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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Comparación de cuatro protocolos anestésicos para ovariohisterectomía canina en jornadas de esterilización masiva]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Comparison between four anesthetic protocols for bitch neutering in ambulatory programs]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Four anesthetic protocols were evaluated for ovariohysterectomy in twenty female dogs. The bitches were randomly divided in four groups of five animals each and were assigned to one of four different anesthetic protocols. In all the protocols xylazine, acepromacine and atropine were included in preanesthesia; ketamine was added to groups 3 and 4 in premedication. Induction was made with ketamine in groups 1 and 4, or propofol in groups 2 and 3. Three anesthesiological variables (latency period, length of the anesthesia and recovery from anesthesia) and six physiological variables (body temperature, cardiac frequency, respiratory frequency, diastolic and systolic blood pressure, oxygen saturation in blood, carbon dioxide in exhaled air) were evaluated. For analysis of data a fully random - balanced fix effect - experimental design, with five replications for treatment was used. The Tukey test with 95% confidence intervals was used for analysis of quantitative variables. A unidirectional descriptive analysis was also used. Body temperature decreased up to 37 ºC in all animals in group 1. The respiratory frequency showed a great variation, especially in groups 1 and 2 (without ketamine in premedication), being more stable in protocol 3 (propofol without ketamine) (p<0.05). Cardiac frequency was slightly increased in group 1. Oxygen saturation in blood and carbon dioxide in exhaled air were stable and similar in all groups (within physiological limits). Systolic and diastolic blood pressures were stable with propofol, higher with ketamine in preanesthesia and induction, and unstable when ketamine was used in induction only. The anesthesiological variables evaluated did not show statistically significant differences among the four protocols. Based on the clinical behavior and on the physiological variables, it was concluded that, the use of ketamine and propofol (protocol 3) for preanesthesia and induction, respectively, is the best anesthetic combination for massive neutering of bitches.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p><b>Comparaci&oacute;n de cuatro protocolos anest&eacute;sicos para ovariohisterectom&iacute;a canina en jornadas de esterilizaci&oacute;n masiva<Sup>&#182;</Sup></b></P >     <p><I>Comparison between four anesthetic protocols for </I><I>bitch neutering in ambulatory programs</I></P >     <p>&nbsp;</P >     <p>Jairo A Pe&ntilde;a<Sup><I>1*</I></Sup><I>,</I> MV, Esp.Clin.; Ra&uacute;l A S&aacute;nchez<Sup><I>1</I></Sup><I>,</I> MV; Luis F Restrepo<Sup><I>1</I></Sup>, Estad. Esp; John D Ruiz<Sup><I>2,</I></Sup> MV, MS.</P >     <p><Sup><I>1</I></Sup>Grupo de investigaci&oacute;n CENTAURO, Escuela de Medicina Veterinaria, Facultad de Ciencias Agrarias,   Universidad de Antioquia. AA.1226, Medell&iacute;n, Colombia.<br />   <Sup><I>2 </I></Sup>Grupo de investigaci&oacute;n en Ciencias Animales INCA-CES, Facultad de Medicina Veterinaria  y Zootecnia,      Universidad CES, Medell&iacute;n. Colombia.