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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Farmacocinética y biodisponibilidad de ceftiofur sódico en caprinos]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Pharmacokinetics and bioavailability of ceftiofur sodium in goats]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Universidad Nacional de Río Cuarto Facultad de Agronomía y Veterinaria Departamento Clínica Animal]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Pharmacokinetic parameters of ceftiofur sodium were determined with a unique dose of 2.2 mg/kg either by the intravenous on the intramuscular routes, in a crossed design treatment in non pregnant adult female goats (n= 6). Variations in plasmatic concentrations over time were determined by the microbiological assay in Mueller-Hinton agar, with Providencia alcalifaciens as indicator. The limit of quantification was set in 0.039 mg/ml. The plasmatic concentrations of Ceftiofur were determined by the non compartimental pharmacokinetic model using sofware PK Solution 2.0. The parameters obtained when the intravenous route was used were: average elimination time (t1/2 b) = 1.63 ± 0.04 hours, total clearance (Cltot) = 3.3 ± 1.1 ml/kg/min, volume of distribution (Vdss) = 0.38 ± 0.19 L/Kg, area under the curve (ABC) = 716.5 ± 225.5 mg/min/ml. These values did not differ significantly from those obtained by the intramuscular test (P < 0.05) and are similar to those informed in other animal species for the same drug. When the intramuscular route was used , the maximum concentration (Cmáx) of 3.6 ± 0.5 mg/ml was obtained at a maximum time (tmáx) of 0.53 ± 0.31 min, and the bioavailability was high (97.6 ± 0.1%). The results indicate that the intramuscular application provides fast absorption and optimal bioavailability, generating plasmatic levels that exceed the MIC90 for sensitive respiratory pathogens for a period of 12 hours. Considering these results and a MIC (£0.06 mg/ml) for bacteria like Pasteurella haemolitica and multocida, the treatment of this type of infections in goats, requires 1.3 mg/Kg every 12 hours by intramuscular route, to obtain a predictive effectiveness (t> MIC) of 77.8%.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <b>Farmacocin&eacute;tica y biodisponibilidad de  ceftiofur s&oacute;dico en caprinos</b>    <br>     <br> Carlos A Errecalde <Sup><i>1</i></Sup>, MV, Esp Cs Clin; Guillermo F Prieto<Sup><i>1</i></Sup>, MV, Esp Cs Clin; Carlos F L&uuml;ders<Sup><i>1</i></Sup> MV, MS; Hugo Garc&iacute;a    Ovando<Sup><i>1</i></Sup> MV, Dr Cs Biol    <br>   <Sup><i>1</i></Sup>Farmacolog&iacute;a, Departamento Cl&iacute;nica Animal, Facultad de Agronom&iacute;a y Veterinaria, Universidad Nacional de R&iacute;o Cuarto. Ruta Nacional 36, Km 601 (5800) RIO CUARTO, C&oacute;rdoba, Rep&uacute;blica Argentina.    <br>   <a href="mailto:cerrecalde@ayv.unrc.edu.ar">cerrecalde@ayv.unrc.edu.ar</a>    <br>       <br>( Recibido: 14 julio, 2005; aceptado: 23 junio, 2006 )    <br>       <br>   <b><i>Resumen    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br> Se determinaron par&aacute;metros farmacocin&eacute;ticos de ceftiofur s&oacute;dico con dosis &uacute;nica de 2.2 mg/kg por v&iacute;a intravenosa e intramuscular, en un dise&ntilde;o cruzado de tratamiento en hembras caprinas adultas no gestantes (n= 6). Las concentraciones plasm&aacute;ticas en funci&oacute;n del tiempo se determinaron por el m&eacute;todo microbiol&oacute;gico de difusi&oacute;n en agar utilizando medio Mueller-Hinton y Providencia alcalifaciens, cuyo l&iacute;mite de cuantificaci&oacute;n se estableci&oacute; en 0.039 </i>&mu;<i>g/ml. Los datos de concentraci&oacute;n plasm&aacute;tica de ceftiofur en funci&oacute;n del tiempo se analizaron por el modelo farmacocin&eacute;tico no compartimental utilizando el sofware PK Solution 2.0. Los par&aacute;metros obtenidos para la v&iacute;a intravenosa fueron: vida media