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<publisher-name><![CDATA[Facultad de Ciencias Agrarias, Universidad de Antioquia]]></publisher-name>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Residuos de enrofloxacina y ciprofloxacina en músculo de pollos parrilleros]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Fluoroquinolones are antimicrobials of intensive usage in veterinary medicine. In our country enrofloxacin is employed in poultry and pig production. Ciprofloxacin, the mayor metabolite of enrofloxacin, is a useful resource in human medicine and one alternative for farm animals. Both antimicrobials were simultaneously detected in muscle of chickens naturally infected with Mycoplasma synoviae and administrated with enrofloxacin or ciprofloxacin (5mg/kg/12h oral) for 5 days. The purpose of this work was to determine the adequate slaughter moment of the animals, with good clinical conditions and acceptable residue levels. The animals were sacrificed at 5 times after treatment. The samples (200 mg) were homogenized in phosphate buffer, and extracted twice with dichloromethane. The fluoroquinolones were detected by high performance liquid chromatography with fluorescence detection at 295 nm excitation and 500 nm emission. The concentration of enrofloxacin residues was maximal at 24 h after treatment (0.073 + 0.006 ìg/ g) and was lower than the maximal limit levels established by international regulations (0.3 ìg/g). In ciprofloxacin administrated animals the superior concentration of the antimicrobial in muscle was 72 h after treatment with 0.027 + 0.015 ìg/g. The consumers and the authorities must be concern about the control of veterinary residues in different products and edible tissues of farm animals.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[micoplasmosis]]></kwd>
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<kwd lng="es"><![CDATA[HPLC]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <p><b>Residuos de enrofloxacina y ciprofloxacina en m&uacute;sculo de pollos parrilleros</b></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>Hugo Garc&iacute;a<sup>1</sup>, MV, Dr; Alejandra Magnoli<sup>2</sup>, MV; Alicia Weyers<sup>2</sup>, Lic, MSc; Laura Ugnia<sup>2</sup>, MV; Carlos L&uuml;ders<sup>1</sup>, MV, MSc; Guillermo Prieto<sup>1</sup>, MV; Carlos Errecalde<sup>1</sup>, MV; Nora Gorla<sup>3</sup>, Lic, Dra.</p>     <p><sup>1</sup>Departamento Cl&iacute;nica Animal, Facultad de Agronom&iacute;a y Veterinaria, Universidad Nacional de R&iacute;o Cuarto.</p>     <p><sup>2</sup>Departamento de salud P&uacute;blica, Facultad de Agronom&iacute;a y Veterinaria, Universidad Nacional de R&iacute;o Cuarto.</p>     <p><sup>3</sup>CONICET</p>     <p><a href="mailto:aweyers@ayv.unrc.edu.ar">aweyers@ayv.unrc.edu.ar</a></p>     <p>(Recibido: 25 julio, 2005; aceptado: 16 diciembre 2005) </p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="justify"><i><b>Resumen</b></i></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><i><b> Las fluoroquinolonas son antimicrobianos de uso intensivo en medicina veterinaria. En Argentina   la enrofloxacina es empleada en planteles av&iacute;colas y porcinos. La Ciprofloxacina, es un metabolito de   la anterior que es empleada en medicina humana y es considerada una alternativa en medicina   veterinaria. Niveles de residuos de enrofloxacina y ciprofloxacina se determinaron en forma simult&aacute;nea   en m&uacute;sculo de pollos naturalmente infectados con Mycoplasma spp. y tratados con estos antimicrobianos   (5 mg/kg/12h oral) durante 5 d&iacute;as. El objetivo de este trabajo fue establecer el momento adecuado de   sacrificio de los animales, para su comercializaci&oacute;n en buenas condiciones cl&iacute;nicas y niveles aceptables   de residuos. Se sacrificaron animales a cinco tiempos pos- tratamiento; 200 mg de m&uacute;sculo pectoral   homogeneizados en buffer fosfato se desproteinizaron, evaporaron y eluyeron por cromatograf&iacute;a l&iacute;quida   de alta presi&oacute;n con detecci&oacute;n por fluorescencia. La concentraci&oacute;n de residuos de enrofloxacina fue   m&aacute;xima a las 24 h de finalizado el tratamiento (0.073 + 0.006 mg/g), inferior al l&iacute;mite m&aacute;ximo de   residuos establecido por entes reguladores internacionales (0.3 mg/g). Los niveles m&aacute;ximos (0.027 +   0.015 mg/g) se detectaron para ciprofloxacina a las 72 h. Es necesario desarrollar y examinar m&eacute;todos   simples y precisos para cuantificar residuos en diferentes productos y tejidos comestibles, promover la aplicaci&oacute;n de buenas pr&aacute;cticas agr&iacute;colas y elaborar regulaciones pertinentes.