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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Inducción a la maduración final y ovulación del yamú Brycon amazonicus con EPC y mGnRH-a]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[In females of yamú Brycon amazonicus of first sexual maturation (two years old, body weight (BW) 1.500 ± 1 g and total length (TL) 42.6 ± 0.1 cm), two hormonal inductors were evaluated, carp pituitary extract (CPE) and mammalian gonadotropin-releasing hormone analogue (mGnRH-a). Eight treatments were conducted: six with mGnRH-a (10, 15 and 20 µg/kg BW in single injection and 10, 15 and 20 µg/kg BW in two injections of 10 and 90%, respectively), one with CPE (5.5 mg/ kg BW in two applications, 10% and 90%, with an interval of 12 h), and one control (saline solution 0.9%). Females induced with mGnRH-a and females controls did not spawn. The 83.3% of the females induced with CPE spawned at the 6.7 ± 0.14 h at 26.9 ± 0.18 &ordm;C (water temperature), with a mean of 117.6 ± 6.8 g per egg volume per female, and 1469.6 ± 34.1 eggs per gram. The fertility rate showed a mean of 55.3 ± 6.1% 6 hours after fertilization (HAF), and 51 ± 5.8% of embryonic survival to 10 HAF. The hatching happened at 12 HAF. Only females induced with CPE presented a significant growth of the diameter (p<0.05) of 1086 to 1178 µm.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p><b>Inducci&oacute;n a la maduraci&oacute;n final y ovulaci&oacute;n del yam&uacute; Brycon amazonicus con EPC y mGnRH-a</b></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>Sandra C Pardo-Carrasco<sup>1</sup> MVZ, MS; Jos&eacute; A Arias-Castellanos<sup>3</sup> Biol. PhD; H&eacute;ctor Su&aacute;rez-Mahecha<sup>1</sup> MVZ, MS; Pablo E Cruz-Casallas<sup>3</sup>, MVZ, PhD; W&aacute;lter V&aacute;squez-Torres<sup>3</sup>, Biol. PhD; V&iacute;ctor Atencio-Garc&iacute;a<sup>1</sup> Ing. Pesq., MS; Evoy Zaniboni-Filho<sup>2</sup> Ocean. PhD.</p>     <p><sup>1</sup>Centro de Investigaci&oacute;n Pisc&iacute;cola, Departamento de Ciencias Acu&iacute;colas, FMVZ, Universidad de C&oacute;rdoba, Kra 6 N&#176; 67-103, Monter&iacute;a, Colombia.</p>     <p><sup>2</sup>Departamento de Acuicultura, Universidad Federal de Santa Catarina, Florian&oacute;polis, SC, Brasil.</p>     <p><sup>3</sup>Instituto de Acuicultura, Universidad de los Llanos, A.A. 110, Villavicencio, Colombia.</p>     <p><a href="mailto:shanyp@terra.com.br">shanyp@terra.com.br</a></p>     <p>(Recibido: 11 abril, 2005; aceptado: 23 enero, 2006)</p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><b><i>Resumen</i></b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b><i>En hembras de yam&uacute; Brycon amazonicus de primera maduraci&oacute;n sexual (2 a&ntilde;os de edad), con un   peso corporal (PC) de 1.500 &#177; 1 g y longitud total (LT) de 42.6 &#177; 0.1 cm, fueron probados dos inductores   hormonales, extracto de pituitaria de carpa (EPC) y an&aacute;logo de mam&iacute;fero de la hormona liberadora   de gonadotropinas (mGnRH-a). Ocho tratamientos fueron realizados: seis con mGnRH-a (10, 15 y 20&#181;g/kg en una sola aplicaci&oacute;n y 10, 15 y 20 &#181;g/kg en dos aplicaciones del 10 y 90%, respectivamente),   una con EPC (5.5 mg/kg en dos aplicaciones, 10% y 90%, con un intervalo de 12 horas) y un control   (soluci&oacute;n salina 0.9%). Las hembras inducidas con mGnRH-a y las hembras control no desovaron. El   83.3% de las hembras inducidas con EPC desovaron a las 6.7 &#177; 0.14 h a 26.9 &#177; 0.18 &ordm;C (temperatura del   agua), con un promedio de 117.6 &#177; 6.8 g de huevos por hembra y 1469.6 &#177; 34.1 huevos por gramo. La   tasa de fertilidad present&oacute; un promedio de 55.3 &#177; 6.1% seis horas despu&eacute;s de la fertilizaci&oacute;n (HDF) y   51 &#177; 5.8% de sobrevivencia embrionaria a 10 HDF. La eclosi&oacute;n sucedi&oacute; a las 12 HDF. Solamente las   hembras inducidas con EPC presentaron un crecimiento significativo del di&aacute;metro ovocitario (p&#60;0.05) de 1086 a 1178 &#181;m.</i></b></p>     <p align="justify"><b>Palabras clave: </b><i>Bryconinae, cultivo, reproducci&oacute;n.</i></p>     <p align="justify">&nbsp;</p> <b>Introducci&oacute;n </b> </p>     <p align="justify">De las m&aacute;s de 40 especies del g&eacute;nero Brycon, se   destaca por su potencialidad para la piscicultura   continental del neotr&oacute;pico (28) el yam&uacute; <i>Brycon   amazonicus</i> (Spix y Agassiz, 1829), cuyo sin&oacute;nimo   m&aacute;s conocido es <i>B. siebenthalae</i> (Eigenmann, 1912)   (15). Sobresale por su r&aacute;pido crecimiento, h&aacute;bito   alimenticio omn&iacute;voro y caracter&iacute;sticas sensoriales   excelentes (2,17). Es un pez reof&iacute;lico, nativo de la   cuenca del r&iacute;o Orinoco, que no se reproduce   espont&aacute;neamente en cautiverio y que gracias a las   ventajas anteriormente descritas, los piscicultores lo producen con fines industriales.