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<journal-title><![CDATA[Revista Colombiana de Ciencias Pecuarias]]></journal-title>
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<publisher-name><![CDATA[Facultad de Ciencias Agrarias, Universidad de Antioquia]]></publisher-name>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[El efecto de la interacción Frankia - micorrizas - micronutrientes en el establecimiento de árboles Aliso (Alnus acuminata) en sistemas silvopastoriles]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[The effects of the interaction Frankia - mycorrhizal fungi - microelements in the establishment of Alder trees (Alnus acuminata) in tree grass systems]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Frankia is a genus of microorganisms called actinomycetes able to induce the formation of radicular nodules that fix atmospheric nitrogen in some non-legumes angiosperms, denominated actinorrhizal plants. The development of symbiotic fixing of N envolves multiple processes that are carried out in endosimbiotic subcellular compartments in which Frankia produces the nodules of the root which turn the N2 in combined form. The mycorrhizal symbiosis and the nodules are generally synergistic. They promote the vegetal growth, the multiplication of mycorrhizae producing a more competitive atmosphere for the pathogens. It is important to consider the participation of micronutrients like molibdenum, which is a component of the nitrogenase, since its deficiency in the medium causes a direct and negative effect in the fixing of the N2. The boron deficiency produces a destabilization of the protecting cover against oxygen, which considerably affects the nodulation of the plant. Cobalt is a structural component of the coenzyme of the B12 vitamin in the process of the fixing of the N. Nevertheless, many aspects related to these micronutrients in the interactions and the mycorrhizal-Frankia symbiosis is unknown. It is important to determine the effects on the microorganisms and the development of the nodules; for determining an optimum development, however its complexity makes its effect to be unpredictable under all conditions and for all species. Therefore, it is important to stimulate the investigation on the matter, as well as to research on more information on the principles of the functioning, interactions, and show results found on the use of promissory trees for tree grass systems in high tropic as the Aliso (Alnus acuminata), a forestal species useful for solving the degradation problems of the soil and deforestation.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p><b>El efecto de la interacci&oacute;n <i>Frankia</i> - micorrizas -    micronutrientes en el establecimiento de &aacute;rboles Aliso (Alnus acuminata) en sistemas  silvopastoriles</b></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>Mauricio Molina L<sup>1</sup>, Zoot, Esp., Marisol Medina S<sup>2</sup>, IA, MSc, Hernando Orozco P<sup>3</sup>, IA, MSc.</p>     <p><sup>1</sup>Asp. Maestr&iacute;a en Ciencias Animales Universidad de Antioquia, Secretaria de Agricultura y Desarrollo Rural de Antioquia.</p>     <p><sup>2</sup>Grupo GRICA Universidad de Antioquia, Facultad de Ciencias Agrarias.</p>     <p><sup>3</sup>Consultor particular.</p>     <p><a href="mailtio:maumolina243@yahoo.es">maumolina243@yahoo.es</a></p>     <p>(Recibido: 26 mayo, 2005; aceptado: 30 enero, 2006)</p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="justify"><i><b>Resumen</b></i></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b><i>Frankia es un g&eacute;nero de microorganismos llamados actinomicetos capaces de inducir la formaci&oacute;n    de n&oacute;dulos radiculares fijadores de nitr&oacute;geno atmosf&eacute;rico en algunas angiospermas no leguminosas,    denominadas plantas actinorr&iacute;zicas. El desarrollo de fijaci&oacute;n de Nitr&oacute;geno (N) simbi&oacute;tico envuelve    m&uacute;ltiples procesos que se llevan a cabo en compartimentos subcelulares endosimbi&oacute;ticos donde Frankia    produce los n&oacute;dulos de la ra&iacute;z que convierten el N<sub>2</sub> en forma combinada. La simbiosis micorriza y    n&oacute;dulo es generalmente sin&eacute;rgica, promueve el crecimiento vegetal, la multiplicaci&oacute;n de las micorrizas   propicia un ambiente de mayor competencia, no favorable para los agentes pat&oacute;genos. A lo anterior    se debe sumar la participaci&oacute;n de microelementos como el molibdeno(Mo), el cual es constituyente de    la nitrogenasa y cuya deficiencia en el medio causa un efecto directo y negativo en la fijaci&oacute;n del N;    con el boro(B,) donde su deficiencia produce una desestabilizaci&oacute;n de la cubierta protectora contra el    ox&iacute;geno, afectando considerablemente la nodulaci&oacute;n de la planta y con el cobalto(Co), forman un    componente estructural de la coenzima de la vitamina B12 en el proceso de fijaci&oacute;n de N. Sin embargo,    muchos aspectos relacionados de estos microelementos en la interrelaci&oacute;n y de la simbiosis micorriza    y Frankia se desconocen. Por lo anterior, es importante determinar sus efectos sobre los microorganismos    del suelo y el desarrollo de los n&oacute;dulos; para intepretar una &oacute;ptima manifestaci&oacute;n, sin embargo su    complejidad hace que su efecto no sea predecible bajo todas las condiciones ni para todas las especies.    Por lo tanto, es importante incentivar la investigaci&oacute;n al respecto, as&iacute; como profundizar en el    conocimiento de sus principios de funcionamiento, interacciones y mostrar los resultados encontrados    en su uso en &aacute;rboles promisiorios para sistemas silvopastoriles tr&oacute;pico alto como el aliso (Alnus    acuminata), especie forestal &uacute;til en la soluci&oacute;n de problemas de degradaci&oacute;n de suelos y deforestaci&oacute;n.</i></b></p>     <p><b>Palabras clave:</b><i> boro, cobalto, molibdeno, fijaci&oacute;n de nitr&oacute;geno, plantas actinorr&iacute;zicas, simbiosis.</i></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="justify"><b>Introducci&oacute;n</b></p>     <p align="justify">El nitr&oacute;geno (N), junto con el agua, es el nutriente    mineral que m&aacute;s frecuentemente limita la producci&oacute;n    de plantas. Aunque la atm&oacute;sfera contiene casi el 80    por ciento de N, su fijaci&oacute;n biol&oacute;gica representa la clave  para incrementar las fuentes de N, puesto que, la  mayor&iacute;a de los seres vivos son incapaces de aprovecharlo en la forma en que se encuentra all&iacute; como, N<sub>2</sub>, s&oacute;lo algunos organismos procari&oacute;ticos pueden  reducirlo a amonio, en un proceso conocido como  fijaci&oacute;n biol&oacute;gica de nitr&oacute;geno (3, 14, 29).</p>     <p align="justify"> De otro lado, la simbiosis es una estrategia biol&oacute;gica    de cooperaci&oacute;n entre dos o m&aacute;s organismos vivos    integrados dentro de un sistema org&aacute;nico, donde su    interacci&oacute;n puede ser de mutualismo, comensalismo o    parasitismo. Las asociaciones simbi&oacute;ticas que se forman entre los microorganismos y plantas son    caracterizados por la penetraci&oacute;n de las c&eacute;lulas vivas    de la planta por un simbionte microbiano, seguido por    un per&iacute;odo durante el cual la vida del simbionte se    encuentra parcialmente o enteramente dentro de las    c&eacute;lulas de la planta y son importantes debido a sus    efectos sobre la morfog&eacute;nesis, la nutrici&oacute;n, la protecci&oacute;n    contra enfermedades infecciosas y la adaptaci&oacute;n a    condiciones ambientales extremas, desempe&ntilde;ando un    papel significativo en agricultura y ecosistemas  naturales (7, 27, 30).</p>     <p align="justify">Se pueden encontrar tres tipos de simbiosis con    plantas leguminosas y no leguminosas, de acuerdo al    tipo de microorganismo simbionte que fije el nitr&oacute;geno:    <i>Frankia, Rhizobium, Cianobacterium</i>. Solo <i>Frankia</i>,    tiene relaciones simbi&oacute;ticas con numerosas familias    de plantas y es responsable del 15% del nitr&oacute;geno    biol&oacute;gico fijado en el mundo (18, 28, 31).