de eliminaci&oacute;n (t</i><Sub><i>1/2 </i></Sub>b<i>)= 1.63 </i>&plusmn; <i>0.04 horas, clearance total (Cl</i><Sub><i>tot</i></Sub><i>)= 3.3 </i>&plusmn; <i>1.1 ml/kg/min, volumen de distribuci&oacute;n (Vd</i><Sub><i>ss</i></Sub><i>)= 0.38 </i>&plusmn; <i>0.19 L/kg, &aacute;rea bajo la curva (ABC)= 716.5 </i>&plusmn; <i>225.5 </i>&mu;<i>g/min/ml. Estos valores no difieren significativamente de los obtenidos del ensayo intramuscular (p &lt; 0.05) y son similares a los informados en otras especies animales con ceftiofur. En el ensayo intramuscular se obtuvo una concentraci&oacute;n m&aacute;xima (C</i><Sub><i>m&aacute;x</i></Sub><i>) de 3.6 </i>&plusmn; <i>0.5 </i>&mu;<i>g/ml, con un tiempo m&aacute;ximo (t</i><Sub><i>m&aacute;x</i></Sub><i>) de 0.53 </i>&plusmn; <i>0.31 horas y elevada biodisponibilidad (97.6 &plusmn; 0.1%). Los resultados indican que la aplicaci&oacute;n intramuscular provee r&aacute;pida absorci&oacute;n y &oacute;ptima biodisponibilidad, generando niveles plasm&aacute;ticos que exceden la concentraci&oacute;n inhibitoria m&iacute;nima (CIM) de pat&oacute;genos respiratorios sensibles durante 12 horas. Considerando estos resultados y la CIM</i><Sub><i>90 </i></Sub><i>(</i>&pound; <i>0.06 </i>&mu;<i>g/ml) frente a bacterias como Pasteurella haemolitica y multocida, se propone como tratamiento de este tipo de cuadros infecciosos en caprinos, una dosis de mantenimiento de 1.3 mg/kg cada 12 horas por v&iacute;a intramuscular, cuyo predictor de eficacia (t &gt; CIM) se calcul&oacute; en 77.8 %. </i>    <br>       <br>   Palabras clave: </b><i>cabras, cefalosporinas, ceftiofur, farmacocin&eacute;tica, Pasteurella spp. </i>    <br>       <br>   <b>Introducci&oacute;n</b>    <br>      <br>  El ceftiofur es una cefalosporina de tercera  generaci&oacute;n indicada en la terap&eacute;utica de infecciones  bacterianas respiratorias de animales dom&eacute;sticos  debido a las &oacute;ptimas concentraciones alcanzadas  en pulm&oacute;n (4, 11, 13) y a la susceptibilidad de las  bacterias implicadas (1, 21, 25). Se reportan valores de  concentraci&oacute;n inhibitoria m&iacute;nima (CIM90) de &pound; 0.06 &mu;g/ml para el g&eacute;nero Pasteurella (25). El ceftiofur  ejerce su acci&oacute;n antibacteriana modificando laintegridad de la pared celular, mediante el bloqueo  de la transpeptidasa o por la uni&oacute;n a prote&iacute;nas  fijadoras de penicilinas (PBPs), ubicadas en  la superficie de la membrana citoplasm&aacute;tica,  vitales para el crecimiento bacteriano, pues  controlan los procesos de elongaci&oacute;n y  divisi&oacute;n, comport&aacute;ndose como transpeptidasas,   d-carboxipeptidasas e indirectamente como transglicolasas, incrementado la actividad autol&iacute;tica y destrucci&oacute;n del microorganismo. El ceftiofur exhibe un amplio espectro de actividad frente a pat&oacute;genos Gram positivos y Gram negativos tales como <i>Pasteurella multocida, Pasteurella haemolytica, Haemophilus somnus y Escherichia coli, </i>inclusive cepas productoras de betalactamasas (12, 21, 27). <i>In vivo </i>e <i>in vitro </i>es m&aacute;s eficaz que la ampicilina y las cefalosporinas precedentes (27), debido a la incorporaci&oacute;n en su estructura del grupo aminotiazol, que intensifica la afinidad por PBPs de Gram negativas y el grupo metoximino, que le confiere estabilidad frente a las betalactamasas (14, 16, 18). El ceftiofur, as&iacute; como los dem&aacute;s antibi&oacute;ticos betalact&aacute;micos, desarrolla una actividad bactericida que es dependiente del tiempo de exposici&oacute;n, el cual se define como el porcentaje del intervalo de dosis durante el cual la concentraci&oacute;n libre del antibi&oacute;tico excede el valor del CIM, relaci&oacute;n que se expresa como t &gt;CIM y que para este grupo de antibi&oacute;ticos constituye el mejor predictor del efecto bactericida <i>in vivo </i>y de eficacia cl&iacute;nica (7). Un resultado exitoso con cefalosporinas de