</P >     <p><a href="mailto:jalpeg@yahoo.es">jalpeg@yahoo.es</a></P >     <p>(Recibido: 2 febrero, 2007; aceptado: 31 julio, 2007)</P >     <p>&nbsp;</P >     <p><I>Resumen</I></P >     <p><I>En el presente estudio se evaluaron cuatro protocolos anest&eacute;sicos para ovariohisterectom&iacute;a en veinte </I><I>hembras caninas distribuidas al azar en cuatro grupos de cinco animales cada uno, y se asign&oacute;, al azar, </I><I>un protocolo diferente a cada grupo. Todos los grupos evaluados recibieron xilacina, acepromacina y </I><I>atropina en la preanestesia; adicionalmente, los grupos 3 y 4 recibieron ketamina. La inducci&oacute;n se llev&oacute; a </I><I>cabo con ketamina en los grupos 1 y 4, o con propofol en los grupos 2 y 3. En cada caso se evaluaron tres </I><I>variables anestesiol&oacute;gicas (periodo de latencia, duraci&oacute;n de la anestesia y recuperaci&oacute;n de la anestesia) </I><I>y seis variables fisiol&oacute;gicas (temperatura corporal, frecuencia card&iacute;aca, frecuencia respiratoria, presi&oacute;n </I><I>arterial diast&oacute;lica y sist&oacute;lica, saturaci&oacute;n de ox&iacute;geno en sangre y bi&oacute;xido de carbono en aire expirado). En </I><I>todos los protocolos, la temperatura corporal estuvo en descenso,  hasta un m&iacute;nimo de 37 &ordm;C registrados en </I><I>el protocolo 1. La frecuencia respiratoria tuvo grandes variaciones en los grupos 1 y 2 (sin ketamina en la </I><I>premedicaci&oacute;n) y fue m&aacute;s estable en el grupo 3 (propofol, sin ketamina) (p&lt;0.05). La frecuencia cardiaca </I><I>estuvo ligeramente aumentada en los grupos 1 y 4 (ketamina s&oacute;lo en inducci&oacute;n)  y fue  m&aacute;s estable en los </I><I>dem&aacute;s grupos. La saturaci&oacute;n de ox&iacute;geno en la sangre y la concentraci&oacute;n de bi&oacute;xido de carbono en aire </I><I>expirado, presentaron un comportamiento estable, siempre dentro de los rangos fisiol&oacute;gicos. La presi&oacute;n </I><I>arterial, tanto diast&oacute;lica como sist&oacute;lica, tuvo un comportamiento estable con el propofol, fue m&aacute;s alta </I><I>con el uso de ketamina en preanestesia e inducci&oacute;n,  y m&aacute;s inestable cuando se us&oacute; ketamina s&oacute;lo en la </I><I>inducci&oacute;n (p&lt;0.05). Las variables anestesiol&oacute;gicas no presentaron diferencias significativas. Con base </I><I>en el juicio cl&iacute;nico y en los resultados de las variables fisiol&oacute;gicas, se concluye que el uso de ketamina en </I><I>preanestesia, e inducci&oacute;n con propofol (protocolo 3), es la  combinaci&oacute;n anest&eacute;sica m&aacute;s recomendable </I><I>para este tipo de intervenciones.</I></P >     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Palabras clave<I>: </I><I>ketamina,</I> <I>latencia,</I> <I>propofol,</I> <I>protocolo,</I> <I>variable.</I></P >     <p><I>Summary</I></P >     <p><I>Four anesthetic protocols were evaluated for ovariohysterectomy in twenty female dogs. The bitches were </I><I>randomly divided in four groups of five animals each and were assigned to one of four different anesthetic </I><I>protocols. In all the protocols xylazine, acepromacine and atropine were included in preanesthesia; </I><I>ketamine was added to groups 3 and 4 in premedication. Induction was made with ketamine in groups 1 and </I><I>4, or propofol in groups 2 and 3. Three anesthesiological variables (latency period, length of the anesthesia </I><I>and recovery from anesthesia) and six physiological variables (body temperature, cardiac frequency, </I><I>respiratory frequency, diastolic and systolic blood pressure, oxygen saturation in blood, carbon dioxide in </I><I>exhaled air) were evaluated. For analysis of data a fully random - balanced