</b></i></p>     <p align="justify"><b>Palabras Clave: </b><i>micoplasmosis, residuos, fluoroquinolonas, HPLC (cromatograf&iacute;a liquida de alta presi&oacute;n)</i></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><b>Introducci&oacute;n</b></p>     <p align="justify">  El presente trabajo tuvo su inicio a partir de la   consulta de un productor av&iacute;cola de la zona de influencia   de la Universidad Nacional de R&iacute;o Cuarto. En uno de   los galpones los pollos parrilleros presentaban una   patolog&iacute;a respiratoria, con diagn&oacute;stico cl&iacute;nico de   micoplasmosis. El productor requer&iacute;a conocer   tratamiento adecuado y el tiempo de espera para la   faena y comercializaci&oacute;n de los animales en buenas   condiciones de salud y bajos niveles de residuos.   Muchos f&aacute;rmacos poseen la capacidad de generar   residuos, entendiendo que estos son todas las sustancias   qu&iacute;micas, ya sean los componentes originales y/o sus   metabolitos, que permanecen en las carnes, leches u   otros alimentos derivados del animal al que se   administr&oacute; el producto veterinario en cuesti&oacute;n (11, 13).   Por otro lado, la casi totalidad de los trabajos de   investigaci&oacute;n en residuos han sido efectuados en   animales sanos.  </p>     <p align="justify">La micoplasmosis aviar es una enfermedad   ampliamente difundida por todo el mundo, pudi&eacute;ndose   presentar como enfermedad respiratoria cr&oacute;nica o como sinovitis infecciosa, siendo <i>Mycoplasma    gallisepticum </i>y<i> Mycoplasma synoviae </i>respectivamente los responsables de las mismas. Si   bien la mortalidad en estas dos formas de presentaci&oacute;n   es baja, la morbilidad es muy alta, lo cual se traduce   en importantes p&eacute;rdidas econ&oacute;micas producto del bajo   incremento de peso en los planteles de pollos parrilleros   (2). Las condiciones atmosf&eacute;ricas y ambientales   adversas, junto con infecciones asociadas de origen   bacteriano o v&iacute;rico, desempe&ntilde;an un importante papel   en la propagaci&oacute;n de micoplasmosis respiratorias   cl&iacute;nicas, en granjas av&iacute;colas (17).</p>     <p align="justify"> Ciprofloxacina (CFX) y enrofloxacina (EFX) son   fluoroquinolonas de segunda generaci&oacute;n con un amplio   espectro de actividad antimicrobiana. Ambas poseen   buena biodisponibilidad luego de la administraci&oacute;n oral   y excelente distribuci&oacute;n en los tejidos. En nuestro pa&iacute;s   EFX es empleada en los planteles av&iacute;colas y porcinos,   con prop&oacute;sitos preventivos y terap&eacute;uticos. CFX fue   introducida en medicina humana siendo efectiva frente   a un gran n&uacute;mero de infecciones, debido a su amplio   espectro e intensa actividad frente a Gram negativos,   y a la propiedad de no poseer resistencia cruzada con   beta lact&aacute;micos y aminogluc&oacute;sidos (15). Se ha indicado   su empleo en perros y gatos, pero no en animales de   producci&oacute;n, debido al riesgo que implica para los   consumidores, la presencia de residuos de esta fluoroquinolona en los alimentos.</p>     <p align="justify">Los L&iacute;mites M&aacute;ximos de Residuos (LMR) para   diferentes medicamentos veterinarios son establecidos   en dise&ntilde;os experimentales que utilizan animales sanos   o a partir de los resultados de estudios de   farmacocin&eacute;tica plasm&aacute;tica obtenidos, en la amplia   mayor&iacute;a de los tratamientos, en dosis &uacute;nica. </p>     <p>El objetivo del presente trabajo fue establecer   durante 5 d&iacute;as pos-tratamiento los niveles de residuos   de EFX y CFX en m&uacute;sculo de pollos tratados con estos   antimicrobianos, para determinar el tiempo de espera   para faena y comercializaci&oacute;n de los animales, sin   riesgos para la salud p&uacute;blica.