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<journal-title><![CDATA[Revista Colombiana de Ciencias Pecuarias]]></journal-title>
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<publisher-name><![CDATA[Facultad de Ciencias Agrarias, Universidad de Antioquia]]></publisher-name>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Estimación de polimorfismos del gen de leptina bovino en poblaciones de las razas criollas Hartón del Valle, Blanco Orejinegro (BON) y en la raza Brahman]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[The leptin gene polymorphism, in the populations of Hartón del Valle, Blanco-Orejinegro ( BON) and Brahman cattle.]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Instituto de Biología Grupo de investigación en Genética y Mejoramiento Animal ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Recent investigations have identified some regions between and adjacent to the leptin gene, associated with different carcass fat levels in bovines in wich requencies vary greatly from one race to another, and from one population to another. This investigation determined the polymorphisms for the region 5 UTR’ and flanking region to the end 3&rsquo; of the leptin gene using two markers ST and WD (G18586 and U50365). 261 animals were evaluated of Hartón del Valle (100), Brahman (121) and BON (40) cattle. Were evaluated the result of this analysis where, 7 different alelles for microsatellite ST and 15 for WD, in the total population. The creole populations evaluated for marker ST are not in Hardy-Weinberg (HW) equilibrium. The marker WD only appeared H-W equilibrium for the population Brahman. The Brahman cattle was the most polymorphic cattle for microsatellites ST, where 6 for ST alleles were found. For WD the most polymorphic cattle was Hartón del Valle and less polymorphic cattle was the BON, with 6 for ST and 6 for WD alleles.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[microsatélite]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[gen obeso]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <p><b>ART&Iacute;CULOS ORIGINALES</b></p>     <p>    <br>   <b>Estimaci&oacute;n de polimorfismos del gen de leptina   bovino en poblaciones de las razas criollas   Hart&oacute;n del Valle, Blanco Orejinegro (BON)   y en la raza Brahman</b></p>     <p>    <br>   Mar&iacute;a T Guerra<sup>1</sup>, Biol; Esperanza Trujillo B<sup>1</sup>, Biol, MSc; Mario Cer&oacute;n-Mu&ntilde;oz<sup>1,2</sup>, Zoot., PhD.</p>     <p>  <sup>1</sup>Grupo de investigaci&oacute;n en Gen&eacute;tica y Mejoramiento Animal, Instituto de Biolog&iacute;a.</p>     <p>  <sup>2</sup> Grupo GRICA, Facultad de Ciencias Agrarias. Universidad de Antioquia, A.A. 1226, Medell&iacute;n, Colombia</p>     <p>  <a href="mailto:etbravo@epm.net.co">etbravo@epm.net.co</a></p>     <p>  (Recibido: 28 febrero, 2005; aceptado: 23 agosto, 2005) </p>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b><i>Resumen</i></b></p>     <p><b><i> En investigaciones recientes se han identificado algunas regiones entre y adyacentes al gen de   leptina, asociadas con diferentes niveles de grasa de la carne en canal, y cuyas frecuencias var&iacute;an   grandemente de una raza a otra, y de una poblaci&oacute;n a otra. En este trabajo, fueron determinados los   polimorfismos para la regi&oacute;n 5 UTR&#146; (regi&oacute;n que no traduce) y regi&oacute;n flanqueante al extremo 3&#146; del   gen leptina, utilizando dos microsat&eacute;lites ST y WD (G18586 y U50365). Fueron evaluados 261 animales   de las razas Hart&oacute;n del Valle (100), Brahman (121) y BON (40). Se encontraron 7 alelos diferentes para   el marcador ST y 15 para WD, considerando la poblaci&oacute;n total analizada. Las poblaciones de las   razas criollas evaluadas para los marcadores ST y WD, no se encuentran en equilibrio de Hardy-   Weinberg. El mayor polimorfismo para el microsat&eacute;lites ST se encontr&oacute; en la raza Brahman, que   present&oacute; 6 alelos. Para WD fue m&aacute;s polimorfica Hart&oacute;n del Valle con 15 alelos diferentes. La menos polim&oacute;rfica fue la raza BON, con 4 alelos para ST y 6 para WD.