</p>     <p align="justify">La asociaci&oacute;n de <i>Frankia</i> con plantas le&ntilde;osas,    como el aliso, se constituye en una de las simbiosis    m&aacute;s representativas que tiene este actinomiceto fijador;   distintos autores reportan en varias especies de <i>Alnus</i>    efectos favorables de la luz y la aireaci&oacute;n sobre la    nodulaci&oacute;n y la fijaci&oacute;n del nitr&oacute;geno. Este proceso    biol&oacute;gico es influido por varios factores ambientales tales como el pH y la aireaci&oacute;n, as&iacute; como el N<sub>2</sub> que    participa en la combinaci&oacute;n (28, 34).</p>     <p align="justify">Es de singular importancia los requerimientos de    micronutrientes para todos estos procesos en    leguminosas y en actinorrizas; el desarrollo nodular y    la fijaci&oacute;n requieren de micronutrientes como Co, B,   Mo, cobre (Cu), hierro (Fe) y n&iacute;quel (Ni); los tres    primeros pueden limitar la fijaci&oacute;n de nitr&oacute;geno en el    campo. Las limitaciones de micronutrientes en plantas    actinorrizadas han sido menos estudiadas, en especial    Mo, como componente esencial de la enzima    nitrogenasa, el B como estabilizador de las cubiertas    del heterocisto en la membrana, principal barrera    protectora para la nitrogenasa y el Co en formaci&oacute;n    de coenzimas de la vitamina B12 dentro de los end&oacute;fitos    de los n&oacute;dulos radiculares en algunas especies (19).</p>     <p align="justify">La interacci&oacute;n <i>frankia</i>-micorriza-aliso es una    relaci&oacute;n tripartita sin&eacute;rgica que beneficia a todo el    sistema, aportando nutrientes y un ambiente favorable    para todo el sistema silvopastoril. As&iacute; mismo, el lograr    un adecuado nivel de micronutrientes en el suelo    permite el aprovechamiento pleno de estas relaciones    simbi&oacute;ticas mutualistas, que contribuyen a la    sostenibilidad del sistema; sin embargo su aplicabilidad    en nuestro medio es a&uacute;n incipiente y poco utilizada.   Este tipo de interacciones sin&eacute;rgicas, podr&iacute;an ser una    estrategia para el establecimiento de sistemas    silvopastoriles que busquen preservar los recursos   naturales y conservar el medio ambiente.     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">      <p align="justify"><i><b>Frankia y las plantas actinorr&iacute;zicas</b></i></p>     <p align="justify"><i>Frankia </i>es un g&eacute;nero de microorganismos llamado   bacteria filamentosa o actinomiceto capaz de inducir    la formaci&oacute;n de n&oacute;dulos radiculares fijadores de    nitr&oacute;geno atmosf&eacute;rico en algunas angiospermas no    leguminosas, denominadas plantas actinorr&iacute;zicas. Estas    se comportan como pioneras en el desarrollo    sucesional de comunidades vegetales en suelos pobres en nitr&oacute;geno, suelos degradados y erosionados, suelos    de baja fertilidad o en suelos disturbados (como    erupciones volc&aacute;nicas e incendios); adem&aacute;s, pueden    contribuir a aumentar los niveles de nitr&oacute;geno en los  sistemas agroforestales (3, 26, 25).</p>     <p align="justify">Las plantas actinorr&iacute;zicas se adaptan a muy diversos    ecosistemas y a condiciones ambientales extremas    como suelos salinos, &aacute;ridos, terrenos pantanosos, son    de alta resistencia a medios hostiles y es as&iacute; que en los    per&iacute;odos glacial y post-glacial fueron muy abundantes    en Am&eacute;rica del Norte y en Europa donde colonizaron    los dep&oacute;sitos glaciales pobres en nitr&oacute;geno y aceleraron    el desarrollo del suelo con incorporaci&oacute;n de materia    org&aacute;nica rica en N. As&iacute; mismo, se han encontrado    evidencias f&oacute;siles del Pleistoceno del &aacute;rbol aliso cuyos    n&oacute;dulos albergaban actinomicetos en su interior. Sin    embargo no fue sino hasta 1978 que se logr&oacute; aislar y    cultivar el actinomiceto <i>Frankia </i>y se design&oacute; a estas    plantas como actinorrizales (1,16, 32).</p>     <p align="justify"><i>Frankia</i> es una bacteria microaerof&iacute;lica y dentro    de las ves&iacute;culas, en los n&oacute;dulos que forma, se encuentra    la nitrogenasa, enzima responsable de la    transformaci&oacute;n de N<sub>2</sub> de la atm&oacute;sfera en NH3    asimilable por las plantas. La <i>Frankia</i> se torna aerobia    cuando se le proporciona nitr&oacute;geno combinado (NH3)    en el medio de cultivo (4, 9, 36).</p>     <p align="justify">La cantidad de N fijado anualmente en el aliso    <i>(Alnus sp.)</i> en simbiosis con <i>Frankia</i> var&iacute;a de manera    importante seg&uacute;n las especies, el clima y las t&eacute;cnicas    aplicadas por los investigadores, pero puede ubicarse    en un promedio de 60 a 320kg de N/ha/a&ntilde;o y en    algunos casos a llegado a los 780kg de N en un per&iacute;odo de cinco a&ntilde;os en condiciones de campo, esta capacidad    var&iacute;a con las condiciones clim&aacute;ticas (9, 10, 17).</p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><b>Definici&oacute;n, taxonom&iacute;a y funcionamiento del  actinomiceto <i>Frankia</i></b></p>     <p align="justify">La taxonom&iacute;a del g&eacute;nero se debe a Becking, quien    propuso que el nombre Frankia resurgiera en honor    del microbi&oacute;logo suizo A. B. Frank, quien acu&ntilde;&oacute; el    t&eacute;rmino simbiosis; as&iacute; mismo, coloc&oacute; al g&eacute;nero en la    familia <i>Frankiaceae.</i> Actualmente no se han definido    claramente las especies (36).</p>     <p align="justify">La simbiosis formada por la bacteria <i>Frankia</i> y el    n&oacute;dulo radical de la planta se conoce con el t&eacute;rmino    de actinorriza. Se han descrito en la actualidad    alrededor de 200 especies de angiospermas,    distribuidas en ocho familias bot&aacute;nicas y 25 g&eacute;neros que pertenecen a estas familias de angiospermas y    que tienen simbiosis con <i>Frankia</i>. Estas familias son:    <i>Betulaceae</i> (un g&eacute;nero:<i> Alnus</i>), <i>Casuarinaceae</i> (4),   <i>Coriaraceae</i> (1), <i>Dasticaceae</i> (1), <i>Elaeagnaceae</i>    (3), <i>Myricaceae</i> (2), <i>Rhamnaceae </i>(7) y <i>Rosaceae</i>    (6). Existen plantas actinorrizas en todos los    continentes, excepto en la Ant&aacute;rtida, que son    portadoras de n&oacute;dulos radicales fijadores de N<sub>2</sub>    formados por <i>Frankia</i>. Este hecho muestra una de    las grandes diferencias que existen entre Frankia y    la bacteria simbi&oacute;tica fijadora de N<sub>2</sub>, <i>Rhizobium</i>, cuyos    g&eacute;neros hospederos pertenecen en su mayor&iacute;a a la familia de las leguminosas (7, 12, 14).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><i>Frankia</i> es un procarionte gram-positivo con hifas    o filamentos septados, con una composici&oacute;n de su    ADN de 70% de guanina m&aacute;s citosina. En cuanto a    su morfolog&iacute;a, es un organismo complejo, presenta    un crecimiento pleom&oacute;rfico; es decir, crecen en    forma de filamentos y como la mayor&iacute;a de los    actinomicetos, las hifas se diferencian en    esporangios. Estos contienen en su interior gran    cantidad de esporas en estado latente que germinan    para formar hifas cuando encuentran condiciones    ambientales adecuadas (16, 34, 35).</p>     <p align="justify">Las hifas tambi&eacute;n pueden diferenciarse para formar    una estructura que constituye un rasgo sobresaliente,   la ves&iacute;cula. Esta estructura est&aacute; especializada en la    fijaci&oacute;n de N<sub>2</sub> atmosf&eacute;rico y se desarrolla como un    hinchamiento de las hifas ramificadas lateralmente, es    redonda y de pared gruesa; la funci&oacute;n de la ves&iacute;cula,   es proteger a la nitrogenasa del efecto negativo del O2. A mayor concentraci&oacute;n de ox&iacute;geno en el medio, el    grosor de la pared envolvente (formada por capas de    l&iacute;pidos) tambi&eacute;n aumenta y las ves&iacute;culas se observan    con mayor refringencia al microscopio. En la Frankia    de la Casuarina, se presenta la hidrogenasa, tanto en    cultivo como en simbiosis. Esta hidrogenasa recicla el    hidr&oacute;geno que produce la nitrogenasa al reducir los    protones, incrementando la eficiencia de la nitrogenasa.   