amplio espectro se lograr&iacute;a si &eacute;stas consiguiesen niveles superiores al CIM durante un 60-70 % del tiempo del intervalo de dosificaci&oacute;n, para la mayor&iacute;a de los pat&oacute;genos sensibles y del 40-50 % cuando se considera <i>S. aureus</i>, diferencia debida al efecto post-antibi&oacute;tico <i>in vivo </i>que ejerce sobre bacterias Gram positivas (17, 24). En general, las cefalosporinas muestran una absorci&oacute;n intramuscular r&aacute;pida y variable en cantidad, seg&uacute;n el compuesto considerado y distribuci&oacute;n limitada al espacio extracelular. Las concentraciones obtenidas en fluidos como el pleural, peritoneal y sinovial,son menores que las plasm&aacute;ticas, pero es mayor el tiempo que los niveles exceden la CIM en estos fluidos(7). Presentan, adem&aacute;s vida media plasm&aacute;tica que oscila entre 0.5-5 horas, seg&uacute;n la cefalosporina considerada y eliminaci&oacute;n activa por orina (15, 21, 28). Los antecedentes del ceftiofur por aplicaci&oacute;n intramuscular de 2.2 mg/kg en bovinos (26), ovinos (6), equinos (3, 11, 12) y caprinos (5) indican absorci&oacute;n r&aacute;pida y completa (5, 6), obteni&eacute;ndose picos plasm&aacute;ticos de 4.46-7.98 &mu;g/ml entre 0.81 y 1.33 horas (11, 12), respectivamente. Presenta un volumen de distribuci&oacute;n al estado estacionario de 0.22 -0.25 L/kg (5, 26) y una vida media de eliminaci&oacute;n que fluct&uacute;a en 4 horas en ovinos (6), caprinos (5) y equinos (3) a    7.12 horas en bovinos (26). En distintos tejidos, el ceftiofur es transformado r&aacute;pidamente en desfuroil ceftiofur (9, 10, 20), metabolito primario que retiene la actividad de su precursor (20, 23), adem&aacute;s posee marcada afinidad por prote&iacute;nas tisulares y alb&uacute;mina (9, 20), si bien el metabolismo y la fracci&oacute;n libre difieren seg&uacute;n la especie (9, 10). Los antecedentes microbiol&oacute;gicos del ceftiofur y las escasas referencias en caprinos justificaron este estudio con los prop&oacute;sitos de cuantificar niveles plasm&aacute;ticos, determinar par&aacute;metros farmacocin&eacute;ticos y en funci&oacute;n de los datos obtenidos, proponer una dosis de mantenimiento por v&iacute;a intramuscular y establecer, no obstante la actividad bactericida y de amplio espectro exhibida por el ceftiofur, el par&aacute;metro predictor de eficacia cl&iacute;nica sobre <i>Pasteurella </i>spp, pat&oacute;geno relevante del &aacute;rbol respiratorio en varias especies animales incluidos los caprinos, &uacute;nico microorganismo del cual se disponen datos que indican su sensibilidad al ceftiofur (25).     <br>       <br>   <b>Materiales y m&eacute;todos</b>    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br> El experimento se realiz&oacute; en un establecimiento dedicado a la crianza de caprinos, pr&oacute;ximo a la ciudad de R&iacute;o Cuarto, provincia de C&oacute;rdoba, Argentina, en los meses de verano del a&ntilde;o 2005, en los cuales se registr&oacute; una temperatura media de 23 &ordm;C y humedad relativa ambiente del 68 %. Como sujetos experimentales se utilizaron hembras caprinas adultas (n= 6) no gestantes, de raza criolla, seleccionadas al azar de una poblaci&oacute;n homog&eacute;nea (n= 75), cl&iacute;nicamente sanas, con un peso corporal de 35 &plusmn; 9 kg, sin antecedentes de tratamientos con antimicrobianos y sometidas a un sistema de crianza de semi estabulado consistente en acceso libre a pasturas naturales durante el d&iacute;a, encierre nocturno en corrales cubiertos y agua <i>ad libitum</i>. Los animales se separaron en dos grupos. El grupo I (n= 3), recibi&oacute; una dosis &uacute;nica de 2.2 mg/kg de ceftiofur s&oacute;dico en soluci&oacute;n inyectable al 5% en forma de bolo en la vena yugular derecha, y el grupo II (n= 3), recibi&oacute; la misma dosis en el m&uacute;sculo semitendinoso izquierdo. Diez d&iacute;as despu&eacute;s el grupo I recibi&oacute; igual dosis