</i></b></p>     <p> <b>Palabras clave: </b><i>microsat&eacute;lite, gen obeso, ST, WD.</i></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><b> Introducci&oacute;n</b></p>     <p>    <br>   Leptina es el producto del gen obeso ob, tambi&eacute;n   llamado leptina (23), un p&eacute;ptido de 167 amino&aacute;cidos,   altamente conservado. Presenta entre 84 y 97 %   de homolog&iacute;a en ratones, ratas, humanos y bovinos   (5,23), es secretada por los adipositos a la sangre y   luego transportada al cerebro (hipot&aacute;lamo), donde   act&uacute;a para estimular factores que afectan el   consumo de alimento, la composici&oacute;n del cuerpo, el   gasto energ&eacute;tico, el aumento de la actividad f&iacute;sica   y la regulaci&oacute;n del peso corporal (6). La leptina   inhibe su propia expresi&oacute;n por retroalimentaci&oacute;n (8)   y entre mayor sea el n&uacute;mero de adipositos, mayor   es la cantidad de RNAm de leptina presente (1,13).</p>     <p>  Tambi&eacute;n tiene un efecto directo sobre otros tejidos   como m&uacute;sculo esquel&eacute;tico (9), donde desempe&ntilde;a   un importante papel en la s&iacute;ntesis del glic&oacute;geno y   transporte de glucosa (11), peque&ntilde;as cantidades de   leptina tambi&eacute;n son secretadas por c&eacute;lulas en el   epitelio del est&oacute;mago y de la placenta (9,11).   El gen de leptina bovino fue clonado por Ji et al   (10) y mapeado en el cromosoma 4 regi&oacute;n q32 (15,   17). Presenta 3 exones y 2 intrones, con las regiones   codificantes ubicadas en los exones 2 y 3 (3). Con   respecto al gen leptina varios grupos de   investigaci&oacute;n, han determinado en razas taurinas la   asociaci&oacute;n de concentraciones de leptina en sangre   con variaciones en el apetito y composici&oacute;n de la   carne en canal (6, 20) y de regiones variables en el   gen con promedio de grasa, espesor de grasa de   cobertura, marmoreo y porcentaje de grasa en   costilla (2, 7, 12).</p>     <p>  En rat&oacute;n, el gen mutado ob en forma homocig&oacute;tica   (ob/ob) produce una leptina biol&oacute;gicamente inactiva   determinando hiperfagia, reducci&oacute;n del gasto de    <br>   energ&iacute;a y obesidad gen&eacute;tica, que resulta en un adulto   est&eacute;ril con el 50% del cuerpo como grasa (18). El   defecto espec&iacute;fico del gen ob en rat&oacute;n fue reportado    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   por Zhang et al (23).   El descubrimiento del gen de la leptina en rat&oacute;n y   otras especies y sus efectos sobre la grasa del cuerpo,   lo convierten en un candidato ideal para evaluaci&oacute;n del metabolismo.</p>     <p>    El presente trabajo pretende estimar las frecuencias   de los polimorfismos de dos microsat&eacute;lites ligados al   gen leptina para su posterior utilizaci&oacute;n como   marcadores de la calidad de carne.  </p>     <p>&nbsp;</p>     <p><b>Materiales y m&eacute;todos </b></p>     <p>    <br>   <i>Muestra poblacional</i></p>     <p>  Fueron evaluados 100 animales (60 hembras, 40   machos) de ganado criollo Hart&oacute;n del Valle (Hv), hato   ubicado en Cerrito &#8212;Valle del Cauca; 40 de BON (7   machos y 33 hembras) provenientes de la finca Hato   Viejo &#8212; Risaralda y 121 de Brahman ( 100 machos y   21 hembras), de Puerto Boyac&aacute;.   Los animales fueron escogidos teniendo en cuenta   los registros de las fincas, con la idea de muestrear los   menos emparentados posibles.</p>     <p>    <br>   <i>Extracci&oacute;n de ADN</i></p>     <p>  De cada animal fueron colectados   aproximadamente 7ml de sangre de la vena   mamaria o arteria cocc&iacute;gea media y almacenados   a 4&#176;C hasta su procesamiento. El ADN fue   extra&iacute;do por la metodolog&iacute;a de &#147;Salting out&#148; (14)   y posterior precipitaci&oacute;n con 2- propanol. La   concentraci&oacute;n de DNA se midi&oacute; por   espectrofotometr&iacute;a a 260 nm.