fix effect - experimental design, </I><I>with five replications for treatment was used. The Tukey test with 95% confidence intervals was used for </I><I>analysis of quantitative variables. A unidirectional descriptive analysis was also used. Body temperature </I><I>decreased up to 37 &ordm;C in all animals in group 1. The respiratory frequency showed a great variation, </I><I>especially in groups 1 and 2 (without ketamine in premedication), being more stable in protocol 3 (propofol </I><I>without ketamine) (p&lt;0.05). Cardiac frequency was slightly increased in group 1. Oxygen saturation in </I><I>blood and carbon dioxide in exhaled air were stable and similar in all groups (within physiological limits). </I><I>Systolic and diastolic blood pressures were stable with propofol, higher with ketamine in preanesthesia </I><I>and induction, and unstable when ketamine was used in induction only. The anesthesiological variables </I><I>evaluated did not show statistically significant differences among the four protocols. Based on the clinical </I><I>behavior and on the physiological variables, it was concluded that, the use of ketamine and propofol </I><I>(protocol 3) for preanesthesia and induction, respectively, is the best anesthetic combination for massive </I><I>neutering of bitches.</I></P >     <p>Key words<I>: </I><I>ketamine,</I> <I>latency,</I> <I>propofol,</I> <I>protocol.</I> </P >     <p>&nbsp;</P >     <p>Introducci&oacute;n</P >     <p>La poblaci&oacute;n canina en la ciudad de Medell&iacute;n ha venido creciendo de manera gradual en los &uacute;ltimos a&ntilde;os, de tal manera que para el a&ntilde;o de 1983 hab&iacute;a una poblaci&oacute;n aproximada de 126.275 animales (16), y para 1993 (&uacute;ltimo censo en Medell&iacute;n), la poblaci&oacute;n canina se estim&oacute; en 180.021 caninos (1), con un incremento de 53.746 perros en 10 a&ntilde;os (42.56%). Frente a este marcado incremento, la Facultad de Ciencias Agrarias de la Universidad de Antioquia, cre&oacute; el programa de control de natalidad canina y felina, que ha logrado esterilizar    alrededor de 30.000 animales en los &uacute;ltimos cinco a&ntilde;os (23). Durante todo este tiempo, en las distintas jornadas de esterilizaci&oacute;n, se ha usado una combinaci&oacute;n anest&eacute;sica compuesta por atropina, acepromacina, ketamina y xilacina en la premedicaci&oacute;n y ketamina como agente inductor, siempre buscando conseguir condiciones ideales en este tipo de cirug&iacute;as ambulatorias; esto es, buena relajaci&oacute;n, per&iacute;odos de anestesia cortos,        recuperaci&oacute;n r&aacute;pida, f&aacute;cil administraci&oacute;n, bajos precios y r&aacute;pida recuperaci&oacute;n. </P >     <p>Aunque los resultados obtenidos a la fecha, en cuanto al comportamiento cl&iacute;nico de los pacientes, han sido satisfactorios, actualmente no se cuenta con estudios experimentales que respalden el uso de la combinaci&oacute;n utilizada. </P >     <p>Con relaci&oacute;n al protocolo anest&eacute;sico utilizado, es importante recordar que: 1) la atropina, garantiza la reducci&oacute;n de la salivaci&oacute;n y de las secreciones bronquiales, a la vez que previene la bradicardia, reduce la incidencia de v&oacute;mito y disminuye la movilidad gastrointestinal (9, 20, 26), 2) con el uso de xilacina, se consigue analgesia y relajaci&oacute;n muscular, gracias a sus efectos inhibitorios en el sistema nervioso central (2, 20, 26), 3) la acepromacina, aunque induce hipotermia, se incluye en esta mezcla por su actividad tranquilizadora