</p>     <p align="justify">  Algunos m&eacute;todos para mejorar las t&eacute;cnicas de   inducci&oacute;n a la reproducci&oacute;n y de producci&oacute;n de semilla   de yam&uacute; han sido desarrollados (19) con el objetivo de   suministrar alevinos en forma estable para su cultivo,   un asunto vital para la consolidaci&oacute;n de la especie en   la acuicultura industrial (3).</p>     <p align="justify">  Evaluar diferentes inductores, buscando mejorar   el desempe&ntilde;o reproductivo y disminuir los costos, es   importante cuando se trata de optimizar las t&eacute;cnicas   reproductivas hormonales. La hipofizaci&oacute;n,   considerada como la primera generaci&oacute;n de   inductores para el desove, ha sido muy usada desde   1930 (5). Sin embargo, el extracto de hip&oacute;fisis de carpa (EPC), presenta algunas desventajas como su   alto costo (31), variabilidad en la calidad y cantidad   de hormonas presentes (14) especialmente en el   contenido de gonadotropinas (GtH), contenido   adicional de otras hormonas y la posibilidad de   transmitir enfermedades (33). De acuerdo con   Donaldson (5), las tecnolog&iacute;as de la tercera   generaci&oacute;n involucran el uso de an&aacute;logos de la   hormona liberadora de gonadotropinas (GnRH-a) con   o sin antagonistas de dopamina como el domperidone,   el pimozide y la metaclorpramida, en sus muchas   formas de aplicaci&oacute;n. Zohar y Mylonas (34)   mencionaron que por lo menos tres ventajas han sido   identificadas para el uso de GnRH-a en la inducci&oacute;n   de la reproducci&oacute;n. Primero, es una mol&eacute;cula   peque&ntilde;a de 10 amino&aacute;cidos que no genera respuesta   inmunol&oacute;gica. Segundo, se induce la liberaci&oacute;n de   GtH end&oacute;geno y se desencadenan desde un nivel   superior los procesos de maduraci&oacute;n final, ovulaci&oacute;n,   desove y espermiaci&oacute;n, proporcionando una mejor   integraci&oacute;n de las hormonas necesarias para la   reproducci&oacute;n. Tercero, debido a su simplicidad es una   mol&eacute;cula que puede sintetizarse en laboratorio,   evitando el riesgo de transmisi&oacute;n de enfermedades.</p>     <p align="justify">  Estudios recientes han determinaron la presencia   de m&aacute;s de una forma de GnRH en el cerebro de los   peces (23, 29) con varias funciones y potencialidades,   generando hip&oacute;tesis para explicar las variables eficiencias de cada tipo de GnRH en los peces.</p>     <p align="justify">  De otra parte, determinar el estado de maduraci&oacute;n   sexual es importante para decidir someter a los peces   a inducci&oacute;n hormonal. Caracter&iacute;sticas como el   di&aacute;metro ovocitario, la posici&oacute;n de la ves&iacute;cula germinal   y el factor de condici&oacute;n relativa (Kn), pueden ayudar   a reconocer las hembras listas para inducci&oacute;n. Varios   autores concuerdan que en miembros de la familia   Serrasalmidae (<i>Piaractus mesopotamicus</i>) y algunos   de la Bryconidae (<i>Brycon cephalus</i>), aparecen como   caracter&iacute;sticas de madurez las siguientes: la distribuci&oacute;n   del di&aacute;metro ovocitario podr&iacute;a ser unimodal y superior   a cierto tama&ntilde;o de acuerdo con la especie (27), la   ves&iacute;cula germinal podr&iacute;a estar en posici&oacute;n central o   migrando hacia la periferia (8) y para <i>Brycon insignis</i>, el Kn podr&iacute;a ser superior a 1 (1).</p>     <p align="justify">  Los objetivos del presente estudio fueron determinar   los par&aacute;metros reproductivos de las hembras de yam&uacute;   y comparar el efecto de dos inductores hormonales, el   EPC y diferentes dosis y protocolos de mGnRH-a en la inducci&oacute;n a la ovulaci&oacute;n y al desove.</p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b> Materiales y m&eacute;todos</b></p>     <p align="justify">  En el Instituto de Acuicultura de la Universidad de   los Llanos localizado en Villavicencio, Colombia a una   latitud 4o 05 &#145; N, longitud 73o 37 &#145; O, y una altitud de   420 m, ejemplares de yam&uacute; fueron obtenidos por   inducci&oacute;n hormonal con EPC de individuos capturados   en el r&iacute;o Meta. Durante el segundo a&ntilde;o de vida, los   futuros reproductores fueron manipulados   mensualmente buscando un cierto grado de&#147;domesticaci&oacute;n&#148;. Fueron mantenidos en estanques de tierra a una densidad de 300 g/m2, alimentados con una raci&oacute;n del 30% de