</p>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>  <b>Materiales y m&eacute;todos</b> </p> </p> <i>Antimicrobianos</i> </p>     <p align="justify"> Enrofloxacina, base, polvo liofilizado 100% de pureza   y Ciprofloxacina clorhidrato, equivalente a 87% de   CFX, fueron usados como est&aacute;ndares para el an&aacute;lisis   por cromatograf&iacute;a l&iacute;quida de alta presi&oacute;n (HPLC).   Baytril oral, soluci&oacute;n al 10% y Ciprofloxacina   clorhidrato fueron empleadas para la administraci&oacute;n   de EFX o CFX a los animales. Las soluciones   est&aacute;ndares de los antimicrobianos (500 mg/ml de agua   deionizada) para estudios de HPLC se prepararon   mensualmente. Las soluciones de antimicrobianos para   la administraci&oacute;n a los animales se prepararon 24 h   antes de los ensayos en animales.     <p align="justify"><i>Animales</i></p>     <p align="justify"> El trabajo se llev&oacute; a cabo en la Unidad Av&iacute;cola   Experimental de la Facultad de Agronom&iacute;a y   Veterinaria de la Universidad Nacional de R&iacute;o Cuarto,   con pollos parrilleros provenientes de un   establecimiento situado en la zona rural de R&iacute;o Cuarto, C&oacute;rdoba. De un galp&oacute;n de 5000 pollos parrilleros de la   l&iacute;nea COBB con sintomatolog&iacute;a respiratoria se   muestrearon 30 animales. Los pollos, de 44 d&iacute;as de   edad con 1.73 + 0.15 kg de peso estaban vacunados   contra Marek y Gumboro y carec&iacute;an de tratamiento   antibacteriano. Los animales recibieron agua y alimento <i>ad libitum</i> y fueron mantenidos en habitaci&oacute;n cerrada,   con pared y piso de cemento, cubierto con c&aacute;scara de   man&iacute;. El alimento balanceado fue a base de ma&iacute;z y   sorgo, sin aditivos, ni antimicrobianos. Todos los   animales estuvieron sometidos al mismo manejo y los   ensayos fueron conducidos sin someterlos a   sufrimiento alguno.      <p align="justify">En Argentina existen pocos estudios sobre   Micoplasmosis Aviar, los cuales fueron de mucho valor   como antecedentes de esta enfermedad en las granjas   de nuestro medio rural (2). La evaluaci&oacute;n cl&iacute;nica del   cuadro respiratorio compatible con micoplasmosis se   efectu&oacute; diariamente, en la ma&ntilde;ana y en la tarde, y se   evalu&oacute; la presencia de ruido pulmonar, la reacci&oacute;n a   est&iacute;mulos externos y el consumo de agua y alimento.   Los animales fueron distribuidos al azar en dos grupos   de 15 individuos cada uno. Un grupo fue tratado con   una dosis diaria de 5 mg/kg/12h de EFX en bolus oral   durante 5 d&iacute;as, y el otro grupo con un esquema   terap&eacute;utico id&eacute;ntico de CFX.</p>     <p>Tres animales de cada grupo, elegidos al azar, fueron   sacrificados a las 24, 48, 72, 96 y 120 h despu&eacute;s de   finalizado el tratamiento. Luego del sacrificio por   decapitaci&oacute;n y desangrado, se extrajeron   aproximadamente 10 g de m&uacute;sculo pectoral y se   congelaron a &#150;20 &#176;C hasta el momento del procesado   de la muestra. Con el tratamiento con CFX, el ruido pulmonar comenz&oacute; a desaparecer al segundo d&iacute;a de   iniciado este, y al tercer d&iacute;a de iniciado con EFX. No   se observ&oacute; ausencia de respuesta a est&iacute;mulos, y   tampoco inapetencia. </p> </p>     <p>  <i>Procesado de las muestras</i> </p> </p> Se pesaron 200 mg de m&uacute;sculo pectoral sin   aponeurosis. Se homogeneiz&oacute; cada muestra con 2   ml de buffer fosfato. Los homogeneizados de   m&uacute;sculo se desproteinizaron con diclorometano (8   ml), se agitaron manualmente y con vortex 1 min y   se centrifugaron a 4000 rpm a 4 oC durante 20 min.   