y su efecto antiem&eacute;tico (3, 12, 31), y 4) la ketamina es usada como agente inductor y como preanest&eacute;sico en algunos casos, entre cuyas caracter&iacute;sticas m&aacute;s importantes se destacan la inducci&oacute;n de una m&iacute;nima depresi&oacute;n cardiovascular y respiratoria (22, 27, 32), la acci&oacute;n analg&eacute;sica y el incremento de la temperatura corporal, la presi&oacute;n sangu&iacute;nea y el gasto cardiaco (10). </P >     <p>Adem&aacute;s de los medicamentos que se han venido usando en las jornadas de esterilizaci&oacute;n, en este proyecto se decidi&oacute; experimentar tambi&eacute;n con el propofol como agente inductor, ya que tiene un corto periodo anest&eacute;sico y un r&aacute;pido metabolismo hep&aacute;tico, lo que trae como consecuencia una r&aacute;pida recuperaci&oacute;n, con escaso efecto acumulativo (21). Estas propiedades hacen del propofol un agente muy importante para contribuir a las condiciones ideales de un protocolo anest&eacute;sico en condiciones de esterilizaci&oacute;n masiva, dado que complementa y, de alguna manera, contrarresta efectos adversos de los otros agentes. </P >     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Por lo tanto, el presente trabajo tuvo como objetivo evaluar cuatro protocolos anest&eacute;sicos, con el fin de recomendar la mejor combinaci&oacute;n para utilizar para el programa de esterilizaci&oacute;n masiva          de caninos. </P >     <p>&nbsp;</P >     <p>Materiales y m&eacute;todos</P >     <p><I>Aspectos bio&eacute;ticos</I></P >     <p>El presente estudio se llev&oacute; a cabo, previo consentimiento informado y firmado por parte de los propietarios de los animales. Para el efecto se seleccionaron  veinte hembras caninas, sin distinci&oacute;n de raza o cruce (exceptuando los braquic&eacute;falos), con condici&oacute;n corporal entre tres y cuatro (escala de 1 a 5), de diferentes edades, cl&iacute;nicamente sanas, procedentes de diferentes barrios del valle de Aburr&aacute; (Medell&iacute;n, Antioquia, Colombia) y adscritas al programa de atenci&oacute;n primaria y control de natalidad canina y felina, efectuado por la Facultad de Ciencias Agrarias de la Universidad de Antioquia, en coordinaci&oacute;n con la Alcald&iacute;a de Medell&iacute;n (Colombia). </P >     <p>De los animales previamente inscritos, se seleccionaron, por sorteo y al azar, cuatro grupos de cinco hembras cada uno para ovariohisterectom&iacute;a. Los pacientes usados fueron criollos en su mayor&iacute;a (s&oacute;lo seis de ellos fueron de la raza French poodle y uno de la raza Pinsher), con edades promedio de 30, 13.2, 16.4 y 19.4 meses, para cada uno de los protocolos, respectivamente; los pesos promedio fueron de 5.4, 11.3, 8.5 y 5.3 kg, respectivamente. </P >     <p>Veinticuatro horas previas a la cirug&iacute;a, a cada uno de los animales se le tom&oacute; muestras de sangre para evaluar hemograma, leucograma, funci&oacute;n hep&aacute;tica y funci&oacute;n renal. Estas muestras fueron tomadas con el fin de relacionar los hallazgos cl&iacute;nicos y de laboratorio, para tener mayor certeza sobre el buen estado de salud del animal, ya que solamente se trabaj&oacute; con pacientes ASA I (de acuerdo con la clasificaci&oacute;n internacional de la Sociedad Americana de Anestesistas). Los animales fueron sometidos a un ayuno de doce horas, previo a la cirug&iacute;a. El primer d&iacute;a de sesi&oacute;n de cirug&iacute;as, se hizo la asignaci&oacute;n, por sorteo, del protocolo a usar en cada una de las sesiones programadas (<a href="#t1">v&eacute;ase Tabla 1</a>).