del antibi&oacute;tico por v&iacute;a intra muscular y el grupo II por v&iacute;a intravenosa. De cada animal se colectaron 3 ml de sangre de la vena yugular izquierda en tubos heparinizados, previo al suministro del antib&oacute;tico y en distintos tiempos hasta 12 horas siguientes a la administraci&oacute;n del antibi&oacute;tico, los tubos se centrifugaron a 1200 g durante 15 minutos, para obtener los plasmas que se conservaron a -20 &deg;C hasta su an&aacute;lisis. La determinaci&oacute;n de ceftiofur en plasma se efectu&oacute; por el m&eacute;todo microbiol&oacute;gico cl&aacute;sico de difusi&oacute;n en agar de acuerdo a Bennett <i>et al </i>(2). Las muestras y una curva de calibraci&oacute;n confeccionada con 10 diluciones est&aacute;ndares de ceftiofur patr&oacute;n (20 a 0.039 &mu;g/ml) en plasma caprino, se sometieron simult&aacute;neamente y por triplicado al ensayo microbiol&oacute;gico, utilizando un medio Mueller-Hinton y un cultivo fresco de 18 horas de <i>Providencia alcalifaciens </i>con una densidad &oacute;ptica equivalente a Mc Farland 1 al 0.5%, como microorganismo detector. Las placas sembradas se refrigeraron a 4 &deg;C durante 60 minutos y luego se incubaron a 33 &deg;C durante 12 horas. Al t&eacute;rmino de este per&iacute;odo se midieron los di&aacute;metros de los halos de inhibici&oacute;n producidos con un calibrador digital.     <br>       <br>   La cuantificaci&oacute;n plasm&aacute;tica de ceftiofur se estableci&oacute; confrontando di&aacute;metros de halos de inhibici&oacute;n versus los generados por la diluci&oacute;n est&aacute;ndar, empleando una curva de regresi&oacute;n semilogar&iacute;tmica (r<Sup>2</Sup>= 0.98), utilizando el procedimiento propuesto por Nouws y Ziv (19). Los datos individuales de concentraciones plasm&aacute;ticas en los distintos tiempos se sometieron a un an&aacute;lisis farmacocin&eacute;tico no compartimental, utilizando el programa PK Solution 2.0 (8). La dosis de mantenimiento (DM) para la aplicaci&oacute;n intramuscular se estim&oacute; seg&uacute;n Ritchel (22), de acuerdo a la siguiente f&oacute;rmula:     <br>    <br>    DM=  C<Sub>ss-av </Sub>. t . V<Sub>d ss   </Sub>/ 1.44 . t<Sub>&frac12; </Sub>b . f     <br>    <br>considerando la concentraci&oacute;n deseada en estado de equilibrio (C<Sub>ss-av </Sub>= 0.5 &mu;g/ml) y los valores obtenidos de volumen de distribuci&oacute;n al estado estacionario (Vd<Sub>ss</Sub>), vida media de eliminaci&oacute;n (t<Sub>&frac12; </Sub>b), biodisponibilidad (f), y 12 horas como intervalo de dosificaci&oacute;n (t). La fracci&oacute;n de tiempo entre el intervalo de dosis (% t &gt; CIM) en que los niveles plasm&aacute;ticos exceden la CIM se determin&oacute; por la ecuaci&oacute;n propuesta por Turnidge (24):     <br>    <br>   t &gt;CIM= ln (DM / Vd . CIM) x t<Sub>&frac12;</Sub>b / ln 2 . 100 / t     <br>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   donde ln= es el logaritmo natural, DM= dosis de mantenimiento, Vd= volumen de distribuci&oacute;n, y t = intervalo de dosis expresado en horas.     <br>       <br>   <b>Resultados</b>    <br>       <br> La figura 1 representa las curvas generadas por las concentraciones plasm&aacute;ticas promedio (&plusmn; DE) en funci&oacute;n del tiempo, tras la aplicaci&oacute;n endovenosa e intramuscular. Los par&aacute;metros farmacocin&eacute;ticos calculados y los respectivos coeficientes de determinaci&oacute;n de las curvas te&oacute;ricas de disposici&oacute;n para cada v&iacute;a estudiada se se&ntilde;alan en la tabla 1. Con estos datos, se determin&oacute; como dosis de mantenimiento la administraci&oacute;n intramuscular de 1.3 mg/kg de ceftiofur s&oacute;dico cada 12 horas. Considerando la CIM90 requerida por <i>Pasteurella </i>spp (25), el predictor de eficacia (t &gt; CIM) se estim&oacute; en 77.8 %.     <br>       <br>   <b>Tabla 1.</b> Par&aacute;metros farmacocin&eacute;ticos (&plusmn; D.E.) luego de la administraci&oacute;n endovenosa e intramuscular de 2.2 mg/kg de ceftiofur s&oacute;dico en caprinos.     <br>       <br>   <img src="/img/revistas/rccp/v19n3/3a07t1.jpg">    <br>     ]]></body>