Dicha enzima, requiere de n&iacute;quel para el funcionamiento; cuando se agrega n&iacute;quel al medio de    cultivo, se incrementa la toma de H2, pero no su    desprendimiento (34, 36).</p>      <p align="justify">En la simbiosis, <i>Frankia</i> provee a la planta una   fuente de N, y la planta provee al <i>Frankia</i> una fuente    de carbono. El costo energ&eacute;tico de la fijaci&oacute;n biol&oacute;gica    de N<sub>2</sub> se puede estimar de la utilizaci&oacute;n del carbohidrato    de la planta, los c&aacute;lculos demuestran que una planta    consume 12g de carbono (C) org&aacute;nico por gramo de    N<sub>2</sub> fijado, donde las fuentes de C utilizadas por<i> Frankia</i>    para su crecimiento y desarrollo generalmente son    diversas incluyendo los &aacute;cidos grasos de cadena corta    tales como el propionato y el acetato; &aacute;cidos grasos    derivados del tween, intermediarios del ciclo del &aacute;cido    c&iacute;trico tales como el succinato y el malato y algunos&aacute;cidos org&aacute;nicos como el piruvato. La reducci&oacute;n    enzim&aacute;tica del N<sub>2</sub> por parte de la nitrogenasa requiere    una inversi&oacute;n grande de energ&iacute;a para la asimilaci&oacute;n    del amonio, producto de la fijaci&oacute;n del N<sub>2</sub> que se lleva    a cabo por el sistema glutamino sintetasa (15, 26, 36).</p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><b>Fijaci&oacute;n de N<sub>2</sub> atmosf&eacute;rico por Frankia en  simbiosis</b></p>     <p align="justify">El desarrollo de fijaci&oacute;n de N<sub>2</sub> simbi&oacute;tico envuelve    m&uacute;ltiples procesos que se encuentran en los    compartimentos subcelulares endosimbi&oacute;ticos. Los    niveles de la fijaci&oacute;n dependen de una fuente continua    de carbohidratos suministrados a los n&oacute;dulos de la    ra&iacute;z; sin embargo, la baja disponibilidad de cualquier    elemento esencial reduce dr&aacute;sticamente el vigor de    la planta y al mismo tiempo reducir&aacute; los niveles de    fijaci&oacute;n de N<sub>2</sub>. Hay muchos factores limitantes de la    simbiosis, pero presumiblemente los m&aacute;s importantes    son los tipos de suelo, la luz, la temperatura, el agua,    los elementos minerales. Adem&aacute;s, la simbiosis tiene otro papel ecol&oacute;gico, incrementa la productividad de    muchas comunidades vegetales vecinas al incorporar    N al suelo a trav&eacute;s de la hojarasca que cae al mismo,   transfiere parte del N<sub>2</sub> que ellas fijan hacia las plantas    vecinas a trav&eacute;s de la red subterr&aacute;nea de hifas de    los hongos micorriz&oacute;genos que van de unas plantas    a otras (7, 9, 28).</p>     <p align="justify">La infecci&oacute;n de las ra&iacute;ces por parte del <i>Frankia</i>    se hace por v&iacute;a pelos radiculares, alterando su    estructura, donde entra en las c&eacute;lulas corticales    causando la formaci&oacute;n de n&oacute;dulos que se originan en    el periciclo. Los n&oacute;dulos formados tienen una anatom&iacute;a    interna similar a la de ra&iacute;ces laterales con un cilindro    cortical del tejido fino vascular, presentan hifas    filamentosas, ramificadas y septadas. Estos son    estructuras coraloides con muchos l&oacute;bulos; cada l&oacute;bulo    es una ra&iacute;z lateral modificada y el tama&ntilde;o var&iacute;a con la    planta de la que se trate y es muy com&uacute;n encontrar en    el campo n&oacute;dulos de 3 a 5cm de di&aacute;metro y pueden    llegar a 8cm de di&aacute;metro, crecen en simbiosis radicular    y a poca profundidad del suelo, indicando su car&aacute;cter aer&oacute;bico (1, 34, 36).</p>     <p align="justify"><i>Franklin et al</i> (17) estudiaron el desarrollo de n&oacute;dulos    y la fijaci&oacute;n de N<sub>2</sub> en el <i>Alnus glutinosa</i> bajo    condiciones <i>in vitro</i> y en campo y aplicaron N a    diferentes niveles. La presencia de n&oacute;dulos se    considera evidencia del proceso. Este estudio encontr&oacute;    que los n&oacute;dulos pueden aparecer entre la segunda y la    tercera semana posterior a la germinaci&oacute;n; donde se encontr&oacute; que adiciones de 15-30 ppm de nitrato a la    soluci&oacute;n nutriente nitrato- N de las plantas    experimentales, tuvo un efecto estimulante y aument&oacute;    en el peso del n&oacute;dulo mientras que con 50-100 ppm,    alta concentraci&oacute;n de N, deprimi&oacute; la nodulaci&oacute;n y se    redujo el n&uacute;mero de n&oacute;dulos. Se concluye, que la    eficiencia en la fijaci&oacute;n en los <i>Alnus glutinosa </i>nodulados se puede afectar por una alta presencia de    materia org&aacute;nica y/o la aplicaci&oacute;n de N.</p>     <p align="justify">Por otro lado, el genotipo del anfitri&oacute;n controla la    morfolog&iacute;a del n&oacute;dulo. La planta puede afectar este    control regulando los pasos dominantes del desarrollo    del n&oacute;dulo a trav&eacute;s de los siguientes mecanismos en    simbiosis: 1) reconocimiento del <i>Frankia</i> espec&iacute;fico    al momento de la infecci&oacute;n, 2) supresi&oacute;n selectiva de    los genes de defensa del anfitri&oacute;n, 3) disposici&oacute;n de un    ambiente protector para el funcionamiento de la    nitrogenasa, 4) control del metabolismo del n&oacute;dulo    especialmente al regular los niveles de la glutamina    sintasa, controlando la exportaci&oacute;n del amon&iacute;aco o    controlando los niveles del ATP requeridos para la    fijaci&oacute;n de nitr&oacute;geno, y 5) regulando la s&iacute;ntesis de los    compuestos del carb&oacute;n para la utilizaci&oacute;n por el microsimbionte (20, 24, 28).</p>     <p align="justify">Es as&iacute; como, el patr&oacute;n del n&oacute;dulo en el sistema de    la ra&iacute;z es controlado por un proceso autoregulatorio    que se induce r&aacute;pidamente despu&eacute;s de la inoculaci&oacute;n    con <i>Frankia</i>. La nodulaci&oacute;n se inicia en la ra&iacute;z cerca    de la primera semana despu&eacute;s de la inoculaci&oacute;n, y la    anatom&iacute;a madura del n&oacute;dulo se alcanza en cerca de    dos semanas despu&eacute;s de la inoculaci&oacute;n. El n&uacute;mero final de n&oacute;dulos y la biomasa del n&oacute;dulo, son    modulados por un segundo mecanismo que est&aacute;    relacionado con el estado de N en la planta. La    fijaci&oacute;n del N<sub>2</sub> se puede detectar (como actividad de    la reducci&oacute;n del acetileno) la tercera semana despu&eacute;s    de la inoculaci&oacute;n, donde el desarrollo del n&oacute;dulo en    el sistema entero de la ra&iacute;z se regula, hasta cuando    la concentraci&oacute;n de N es m&aacute;xima (24, 28).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Por otro lado, Gentili y Huss-Danell (20), estudiaron    los efectos del nitrato de amonio, del fosfato y de sus    interacciones en la nodulaci&oacute;n de actinorriza infectados    intercelularmente en plantas de la familia    <i>Rhamnaceae</i>. Se aplicaron diversas concentraciones    de N y de P en las plantas, para determinar si los    efectos de N y de P eran locales o sist&eacute;micos. De 6 a 10 semanas despu&eacute;s de la inoculaci&oacute;n con <i>Frankia</i>,    los resultados mostraron que un alto nivel de P ten&iacute;a    un est&iacute;mulo sist&eacute;mico en el n&uacute;mero de n&oacute;dulos y su    biomasa. Se concluy&oacute; que la nodulaci&oacute;n es regulada    por nutrientes como el nitr&oacute;geno y el f&oacute;sforo.     <p align="justify">      <p align="justify"><b>Interacci&oacute;n <i>Frankia </i>- micorrizas</b></p>     <p align="justify"> La simbiosis realizada por los hongos    micorriz&oacute;genos es mucho m&aacute;s antigua que la fijaci&oacute;n    de N<sub>2</sub>, algunas l&iacute;neas de evidencia sugieren que estos    se originaron 400-500 millones de a&ntilde;os atr&aacute;s. Estos    son caracter&iacute;sticos de la gran mayor&iacute;a de plantas    terrestres contempor&aacute;neas y extintas, abarca un grupo    monofil&eacute;tico que (seg&uacute;n lo deducido de divergencia    del rDNA 16S) se origin&oacute; en el mismo per&iacute;odo que las    plantas terrestres. La simbiosis de leguminosa- <i>Rhizobium</i> y el actinorriza se originaron 60 - 70    millones de a&ntilde;os en el Cret&aacute;ceo cuando divergieron    las familias principales de la angioesperma y los suelos    eran pobres en N (7).