Las fases acuosa y org&aacute;nica obtenidas se separaron   por filtraci&oacute;n con papel separador de fases,   colectando esta &uacute;ltima. El precipitado se re-extrajo   con 6 ml de diclorometano y las fases org&aacute;nicas   obtenidas se evaporaron a sequedad a 50 oC bajo   corriente de nitr&oacute;geno para luego resuspenderlas en   200 ml de fase m&oacute;vil. Las fluoroquinolonas presentes   se cuantificaron por cromatograf&iacute;a l&iacute;quida de alta   presi&oacute;n (HPLC), con detecci&oacute;n por fluorescencia a   295 nm de excitaci&oacute;n y 500 nm de emisi&oacute;n (8, 9). El   ensayo fue lineal desde 0.00375 a 0.1 mg/ml. Los   antimicrobianos pudieron ser cuantificados con buena   resoluci&oacute;n de ambos picos y ausencia de   interferencias por la matriz biol&oacute;gica empleada.</p>     <p align="justify"> Los l&iacute;mites de cuantificaci&oacute;n fueron 0.0119 y 0.0557   mg/g para EFX y CFX respectivamente. Los &iacute;ndices   de recuperabilidad de los metabolitos en m&uacute;sculo se   obtuvieron restando la concentraci&oacute;n de los   antimicrobianos de las muestras inicialmente   adicionadas con EFX y CFX (0.01 y 0.1 mg/ml)   respecto de muestras de m&uacute;sculo con incorporaci&oacute;n   de los antimicrobianos en igual concentraci&oacute;n pero   luego del procesado de la muestra. Los promedios   fueron 77.47 % para EFX y 87.7 % para CFX.</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><b>Resultados</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Los residuos de antimicrobianos en m&uacute;sculo de pollo   pudieron ser cuantificados por HPLC con detector de   fluorescencia. EFX eluye a los 2.70 + 0.50 min y CFX   a los 4.02 + 0.15 min. Las concentraciones de residuos   de ambas fluoroquinolonas en m&uacute;sculo se muestran   en la <a href="#t1">tabla 1</a>. CFX alcanz&oacute; su nivel m&aacute;ximo a las 72 h   de finalizado el tratamiento con 0.027 + 0.014 mg/g.   Desde las 24 a las 120 h los niveles de CFX oscilaron entre valores m&iacute;nimos de 0.012 + 0.002 y m&aacute;ximos de 0.027 + 0.014 mg/g. En los pollos medicados con EFX,   la m&aacute;xima concentraci&oacute;n de antibacteriano en m&uacute;sculo   se alcanz&oacute; a las 24 h de suspendido el tratamiento   (0.073 + 0.006 mg/g), descendiendo gradualmente hasta   0.0004 + 0.0002 mg/g a las 120 h.</p> </p>     <p><img src="/img/revistas/rccp/v19n1/v19n1a07t01.jpg"><a name="t1"></a></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>Como se observa en la <a href="#f1">figura 1</a>, los niveles de CFX   se mantuvieron casi constantes en el tiempo del ensayo,   promediando los 0.0166 + 0.0068 mg/g. Por el contrario,   la concentraci&oacute;n de EFX en m&uacute;sculo descendi&oacute; en   forma r&aacute;pida y constante despu&eacute;s de finalizado el   tratamiento, alcanzando a las 120 h la concentraci&oacute;n   m&iacute;nima.</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><img src="/img/revistas/rccp/v19n1/v19n1a07f01.jpg"><a name="f1"></a></p> </p>     <p>&nbsp;</p>     <p><b>Discusi&oacute;n</b></p>     <p align="justify"> Si bien la efectividad terap&eacute;utica no fue el objetivo   de este trabajo, cabe recordar que los niveles tisulares   de EFX y CFX se determinaron en un lote de pollos   con micoplasmosis. Los trabajos de residuos en tejidos   de pollos en proceso infeccioso son escasos en la   bibliograf&iacute;a. Soliman (18), evalu&oacute; la distribuci&oacute;n tisular   de EFX en pollos sanos e infectados con <i>Escherichia   coli,</i> tratados en un esquema de dosis m&uacute;ltiple,observando diferencias de concentraciones   antimicrobianas entre ambos grupos de animales,   siendo menores en pollos enfermos. Los l&iacute;mites   m&aacute;ximos de residuos (LMR) son en general   establecidos en animales sanos a partir de los ensayos   farmacol&oacute;gicos y toxicol&oacute;gicos pertinentes y de los   m&eacute;todos anal&iacute;ticos desarrollados. La pr&aacute;ctica   veterinaria nos enfrenta a situaciones donde es   necesario lograr efectividad cl&iacute;nica antimicrobiana en   animales enfermos y lograr carnes aptas para el consumo.</p>     <p align="justify">El m&eacute;todo empleado en este trabajo para investigar   la presencia de dos fluoroquinolonas simult&aacute;neamente   en m&uacute;sculo de pollo es simple y econ&oacute;mico (9); es   simple porque se demora tres horas desde la recepci&oacute;n   de la muestra hasta la obtenci&oacute;n de los resultados, y   econ&oacute;mico porque la extracci&oacute;n l&iacute;quido-l&iacute;quido es   accesible para pa&iacute;ses como el nuestro, sin la necesidad   de la importaci&oacute;n de insumos de alto costo como son   los cartuchos de extracci&oacute;n en fase s&oacute;lida.