</P >     <p><img src="/img/revistas/rccp/v20n3/v20n3a04t1.png"><a name="t1" id="t1"></a></P >     <p>El d&iacute;a de la cirug&iacute;a, los animales fueron llevados a las instalaciones del Centro de Veterinaria y Zootecnia de la Universidad CES en Envigado (Colombia) y se les practic&oacute; un examen cl&iacute;nico completo, seg&uacute;n el protocolo habitual, con el animal en reposo. Pasados cinco minutos despu&eacute;s de la aplicaci&oacute;n del preanest&eacute;sico por v&iacute;a IM, se procedi&oacute; a tomar la frecuencia cardiaca y la temperatura            rectal (variables en preanestesia). Diez minutos despu&eacute;s de premedicar, se inyect&oacute; el agente inductor respectivo, por v&iacute;a endovenosa, de acuerdo con los protocolos previamente establecidos. </P >     <p>Para el mantenimiento anest&eacute;sico, se canul&oacute; la vena cef&aacute;lica, en donde se dej&oacute; la jeringa cargada con el agente inductor, con el fin de aplicar bolos cada vez que fuera necesario. Transcurridos cuatro minutos de la anestesia, y por medio de un monitor electr&oacute;nico (Datex &ndash; Ohmeda 8000059-12, Finlum, USA), se procedi&oacute; a medir las variables fisiol&oacute;gicas: presi&oacute;n arterial (mmHg), saturaci&oacute;n de ox&iacute;geno en sangre, frecuencia cardiaca (latidos/minuto), frecuencia respiratoria (respiraciones/minuto), temperatura corporal (&ordm;C) y concentraci&oacute;n de CO<Sub>2</Sub> en aire expirado, todas bajo condiciones de transanestesia inicial; luego se efectuaron mediciones cada cuatro minutos, hasta el momento en que el animal hizo intentos de incorporarse.</P >     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Las variables anestesiol&oacute;gicas (expresadas en minutos) fueron: per&iacute;odo de latencia (PL = tiempo transcurrido entre la administraci&oacute;n del anest&eacute;sico y la p&eacute;rdida del reflejo interdigital); duraci&oacute;n de la anestesia: (DA = tiempo trascurrido entre la p&eacute;rdida y la recuperaci&oacute;n del reflejo interdigital); y recuperaci&oacute;n de la anestesia (RA = tiempo transcurrido entre la recuperaci&oacute;n del reflejo interdigital y el momento en que el animal              realiza movimientos tratando de incorporarse).</P >     <p>Las cirug&iacute;as fueron practicadas siempre por el mismo equipo de trabajo y una vez terminada se procedi&oacute; a la aplicaci&oacute;n de un antibi&oacute;tico de amplio espectro y larga acci&oacute;n (penicilina benzat&iacute;nica + estreptomicina). </P >     <p><I>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</I></P >     <p>Para el an&aacute;lisis de los datos, se emple&oacute; un dise&ntilde;o de clasificaci&oacute;n experimental completamente aleatorizado, balanceado efecto fijo, con cinco replicaciones por tratamiento, complement&aacute;ndose con la prueba de Tukey con intervalos de confiabilidad del 95% para las variables de &iacute;ndole cuantitativo; de igual forma se hizo un an&aacute;lisis descriptivo unidireccional, usando el programa SAS. </P >     <p>&nbsp;</P >     <p>Resultados</P >     <p><I>Datos anest&eacute;sicos</I></P >     <p>La inducci&oacute;n anest&eacute;sica se realiz&oacute; utilizando dosis promedio de 14.4 mg/kg de ketamina en el protocolo uno, 5.27 mg/kg de propofol en el protocolo dos, 3.18 mg/kg de propofol en el protocolo tres y 12.42 mg/kg de ketamina para el protocolo 4 (<a href="#t2">v&eacute;ase Tabla 2</a>).