</p>     <p align="justify"> Los an&aacute;lisis de hongos micorriz&oacute;genos y n&oacute;dulos    fijadores de N<sub>2</sub> sugieren que las plantas tienen un    sistema universal para monitorear sus afinidades    microbianas que pueden ser sin&eacute;rgicas, mutuas o    antag&oacute;nicas; adem&aacute;s dependiente de las condiciones    ambientales y las caracter&iacute;sticas gen&eacute;ticas individuales    de organismos en interacci&oacute;n. Estas asociaciones    fueron importantes para la evoluci&oacute;n en beneficio de    interacciones microbiales que contribuyen en grandes proporciones al potencial adaptativo de las plantas    terrestres. Asimismo, en la simbiosis micorriza y    n&oacute;dulo (es decir <i>Frankia, Rhizobium y    Bradyrhizobium</i>) se obtiene f&oacute;sforo para la planta    por parte del hongo micorriz&oacute;geno, adem&aacute;s de    beneficios para el sistema nitrogenasa en la fijaci&oacute;n    de N<sub>2</sub> del otro simbionte, dando por resultado niveles    altos de fijaci&oacute;n y por lo tanto un aumento de N de la    planta, promoviendo as&iacute;, el crecimiento vegetal, el    desarrollo micorrizal y un ambiente m&aacute;s competitivo   para los pat&oacute;genos (11, 14, 23).</p>     <p align="justify">Los resultados de una investigaci&oacute;n sobre el efecto    de interacciones de las especies <i>Casuarina    cunninghamiana, C. equisetifolia, C. glauca, y C.   junghuniana</i>, con <i>Frankia</i> y el hongo micorriz&oacute;geno    <i>Glomus fasciculatum</i> bajo condiciones deficientes de    N, mostraron que la inoculaci&oacute;n de las cuatro especies    de <i>Casuarina </i>con <i>Frankia</i> di&oacute; pocas diferencias    significativas en el crecimiento mientras esas    diferencias que fueron observadas por la presencia o    la ausencia de <i>Glomus.</i> Los efectos sobre el    crecimiento en biomasa vegetal y la colonizaci&oacute;n de    las ra&iacute;ces fueron mayores para las especies de    <i>Casuarina</i> inoculadas con Frankia y <i>Glomus    fasciculatum</i>. La efectividad de la fijaci&oacute;n de nitr&oacute;geno    era similar para las plantas inoculadas con <i>Frankia</i>,    s&oacute;lo, donde sobresali&oacute; la <i>C. equisetifolia</i>, siendo tres    veces m&aacute;s efectiva en la fijaci&oacute;n de N. Sin embargo,    esta efectividad m&aacute;s alta no fue reflejada en el mayor    crecimiento de la <i>C. equisetifolia</i> porque un peso m&aacute;s    peque&ntilde;o de n&oacute;dulos fue producido por la planta (22).</p>     <p align="justify">La relaci&oacute;n simbi&oacute;tica entre la planta, la micorriza    y <i>Frankia</i> se llama una relaci&oacute;n tripartita y es una    comunidad compleja, de varias cepas de organismos    que protegen y se apoyan. Barbas<i> et al</i> (2),    estudiaron la funci&oacute;n de los n&oacute;dulos de <i>Frankia</i> en la ra&iacute;z de varios <i>Alnus</i> en la fijaci&oacute;n de nitr&oacute;geno y    su papel positivo en el crecimiento de la planta en el    laboratorio y en el campo; como resultado se obtuvo    que la simbiosis de <i>A. glutinosa, y de A. incana</i>  hacen interelaci&oacute;n tripartita EM (hongo ectomicorriz&oacute;geno), AM (hongo endomicorriz&oacute;geno)    y <i>Frankia</i>. As&iacute; mismo, una investigaci&oacute;n sobre el    papel de las asociaciones tripartitas entre el <i>Frankia</i>,    <i>Alpova diplophloeus</i> (hongo ectomicorriz&oacute;geno) y    el <i>Alnus tenuifolia</i> en crecimiento, fijaci&oacute;n de N<sub>2</sub>,    formaci&oacute;n ectomicorrizal y la adquisici&oacute;n mineral del    <i>A. tenuifolia</i>, reporta que las plantas del semillero    que crecieron en los potes con una mezcla de suelo    basal con perlita despu&eacute;s de la inoculaci&oacute;n dual con    el <i>Frankia </i>y del A. <i>tenuifolia</i> ten&iacute;an los n&oacute;dulos    m&aacute;s pesados de la ra&iacute;z en peso seco, y demostraron    la capacidad fijaci&oacute;n de N<sub>2</sub> m&aacute;s grande medida por    la reducci&oacute;n del acetileno. La <i>Alpova diplophloeus</i>  cuando se inocul&oacute; junto con <i>Frankia</i> contribuy&oacute; al    mayor crecimiento del <i>Alnus tenuifolia</i> (2, 8, 33).</p>      <p align="justify">Otro estudio examina el efecto de <i>Frankia</i>,   macronutrientes, micronutrientes, hongos    micorriz&oacute;geno, y <i>Pseudomonas</i> sp. fluorescentes,   durante el sembrado-crecimiento-germinaci&oacute;n, en la    biomasa total, peso nodular, y fijaci&oacute;n de N<sub>2</sub> del aliso rojo (<i>Alnus rubra Familia Betulaceae</i>) y el laurel    pegajoso (<i>Ceanothus velutinus Familia Rhamnaceae</i>)    bajo condiciones de invernadero. Las semillas de aliso    rojo que tuvieron <i>Frankia</i> y macronutrientes    produjeron mayor biomasa y mayor fijaci&oacute;n de N<sub>2</sub> que    las semillas crecieron sin adiciones; agregando el    hongo ectomicorriz&oacute;geno (EM), <i>Alpova diplophleus</i>,   increment&oacute; la fijaci&oacute;n de N<sub>2</sub> en un 33% m&aacute;s que el    obtenido con Frankia y macronutrientes. Frankia,    macronutrientes, y hongos micorriz&oacute;genos juntos    incrementaron la fijaci&oacute;n de N<sub>2</sub> en un 136% por encima    del control. Adicionando s&oacute;lo micronutrientes a<i>Frankia </i>y macronutrientes; se redujo la fijaci&oacute;n de    N<sub>2</sub> a la mitad. La presencia de hongos micorriz&oacute;genos    permiti&oacute; amortiguar este efecto negativo (33).</p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><b>Interacci&oacute;n <i>Frankia</i> - Molibdeno (Mo)</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Los minerales del suelo se clasifican de acuerdo a    criterios cuantitativos y se dividen en tres grupos. En    el primer grupo carb&oacute;n (C), ox&iacute;geno (O), hidr&oacute;geno    (H), nitr&oacute;geno (N), f&oacute;sforo (P), potasio (K), calcio   (Ca), magnesio (Mg) y el azufre (S) son asignados   como macronutrientes, por ser necesarios en   cantidades m&aacute;s altas; mientras que hierro (Fe),   manganeso (Mn), zinc (Zn), cobre (Cu), n&iacute;quel (Ni),   boro (B), molibdeno (Mo) y cloro (Cl) son asignados   como micronutrientes. El sodio (Na), silicio (Si) y   cobalto (Co) son asignados como elementos   beneficiosos porque estimulan el crecimiento de   algunas plantas, no siendo esenciales, o porque son   esenciales solamente para una cierta especie vegetal (9).</p>     <p align="justify">Los micronutrientes ani&oacute;nicos son el B, el Mo y el   Cl. El Mo es parte importante para el funcionamiento   de las enzimas del metabolismo del N y del ajuste del   N<sub>2</sub> atmosf&eacute;rico para el <i>Rhizobium </i>y actinorrizas. La   deficiencia del Mo puede aparecer en suelos &aacute;cidos.   En leguminosas para fijar nitr&oacute;geno y el desarrollonodular requiere de micronutrientes como Co, B, Mo,   Cu, Fe y Ni, tanto como macronutrientes; los primeros   tres pueden limitar la fijaci&oacute;n de N en el campo (9,   33).</p>     <p align="justify">El Mo es un constituyente de la nitrogenasa, as&iacute;    que una deficiencia de Mo en el medio causa un   efecto directo y negativo en la fijaci&oacute;n del N<sub>2</sub>. Sin   embargo, el Fe (que tambi&eacute;n es un elemento   constituyente de la nitrogenasa) no tiene un efecto   directo sobre la fijaci&oacute;n del nitr&oacute;geno cuando este   escasea en el medio. El complejo de la enzima   nitrogenasa se puede separar en dos componentes,   la prote&iacute;na ferredoxina y el complejo proteico   Molibdoferrato (MoFe) (15, 31).