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Las concentraciones de estos antimicrobianos en   m&uacute;sculo en el tiempo muestran un comportamiento   cin&eacute;tico tisular diferente con niveles constantes para   CFX y declinaci&oacute;n r&aacute;pida para EFX, como se observa   en la <a href="#f1">Tabla 1</a> y la <a href="#f1">figura 1</a>. En trabajos previos de   farmacocin&eacute;tica plasm&aacute;tica en pollos (7) y en cabras   (6) se observ&oacute; una r&aacute;pida eliminaci&oacute;n de CFX. Esto   tambi&eacute;n fue observado por otros autores en varias   especies como caninos, equinos y ovinos (1, 4, 14).   Esos trabajos midieron la disminuci&oacute;n de CFX en   plasma en el tiempo, y en todos se resalt&oacute; la r&aacute;pida   eliminaci&oacute;n de este antimicrobiano. Los presentes   resultados en m&uacute;sculo abren un interrogante, ya que   la declinaci&oacute;n plasm&aacute;tica de CFX no parece ser un   reflejo de la eliminaci&oacute;n tisular de este f&aacute;rmaco del   animal, sino a su amplia distribuci&oacute;n en los tejidos.   Otros autores, en un estudio de farmacocin&eacute;tica   plasm&aacute;tica y concentraci&oacute;n tisular de danofloxacina y   EFX en pollos parrilleros, informan que ambas drogas   en las concentraciones tisulares exceden ampliamente las concentraciones plasm&aacute;ticas (12).</p>     <p>A partir de los estudios farmacocin&eacute;ticos, en los   que se infiere la posible distribuci&oacute;n tisular de los   f&aacute;rmacos, CFX es presentada como una de las   fluoroquinolonas con mejores cualidades. Sin embargo,   los presentes resultados hacen suponer la existencia   de una disociaci&oacute;n entre la cin&eacute;tica plasm&aacute;tica y tisular,   al menos en esta especie y con este esquema   terap&eacute;utico. Se resalta entonces, la importancia de   efectuar estudios de farmacocin&eacute;tica tisular de   f&aacute;rmacos en tejidos de importancia terap&eacute;utica o   econ&oacute;mica. En un trabajo anterior, se analiz&oacute; la   presencia de residuos de EFX y CFX en huevos de   gallinas ponedoras, cuantific&aacute;ndose mayor   concentraci&oacute;n en clara que en yema, y se determin&oacute;   que se deber&iacute;a contemplar un tiempo de espera de 6   d&iacute;as para EFX en plantas productoras para evitar   niveles de residuos violatorios de este antimicrobiano   en estos productos (10).</p>     <p>La Food and Drug Administration (FDA) (5)   estableci&oacute; una tolerancia de 0.3 mg/g para residuos   de EFX en m&uacute;sculo de pollos y pavos. Paralelamente   la Comisi&oacute;n del Codex Alimentarius (3), un &oacute;rgano   creado por la FAO y la OMS para el desarrollo de   est&aacute;ndares de residuos de f&aacute;rmacos en alimentos   seguros, no determina los LMR para fluoroquinolonas,   y s&oacute;lo danofloxacina y sarafloxacina est&aacute;n bajo   evaluaci&oacute;n con tolerancias tentativas de 0.2 mg/g y   0.01 mg/g respectivamente. Los LMR permitidos por   la Uni&oacute;n Europea para EFX y su metabolito CFX   son 100 y 300 mg/kg en m&uacute;sculo de pollo. Los   resultados obtenidos en los animales tratados con   EFX muestran en los diferentes tiempos niveles de   residuos inferiores a los establecidos por los   organismos internacionales. Todo lo expuesto nos   permite establecer que en pollos parrilleros con   infecci&oacute;n respiratoria por micoplasma, una vez   finalizado el tratamiento con EFX 5 mg/kg/12h durante   5 d&iacute;as, los animales est&aacute;n en condiciones aceptables   de consumo con niveles de residuos por debajo de los   est&aacute;ndares internacionales. Resultados similares se   obtuvieron con CFX, una alternativa terap&eacute;utica de   uso actual en medicina humana, pero cuyo posible uso   futuro en medicina veterinaria no deber&iacute;a excluirse en   producci&oacute;n animal, como algunos autores expresan en   sus trabajos (7, 15, 16). A nuestro criterio es necesario   analizar la posible presencia de residuos en distintos   productos y tejidos animales comestibles, e incluir   estudios de distribuci&oacute;n tisular, en la determinaci&oacute;n de   los valores de tolerancia.