</P >     <p><img src="/img/revistas/rccp/v20n3/v20n3a04t2.png"><a name="t2" id="t2"></a></P >     <p>En la tabla no se observan diferencias estad&iacute;sticamente significativas (p&gt;0.05).</P >     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>PL: per&iacute;odo de latencia; DA: duraci&oacute;n de la anestesia; RA: recuperaci&oacute;n de la anestesia</P >     <p><I>Variables fisiol&oacute;gicas</I></P >     <p>Los resultados de las variables fisiol&oacute;gicas, medidas cada cuatro minutos (temperatura corporal, frecuencias respiratoria y cardiaca, oximetr&iacute;a, capnograf&iacute;a, presi&oacute;n arterial sist&oacute;lica y diast&oacute;lica), con cada uno de los cuatro protocolos evaluados,  se muestran en las figuras 1 a  7. </P >     <p><I>Temperatura corporal</I>. El an&aacute;lisis descriptivo de esta variable, para todos los protocolos, mostr&oacute; un coeficiente de variaci&oacute;n muy bajo (0.1 a 2.3%) con tendencia hacia la disminuci&oacute;n, pero nunca por fuera de los rangos fisiol&oacute;gicos, partiendo de un valor prequir&uacute;rgico promedio de 39.1 &ordm;C (<a href="#f1">v&eacute;ase Figura 1</a>). Al efectuar la prueba de comparaci&oacute;n por el m&eacute;todo de Tukey, se encontr&oacute; diferencia estad&iacute;stica significativa entre los protocolos 2 y 3 y entre los protocolos 3 y 4; sin embargo, dado que ning&uacute;n valor estuvo por fuera de la normalidad, cualquiera de los 4 protocolos es igualmente bueno con relaci&oacute;n a esta variable. </P >     <p><img src="/img/revistas/rccp/v20n3/v20n3a04f1.png"><a name="f1" id="f1"></a></P >     <p>En cuanto a las mediciones de temperatura realizadas cada cuatro minutos, no se encontraron diferencias significativas entre los minutos 0, 4, 8 y 12 (primeras cuatro tomas); pero del minuto 16 en adelante (&uacute;ltimas cinco mediciones) s&iacute; hubo diferencias con respecto a la medici&oacute;n inicial, con una disminuci&oacute;n progresiva. </P >     <p><I>Frecuencia</I> <I>respiratoria</I>. Esta variable present&oacute; grandes variaciones y diferencias en cuanto al coeficiente de variaci&oacute;n se refiere (an&aacute;lisis descriptivo). <a href="#f2">La figura 2</a> muestra que se presentaron menores variaciones en la frecuencia respiratoria con los protocolos 2 y 3, en los cuales se us&oacute; propofol como agente inductor. Mediante la prueba de comparaci&oacute;n por el m&eacute;todo de Tukey, s&oacute;lo se encontr&oacute; diferencia en la frecuencia respiratoria, para todos los tiempos de medici&oacute;n, entre los protocolos 3 y 4, donde el mayor promedio de frecuencia respiratoria fue para el protocolo 3 (42.3 rpm) y el menor promedio fue para el protocolo 4 (26.2 rpm). </P >     <p>Con relaci&oacute;n a la toma realizada cada cuatro minutos, no se encontraron diferencias estad&iacute;sticas significativas. La menor frecuencia respiratoria obtenida con el protocolo 4 (26.2 rpm), no present&oacute; diferencias estad&iacute;sticas en relaci&oacute;n con los resultados obtenidos con los protocolos 1 y 2, consider&aacute;ndose entonces como un valor normal.    <br>       <br> <img src="/img/revistas/rccp/v20n3/v20n3a04f2.png"><a name="f2" id="f2"></a></P >     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><I>Frecuencia</I> <I>card&iacute;aca</I>. <a href="#f3">La figura 3</a> muestra la heterogeneidad entre todos los protocolos, donde no se observaron diferencias estad&iacute;sticamente significativas con relaci&oacute;n a los datos obtenidos en el examen cl&iacute;nico y en preanestesia. La prueba de comparaci&oacute;n por el m&eacute;todo de Tukey s&oacute;lo mostr&oacute; diferencias