prote&iacute;na bruta y 3000 kcal. A los dos a&ntilde;os de edad alcanzaron la madurez sexual, con un PC 1.5 &#177; 0.001 kg y LT 42.6 &#177; 0.1 cm. Fueron seleccionados inicialmente de acuerdo con caracter&iacute;sticas externas de maduraci&oacute;n sexual como abdomen suave, papila genital rojiza y mediante biopsia ov&aacute;rica se verific&oacute; el estado de maduraci&oacute;n. Los reproductores se distribuyeron completamente al azar entre los tratamientos. La temperatura, la humedad relativa y la precipitaci&oacute;n durante el tiempo de los experimentos fue de 26.4 oC, 84.5% y 516.1 mm respectivamente. Los par&aacute;metros f&iacute;sico qu&iacute;micos del agua presentaron peque&ntilde;a variaci&oacute;n, con valores promedios de 27.6 &#177; 0.1 oC de temperatura, 7.9 &#177; 0.4 mg/l de ox&iacute;geno disuelto y 6.5 &#177; 0.1 de pH.</p>     <p align="justify">  Los tratamientos aparecen descritos en la <a href="#t1">tabla 1</a>.   Las hormonas usadas fueron: Extracto de pituitaria de   Carpa (EPC) (Argent, USA) y an&aacute;logo de mam&iacute;fero   del factor liberador de gonadotropinas (mGnRH-a) (DAla6,   des-Gly10, Sigma Co., St Louis, Missouri) En   todos los casos, el diluyente fue soluci&oacute;n salina y las   aplicaciones se hicieron en la musculatura dorsal.</p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><img src="/img/revistas/rccp/19n2/v19n2a07t01.jpg"><a name="t1"></a></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify">A trav&eacute;s del uso de un cat&eacute;ter pl&aacute;stico, se tomaron   tres muestras de ovocitos (9) de cada hembra, una al momento de la selecci&oacute;n, otra al tiempo de la segunda dosis y la tercera al momento del estrujamiento. A las hembras que no ovularon, la tercera muestra se les tom&oacute; dos horas despu&eacute;s de ocurrida la ovulaci&oacute;n y el desove en las dem&aacute;s. Las muestras fueron preservadas en formol bufferado 3.7% y posteriormente se midieron 100 ovocitos de cada muestra con la ayuda de un est&eacute;reo microscopio; el di&aacute;metro de los ovocitos fue determinado y la distribuci&oacute;n de frecuencia se grafic&oacute;. En la primera y tercera muestra, se clarificaron submuestras utilizando la soluci&oacute;n de Serra (etanol 80%, formol 15%; &aacute;cido ac&eacute;tico glacial 5%) para determinar la posici&oacute;n de la ves&iacute;cula germinal (VG). Los estad&iacute;os de maduraci&oacute;n del ovocito fueron clasificados como sigue: ves&iacute;cula germinal central, migrando, maduro y ovocitos atr&eacute;sicos en los cuales posteriormente a la adici&oacute;n de la soluci&oacute;n de Serra, la ves&iacute;cula germinal no se encontraba visible, la membrana externa estaba arrugada y su forma no era esf&eacute;rica (18).</p>     <p align="justify">  El factor de condici&oacute;n relativo fue calculado con el   prop&oacute;sito de verificar la condici&oacute;n apropiada de las   hembras seleccionadas para el tratamiento hormonal,   de acuerdo a lo propuesto por Andrade-Talmelli <i>et al </i>(1), Kn = Pt/Pe donde Pt corresponde al peso total del   animal y Pe al peso esperado por la relaci&oacute;n entre   peso y longitud total.</p>     <p align="justify">  Despu&eacute;s de la &uacute;ltima inyecci&oacute;n, la temperatura del   agua fue medida cada hora hasta completar los 160   grados hora a partir de la cual se procedi&oacute; a revisar   cada 15 minutos las hembras para determinar el inicio   de la ovulaci&oacute;n (19, 20). Todos los desoves fueron   realizados en seco para medir la cantidad de huevos   desovados por hembra y la cantidad de huevos en cada gramo de huevos. La fertilizaci&oacute;n fue hecha con una   mezcla de semen de machos inducidos con EPC (19,   20). Posteriormente los huevos fueron colocados en   incubadoras tipo experimental con una capacidad de   1.5 litros dejando tres incubadoras por cada hembra, como   lo describen Pardo-Carrasco <i>et al </i>(21). Por medio de   tres conteos de 100 huevos por incubadora, la tasa de   fertilidad fue determinada 6 horas despu&eacute;s de la   fertilizaci&oacute;n (HDF) y la tasa de sobrevivencia embrionaria   se midi&oacute; a las 10 HDF en el estado de embri&oacute;n avanzado   (la eclosi&oacute;n ocurri&oacute; a las 12 HDF a 27 oC).</p>     <p align="justify">  Para los par&aacute;metros reproductivos, la diferencia   entre promedios fue probada usando an&aacute;lisis de   varianza convencional ANOVA, seguido de test de   Tukey cuando hab&iacute;a diferencia (p&#60;0.05). Para los   di&aacute;metros ovocitarios, la frecuencia de distribuci&oacute;n fue   analizada. Para lo anterior fue utilizado el software   Systac versi&oacute;n 7.0 (Spss Inc, 1997).