</p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="justify"><i><b>Summary</b></i></p>     <p><i><b>Residues of enrofloxacin and ciprofloxacin in muscle of broiler chickens</b></i></p>     <p>    <i><b>Fluoroquinolones are antimicrobials of intensive usage in veterinary medicine. In our country   enrofloxacin is employed in poultry and pig production. Ciprofloxacin, the mayor metabolite of   enrofloxacin, is a useful resource in human medicine and one alternative for farm animals. Both   antimicrobials were simultaneously detected in muscle of chickens naturally infected with   Mycoplasma synoviae and administrated with enrofloxacin or ciprofloxacin (5mg/kg/12h oral)   for 5 days. The purpose of this work was to determine the adequate slaughter moment of the   animals, with good clinical conditions and acceptable residue levels. The animals were sacrificed   at 5 times after treatment. The samples (200 mg) were homogenized in phosphate buffer, and   extracted twice with dichloromethane. The fluoroquinolones were detected by high performance   liquid chromatography with fluorescence detection at 295 nm excitation and 500 nm emission. </b></i></p>     <p><i><b>The concentration of enrofloxacin residues was maximal at 24 h after treatment (0.073 + 0.006 &igrave;g/   g) and was lower than the maximal limit levels established by international regulations (0.3 &igrave;g/g). In   ciprofloxacin administrated animals the superior concentration of the antimicrobial in muscle was   72 h after treatment with 0.027 + 0.015 &igrave;g/g. The consumers and the authorities must be concern about the control of veterinary residues in different products and edible tissues of farm animals.</b></i></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><b>Referencias</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>1. Abad&iacute;a AR, Aramayona JJ, Mu&ntilde;oz MJ, Pla Delfina JM,   Bregante MA. Ciprofloxacin pharmacokinetics in dogs   following oral administration. J. Vet. Med. 1995;   42:501-511.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000053&pid=S0120-0690200600010000700001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">2. Cerd&aacute; O, Xavier JA, Petruccelli MA, Etcheverrigaray ME.   Aislamiento de <i>mycoplasma synoviae </i>de pollos parrilleros y gallinas reproductoras. Primera comunicaci&oacute;n en la Rep&uacute;blica Argentina. Analecta Vet. 1998; 18(1/2):41-46.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000054&pid=S0120-0690200600010000700002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">3. Codex Alimentarius: Veterinary Drug Residues in Food-MRL.   [ref. de 17 de mayo de 2005 ]. Disponible en Web: <a href="http://faostat.fao.org/faostat/collections" target="_blank">http://faostat.fao.org/faostat/collections </a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000055&pid=S0120-0690200600010000700003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">4. Dowling PM, Wilson RC, Tyler JW, Duran SH.   Pharmacokinetics of ciprofloxacin in ponies. J. Vet.   Pharmacol. Ther. 1995; 18:7-12.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000056&pid=S0120-0690200600010000700004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">5. FDA. Food and Drug Administration, Center for Veterinary   Medicine, Updated Information on FDA &#145;s Proposed   withdrawal of Approval of Poultry Fluoroquinolones. [ref.   de 17 de mayo de 2005 ]. Disponible en Web: <a href="http://www.fda.gov/CVM/antimicrobial/antimicrobial.HTML" target="_blank">http://www.fda.gov/CVM/antimicrobial/antimicrobial.HTML</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000057&pid=S0120-0690200600010000700005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">6. Garc&iacute;a Ovando H, Gorla N, Poloni G, Trotti N, Prieto G,   Errecalde C. Intravenous pharmacokinetics of ciprofloxacin   in goats. Int. J. Antimicrob. Agents. 2000a; 15:77-79.