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>    <br>   <i>Genotipificaci&oacute;n</i></p>     <p>  Las reacciones de PCR se llevaron a cabo en un   volumen total de 25mL, que conten&iacute;an: 0,7 mg/mL de   DNA; buffer de reacci&oacute;n 1X (10Mm Tris-HCL pH   9,0; 50mM KCl; 0,1 % Triton&#174; X-100); 3mM de   MgCl2; 0,08mM de cada dNTP; 5 pmol de cada   primer y 1 unidad de Taq DNA Polimerasa   (Invitrogen). La amplificaci&oacute;n se efectu&oacute; en un   termociclador T-Personal 48 (Biometra&#174; GMBH, D-   37079 Goettingen, Germany). Para la amplificaci&oacute;n   del microsat&eacute;lite WD ubicado la regi&oacute;n 5&#146;UTR del   gen de la leptina bovina (cromosoma 4), fueron   utilizados los primers: WD-1 5&#146;-   TTCTAATGGTCGAATATGTTCTGG-3&#146; y WD-2   5&#146;-TAAAGACCGGCTACGACTAGAC-3&#146; (22) y   para el microsat&eacute;lite ST ubicado en la regi&oacute;n que   flanquea el extremo 3&#146; del gen de leptina fueron    <br>   utilizados los primers: ST-1 5&#146;-   CATCGACGACAGGAACTCC-3&#146; y ST-2   5&#146;-GGAAT17CGTACAAGGGACC-3&#146; (17),   fabricados por IDT (Coralville, IA 52241, USA). El   perfil t&eacute;rmico para cada reacci&oacute;n consisti&oacute; en un ciclo   a 94&#176;C por 2 min, 60&#176;C por 30 seg, 72&#176;C por 30 seg,   seguido por 29 ciclos a 94&#176;C por 20 seg, 60&#176;C por 20   seg y 72&#176;C por 30 seg y extensi&oacute;n final a 72&#176;C por 7   min. Los productos de la PCR fueron visualizados   en geles de agarosa al 2% conteniendo Bromuro de   Etidio (0.7 &micro;g/mL). Para la determinaci&oacute;n de los   genotipos se utilizaron geles de poliacrilamida al 6%.</p>     <p>    <br>   <i>M&eacute;todos estad&iacute;sticos</i></p>     <p>  Se estim&oacute; el equilibrio de Hardy-Weinberg, las   frecuencias genot&iacute;picas y las frecuencias al&eacute;licas con   el programa GENEPOP versi&oacute;n 3.3 (16).</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><b> Resultados</b></p>     <p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   La genotipificaci&oacute;n del marcador ST (17), en las   poblaciones seleccionadas de las razas criollas Hart&oacute;n   del Valle, BON y de la raza Brahman, dio como   resultado la identificaci&oacute;n de 7 alelos diferentes para   este microsat&eacute;lite (<a href="#t1">v&eacute;ase Tabla 1</a>), tres diferentes (132,   141 y 150) de los reportados previamente en   investigaciones realizadas por Fitzimmons et al (4) y   Tessanne et al (19) quienes encontraron los siguientes   alelos 135, 138, 140, 144, 147 y 149.   En Hart&oacute;n del Valle se detectaron 5 alelos para   ST, siendo los m&aacute;s frecuentes 135 y 144. En   Brahman, 6 alelos en total, siendo el m&aacute;s frecuente   el 144. La raza criolla BON present&oacute; 4 alelos   diferentes, con la frecuencia m&aacute;s alta para el alelo 144 (<a href="#t1">v&eacute;ase Tabla 1</a>).</p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/rccp/v18n3/v18n3a02t01.jpg"><a name="t1"></a></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>Los alelos 135 y 144 para el marcador ST,   representaron para cada una de las tres poblaciones   el m&aacute;s alto porcentaje as&iacute;: Hart&oacute;n del Valle 94.5%,   Brahman 88.9% y BON 87.6%. El alelo 135 mostr&oacute;   una alta frecuencia (0.405) en Hart&oacute;n del Valle, pero   baja en las razas Brahman y BON con valores de 0.12   y 0.14 respectivamente.   Los alelos 132 y 138, fueron determinados   exclusivamente en animales Hart&oacute;n del Valle y   Brahman respectivamente, con frecuencias de 0.01   (correspondiente a dos animales heterocig&oacute;ticos) y   0.008 (dos animales heterocig&oacute;ticos). Los alelos 135,   144 y 147 fueron comunes a las tres poblaciones, (Brahman, Hart&oacute;n del Valle y BON) (<a href="#t2">v&eacute;ase Tabla 2</a>).