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify">  <b>Resultados</b></p>     <p align="justify">  Las hembras inducidas con mGnRH-a y las del   control no desovaron. En hembras inducidas con EPC   el porcentaje de desove fue del 83.3%. El tiempo de   latencia (horas trascurridas entre la &uacute;ltima inyecci&oacute;n y   la liberaci&oacute;n de huevos) fue de 6.7 &#177; 0.14 h a 26.9 &#177;   0.18 oC (<a href="#t2">v&eacute;ase Tabla 2</a>).</p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><img src="/img/revistas/rccp/19n2/v19n2a07t02.jpg"><a name="t2"></a></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p>El di&aacute;metro ovocitario inicial para todas las hembras   tuvo una distribuci&oacute;n unimodal, la cual oscil&oacute; entre 1000   y 1125 &#181;m, con un valor m&iacute;nimo de 800 &#181;m y un   m&aacute;ximo de 1450 &#181;m sin diferencia significativa entre   hembras (p&#62;0.05). Solamente las hembras tratadas   con EPC presentaron un crecimiento significativo del   di&aacute;metro ovocitario entre las tres muestras tomadas   (p&#60;0.05) de 1086 a 1178 &#181;m, presentando una moda   de 1250 &#181;m, el valor m&iacute;nimo de 1000 &#181;m y m&aacute;ximo de   1450 &#181;m (<a href="#f1">v&eacute;ase Figura 1</a>).</p> </p>     <p>&nbsp;</p>     <p><img src="/img/revistas/rccp/19n2/v19n2a07f01.jpg"><a name="f1"></a></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">La ves&iacute;cula germinal al comienzo del experimento   fue encontrada con 7.54 &#177; 1.2% en estado central;   80.2 &#177; 1.7% migrando; 7.66 &#177; 0.9% maduro y 4.62 &#177;   1.1% en estado atr&eacute;sico sin presentar diferencias entre   los tratamientos. Al final del experimento, las hembras   tratadas con EPC presentaron progreso en la migraci&oacute;n   de la ves&iacute;cula germinal con 6.2 &#177; 3.2% en estado   migrando, 74.9 &#177; 5.3% maduro y 18.85 &#177; 4.9% en   estado atr&eacute;sico, a diferencia de las hembras inducidas   con mGnRH-a y de las control que no presentaron   signos de avance en la maduraci&oacute;n final (p&#60;0.05)   (<a href="#f2">v&eacute;ase Figura 2</a>). La mortalidad postinducci&oacute;n de los reproductores fue del 10%.</p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><img src="/img/revistas/rccp/19n2/v19n2a07f02.jpg"><a name="f2"></a></p>     <p align="justify">      <p align="justify">  <b>Discusi&oacute;n</b></p>     <p align="justify">  Los par&aacute;metros reproductivos de las hembras   concuerdan con lo reportado en investigaciones previas   de los autores (19), se presenta un porcentaje de &eacute;xito   levemente mejor para las hembras inducidas con EPC,   lo cual indica que nuevos experimentos deben ser   conducidos a fin de mejorar este &iacute;ndice. Sin embargo,   Lam (14) menciona las desventajas de la hipofizaci&oacute;n,   los extractos de pituitaria son impuros produciendo una   acci&oacute;n inesperada, creando dificultad para alcanzar una respuesta positiva en el 100%. La tasa de mortalidad   despu&eacute;s de la inducci&oacute;n disminuy&oacute; en relaci&oacute;n a las   investigaciones previas (20%) (19), condici&oacute;n que   podr&iacute;a explicarse como resultado de la mayor   manipulaci&oacute;n de los reproductores y mostrando una   cierta adaptaci&oacute;n a los procesos en cautiverio.     <p align="justify">Resultados negativos en experimentos similares con   GnRH en <i>Brycon</i> han sido obtenidos por diferentes   autores (12, 19, 24) y varios aspectos pueden ser   discutidos al respecto. La posibilidad de un efecto del   estado de maduraci&oacute;n puede ser descartada, todas las   hembras fueron seleccionadas en igualdad de   condiciones, con di&aacute;metros ovocitarios superiores a 1000 &#181;m y con el 80.2 &#177; 1.7% de los ovocitos con la   ves&iacute;cula germinal migrando hacia la periferia, evidencia   que hab&iacute;an iniciado la maduraci&oacute;n final. De otra parte,   los experimentos fueron realizados entre abril y mayo,   meses que hacen parte del per&iacute;odo reproductivo del   yam&uacute;, el cual se extiende de marzo a junio (2). Otros   eventos que pudieron tener influencia en la efectividad   del mGnRH-a, son el tipo de an&aacute;logo utilizado de GnRH   (16), la v&iacute;a de aplicaci&oacute;n (18) y la combinaci&oacute;n de   mGnRH-a con un antagonista de la dopamina (22).</p>      <p align="justify">En el presente estudio, es probable que la causa de   la respuesta negativa sea la ausencia de un bloqueador   de los factores inhibidores de la liberaci&oacute;n de   gonadotropinas (GRIF) como domperidone o   metaclorpramida, m&eacute;todo conocido como LINPE (22).   