedures. Theriogenology 1993; 39:1267-1277.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000045&pid=S0120-0690200500020000300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   > 7. Kim BK, Lee SC, Lee KS, Lee BK, Kim JH. Effect of   medium milieu on sperm penetration and pronuclear   formation of bovine oocitos matured in vitro.Theriogenology.   2002; 57:2093 -104.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000046&pid=S0120-0690200500020000300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   >8. Kurtu JM, Ambrose JD, Rajamahendran R. Cleavage rata of   bovine oocytes in-vitro is affected by bulls but not sperm concentrations. Theriogenoloy 1996; 45:257 - 265.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000047&pid=S0120-0690200500020000300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   > 9. Leven K, Clay A, Burnley A, Benjamin G. Production of   viable bovine blastocysts in defined in vitro conditions.   Biology of reproduction 1995; 52:1410 - 1417.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000048&pid=S0120-0690200500020000300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   > 10. Lu KH, Seidel GE Jr. Effects of heparin and sperm   concentration on cleavage and blastocyst development rates   of bovine oocytes inseminated with flow cytometricallysorted   sperm. Theriogenology 2004; 62:819-30.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000049&pid=S0120-0690200500020000300010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   > 11. Niwa, K, Ohgoda, O. Synergistic effect of caffein and heparin   on in-vitro fertilization of cattle oocytes matured in culture.   Theriogenology 1988; 30:733-741.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000050&pid=S0120-0690200500020000300011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   > 12. Parrish JJ, Susko-Parrish, First NL. Effect of heparin and   chondroitin sulfate on the acrosome reaction and fertility   of bovine sperm in vitro. Theriogenology. 1985; 24: 537- 549.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000051&pid=S0120-0690200500020000300012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   > 13. Parrish JJ, Susko-Parrish JL, Leibfried Rufledge ML, Crister   EJ Eyestone EH, First NL. Bovine in-vitro fertilization with   frozen-thawed semen. Theriogenoloy 1986; 25:591-600.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000052&pid=S0120-0690200500020000300013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   > 14. Parrish JJ, Susko-Parrish MA, Winer A, First NL.   Capacitation of bovine sperm by heparin. Biol Reprod 1988;   38:1171-1180.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000053&pid=S0120-0690200500020000300014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   > 15. Parrish JJ, Susko Parrish JL, Handrow RR, Sims MM and   First NL. Capacitation of bovine spermatozoa by oviduct   fluid. Biol Reprod 1989; 40:1020-1025.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000054&pid=S0120-0690200500020000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   > 16. Pinyopummintr T. and Bavister B. In vitro- matured/in   vitro- fertilized bovine oocytes can develop into morulae/blastocists in chemically defined, protein- free culture media.   Biol Reprod 1991; 45: 736-742.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000055&pid=S0120-0690200500020000300016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   > 17. Rieger D, Grisart B, Semple E, Van Langendonckt A,   Betteridge KJ, et al. Comparison of the effects of oviductal   cell co-culture and oviductal cell-conditioned medium on the   development and metabolic activity of cattle embryos. J   Reprod Fertil 1995; 105: 91-98.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000056&pid=S0120-0690200500020000300017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   > 18. Saeki K, Nagao Y, Hoshi M and Nagai M. Effect of heparin,   sperm concentration and bull variation on in vitro fertilization   of bovine oocytes in a protein-free medium. Theriogenology   1995; 43:751-759.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000057&pid=S0120-0690200500020000300018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   > 19. Shamsuddin M, Niwa K, Larsson B, Rodriguez-Martinez   H. In vitro maturation and fertilization of bovine oocytes.   Reprod Dom Anim 1996; 31:613-622.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000058&pid=S0120-0690200500020000300019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   > 20. Xu KP, Greve T. A detailed analysis of early events during   in-vitro fertilization of bovine folicular oocytes. J Reprod   Fertil 1988; 82:127-134.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000059&pid=S0120-0690200500020000300020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P   > 21. Van Inzen WG, Van Stekelenburg-Hamers AE, Weima SM,   Kruip TA, Bevers MM, et al. Culture of bovine embryos to   the blastocist stage using buffalo rat liver (BRL) cells.   Theriogenology 1995; 43:723-738.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000060&pid=S0120-0690200500020000300021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><P   >&nbsp;</P >      ]]></body><back>
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