</p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/rccp/v18n3/v18n3a02t02.jpg"><a name="t2"></a></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>Se detectaron 7 combinaciones genot&iacute;picas para el   marcador ST en Hart&oacute;n del Valle, 6 en BON y 9 en Brahman; el homocig&oacute;tico 144/144 present&oacute; la m&aacute;s alta frecuencia, en cada una de las tres poblaciones as&iacute;: Hart&oacute;n del Valle (0.38), BON (0.57) y Brahman (0.58). Las combinaciones genot&iacute;picas que se    <br> presentaron en menor proporci&oacute;n fueron 147/147 y 135/ 150, en BON y Brahman respectivamente. (<a href="#t2">v&eacute;ase Tabla 2</a>) El otro microsat&eacute;lite genotipificado fue WD (22). Wilkins y Davey (22) encontraron 18 alelos diferentes para este marcador en investigaciones con Angus. En la evaluaci&oacute;n en el presente estudio para este mismo marcador, se determinaron 15, 8 y 6 alelos para las razas Hart&oacute;n del Valle, Brahman y BON respectivamente (<a href="#t3">v&eacute;ase Tabla 3</a>). Los m&aacute;s frecuentes para cada una de las razas analizadas fueron: 171 en Brahman, 175 en Hart&oacute;n del Valle y 177 en BON, con frecuencias de 0.46, 0.37 y 0.84 respectivamente (<a href="#t3">v&eacute;ase Tabla 3</a>). En otros resultados en la raza Angus, el alelo m&aacute;s frecuente fue el 177 con 0.51 (19).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Fueron comunes a las tres poblaciones analizadas   los alelos 175, 177, 179 y 183 de WD. Los alelos 169,   171, 173 y 181 &uacute;nicamente se detectaron en las    <br>   poblaciones Hart&oacute;n del Valle y Brahman pero no en   BON. 187 y 189 s&oacute;lo estuvieron presentes en Hart&oacute;n   del Valle y BON y los alelos 185, 191, 193, 195 y 197   solo se encontraron en Hart&oacute;n del Valle. &Eacute;sta &uacute;ltima   fue la &uacute;nica raza en la que se determinaron la totalidad   de los diferentes alelos encontrados en este estudio (<a href="#t3">v&eacute;ase Tabla 3</a>).</p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/rccp/v18n3/v18n3a02t03.jpg"><a name="t3"></a></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>En la genotipificaci&oacute;n del marcador WD, se   detectaron 6 genotipos diferentes en BON, 40 en   Hart&oacute;n del Valle y 24 en Brahman, siendo la raza criolla    <br>   Hart&oacute;n del Valle, la que m&aacute;s combinaciones genot&iacute;picas   present&oacute; y cuyo genotipo m&aacute;s frecuente fue el 175/   175 con un valor de 0.26. En Brahman fue el    <br>   homocig&oacute;tico 171/171, con una frecuencia de 0.24 y   en BON el genotipo 177/177 con una frecuencia de 0.77 (<a href="#t4">v&eacute;ase Tabla 4</a>).</p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/rccp/v18n3/v18n3a02t04.jpg"><a name="t4"></a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p>En la tabla 6 se muestran los valores estimados de   la heterocigosis observada y esperada para cada uno   de los microsat&eacute;lites (ST y WD) y en cada una de las razas.</p>     <p>    <br>   <b>Discusi&oacute;n</b></p>     <p>    <br>   El gen ob ha sido propuesto como un gen   candidato, cuyo producto se cree est&aacute; involucrado   en la regulaci&oacute;n y disposici&oacute;n de la grasa en ganado   de carne. Varios grupos de investigaci&oacute;n (6,12), han   evaluado la asociaci&oacute;n con variaciones en el apetito,   caracter&iacute;sticas de la carne en canal y contenido de   grasa intramuscular en ganado, de microsat&eacute;lites   ubicados en regiones cercanas y no codificantes al   gen leptina tales como ST (17) y WD (22), as&iacute; como   de secuencias internas al gen como el marcador   SNP (2).</p>     <p>El microsat&eacute;lite ST cercano al gen ob fue   caracterizado previamente en las razas: Angus,   Charolais, Hereford y Simmental por Fitzsimmons et   al (4), quienes encontraron cuatro alelos de 138, 140,   147 y 149 pares de bases y una asociaci&oacute;n significativa   del alelo 138 con un alto espesor de grasa subcut&aacute;nea   en Angus y Hereford y del alelo 147 con un efecto   opuesto. El alelo 138 fue reportado con frecuencias   de 0.57 en Angus y 0.59 en Hereford (7) y el 147 en    <br>   razas como Charolais y Simmental con frecuencias de 0.54 y 0.58 respectivamente (7).