</p>     <p align="justify">En la investigaci&oacute;n referenciada anteriormente de   Rojas <i>et al</i> (33), se encontr&oacute; que la actividad de la   nitrogenasa en semillas de aliso rojo fue influenciada   por interacciones entre macronutrientes y el hongo   micorrizal (<i>Alpova</i>). Contrario a las expectativas,   adicionando micronutrientes a la combinaci&oacute;n de   <i>Frankia</i> y macronutrientes esencialmente, se elimin&oacute;   el efecto ben&eacute;fico de esas adiciones. El efecto   negativo de micronutrientes en la actividad de la   nitrogenasa fue inesperado; Co, Cu, Fe, B, Mo y Ni   se sabe que son importantes en la formaci&oacute;n nodular   y la actividad de la nitrogenasa de leguminosas, se asumi&oacute; que esa fertilizaci&oacute;n con micronutrientes pudo   ser sustituida al menos en parte por hongos   micorriz&oacute;genos y Pseudomonas. No es claro porque   ocurri&oacute; lo opuesto. Los micronutrientes fueron   adicionados en medidas recomendadas para <i>Alnus   spp</i>, pero cantidades recomendadas de fertilizaci&oacute;n   son a menudo considerablemente superiores que   aquellas que ocurren naturalmente y pueden resultar   en respuestas negativas por toxicidad, es posible que   la concentraci&oacute;n relativamente amplia adicionada   como fertilizante induzca un desbalance biol&oacute;gico en   semillas en la rizosfera, a lo mejor favoreciendo el   crecimiento competitivo de microorganismos   pat&oacute;genos. El efecto amortiguante aparente de   <i>Alpova</i> puede ser debido a la habilidad de los hongos   para proteger la planta por incrementar esa tolerancia   a toxinas y a pat&oacute;genos del suelo (33).     <p align="justify">      <p align="justify"><b>Interacci&oacute;n <i>Frankia</i> - Boro (B)</b></p>     <p align="justify">El Boro (B) es un microelemento esencial para el   desarrollo de plantas, diatomeas y una cierta especie   de algas; se absorbe en la forma &aacute;cido b&oacute;rico y es   importante para el metabolismo y el transporte de   los gl&uacute;cidos, metabolismo de &aacute;cidos nucleicos y la   lignificaci&oacute;n de las paredes celulares. Es deficiente   en los suelos de lixiviaci&oacute;n intensa y de baja calidad.   El B posee varias funciones importantes en la   estructura de la pared de la c&eacute;lula, membranas y   reacciones, reproducci&oacute;n, crecimiento del tubo del   polen, y germinaci&oacute;n del polen, fijaci&oacute;n de N<sub>2</sub>,   asociados-membrana, entre otros (4, 5, 10).</p>     <p align="justify">La fijaci&oacute;n biol&oacute;gica del nitr&oacute;geno es una reacci&oacute;n   basada en la acci&oacute;n de la enzima nitrogenasa, la cual   es altamente sensible al ox&iacute;geno, por lo cual el   mantenimiento de las estructuras que la protegen del   ox&iacute;geno es crucial para el proceso. Es as&iacute;, que en   una investigaci&oacute;n realizada en cianobacterias   <i>heterocystous</i> requieren B cuando est&aacute;n   desarrolladas bajo condiciones de fijaci&oacute;n de N<sub>2</sub>, como   estabilizador de las cubiertas del heterocisto, principal   barrera protectora para la nitrogenasa, donde controla   el acceso del ox&iacute;geno. As&iacute;, en cianobacterias se pudo   comprobar que el B es necesario para el crecimiento   de las mismas cuando se las cultiva en ausencia de   nitr&oacute;geno combinado (o sin otra fuente de nitr&oacute;geno   que el N<sub>2</sub> atmosf&eacute;rico), detect&aacute;ndose en esos casos,   una inhibici&oacute;n de la actividad nitrogenasa tan s&oacute;lo   dos horas despu&eacute;s de retirar el B del medio de cultivo,   este efecto est&aacute; originado por la desestabilizaci&oacute;n de   una de las cubiertas del heterocisto. A diferencia de   <i>Rhizobium</i>, pero de forma an&aacute;loga a las   cianobacterias, bacterias <i>Frankia</i> poseen como   diferencia las ves&iacute;culas, estructuras esf&eacute;ricas   multicelulares especializadas rodeadas de una c&aacute;psula   que consiguen resistir hasta una concentraci&oacute;n de   ox&iacute;geno del 80%, ya que presentan una cubierta   multilaminar de naturaleza lip&iacute;dica, similar a la de los   heterocistos, concretamente l&aacute;mina de glucol&iacute;pidos,   principal barrera contra la difusi&oacute;n ox&iacute;geno,   susceptible de interaccionar con B (4, 5, 6).</p>     <p align="justify">En la simbiosis <i>Rhizobium</i>-leguminosas, la   relaci&oacute;n B-Ca2+, el Ca2+ juega un papel preponderante   en los procesos de iniciaci&oacute;n del n&oacute;dulo; sin embargo,   principalmente en el ambiente endof&iacute;tico. Si bien el   B no parece esencial para la bacteria, la estructura   del n&oacute;dulo y las interacciones planta-bacteria; si se   ha encontrado que durante varias etapas del   desarrollo del n&oacute;dulo de la ra&iacute;z de la leguminosa, como   son la formaci&oacute;n de la pared celular del n&oacute;dulo y   estructura de la membrana, el desarrollo del hilo de   rosca de la infecci&oacute;n e invasi&oacute;n del n&oacute;dulo y desarrollo   simbiosoma; son procesos que pueden llegar a suprimirse debido a la deficiencia de B en la planta del anfitri&oacute;n (4, 6).</p>     <p align="justify">En un estudio realizado por Bola&ntilde;os et al (4) sobre   el papel del B en cultivos de <i>Frankia</i> crecidos con y   en ausencia de B, los resultados al microscopio &oacute;ptico   muestran que los cultivos crecidos en presencia de   B presentan unas hifas de longitud considerablemente   mayor que las de aquellos crecidos en ausencia de   B, que son m&aacute;s cortas y de aspecto m&aacute;s fr&aacute;gil, las   ves&iacute;culas y los esporangios aparecen con una   estructura totalmente desorganizada; adem&aacute;s, el   n&uacute;mero de ves&iacute;culas diferenciadas parece menor en   estos &uacute;ltimos. As&iacute;, en tanto que las hifas en presencia   de B presentan un citoplasma y una septaci&oacute;n normal,   las hifas de los cultivos crecidos en ausencia de B   carecen de septos definidos as&iacute; como aparentemente,   de citoplasma. Adem&aacute;s, posiblemente la ausencia   de B disminuye la estabilidad de la pared celular al   no poder generarse los enlaces ester entre el borato   y los grupos cis-diol de las mol&eacute;culas constitutivas   de la pared celular. Tambi&eacute;n debe de influir en la   diferenciaci&oacute;n y funcionalidad de las ves&iacute;culas, ya   que en condiciones de fijaci&oacute;n y ausencia de B la   cantidad de prote&iacute;nas no se incrementa respecto al   valor inicial, lo que indica que hay una menor   disponibilidad de nitr&oacute;geno reducido, el cual ha de   ser proporcionado por las ves&iacute;culas. Dicha   funcionalidad, posiblemente se vea alterada debido   a una desestabilizaci&oacute;n de la cubierta protectora   contra el ox&iacute;geno, lo que determina, una vez m&aacute;s, un papel estructural para el B (4).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"> Plantas de los<i> Discaria trinervis</i> (Familia <i>Rhamnaceae</i>) fueron inoculadas con <i>Frankia </i>BCU110501 que hab&iacute;a sido cultivado previamente   libre de B o con B y con N<sub>2</sub> o con amonio (+N)   como fuente del N. Dos meses despu&eacute;s de la    inoculaci&oacute;n, el &iacute;ndice m&aacute;s alto de infecci&oacute;n fue el   obtenido en las plantas cultivadas con B e inoculadas   con <i>Frankia.</i> La tasa de nodulaci&oacute;n fue reducida en   plantas deficientes de B, adem&aacute;s des ser estos n&oacute;dulos no funcionales. Por otra parte, la fluorescencia de los cultivos positivos a naranja de   acridina, indic&oacute; que la deficiencia de B provoc&oacute;   cambios en las c&eacute;lulas. Estos resultados demuestran   la necesidad que se tiene del B, no solamente para   establecer una relaci&oacute;n simbi&oacute;tica <i>Discaria </i>con <i>Frankia</i> BCU110501, sino para la capacidad   vegetativa del crecimiento y de la infecci&oacute;n de   <i>Frankia</i>; adem&aacute;s el B es esencial cuando las bacterias se cultivan limitando el N (4, 6).