Ramos (25) tuvo &eacute;xito usando el m&eacute;todo LINPE en   <i>Brycon cephalus</i>, resaltando que el mGnRH-a con   domperidone no fue efectivo a las dosis probadas (10  &#181;g/kg en una o dos aplicaciones + 5 mg/Kg a 15 mg/   kg, respectivamente), pero cuando lo combinaron con   metaclorpramida (10 &#181;g/kg en una aplicaci&oacute;n + 10 &oacute;   20 mg/kg, respectivamente) tuvo acci&oacute;n positiva en la   inducci&oacute;n. El Ovaprim&#174; (Laboratorio SYNDELL,   Canad&aacute;) fue solamente efectivo cuando lo usaron al   doble de la dosis recomendada por el fabricante (1 ml/   kg). El trabajo de Ramos (25) muestra que no todas   las sustancias usadas para bloquear el GRIF son   efectivas en este g&eacute;nero de peces y que los efectos   son dependientes de las dosis. Otra posibilidad es que   el tipo de an&aacute;logo utilizado no tenga receptores en la   pituitaria del yam&uacute;. Estudios acerca de las formas   moleculares de GnRH presente en el cerebro de los  <i>Brycon</i> podr&iacute;an dilucidar estas hip&oacute;tesis. En el cerebro   de <i>Piaractus mesopotamicus </i>y<i> Prochilodus lineatus</i>,   han sido observados tres tipos de GnRH: de pollo   (cGnRH-II), de salm&oacute;n (sGnRH) y de Seabream   Sparus aurata (sbGnRH) (23, 29); obteniendose   resultados positivos con el uso de mGnRH-a sin   bloqueador de GRIF (4, 32, 33). Sin embargo, en otros   tele&oacute;steos como<i> Carassius auratus</i>, <i>Oncorhynchus   masou</i> (13) y <i>Clarias garipinus</i> (11) fueron   encontradas solamente dos formas (cGnRH-II y de   Catfish <i>Clarias garipinus cfGnRH</i> o sGnRH) y en   ellos se ha observado que es necesario usar el m&eacute;todo LINPE para estimular la maduraci&oacute;n final y el desove.</p>     <p align="justify">Esta evidencia sugiere la posibilidad que los   <i>Bryconideos</i> presenten diferencias en relaci&oacute;n a otros   peces estudiados de Am&eacute;rica del Sur. Otro hecho, es   que la liberaci&oacute;n de gonadotropinas esta sujeta a la   sensibilidad estacional del sistema GnRH, la cual es   modulada por la dopamina, quiere decir esto que   dependiendo del estado de maduraci&oacute;n sexual, es o no necesario el uso de bloqueadores de GRIF (30).</p>     <p align="justify">  Varios autores confirman el incremento del di&aacute;metro   ovocitario al momento de la ovulaci&oacute;n despu&eacute;s de la   inducci&oacute;n hormonal (10, 31). En <i>B. cephalus</i> inducidos   con EPC, Romagosa (26) encontr&oacute; un incremento en la   frecuencia de ovocitos de mayor tama&ntilde;o en la tercera   muestra, as&iacute; como sucedi&oacute; para las hembras tratadas con   EPC en el presente estudio. Este hecho evidencia un   efecto positivo del EPC, mientras que en las hembras   tratados con mGnRH-a no se observ&oacute; incremento en el di&aacute;metro ovocitario y el desove no ocurri&oacute;.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">  El factor de condici&oacute;n relativo (Kn) fue usado por   primera vez por Eckmann (7) con <i>Brycon   erythropterus</i> cf. para determinar hembras maduras.   Recientemente Romagosa (26) y Andrade-Talmelli   et al. (1) corroboraron su uso en <i>Brycon</i> <i>insignis</i>,   determinando que valores centralizados alrededor de   1 indican hembras listas para participar en los   procesos de inducci&oacute;n hormonal. En el presente   trabajo el Kn oscil&oacute; entre 0.97 y 1.01, con un promedio   de 1.0, clasificando todas las hembras como aptas para la inducci&oacute;n.</p>     <p align="justify">En este estudio, fue observado que el EPC estimula   el desplazamiento de la ves&iacute;cula germinal hacia la   periferia, similar a la informaci&oacute;n reportada por Drori   et al (6) para <i>Cyprinus carpio</i> inducida con el m&eacute;todo LINPE y EPC.</p>     <p align="justify">  En conclusi&oacute;n, bajo las condiciones experimentales   mostradas, el mGnRH-a no fue efectivo en la inducci&oacute;n   a la ovulaci&oacute;n y el desove de yam&uacute; <i>Brycon   amazonicus</i>, mientras que EPC fue efectivo en inducir el 83.3% de las hembras tratadas.</p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><b>  Agradecimientos</b></p>     <p align="justify">  Los autores desean expresar sus agradecimientos   al Instituto de Acuicultura de la Universidad de los   Llanos - IALL por el acompa&ntilde;amiento del experimento,   el suministro de los reproductores y el apoyo de su   equipo. La financiaci&oacute;n estuvo dada por la Universidad   de los Llanos y COLCIENCIAS a trav&eacute;s del proyecto &#171;Maduraci&oacute;n gonadal, reproducci&oacute;n inducida y alevinaje del yam&uacute; <i>Brycon siebenthalae</i> (1122-09- 267-98).