</p>     <p>  En este estudio, el alelo 138 fue detectado &uacute;nicamente en la raza Brahman de las tres analizadas   y con una muy baja frecuencia (0.008) (un animal), y el 147 present&oacute; frecuencias bajas en las 3 razas analizadas, principalmente en Brahman (<a href="#t1">v&eacute;ase Tabla 1</a>).</p>     <p>  El 132 es una alelo encontrado &uacute;nicamente en la   raza Hart&oacute;n del Valle, con baja frecuencia (0.10)   (<a href="#t1">v&eacute;ase Tabla 1</a>), no ha sido reportado en   investigaciones previas en otras razas tales como:   Angus, Charolais, Hereford y Simmental (4,19). Su   detecci&oacute;n en Hart&oacute;n del Valle se debe quiz&aacute;s a la   presencia de algo de mezcla con otras razas de origen   indicus.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En cuanto al alelo 144 del marcador ST, fue el m&aacute;s   frecuente en las tres razas analizadas, en concordancia   con los resultados de Tessanne et al (19) quienes   reportaron para este mismo alelo frecuencias muy altas en la raza Angus (0.51).</p>     <p> El mayor polimorfismo para el microsat&eacute;lite ST lo   present&oacute; la raza Brahman, comparada con lo   encontrado en Hart&oacute;n del Valle y BON. La variabilidad   encontrada en Brahman, posiblemente sea el resultado   de un mayor pie de cr&iacute;a ancestral y reducidos niveles   de endogamia en los hatos. Adem&aacute;s, la raza Brahman   es el resultado de una mezcla gen&eacute;tica entre diferentes   razas que contribuyeron en su formaci&oacute;n. Entre las   tres razas analizadas la menos polim&oacute;rfica para este   microsat&eacute;lite fue la raza BON ya que present&oacute; &uacute;nicamente cuatro alelos de los siete determinados en las tres poblaciones.</p>     <p>  Para el microsat&eacute;lite WD, Tessanne et al (19),   determinaron en Angus seis alelos diferentes (177, 184,   186, 190, 192 y 209). En esta misma investigaci&oacute;n,    <br>   este microsat&eacute;lite fue asociado con calidad de carne,   principalmente con relaci&oacute;n a mayor &aacute;rea del ojo del   lomo, especialmente los genotipos que contienen el alelo 209 (19). Este alelo no fue encontrado en ninguna de   las razas evaluadas en este estudio.</p>     <p>  Los diferentes alelos encontrados para WD (<a href="#t3">v&eacute;ase   Tabla 3</a>), teniendo en cuenta la poblaci&oacute;n total   genotipificada, indican un alto polimorfismo para &eacute;ste    <br>   microsat&eacute;lite. El alto polimorfismo encontrado, quiz&aacute;s   es debido a que es un marcador ubicado en una zona   de alta variabilidad en el gen de leptina (regi&oacute;n 5&#146;UTR).   La poblaci&oacute;n Hart&oacute;n del Valle fue la raza criolla m&aacute;s   polim&oacute;rfica de las tres y la raza BON la menos   polim&oacute;rfica. El polimorfismo en Hart&oacute;n del Valle, es   debido al n&uacute;mero de alelos determinados para WD en   la poblaci&oacute;n (aunque con muy bajas frecuencias)   (<a href="#t3">v&eacute;ase Tabla 3</a>) y que denotan variabilidad, se debe    <br>   posiblemente, a que en este n&uacute;cleo empieza a darse la mezcla con parentales de otros or&iacute;genes.</p>     <p> A partir del an&aacute;lisis de equilibrio de Hardy-Weinberg   se determin&oacute; que, las poblaciones Hart&oacute;n del Valle y   BON no se encontraron en equilibrio para los   microsat&eacute;lites ST y WD (p = 0.05), pero s&iacute; la poblaci&oacute;n   Brahman (<a href="#t5">v&eacute;ase Tabla 5</a>).</p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/rccp/v18n3/v18n3a02t05.jpg"><a name="t5"></a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p>La p&eacute;rdida de equilibrio H-W, que se present&oacute; para   WD y ST en las razas criollas es lo esperado, ya que   es frecuente la utilizaci&oacute;n de pocos parentales machos   en los diferentes hatos, lo que conduce a un alto nivel   de endogamia, acorde con la endogamia detectada en   los registros hist&oacute;ricos que se llevan en estas explotaciones.