</p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><b>Interacci&oacute;n <i>Frankia</i> - Cobalto (Co)</b></p>     <p align="justify">El Cobalto (Co) es necesario para los   microrganismos de los procari&oacute;ticos capaces de fijar   el nitr&oacute;geno atmosf&eacute;rico, beneficiando al crecimiento   y a la producci&oacute;n de plantas con procesos de fijaci&oacute;n   de N<sub>2</sub>. Es as&iacute;, en investigacion realizada con ensayos   enzim&aacute;ticos se identificaron coenzimas B12 en n&oacute;dulos   de <i>Alnus rubra</i>; <i>Ceanothus velutinus</i> y un variedad   de especies leguminosas, donde es muy probable que   el papel esencial del Co en la nutrici&oacute;n de organismos   fijadores de N<sub>2</sub> se relacione al menos en parte con el   papel de la coenzima(s) de la vitamina B12 las que   contienen Co como un componente esencial de su   estructura (9, 17).</p>     <p align="justify"><i>Franklin et al</i> (17) realizaron una investigaci&oacute;n   acerca de los efectos del aumento de las   concentraciones de Ni, Fe y Mn sobre el crecimiento   y sobre el contenido de la clorofila, N, vitamina B12 y    Co de <i>Alnus rubra</i> en presencia y ausencia de 50 ppm de Co en el medio nutritivo. Los efectos del Mn,   Fe y Ni sobre el crecimiento tanto en presencia y   ausencia de Co no fueron estad&iacute;sticamente   significativos. A la primera cosecha a los 144 d&iacute;as, los   efectos del tratamiento con Co sobre el peso fresco y   seco de los copos de las plantas, en el contenido de   clorofila de las hojas y el contenido de N en las ramas   superiores fueron altamente significativos. Las diferencias   en muchos casos fueron muy notables. El efecto del Co   sobre el crecimiento de las plantas fue consistente en   todas las replicas. Adem&aacute;s, se encontr&oacute; que los arbustos   que crecieron sin cobalto desarrollaron clorosis aguda y   caracter&iacute;sticas de deficiencia de nitr&oacute;geno.</p>     <p align="justify">Debido a que el papel conocido del Co es asociado   como constituyente de la coenzima de la vitamina B12   en el actinomiceto Frankia, se estudio determinar si la   concentraci&oacute;n de ciertos elementos traza con   propiedades qu&iacute;micas similares al Co puede interferir   con la bios&iacute;ntesis de compuestos que contienen vitamina   B12, la cual act&uacute;a como catalizador del proceso, en   n&oacute;dulos de <i>Alnus rubra</i>. Parece l&oacute;gico postular que   metales como Mn, Fe y Ni a altas concentraciones   pueden competir con el Co en la incorporaci&oacute;n de este   elemento dentro de los compuestos B12. Esto podr&iacute;a   llevar a un una disminuci&oacute;n de la concentraci&oacute;n de   vitamina B12 y a un antagonismo entre las   concentraciones excesivas de elementos traza y Co (17).</p>     <p align="justify">El efecto del incremento de las concentraciones de   Ni fue m&aacute;s pronunciado, los n&oacute;dulos de las plantas crecieron sin Ni y con 0.05 ppm de Co, conteniendo   cerca de 130 microgramos de vitamina B12 por gramo   de n&oacute;dulos frescos. Los resultados sugieren que la   adici&oacute;n de Co en los suelos como nutriente artificial   interviene en la fijaci&oacute;n de N<sub>2</sub> simbi&oacute;tico, no s&oacute;lo por   la cantidad de Co disponible para las plantas sino   tambi&eacute;n por la concentraci&oacute;n de elementos de transici&oacute;n   en el crecimiento que pueden competir con el Co en los   procesos metab&oacute;licos donde el Co participa (17).</p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><b>Simbiosis <i>Alnus - Frankia sp.</i></b></p>     <p align="justify">En los alisos de Am&eacute;rica Latina, el primer reporte   sobre la existencia de n&oacute;dulos en las ra&iacute;ces fue   efectuado por Castellanos (1944). M&aacute;s tarde, Holdridge   (1951) mencionaba el excelente crecimiento del pasto   bajo la sombra de alisos, en raz&oacute;n de estos organismos   fijadores de nitr&oacute;geno. Budowski (1957), confirmaba   esta apreciaci&oacute;n utilizando ya el nombre de   actinomicetos para definirlos. Los n&oacute;dulos de <i>Alnus   acuminata </i>est&aacute;n concentrados en los primeros 5 cm   del perfil del suelo, pueden medir hasta 6 cm de   di&aacute;metro y forman grupos (2, 32).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">A pesar de las probables diferencias gen&eacute;ticas entre   los end&oacute;fitos de los alisos europeos y norteamericanos,   los n&oacute;dulos inducidos a partir de la inoculaci&oacute;n de  <i>Frankia</i> (cepas aisladas, n&oacute;dulos macerados y suelos   de la riz&oacute;sfera) de varias especies norteamericanas   producen n&oacute;dulos capaces de fijar nitr&oacute;geno en <i>Alnus   glutinosa.</i> El <i>Alnus acuminata</i> ha demostrado que   juega un importante papel en el incremento de los   niveles de nitr&oacute;geno en los suelos tropicales a trav&eacute;s   de n&oacute;dulos, estos fijan el nitr&oacute;geno atmosf&eacute;rico como   lo hacen los n&oacute;dulos de las especies de <i>Alnus</i> europeos,   en pl&aacute;ntulas de <i>Alnus acuminata</i> inoculadas con   algunos n&oacute;dulos macerados de esta misma especie   aumentaron su crecimiento a&eacute;reo y radical y su n&uacute;mero   de hojas en comparaci&oacute;n con los testigos sin inocular;   algunas pl&aacute;ntulas germinadas en suelos est&eacute;riles murieron diez d&iacute;as despu&eacute;s de la germinaci&oacute;n, esto   demuestra que esta especie tiene necesidad del   actinomiceto <i>Frankia alni.</i> Sin embargo, muchos   suelos forestales y agroforestales parecen estar   desprovistos del in&oacute;culo de <i>Frankia </i>(26, 32, 34).</p>     <p align="justify">El g&eacute;nero <i>Alnus</i> est&aacute; igualmente asociado con   micorrizas, esta interacci&oacute;n de organismos aparentemente   cumplen un importante papel en la absorci&oacute;n de nutrientes,   fijaci&oacute;n de nitr&oacute;geno y en la minimizaci&oacute;n de enfermedades   radicales. En <i>Alnus acuminata</i>, se encontr&oacute; que la   presencia de n&oacute;dulos de Frankia sp reduce el efecto   patog&eacute;nico de los hongos <i>Fusarium oxysporum y   Pythium sylvaticum</i> (12, 18, 32).</p>     <p align="justify">Chavarriaga (14) encontr&oacute; en un estudio sobre la   interelaci&oacute;n micorriza y Frankia sobre la acci&oacute;n del   pat&oacute;geno <i>Fusarium</i>, la presencia de ambos ejercen   un efecto obst&aacute;culo al crear un medio ambiente m&aacute;s   competitivo al pat&oacute;geno. Adem&aacute;s, dentro de los n&oacute;dulos   de la ra&iacute;z se releva la presencia de P para la planta, lo   cual tiene beneficios para el sistema de la fijaci&oacute;n N<sub>2</sub>, dando por resultado niveles altos de N en la planta lo   que promueve el crecimiento vegetal y tambi&eacute;n el   desarrollo micorrizal.</p>     <p align="justify">Asi mismo, Oliveira et al (29) encontr&oacute; en <i>alnus</i>  negro (<i>Alnus glutinosa</i>) un efecto superior en   desarrollo de los &aacute;rboles por la inoculaci&oacute;n conjunta   de <i>Glomus intrarradices</i> con <i>Frankia spp</i>. que   cuando se emplearon cada uno de los microorganismos   por separado e igualmente esta doble inoculaci&oacute;n   favoreci&oacute; el contenido de nitr&oacute;geno y f&oacute;sforo en las   hojas en suelos degradados con pH alto. Resultados   similares present&oacute; Orozco et al (30) en <i>Alnus acuminata   var acuminate,</i> al emplear conjutamente el actinomiceto   <i>Frankia spp.</i> y hongos micorriz&oacute;genos.</p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><b>Consideraciones finales</b></p>     <p align="justify">La informaci&oacute;n bibliogr&aacute;fica encontrada sobre el   aliso (<i>Alnus acuminata</i>) demuestra que es una especie   con un gran potencial para el mejoramiento del suelo y   una alternativa en los sistemas silvopastoriles en tr&oacute;pico   alto andino.</p>     <p align="justify"> Los estudios demuestran que la asociaci&oacute;n simbi&oacute;tica   de la relaci&oacute;n del aliso con microorganismos del suelo   ser&iacute;a una opci&oacute;n para el mejoramiento de suelos   erosionados y/o degradados que predominan en condiciones   tropicales por el sobrepastoreo y los monocultivos.