&#187;</p>     <p align="justify">      <p align="justify"><i><b>  Summary</b></i></p> <i><b>Induction to maturation and ovulation of yam&uacute; Brycon amazonicus with CPE and mGnRHa </b></i>     <p align="justify"><b><i>In females of yam&uacute; Brycon amazonicus of first sexual maturation (two years old, body weight   (BW) 1.500 &#177; 1 g and total length (TL) 42.6 &#177; 0.1 cm), two hormonal inductors were evaluated, carp   pituitary extract (CPE) and mammalian gonadotropin-releasing hormone analogue (mGnRH-a). Eight treatments were conducted: six with mGnRH-a (10, 15 and 20 &#181;g/kg BW in single injection   and 10, 15 and 20 &#181;g/kg BW in two injections of 10 and 90%, respectively), one with CPE (5.5 mg/   kg BW in two applications, 10% and 90%, with an interval of 12 h), and one control (saline   solution 0.9%). Females induced with mGnRH-a and females controls did not spawn. The 83.3% of   the females induced with CPE spawned at the 6.7 &#177; 0.14 h at 26.9 &#177; 0.18 &ordm;C (water temperature),   with a mean of 117.6 &#177; 6.8 g per egg volume per female, and 1469.6 &#177; 34.1 eggs per gram. The   fertility rate showed a mean of 55.3 &#177; 6.1% 6 hours after fertilization (HAF), and 51 &#177; 5.8% of   embryonic survival to 10 HAF. The hatching happened at 12 HAF. Only females induced with CPE   presented a significant growth of the diameter (p&#60;0.05) of 1086 to 1178 &#181;m. </i> </b></p>      <p align="justify"><b>Key words:</b> <i>Bryconinae, culture, reproduction.</i></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><b>Referencias</b></p>     <!-- ref --><p align="justify">  1. Andrade-Talmelli EF, Fenerich-Verani N, Verani JR. Fator de   condi&ccedil;&atilde;o relativo (Kn): um crit&eacute;rio para selecionar f&ecirc;meas de   piabanha <i>Brycon insignis</i> (Steindachner, 1876) (Pisces:   Bryconidae), para indu&ccedil;&atilde;o reprodutiva. Bol Inst de Pesca   1999; 25: 95-99.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S0120-0690200600020000700001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">  2. Arias CJA. Contribuci&oacute;n al conocimiento biol&oacute;gico de los   peces de los Llanos, yam&uacute; (<i>Brycon siebenthalae</i>), y la sapuara (<i>Semaprochilodus laticeps cf</i>.) con fines de cultivo. Informe   final. Unillanos-Colciencias. Villavicencio. 1995. 63p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000066&pid=S0120-0690200600020000700002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">  3. Atencio-Garc&iacute;a VJ, Zaniboni-Filho E, Pardo-Carrasco SC e   Arias-Castellanos, A. Influ&ecirc;ncia da primeira alimenta&ccedil;&atilde;o na larvicultura e alevinagem do yam&uacute; <i>Brycon siebenthalae</i>  (Characidae). Acta Scientiarium 2003; 25: 61-72.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0120-0690200600020000700003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">  4. Carolsfeld J, Ramos SM, Ormanezi R, Gomes JH, Barbosa   JM, <i>et al</i>. Analysis of protocols for application of an LHRH analog for induced final maturation and ovulation of female   pacu (<i>Piaractus mesopotamicus</i> Holmberg 1887). Aquacult.   1988; 74: 49-55.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0120-0690200600020000700004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">  5. Donaldson EM. Manipulation of reproduction in farmed   fish. Anim Reprod Sci. 1996; 42: 381-392.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0120-0690200600020000700005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"> 6. Drori S, Ofir M, Levavi-Sivan B, Yaron Z. Spawning   induction in common carp (<i>Cyprinus carpio</i>) using pituitary   extract or GnRH superactive analogue combined with   metoclopramide: analyses of hormone profile, progress of   oocyte maturation and dependence on temperature. Aquacult.   1994; 119: 393-407.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0120-0690200600020000700006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">  7. Eckmann RT. Induced reproduction in <i>Brycon </i>cf.<i> erythropterus.</i> Aquacult. 1984; 38: 379-382.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0120-0690200600020000700007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">  8. Fortuny A, Espinach Ros A, Amutio VG. Hormonal induction   of final maturation and ovulation in the s&aacute;balo, <i>Prochilodus</i> <i>platensis </i>Holmberg: treatments, latency and incubation times   and viability of ovules retained in the ovary after ovulation.   Aquacult. 1988; 73: 373-381.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0120-0690200600020000700008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">  9. Garc&iacute;a LM. Development of an ovarian biopsy technique in   the sea bass, <i>Lates calcarifer </i>(Bloch). Aquacult.1989; 77: 97-102.