<body><![CDATA[<br> <img src="/img/revistas/rccp/v19n3/3a07f1.jpg">    <br>     <br> <b>Discusi&oacute;n</b>          <br>     <br> En las v&iacute;as estudiadas y luego de la administraci&oacute;n &uacute;nica, el m&eacute;todo implementado result&oacute; sensible para cuantificar las concentraciones plasm&aacute;ticas del antibi&oacute;tico que subsisten 12 horas por encima de la CIM<Sub>90 </Sub> requerida por pat&oacute;genos susceptibles del &aacute;rbol respiratorio; no obstante, los niveles son inferiores a los reportados por cromatograf&iacute;a l&iacute;quida de alta performance (HPLC) (4, 6, 13). Esta discrepancia deriva en que el m&eacute;todo HPLC estima la totalidad del f&aacute;rmaco (4, 13), en tanto la valoraci&oacute;n microbiol&oacute;gica, si bien no discrimina entre el antibi&oacute;tico y su metabolito activo, s&oacute;lo determina la actividad microbiol&oacute;gica del f&aacute;rmaco libre, no unido a macromol&eacute;culas (4,12). Los valores de los par&aacute;metros farmacocin&eacute;ticos obtenidos por v&iacute;a intravenosa no difieren significativamente de los obtenidos del ensayo intramuscular (p&lt;0.05) y son similares a los informados en otras especies animales para esta droga (15, 21, 28). Las curvas de disposici&oacute;n y el &aacute;rea bajo la curva (ABC) son comparables, en consecuencia es posible optar por la v&iacute;a intramuscular, que ofrece &oacute;ptima biodisponibilidad (97.6 &plusmn; 0.1%), en consonancia con experiencias realizadas en ovinos (6) y caprinos (5). Similar a lo informado en equinos (3) y caprinos (5), en el ensayo intramuscular se comprueba una r&aacute;pida absorci&oacute;n, generando una concentraci&oacute;n m&aacute;xima (C<Sub>m&aacute;x</Sub>) de 3.6 &plusmn; 0.5 &mu;g/ml, inferior al encontrado en ovinos (6), caprinos (5) y equinos (3, 11, 12); en tanto el t<Sub>m&aacute;x </Sub>(0.53 &plusmn; 0.31 horas) es cercano al comunicado en equinos (3, 11, 12) y ovinos (6). De acuerdo con Courtin <i>et al </i>(5), el ceftiofur se distribuye pronto desde el compartimiento central por las v&iacute;as estudiadas y revela limitada permanencia en el organismo, tal como indican los par&aacute;metros de t<Sub>&frac12; </Sub>b(1.63 &plusmn; 0.26 horas por v&iacute;a endovenosa y 1.71 &plusmn; 0.37 horas por aplicaci&oacute;n intramuscular) inferiores a lo comunicado en bovinos (26), equinos (3) y el tiempo medio de residencia (TMR= 1.85 &plusmn; 0.34 horas por v&iacute;a endovenosa y 2.74 &plusmn; 0.83 horas por administraci&oacute;n intramuscular), significativamente menor a las 3.67 (12), 6.10 &plusmn; 1.27 horas informada en equinos (11), 4.78 horas en caprinos (5) y 6.48 horas en bovinos (26). Los reducidos valores de tb y TMR obtenidos ser&iacute;an consecuencia de la &frac12;r&aacute;pida eliminaci&oacute;n, seg&uacute;n expresa el Cl<Sub>tot </Sub>(3.3 ml/min/kg) que supera al informado en caprinos por Courtin <i>et al </i>(5) (1.1 ml/min/kg) o tambi&eacute;n puede deberse a la menor afinidad del ceftiofur &oacute; su metabolito por prote&iacute;nas plasm&aacute;ticas con respecto a tisulares (26), lo que explicar&iacute;a el Vd<Sub>&aacute;rea </Sub>(0.49 &plusmn; 0.07 L/kg) encontrado por v&iacute;a intramuscular que excede al comunicado para el ceftiofur (26), y otras cefalosporinas en animales dom&eacute;sticos (1, 4, 28), insinuando mejor difusi&oacute;n tisular. Aunque la tercera generaci&oacute;n de cefalosporinas es m&aacute;s liposoluble y en consecuencia su farmacocin&eacute;tica es m&aacute;s conveniente (1, 14), en general las caracter&iacute;sticas del ceftiofur s&oacute;dico en caprinos concuerdan con el perfil exhibido por el conjunto de las cefalosporinas (15, 21, 28). Contemplando la excelente biodisponibilidad obtenida, una relaci&oacute;n C<Sub>max </Sub>/ CIM<Sub>90 </Sub><i>Pasteurella </i>spp favorable (7, 17), y que el satisfactorio t &gt; CIM obtenido (77.8 %) vaticina un resultado cl&iacute;nico-bacteriol&oacute;gico exitoso en presencia de patolog&iacute;as respiratorias producidas por este microorganismo (24), se propone la aplicaci&oacute;n intramuscular de 1.3 mg/kg de ceftiofur s&oacute;dico cada 12 horas como dosis de mantenimiento en caprinos.     <br>     <br> <b><i>Summary </i>     <br>     <br> <i>Pharmacokinetics and bioavailability of ceftiofur sodium in goats </i>    <br>     ]]></body>