</p>     <p> Los resultados de la estimaci&oacute;n de las diferencias   entre la heterocigocidad observada y esperada para   ambos microsat&eacute;lites, mostraron que ambas razas    <br>   criollas (Hart&oacute;n del Valle y BON) tienen un d&eacute;ficit de   heterocig&oacute;ticos (p = 0.05), producido posiblemente porel alto grado de consanguinidad, debido al bajo n&uacute;mero   de n&uacute;cleos que conforman cada una de &eacute;stas razas,   cerrados y aislados, lo que no permite un verdadero   intercambio. En Brahman no se present&oacute; un exceso   de heterocig&oacute;ticos (p&#62;0.05) (<a href="#t6">v&eacute;ase Tabla 6</a>).</p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/rccp/v18n3/v18n3a02t06.jpg"><a name="t6"></a></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>En la estimaci&oacute;n de los valores de FIS, se   determin&oacute; que los resultados para cada locus y para   cada poblaci&oacute;n son significativos para el d&eacute;ficit de   heterocig&oacute;ticos en Hart&oacute;n del Valle y BON. La   poblaci&oacute;n Brahman no present&oacute; d&eacute;ficit de heterocig&oacute;ticos (<a href="#t7">v&eacute;anse Tablas 7</a> y <a href="#t8">8</a>).</p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/rccp/v18n3/v18n3a02t07.jpg"><a name="t7"></a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/rccp/v18n3/v18n3a02t08.jpg"><a name="t8"></a></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>Se encontr&oacute; segregaci&oacute;n independiente entre los   dos loci con un valor p altamente significativo (p&#60;0.05),   para cada una de las poblaciones, Hart&oacute;n del Valle,    <br>   Brahman y BON. Este resultado concuerda con el   hecho de que ambos marcadores se encuentran alejados   entre s&iacute; en el mapa gen&oacute;mico, no hay desequilibrio de   ligamiento y como consecuencia, no pueden establecerse haplotipos predominantes en la poblaci&oacute;n.</p>     <p> La genotipificaci&oacute;n, la determinaci&oacute;n de los valores   de las frecuencias al&eacute;licas y genot&iacute;picas encontradas   y el an&aacute;lisis de equilibrio de H-W en las razas criollas    <br>   y Brahman, con respecto a las regiones 5&#146;UTR y la   que flanquea el extremo 3&#146; del gen leptina, permiti&oacute;   establecer diferencias marcadas entre las razas para    <br>   cada uno de los marcadores evaluados. Adem&aacute;s,   posibilitar la apertura de nuevas investigaciones   encaminadas a buscar su asociaci&oacute;n con caracter&iacute;sticas    <br>   de calidad de carne.</p>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>  Agradecimientos</b></p>     <p>    <br>   A la Vicerrector&iacute;a de extensi&oacute;n (Universidad de   Antioquia. Proyecto &#8470; 158.04) y a la Cooperativa   Lechera COLANTA.</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><i><b>Summary</b></i></p>     <p><b><i>  The leptin gene polymorphism, in the populations of Hart&oacute;n del Valle, Blanco-Orejinegro ( BON)   and Brahman cattle.</i></b></p>     <p><b><i>  Recent investigations have identified some regions between and adjacent to the leptin gene, associated   with different carcass fat levels in bovines in wich requencies vary greatly from one race to another,   and from one population to another. This investigation determined the polymorphisms for the region 5   UTR&#146; and flanking region to the end 3&rsquo; of the leptin gene using two markers ST and WD (G18586 and   U50365). 261 animals were evaluated of Hart&oacute;n del Valle (100), Brahman (121) and BON (40) cattle.   Were evaluated the result of this analysis where, 7 different alelles for microsatellite ST and 15 for WD,   in the total population. The creole populations evaluated for marker ST are not in Hardy-Weinberg (HW)   equilibrium. The marker WD only appeared H-W equilibrium for the population Brahman. The   Brahman cattle was the most polymorphic cattle for microsatellites ST, where 6 for ST alleles were   found. For WD the most polymorphic cattle was Hart&oacute;n del Valle and less polymorphic cattle was the   BON, with 6 for ST and 6 for WD alleles. </i></b></p>     <p><b>Key words:</b> <i>microsatellite, obese gene, ST, WD.