</p>     <p align="justify">As&iacute; mismo, la revisi&oacute;n indica, que la interrelaci&oacute;n   de microelementos como el B, Co y Mo; con esta   relaci&oacute;n tripartita, de acuerdo a investigaciones   cient&iacute;ficas en otros pa&iacute;ses y de condiciones diferentes,   han demostrado su importancia en su funcionalidad,   sin embargo en los suelos &aacute;cidos tropicales   predominantes en la regi&oacute;n, se desconoce su efecto   en lo referente a aspectos b&aacute;sicos de su biolog&iacute;a,   funcionamiento y desarrollo, por lo cual es necesario   realizar estudios b&aacute;sicos y aplicados.</p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b><i>Summary</i></b></p>     <p align="justify"><i><b>The effects of the interaction Frankia - mycorrhizal fungi - microelements in the establishment   of Alder trees (Alnus acuminata) in tree grass systems</b></i></p>     <p align="justify"><i><b> Frankia is a genus of microorganisms called actinomycetes able to induce the formation of   radicular nodules that fix atmospheric nitrogen in some non-legumes angiosperms, denominated   actinorrhizal plants. The development of symbiotic fixing of N envolves multiple processes that are   carried out in endosimbiotic subcellular compartments in which Frankia produces the nodules of   the root which turn the N<sub>2</sub> in combined form. The mycorrhizal symbiosis and the nodules are   generally synergistic. They promote the vegetal growth, the multiplication of mycorrhizae producing   a more competitive atmosphere for the pathogens. It is important to consider the participation of   micronutrients like molibdenum, which is a component of the nitrogenase, since its deficiency in   the medium causes a direct and negative effect in the fixing of the N<sub>2</sub>. The boron deficiency   produces a destabilization of the protecting cover against oxygen, which considerably affects the   nodulation of the plant. Cobalt is a structural component of the coenzyme of the B12 vitamin in the   process of the fixing of the N. Nevertheless, many aspects related to these micronutrients in the   interactions and the mycorrhizal-Frankia symbiosis is unknown. It is important to determine the   effects on the microorganisms and the development of the nodules; for determining an optimum   development, however its complexity makes its effect to be unpredictable under all conditions and   for all species. Therefore, it is important to stimulate the investigation on the matter, as well as to   research on more information on the principles of the functioning, interactions, and show results   found on the use of promissory trees for tree grass systems in high tropic as the Aliso (Alnus   acuminata), a forestal species useful for solving the degradation problems of the soil and   deforestation.</b></i></p>     <p align="justify"><b>Key words: </b><i>boron, cobalt, molibdenum, fixing of N<sub>2</sub>, actinorrhizal plants, symbiosis.</i></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><b>Referencias</b></p>     <!-- ref --><p align="justify">1. Arango C, Lepineux W. Inoculaci&oacute;n de Aliso (<i>Alnus   acuminata</i>) con <i>Frankia Alni.</i> Tesis de grado, Facultad de   Agronom&iacute;a, Universidad de Caldas, Manizales, Colombia,   1994, 65 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0120-0690200600010000500001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">2. Barbas V, Papaioannou A, Orfanoudakis M. Preliminary   studies in <i>Alnus glutinosa </i>root symbiosis in the field.   Laboratory of Forest Genetics, Department of Forestry and   Natural environment, Aristotle University of Thessaloniki, Greece, 2001; 200 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0120-0690200600010000500002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">3. Benson D, Silvester W. Biology of <i>Frankia </i>strains,   actinomycete symbiontsof actinorhizal plants.   Microbiological Review 1993; 57 (2): 293-319.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0120-0690200600010000500003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">4. Bola&ntilde;os L, Bonilla I, Redondo M, Orellana M, Wall LG.   Papel del boro en el desarrollo de <i>Frankia</i>. incidencia sobre la fijaci&oacute;n biol&oacute;gica del nitr&oacute;geno en vida libre. Seminario   Perspectivas de la Fijaci&oacute;n Biol&oacute;gica de Nitr&oacute;geno en el   Umbral del Siglo XXI 2.000, Facultad de Ciencias. UAM.   Madrid, 2000&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0120-0690200600010000500004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">5. Bola&ntilde;os L, Bonilla I, Redondo-Nieto M. Relaci&oacute;n B-Ca2+   en la fijaci&oacute;n biol&oacute;gica del nitr&oacute;geno. URL: <a href="http//www.uam.es/personal-pdi/bolarios/Investigación/B-CafijN.htm" target="_blank">http//www.uam.es/personal-pdi/bolarios/Investigaci&oacute;n/B-CafijN.htm</a>. 2003.   Visitada por &uacute;ltima vez Octubre 5 de 2.004&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0120-0690200600010000500005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">6. Bola&ntilde;os L, Bonilla I, Redondo M; Wallb L. Boron requirement   in the <i>Discaria trinervis (Rhamnaceae) </i>and<i> Frankia</i> symbiotic relationship Physiologia Plantarum 2002; 115:   563&#150;570. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0120-0690200600010000500006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">7. Bosirov L, Provorov N, Tikhonovich I. Development   Genetics and evolution of simbiotic structures in nitrogenfixing nodules and arbuscular mycorrhiza. Russia research   Institute for Agricultural Microbiology. Journal Theor.   Biology 2002; 214: 215-232.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0120-0690200600010000500007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">8. Bormann BT, Okabe H, Yamanaka T. Tripartite associations   in an alder: effects of <i>Frankia </i>and<i> Alpova diplophloeus</i> on the growth, nitrogen fixation and mineral acquisition of <i>Alnus   tenuifolia</i>. Plant and Soil July 2003; 254: 179-186.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0120-0690200600010000500008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">9. Brown Kevin. Mineral nutrition and fertilization of deciduous   broadleaved tree species in British Columbia. Ministry of Forests Research Program Canadian. Forestry Division   Services Branch 1999; pp.42 &#150; 60&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0120-0690200600010000500009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">10. Brozek S, Wanic T. Impact of forest litter of <i>Alnus glutinosa </i>(L.) Gaertn, <i>Alnus incana</i> (L.) Moench, <i>Alnus viridis</i> (Chaix)   Lam. Et Dc, <i>Abies alba </i>Mill., and <i>Fagus sylvatica</i> L. on   chosen soil properties. Department of Forest Soil Science,   Agricultural University of Cracow, Poland. Electronic Journal   of Polish Agricultural Universities 2002; 5 (1).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0120-0690200600010000500010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">11. Burns T, Morton J, Redecker D. Ancestral Lineages of   Arbuscular Mycorrhizal Fungi(<i>Glomales</i>). Journal Molecular Phylogenetics and Evolution 2000; 14 (2): 276&#150;284.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0120-0690200600010000500011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">12. Carlson PJ, Dawson, JO. Soil nitrogen changes, early growth,   and response to soil internal drainage of a plantation of <i>Alnus   jorullensis</i> in the Colombian highlands. Turrialba 1985; 35   (2): 141-150.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0120-0690200600010000500012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">13. Car&uacute; M, Schwencke J. Advances in Actinorhizal Symbiosis:   Host Plant-<i>Frankia </i>Interactions, Biology, and Applications in Arid Land Arid Land Research and Management Issue   2001; 15 (4): 285 &#150; 327.