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000058&pid=S0120-0690200600010000700006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">7. Garc&iacute;a Ovando H, Gorla N, L&ucirc;ders C, Poloni G, Errecalde C,   Prieto G, Puelles, I. Comparative pharmacokinetics of enrofloxacin and ciprofloxacin in chickens. J. Vet. Pharmacol.   Ther. 1999; 22:209-212.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000059&pid=S0120-0690200600010000700007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">8. Garc&iacute;a Ovando H, Gorla N, Weyers A, Ugnia L, Martinez   M, Giacomelli N, Liboa R, Chiostri E, Davicino R.   Enrofloxacin liquid-liquid extraction from chicken muscle and   HPLC detection. J. Liquid Chromatogr. Rel. Technol. 2000b; 23:2391-2397.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000060&pid=S0120-0690200600010000700008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">9.- Garc&iacute;a Ovando H, Magnoli A, Gorla N, Weyers A, Ugnia L.   Simultaneous quantification of ciprofloxacin, enrofloxacin and   balofloxacin in broiler chicken muscle Arch. Med. Vet. 2004;   36 (1):93-98.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000061&pid=S0120-0690200600010000700009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">10. Gorla N, Chiostri E, Ugnia L, Weyers A, Giacomelli N,   Davicino R, Garc&iacute;a Ovando H. HPLC residues of enrofloxacin and ciprofloxacin in eggs of laying hens. Int. J. Antimicrob.   Agents. 1997; 8:253-256.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000062&pid=S0120-0690200600010000700010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">11. Kaneene JB, Miller R. Problems associated with drug residues   in beef from feeds and therapy. Rev. Sci. Tech. Off. Int. Epiz.   1997; 16:694-708.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000063&pid=S0120-0690200600010000700011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">12. Knoll U, Glunder G, Kietzmann M. Comparative study of   the plasma pharmcokinetics and tissue concentrations of   danofloxacin and enrofloxacin in broiler chickens. J. Vet.   Pharmacol. Ther. 1999; 22:239-246.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000064&pid=S0120-0690200600010000700012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">13. Laguna DS. Residuos de f&aacute;rmacos de los alimentos de origen   animal. Aspectos regulatorios, anal&iacute;ticos y toxicol&oacute;gicos, Universidad Nacional de Educaci&oacute;n a Distancia, C&oacute;rdoba,   Espa&ntilde;a, 1995.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S0120-0690200600010000700013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">14. Mengozzi G, Intorre L, Bertini S, Soldani G. Pharmacokinetics   of enrofloxacin and its metabolite ciprofloxacin after intravenous and intramuscular administration in sheep. Am.   J. Vet. Res. 1996; 57:1040-1043.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000066&pid=S0120-0690200600010000700014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">15. Nouws JFM, Mevius DJ, Vree TB, Baars AM, Laurensen J.   Pharmacokinetics renal clearance and metabolism of ciprofloxacin following intravenous and oral administration   to calves and pigs. Vet. Quart. 1988; 10(3):156-163.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0120-0690200600010000700015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">16. Papich MG. Antibacterial drug therapy. Focus on new drugs.   Vet. Clin. N. A. Small Animal Practice. 1998; 28(2):215-231.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0120-0690200600010000700016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">17. Sato S. La micoplasmosis aviar en Asia. Rev. Sci. Tech. Off.   Int. Epiz. 1996; 15(4):1555-1568.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0120-0690200600010000700017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">18. Soliman GA. Tissue distribution and disposition kinetics of   enrofloxacin in healthy and E.coli infected broilers. Dtsch Tierarztl Wochenschr. 2000; 107:23-27.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0120-0690200600010000700018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify">&nbsp;</p>      ]]></body><back>
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