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0120-0690200600020000700009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">  10. Godinho HP, Godinho AL. Induced spawning of the pacu,   <i>Colossoma mitrei </i>(Berg 1895), by hypophysation with crude   carp pituitary extract. Aquacult. 1986; 55: 69-73.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0120-0690200600020000700010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">  11. Goos HJTh, Bosma PT, Bogerd J, Tensen CP, Li KW, <i>et al.</i>  Gonadotropin-releasing hormones in the African catfish: molecular forms, localization, potency and receptors. Fish   Physiol. Biochem. 1997; 17: 45-51.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0120-0690200600020000700011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">  12. Honczaryk A. Effectiveness of an LHRH analogue for the   induced spawning of matrinx&atilde; <i>Brycon cephalus</i>. In:   Proceedings of the Symposium international Biology of   tropical fishes, Manaos, Brasil. 1997. p 137.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0120-0690200600020000700012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">  13. Kobayashi M, Amano M, Kim MH, Yoshiura Y, Sohn   YC, <i>et al</i>. Gonadotropin-releasing hormone and   gonadotropin in goldfish and masu salmon. Fish Physiol.   Biochem. 1997; 17: 1-8.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0120-0690200600020000700013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">  14. Lam TJ. Environmental influences on gonadal activity in   fish. In: Hoar WS, Randall DJ, Donaldson EM. Fish   Physiology (IXB), London. Academic Press 1983: 65-101.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0120-0690200600020000700014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">  15. Lima FCT. Subfamiliy <i>Bryconinae</i>: Characins, tetras. In: Reis   R, Kullander S, Ferraris JC. Check list of the freshwater fishes of South and Central America. Porto Alegre: Edipucrs,   2003. p 174-181.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0120-0690200600020000700015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">  16. Lin HR, Zhou XJ, Van Der Kraak G, Peter RE. Effects of   gonadotropin-releasing hormone agonists and dopamine antagonists on gonadotropin secretion and ovulation in   Chinese loach, <i>Paramisgurnus dabryanus</i>. Aquacult. 1991;   95: 139-147.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0120-0690200600020000700016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">  17. Lugo LM. Determinaci&oacute;n de h&aacute;bitos alimenticios, madurez   sexual y desove en tres especies &iacute;cticas de la cuenca del r&iacute;o Tomo (Vichada) y consideraciones para el mantenimiento de   padrotes; informe final. Villavicencio: Universidad de los   Llanos/Colciencias/C&oacute;inco. 1989. 137 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0120-0690200600020000700017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">  18. Mylonas CC, Zohar Y. Induced spawning of wild American   shad <i>Alosa sapidissima </i>using sustained administration of gonadotropin-releasing hormone analog (GnRHa). J. World   Aquac. Soc. 1995; 26 (3): 240-251.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0120-0690200600020000700018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">  19. Pardo-Carrasco SC, Arias JA, Atencio-Garc&iacute;a VJ, Zaniboni-   Filho E, V&aacute;squez,-Torres W. Ensayos de reproducci&oacute;n inducida del yam&uacute; <i>Brycon siebenthalae</i> en los llanos   colombianos. En: Congreso Sur Americano de Acuicultura.<i> Resumos</i>, Recife. 1998; 282 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0120-0690200600020000700019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">  20. Pardo-Carrasco SC, Arias JA, Atencio-Garc&iacute;a VJ, Zaniboni-   Filho E, V&aacute;squez-Torres W. Experiencias sobre reproducci&oacute;n   inducida en el yam&uacute;, <i>Brycon siebenthalae</i>, en los llanos de   Colombia. II Curso Internacional de Acuicultura, Santa fe de   Bogot&aacute;, DC, Memorias. 1999; p. 24-27.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0120-0690200600020000700020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">  21. Pardo-Carrasco SC, Su&aacute;rez-Mahecha H, Zaniboni-Filho E,   Arias JA, Atencio-Garc&iacute;a VJ, et al. Avalia&ccedil;&atilde;o de incubadoras   experimentais para pesquisa em reprodu&ccedil;&atilde;o induzida. En:   Simp&oacute;sio Brasileiro de Aq&uuml;icultura, Florian&oacute;polis: Simbraq,   2000, n&atilde;o paginado, CD-ROM.