</i></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><b>Referencias</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>      <!-- ref --><br> 1. Auwerx J. and Staels, B. 1998. Leptin. Lancet. 351: 737-742.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0120-0690200500030000200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 2. Buchanan FC, Fitzsimmons CJ, Van Kessel, AG, Thue TD,   Windkelman-Sim DC, Schmutz SM. 2002. Association of a   missense mutation in the bovine leptin gene with carcass fat   content and leptin mRNA levels. Genet. Sci. Evol. 34: 105-116.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0120-0690200500030000200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 3. Coleman DL. 1978. Obese and diabetes: two mutant genes   causing diabetes-obesity syndromes in mice. Diabetologia   14: 141-148.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S0120-0690200500030000200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 4. Fitzsimmons CJ, Schmutz SM, Bergen RD, and McKinnon   JJ. 1998. A potential association between the BM1500   microsatellite and fat deposition in beef cattle. Mamm.   Genome 9: 432-434.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0120-0690200500030000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  5. Funahashi T, Simomura I, Hiraoka H, Arai T, Takahashi M,   Nakamura T, Nozaki S Yamashita S, Takemura K, Matsuzawa   Y, 1995. Enhanced expression of rat obese (OB) gene in   adipose tissues of ventromedial hypothalamus (VMH)-   lesioned rats. Biochem Biophys Res Commun. 211: 469-475.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S0120-0690200500030000200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  6. Geary TW, McFadin EL, MacNeil MD, Grings EE, Short   RE, Funston RN, and Keisler DH. 2003. Leptin as a   predictor of carcass composition in beef cattle. J.Anim. Sci.   81: 1-8.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0120-0690200500030000200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  7. Hale CS, Herring WO, Johnson GS, Shibuya H, Lubahn, D.   B. and Keisler, DH. 1998. Evaluation of the leptin gene as a   possible marker of carcass traits in Angus cattle. UMC Animal   Sciences Departmental Report, 25-27.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000120&pid=S0120-0690200500030000200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 8. Houseknecht KL, Baile CA, Matteri RL, Spurlock ME. 1998.   The Biology of Leptin: A Review. J. Anim. Sci. 76: 1405-   1420.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0120-0690200500030000200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  9. Hossner KL. 1998. Cellular, molecular and physiological   aspects of leptin: Potential application in animal production.   Can. J. Anim. Sci. 78:463-472.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000122&pid=S0120-0690200500030000200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10. Ji S, Willis GM, Scott RR, Spurlock ME, 1998. Partial cloning   and expression of the bovine leptin gene. Anim. Biotechnol.   9: 1-14.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0120-0690200500030000200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11. Margetic S, Gazzola C, Pegg GG, and Hill R A. 2002. Leptin:   a review of its peripheral actions and interactions. Inter. J. Obes. 26: 1407-1433.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000124&pid=S0120-0690200500030000200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 12. Marquess L. 2001. The leptin gene as a candidate for fat   deposition assessment. Mimeo.