<body><![CDATA[<br> <i>Pharmacokinetic parameters of ceftiofur sodium were determined with a unique dose of 2.2 mg/kg either by the intravenous on the intramuscular routes, in a crossed design treatment in non pregnant adult female goats (n= 6). Variations in plasmatic concentrations over time were determined by the microbiological assay in Mueller-Hinton agar, with Providencia alcalifaciens as indicator. The limit of quantification was set in 0.039 mg/ml. The plasmatic concentrations of Ceftiofur were determined by the non compartimental pharmacokinetic model using sofware PK Solution 2.0. The parameters obtained when the intravenous route was used were: average elimination time (t1/2 </i>b<i>) = 1.63 &plusmn; 0.04 hours, total clearance (Cltot) = 3.3 &plusmn; 1.1 ml/kg/min, volume of distribution (Vdss) = 0.38 &plusmn; 0.19 L/Kg, area under the curve (ABC) = 716.5 &plusmn; 225.5 mg/min/ml. These values did not differ significantly from those obtained by the intramuscular test (P &lt; 0.05) and are similar to those informed in other animal species for the same drug. When the intramuscular route was used , the maximum concentration (Cm&aacute;x) of 3.6 &plusmn; 0.5 mg/ml was obtained at a maximum time (tm&aacute;x) of 0.53 &plusmn; 0.31 min, and the bioavailability was high (97.6 &plusmn; 0.1%). The results indicate that the intramuscular application provides fast absorption and optimal bioavailability, generating plasmatic levels that exceed the MIC90 for sensitive respiratory pathogens for a period of 12 hours. Considering these results and a MIC (</i>&pound;<i>0.06 mg/ml) for bacteria like Pasteurella haemolitica and multocida, the treatment of this type of infections in goats, requires 1.3 mg/Kg every 12 hours by intramuscular route, to obtain a predictive effectiveness (t&gt; MIC) of 77.8%. </i>    <br>     <br> Key words:</b> <i>ceftiofur, cephalosporins, goats, Pasteurella spp, pharmacokinetics. </i>    <br>     <br> <b>Referencias</b>    <br>     <!-- ref --><br> 1. Barragry T, editor. Veterinary drug therapy. Philadelphia: Lea &amp; Febiger; 1994.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000059&pid=S0120-0690200600030000700001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>     <!-- ref --><br> 2. Bennett J, Brodie J, Brenner E, Kirby W. Simplified accurate method for antibiotic assay of clinical specimens. Appl Microbiol 1966;14:170-177.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000061&pid=S0120-0690200600030000700002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><br> 3. Cervantes C, Brown M, Gronwall R, Merritt K. Pharmacokinetics and concentrations of ceftiofur sodium in body fluids and endometrium after repeated intramuscular injections in mares. Am J Vet Res 1993;54:573-575.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000063&pid=S0120-0690200600030000700003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>     <!-- ref --><br> 4. Clarke C, Brown S, Streeter R, Clarke J, Hamlow P. Penetration of parenterally administered ceftiofur into sterile vs. Pasteurella haemolytica-infected tissue chambers in cattle. J Vet Pharmacol Therap 1996;19:376-381.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S0120-0690200600030000700004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>     <!