para todos los tiempos de medici&oacute;n entre los protocolos 2 y 4, con un valor mayor para el protocolo 4 (135 latidos/min) y el menor para el protocolo 2 (91.6 latidos/min). </P >     <p><I>Oximetr&iacute;a</I>. El an&aacute;lisis descriptivo de esta variable mostr&oacute; que, de todas las variables analizadas, la oximetr&iacute;a de pulso fue la de mayor homogeneidad, tanto entre protocolos, como entre los distintos tiempos de toma (cada cuatro minutos). Los coeficientes de variaci&oacute;n fueron siempre bajos, fluctuando entre 0.7 y 20% (<a href="#f4">v&eacute;ase Figura 4</a>). La prueba de Tukey encontr&oacute; diferencias entre los protocolos 3 y 4, con el mayor valor para el protocolo 4 (88.5%) y el menor para el protocolo 3 (80.3%). </P >     <p><img src="/img/revistas/rccp/v20n3/v20n3a04f3.png"><a name="f3" id="f3"></a></P >     <p>    <br> <img src="/img/revistas/rccp/v20n3/v20n3a04f4.png"><a name="f4" id="f4"></a></P >     <p><I>Capnograf&iacute;a. E</I>n el an&aacute;lisis descriptivo de esta variable, los valores mostraron heterogeneidad, tanto entre los individuos, como entre los protocolos y entre los distintos tiempos de medici&oacute;n. Los coeficientes de variaci&oacute;n para esta variable estuvieron entre 2.2 y 50%, y s&oacute;lo se observ&oacute; un leve incremento de la variable en el protocolo 1 minuto 4; protocolo 3 minutos 16, 20 y 24; y protocolo 2 minuto 28 (<a href="#f5">v&eacute;ase Figura 5</a>). </P >     <p><img src="/img/revistas/rccp/v20n3/v20n3a04f5.png"><a name="f5" id="f5"></a></P >     <p><I>Presi&oacute;n sist&oacute;lica y diast&oacute;lica</I>. El an&aacute;lisis descriptivo de estas variables mostr&oacute; un comportamiento similar entre ellas. Se present&oacute; heterogeneidad entre los protocolos y entre los distintos tiempos de medici&oacute;n. Mediante la prueba de comparaci&oacute;n por el m&eacute;todo de Tukey, se encontr&oacute; diferencias entre los protocolos 1 y 4, con el mayor valor para el protocolo 4 (145.8/102.8 mmHg) y el menor para el protocolo 1 (107.2/73.4 mmHg) (<a href="#f6">v&eacute;anse Figuras 6 y 7</a>). </P >     <p>En t&eacute;rminos econ&oacute;micos, el protocolo uno result&oacute; ser el m&aacute;s barato en pesos colombianos                ($ 3.713 para un animal de 10 kg, lo que equivale a 1.8 d&oacute;lares), seguido por el protocolo 4 ($ 4.355 = 2.1 d&oacute;lares), el protocolo 3 ($ 5.130 = 2.5 d&oacute;lares), y el protocolo 2 ($ 6.313 = 3.1 d&oacute;lares).</P >     <p><img src="/img/revistas/rccp/v20n3/v20n3a04f6.png"><a name="f6" id="f6"></a></P >     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><img src="/img/revistas/rccp/v20n3/v20n3a04f7.png"><a name="f6" id="f6"></a></P >     <p>&nbsp;</P >     <p>Discusi&oacute;n </P >     <p><I>Variables fisiol&oacute;gicas</I></P >     <p><I>Temperatura corporal</I>. Las diferencias encontradas con esta variable reflejan el plano anest&eacute;sico, cada vez m&aacute;s profundo, en el que ingresa el animal a medida que el agente anest&eacute;sico va potenciando su acci&oacute;n. Se ha reportado disminuci&oacute;n de la temperatura rectal con la aplicaci&oacute;n de propofol en infusi&oacute;n continua en perros galgos y tambi&eacute;n en perros de otras razas premedicados con acepromacina y atropina (21). Thurmon <I>et al (28)</I>, se&ntilde;alan que perros anestesiados con propofol, sufren una disminuci&oacute;n de la temperatura corporal, pero siempre dentro de l&iacute;mites normales.