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S0120-0690200500030000200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 13. Masuzaki H, Ogawa Y, Isse N, Satoh N, Okasaki TM,   Shigemoto M, Mori K, Tamura N, Hosada K, Yoshimasa Y,   Jingami H, Kawada T, and Nakao K. 1995. Human obese   expression and regional differences in the adipose tissue.   Diabetes. 44: 855-858&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000126&pid=S0120-0690200500030000200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 14. Miller SA, Dykes DD, Poletsky HF. 1988 A simple salting   out procedure for extracting DNA from human nucleated   cells. Nucl Acids Res 16: 1215.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S0120-0690200500030000200014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 15. Pomp D, Zou T, Clutter AC., and Barendse, W. 1997. Rapid   communication: Mapping of leptin to bovine chromosome 4   by linkage analysis of a PCR- based polymorphism. J. Anim.   Sci. Vol. 75, p. 1427.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000128&pid=S0120-0690200500030000200015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 16. Raymond M, Rousset F. 1995. GENEPOP (Versi&oacute;n 3.3):   population genetics software for exact test and ecumenicism.   J Heredity 86:248-249.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S0120-0690200500030000200016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 17. Stone RT, Kappes S. M. and Beattie C. (1997) Two polymorphic   microsatellites within an 18 kb genomic clone containing the   bovine ob gene. Animal Genetics. 27 (Suppl. 2), 64.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000130&pid=S0120-0690200500030000200017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 18. Tartaglia LA, Dembski M, Weng X, Deng N, Culpepper J,   Devos R, Richards JG, Campfield LA, Clark FT, Deeds J,   Muir C, Sanker S, Moriarty A, Moore KJ, Smutko JS, Mays   GG, Woolf EA, Monroe CA, and Tepper RI. 1995.   Identification and expression cloning of a leptin receptor,   OB-R. Cell 83: 1263-1271.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000131&pid=S0120-0690200500030000200018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 19. Tessanne K, Hines HC, and Davis ME, 1999. Relationships   of Polymorphisms in the Bovine Leptin Gene with   Differences in Beef Carcass Traits. esearch and Reviews:   Beef and Sheep. Special Circular.170.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000132&pid=S0120-0690200500030000200019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 20. Wegner J, Huff P, Xie CP, Schneider F, Teuscher F, Mire PS,   Mir Z, Kazala, EC, Weselake RJ and Ender K. 2001.   Relationship of plasma leptin concentration to intramuscular   fat content in beef from crossbred Wagyu cattle. Can. J. Anim. Sci. 81:451-457.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000133&pid=S0120-0690200500030000200020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 21. Wheeler TL, Cundiff LV and Koch RM. 1994. Effect of   marbling degree on beef palatability in Bos taurus and Bos   indicus cattle. J. Anim. Sci. 72:3145-3151.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000134&pid=S0120-0690200500030000200021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 22. Wilkins RJ and Davey H. 1997. A polymorphic microsatellite   in the bovine leptin gene. Animal Genetics 38: 370-383.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000135&pid=S0120-0690200500030000200022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 23. Zhang Y, Proenca R, Maffel M, Barone M, Leopoldo L and   Friedman JM. 1994. Positional Cloning of the mouse obese   gene and its human homologue. Nature (Lond.) 372: 425-   432.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000136&pid=S0120-0690200500030000200023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p>&nbsp;</p>      ]]></body><back>
<ref-list>
<ref id="B1">
<label>1</label><nlm-citation citation-type="">
<source><![CDATA[]]></source>
<year></year>
</nlm-citation>
</ref>
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