-- ref --><br> 5. Courtin F, Craigmill A, Wetzlich S, Gustafson C, Arndt T. Pharmacokinetics of ceftiofur and metabolites after single intravenous and intramuscular administrations and multiple intramuscular administration of ceftiofur sodium to dairy goats. J Vet Pharmacol Therap 1997;20:368-373.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0120-0690200600030000700005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>     <!-- ref --><br> 6. Craigmill A, Brown S, Wetzlich S, Gustafson C, Arndt T. Pharmacokinetics of ceftiofur and metabolites after single intravenous and intramuscular administrations of ceftiofur sodium to sheep. J Vet Pharmacol Ther 1997;20:139-144.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0120-0690200600030000700006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>     <!-- ref --><br> 7. Drusano G, Craig W. Relevance of pharmacokinetics and pharmacodynamics in the selection for respiratory tract infections. J Chemother 1997;9:38-44.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0120-0690200600030000700007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><br> 8. Farrier A. PK Solution 2.0 non compartmental pharmacokinetic analysis. Ashland: SummitPK Co; 1999.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0120-0690200600030000700008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>     <!-- ref --><br> 9. Jaglan P, Kubicek M, Arnold T, Cox B, Robins R et al. Metabolism of ceftiofur. Nature of urinary and plasma metabolites in rats and cattle. J Agric Food Chem 1989; 37:1112-1118.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0120-0690200600030000700009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>     <!-- ref --><br> 10. Jaglan P, Cox B, Arnold T, Kubicek M, Stuart D et al. Liquid chromatographic determination of desfuroylceftiofur metabolite of ceftiofur as residue in cattle plasma. J Assoc Anal Chem 1990;73:26-30.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0120-0690200600030000700010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>     <!-- ref --><br> 11. Jaglan P, Roof R, Yein F, Arnold T, Brown S et al. Concentration of ceftiofur metabolites in the plasma and lung of horses following intramuscular treatment. J Vet Pharmacol Therap 1994;17:24-30.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0120-0690200600030000700011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>     <!-- ref --><br> 12. Guglick M, Mac Allister G, Clarke C, Pollet R, Hague C et al. Pharmacokinetics of cefepime and comparison with those of ceftiofur in horses. Am J Vet Res 1998;59:    458-463.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0120-0690200600030000700012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><br> 13. Halstead S, Walker R, Baker J, Holland R, STein G et al. Pharmacokinetics evaluation of ceftiofur in serum, tissue chambers fluid and bronchial secretions from healthy beef-bred calves. Can J Vet Res 1992;56:269-274.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0120-0690200600030000700013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>     <!-- ref --><br> 14. Klein N, Cunha B. Third-generation cephalosporins. Med Clin North Am 1995;79:705-719.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0120-0690200600030000700014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>     <!-- ref --><br> 15. Klepser M, Marangos M, Patel K, Nicolau D, Quintiliani R et al. Clinical pharmacokinetics the newer cephalosporins. Clin Pharmacok 1995;28:361-384.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0120-0690200600030000700015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>     <!-- ref --><br> 16. Lancini G, Parenti F, Gallo G, editors. Antibiotics. a multidisciplinary approach. New York: Plenum Press; 1995; 277p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0120-0690200600030000700016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>     <!-- ref --><br> 17. Lees P, Shojaee F. Rational dosing: animals versus humans. 