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0120-0690200600010000500013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">14. Chavarriaga H. Didier Mauricio. Biological control of   Fusarium spp and other soil-borne pathogens on tree   seedlings. University of Aberdeen. Tesis Doctor. Aberdeen,   Scotland UK, 2003, 400 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0120-0690200600010000500014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">15. Dixon R, Wheeler CT. Nitrogen Fixation in Plants. Chapter   12: Assimilation of Mineral Nutrients. Chapman and Hall, New York, 1986&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0120-0690200600010000500015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">16. Eppard M, Koch C, Krumbein W, Rhiel E., Stackebrandt E,   Staley J. Morphological, physiological, and molecular characterizacion of actinomycetes isolated from dry soil,   rocks, and monument surfaces.Arch Microbiol, Germany,   1996; 166:12 &#150; 22.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0120-0690200600010000500016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">17. Franklin JF, Tarrant RF, Trappe JM Biology of Alder - Efecto   de la materia org&aacute;nica y nitr&oacute;geno en la nodulaci&oacute;n y fijaci&oacute;n   del nitrogeno en el marrubio (<i>Alnus rubra</i>). Edited Forets   service, USA Departament of Agriculture. Portland, Oregon.   1968; 292 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0120-0690200600010000500017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">18. Franklin JF, Tarrant RF, Trappe JM. Biology of Alder - El   efecto del cobalto y algunos otros metales traza sobre el crecimiento y contenido se vitamina B12 de <i>Alnus rubra</i>.   Edited Forets service, USA Departament of Agriculture.   Portland, Oregon. 1968; 292 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0120-0690200600010000500018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">19. Ganio LM, Li CY, Perry DA, Rojas NS. Interactions among   soil biology, nutrition, and performance of actinorhizal plant species in the H.J. Andrews Experimental forest of Oregon.   Rev. Applied Soil Ecology 2002; 19: 13 &#150; 26.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0120-0690200600010000500019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">20. Gentili F., Huss-Danell Kerstin. The biology of <i>Frankia</i> and   actinorhizal plants. San Diego, CA, USA: Academic Press, pp.61-81URL:<a href="http://www.blackwell-synergy.com/links/">www.blackwell-synergy.com/links/</a>   2001Visitada Octubre 5 de 2005&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0120-0690200600010000500020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">21. Gesheva Victoria. Rhizosphere microflora of some citrus as   a source of antagonistic actinomycetes. Institute of   Microbiology, Bulgarian Academy of Sciences, European   Journal of Soil Biology 2002; 38: 85 - 88.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0120-0690200600010000500021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">22. Handley L, Hooker JE, Scrimgeou CM, Tilak M, Wheeler   C. Effects of symbiosis with <i>Frankia</i> and arbuscular   mycorrhizal fungus on the natural abundance of 15N in four   species of Casuarina. Journal of Experimental Botany, 2000; 51(343): 87-297.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0120-0690200600010000500022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">23. Hodge Angela Microbial ecology of the arbuscular mycorrhiza.   Department of Biology, The University of York, FEMS Microbiology Ecology 2000; 32: 91-96.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0120-0690200600010000500023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">24. Huss-Danell K, Valverde K; Wal L.G. Regulation of   nodulation in the absence of N<sub>2</sub> is different in actinorhizal   plants with different infection pathways. Journal of   Experimental Botany, 2003; 54 (385): 1253-1258.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0120-0690200600010000500024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">25. Huss-Danell Kerstin. Actinorhizal symbioses and their N<sub>2</sub>   fixation The New Phytologist 1997; 136 (3): 375.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0120-0690200600010000500025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">26. McEwan, Neil R. Autofluorescence as a tool for monitoring   the interaction between alders and <i>Frankia</i>. Botany Department, Glasgow University, Escocia, published on   Internet Sep. 7, 1997&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0120-0690200600010000500026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">27. McEwan NR, Wheeler CT. An improved method for screening   <i>Frankia </i>viability in strain CcI3. Exp. Biol. Online 1997; 2: 13.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0120-0690200600010000500027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">28. Misra Arvind K, Verghese Susamma. <i>Frankia</i>&#150;actinorhizal   symbiosis with special reference to host&#150;microsymbiont relationship. Department of Botany, North-Eastern Hill   University, India. Current Science, 2002; 83 (4): 25.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S0120-0690200600010000500028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">29. Oliveira R S Castro P M Dodd J C Vos&aacute;tka M. Synergistic   effect of <i>Glomus intraradices </i>and<i> Frankia spp</i>. On the growth   and stress recovery of <i>Alnus glutinosa </i>in an alkalines   antropogenic sediment. United Kingdom. Chemosphere, 2005; 60(10): 1462 &#150; 1470.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0120-0690200600010000500029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">30. Orozco H Medina M Sarria P. Aislamiento y evaluaci&oacute;n de   microorganismos end&oacute;fitos de Aliso (<i>Alnus acuminata var.</i> <i>Acuminata</i>). Livestock Research for Rural Development;   17(1), 2005; URL: <a href="http://www.cipav.org.co/lrrd/lrrd17/1/cont1701.htm" target="_blank">http://www.cipav.org.co/lrrd/lrrd17/1/cont1701.htm </a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S0120-0690200600010000500030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">31. P&eacute;rez S, Torralba A. La fijaci&oacute;n del Nitr&oacute;geno por los seres   vivos: simbiosis de microorganismos fijadores con plantas no leguminosas. Seminario Fisiolog&iacute;a Vegetal. Facultad   Biolog&iacute;a Oviedo, Espa&ntilde;a, 1997, 21 pp.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0120-0690200600010000500031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">32. Restrepo U Guillermo. Infectividad y efectividad de los   actinomicetos del g&eacute;nero <i>Frankia </i>asociados con <i>Alnus</i> <i>acuminata ssp</i>. acuminata en Colombia. Cronica Forestal y   del MedioAambiente, Universidad Nacional de Colombia, 1997; 12 (1): 1 - 10.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000120&pid=S0120-0690200600010000500032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">33. Rojas NS, Perry DA, Li CY, Ganio L. Interacciones entre   biolog&iacute;a, la nutrici&oacute;n, y el funcionamiento del suelo de la especie actinorhizal de la planta en el bosque Experimental   de H.J. Andrews de Oregon. Ecolog&iacute;a Aplicada Del Suelo 2002; 19(1):13-26.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0120-0690200600010000500033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">34. Sellstedt Anita. <i>Frankia alni.</i> A symbiotic nitrogen-fixing   actinobacterium. Center for microbial ecology at University of Lyon 2003&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000122&pid=S0120-0690200600010000500034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">35. URL :<a href="http://www.genoscope.cns.fr/externe/organisme_HF.html" target="_blank">http://www.genoscope.cns.fr/externe/organisme_HF.html </a>P&aacute;gina visitada Octubre 15 de 2005.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0120-0690200600010000500035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">36. Vald&eacute;s Mar&iacute;a. La bacteria filamentosa <i>Frankia</i>. Escuela   Nacional de Ciencias Biol&oacute;gicas del Instituto Polit&eacute;cnico Nacional, Prolongaci&oacute;n de Carpio y Plan de Ayala, M&eacute;xico DF, 2002, 15 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000124&pid=S0120-0690200600010000500036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify">&nbsp;</p>      ]]></body><back>
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