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0120-0690200600020000700021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">  22. Peter RE, Lin H-R, Van der Kraak G. Induced ovulation and   spawning of cultured freshwater fish in China: advances in application of GnRH analogues and dopamine antagonists.   Aquacult. 1988; 74: 1-10.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0120-0690200600020000700022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">  23. Powell JF, Standen EM, Carolsfeld J, Borella MI, Gazola R,   et al. Primary structure of three forms of gonadotropinreleasing   hormone (GnRH) from the pacu brain. Regul. Pept.   1994; 68(3): 189-95.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0120-0690200600020000700023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">  24. Ramos RO, Ramos SM, Medon&ccedil;a JOJ. Utiliza&ccedil;&atilde;o de   an&aacute;logos do LHRH, na indu&ccedil;&atilde;o do matrinch&atilde; <i>Brycon cephalus</i>. B. Tec. CEPTA 1997; 10: 1-7.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0120-0690200600020000700024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"> 25. Ramos SM. Efeito de an&aacute;logos de LHRH em combina&ccedil;&atilde;o   com receptores antagonistas de dopamine na indu&ccedil;&atilde;o &agrave; ovula&ccedil;&atilde;o do matrinx&atilde;, <i>Brycon cephalus</i> (G&uuml;ntherm   1869). Disserta&ccedil;&atilde;o de mestrado, Universidade de S&atilde;o   Paulo, 2000; 48p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0120-0690200600020000700025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">26. Romagosa E. Desenvolvimento gonadal (morfologia; ultraestructura)   e indu&ccedil;&atilde;o da reprodu&ccedil;&atilde;o do matrinx&atilde;, <i>Brycon</i> <i>cephalus </i>(G&uuml;nter, 1869) em cativeiro Vale do Ribeira, S&atilde;o   Paulo. Tese de Doutorado. Universidade Federal de S&atilde;o   Carlos, 1998; 218 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0120-0690200600020000700026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">  27. Romagosa E, De Paiva P, Godinho HM. Pattern of oocyte   diameter frequency distribution in females of the pacu,   <i>Piaractus mesopotamicu</i>s (Holmberg 1887) (<i>Colossoma   mitrei </i>Berg 1895), induced to spawn. Aquacult. 1990; 86:   105-110.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0120-0690200600020000700027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">  28. Saint-Paul U. Potential for aquaculture of South   American freshwater fishes: a review. Aquacult. 1986;   54: 205-240.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0120-0690200600020000700028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">  29. Somoza GM, St&eacute;fano A, D&#146;eramo JL, Canosa LF, Fridman   O. Immunoreactive GnRH suggesting a third form of GnRH in addition to cIIGnRH and s-GnRH in the brain and pituitary   gland of <i>Prochilodus lineatus</i> (Characiformes) Gen. Comp.   Endocrinol. 1994; 94: 44-52.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0120-0690200600020000700029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">  30. Tharakan B, Joy KP. Effects of mammalian gonadotropinreleasing   hormone analogue, pimozide, and the combination on plasma gonadotropin levels in different seasons and   induction of ovulation in female catfish. J. Fish. Biol. 1996;   48: 623-632.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0120-0690200600020000700030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">  31. Wallace RA, Selman K. Cellular and dynamic aspects of oocyte   growth in teleosts. Am. Zool. 1981; 21: 325-343.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0120-0690200600020000700031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">  32. Zaniboni-Filho E. Utiliza&ccedil;&atilde;o do LHRH-a para indu&ccedil;&atilde;o &agrave;   espermia&ccedil;&atilde;o e desova do Pacu-caranha, <i>Piaractus   mesopotamicus</i> (Holmberg, 1887). Biotemas 1995; 8 (1):   35-45.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0120-0690200600020000700032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">  33. Zaniboni-Filho E, Barbosa NDC. Priming hormone   administration to induce spawning of some Brazilian   migratory fish. Rev. Bras. Biol. 1996; 56(4): 655-659.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0120-0690200600020000700033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">  34. Zohar Y, Mylonas C. Endocrine manipulations of spawning in cultures fish: from hormones to genes. Aquacult. 2001; 197: 99-136.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0120-0690200600020000700034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify">      ]]></body><back>
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