8 ed. ISAP Symp. Nijmegen, The Netherlands; 2001.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0120-0690200600030000700017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><br> 18. Livermore D. b-Lactamase-mediated resistance and opportunities for its control. J Antimicrob Therap 1998;41(Suppl D):25-41.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0120-0690200600030000700018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>     <!-- ref --><br> 19. Nouws J, Ziv G. The effect of storage at 4&deg;C with antibiotic     residues in kidney and meat tissues of dairy cows. Tijdschr     Diergeneesk 1976;101:119-127.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0120-0690200600030000700019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>     <!-- ref --><br> 20. Olson S, Beconi-Barker M, Smith E, Martin R, Vidmar T et al. In vitro metabolism of ceftiofur in bovine tissues. J Vet Pharmacol Therap 1998;21:112-120.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0120-0690200600030000700020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>     <!-- ref --><br> 21. Prescott J. Antibi&oacute;ticos betalact&aacute;micos: penicilinas     y cefalosporinas. En: Prescott J, Baggot J, Walker R.     Terap&eacute;utica antimicrobiana en medicina veterinaria.     3 ed. Buenos Aires: Interm&eacute;dica; 2002; p.118-141.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0120-0690200600030000700021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>     <!-- ref --><br> 22. Ritschel WA. Kinetic model and dosage regime. En: Kuammerle H &amp; Brenkel P, Eds. Clinical pharmacology     and pregnacy. Ames: MTP Press; 1984.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0120-0690200600030000700022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><br> 23. Salmon S, Watts J, Yancey R. In vitro activity of ceftiofur and its primary metabolite, desfuroylceftiofur, against organisms of veterinary importance. J Vet Diagn Invest 1996;8:332-336.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0120-0690200600030000700023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>     <!-- ref --><P   >24. Turnidge J. The pharmacodynamics of b-lactams. Clin     Infect Dis 1998;27:10-22.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0120-0690200600030000700024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>         <!-- ref --><br>     25. Watts J, Yancey R, Salmon S, Case C. A 4-year survey of     antimicrobial susceptibility trends from cattle with bovine     respiratory disease in North America. J Clin Pharmacol     1994;32:725-731.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0120-0690200600030000700025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>         <!-- ref --><br>     26. Whittem T, Freeman D, Hanlon D, Parton K. The effects     on the pharmacokinetics of intravenous ceftiofur sodium     in dairy cattle of simultaneous intravenous acetyl salicylate     (aspirin) or probenecid. J Vet Pharmacol Therap 1995;     18:61-67.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0120-0690200600030000700026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>         <!-- ref --><br>     27. Yancey R, Kinney M, Roberts B, Goodenough K, Hamel J     et al. Ceftiofur sodium, a broad-spectrum cephalosporin:     evaluation in vitro and in vivo in mice. Am J Vet Res     1987;48:1050-1053.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0120-0690200600030000700027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>         ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><br>     28. Vaden S, Riviere J. Penicillins and related b-lactam     antibiotics. En: Adams R, editor. Veterinary pharmacology     and therapeutics, 7 ed. Ames: State University Press; 1995; p. 774-784.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0120-0690200600030000700028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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