</P >     <p><I>Frecuencia</I> <I>respiratoria</I>. La frecuencia respiratoria fue m&aacute;s estable en los pacientes del protocolo 3, a los cuales se les suministr&oacute; las menores dosis de anest&eacute;sico (3.18 mg/kg de propofol). En t&eacute;rminos generales, estos pacientes se mostraron bastante tranquilos y no requirieron administraci&oacute;n adicional del agente anest&eacute;sico. Para este mismo caso, los valores de frecuencia respiratoria se mantuvieron bastante estables, sin que se presentase bradipnea o taquipnea en ning&uacute;n caso. </P >     <p>Las mayores variaciones de la frecuencia respiratoria se presentaron con los pacientes del protocolo 1, en los cuales se us&oacute; ketamina como agente inductor, pero no en preanestesia. El plano anest&eacute;sico logrado con este protocolo fue muy superficial, pues en la mayor&iacute;a de los casos no hubo p&eacute;rdida del reflejo interdigital, por lo cual hubo necesidad de aumentar notoriamente las dosis de  ketamina (hasta 14.4 mg/kg) mediante aplicaciones repetidas. Es claro que, con este protocolo, no se logr&oacute; una buena anestesia, mientras que con los dem&aacute;s protocolos el plano anest&eacute;sico fue satisfactorio, al obtenerse p&eacute;rdida de dicho reflejo en todos los casos. </P >     <p>En estudios realizados usando xilacina como preanest&eacute;sico y ketamina como agente inductor, se ha reportado que la xylazina puede compensar los efectos sedantes respiratorios de la ketamina, un efecto que se podr&iacute;a atribuir al est&iacute;mulo de regiones corticales, subcorticales y reticulares, con excitaci&oacute;n directa de neuronas respiratorias medulares y de la activaci&oacute;n indirecta de quimiorreceptores                  perif&eacute;ricos (14).</P >     <p>Contrario a lo que podr&iacute;a esperarse, y dado que el propofol puede causar depresi&oacute;n respiratoria por acci&oacute;n directa sobre el centro respiratorio y afectar la respuesta del paciente a la presi&oacute;n de CO<Sub>2</Sub> (25), el uso de este agente anest&eacute;sico en el caso del protocolo 3, no produjo la depresi&oacute;n esperada, tal vez debido a la combinaci&oacute;n anest&eacute;sica utilizada y al posible dolor reflejo que se produjo en los pacientes en el momento de traccionar los ovarios durante el acto quir&uacute;rgico. </P >     <p>Aunque el propofol y la xilacina producen una marcada bradipnea debido a un mayor efecto depresor sobre el centro respiratorio (13, 18), esto no se present&oacute; en este estudio. Tan solo se registr&oacute; un caso de apnea de 1.5 minutos de duraci&oacute;n, en un animal inducido con propofol y sin ketamina en la premedicaci&oacute;n (protocolo 2). Seg&uacute;n algunos autores, pueden desarrollarse cortos per&iacute;odos de apnea, leve acidosis e hipercapnia, luego de usar propofol, pero ninguno de estos fen&oacute;menos es severo (4). </P >     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><I>Frecuencia</I> <I>card&iacute;aca</I>. En los pacientes del  protocolo 4 se usaron las dosis m&aacute;s altas de ketamina, lo cual pudo haber sido la raz&oacute;n para que en este grupo se presentase un aumento significativo de la frecuencia card&iacute;aca (135 latidos/min) con relaci&oacute;n a los dem&aacute;s grupos. Estos resultados concuerdan con reportes de la literatura que afirman que la ketamina incrementa el gasto card&iacute;aco, la presi&oacute;n arterial en la aorta, la presi&oacute;n arterial pulmonar, la presi&oacute;n venosa central y la frecuencia card&iacute;aca (3).  La taquicardia en los animales del grupo tres (124.6 latidos/min), concuerda con algunos trabajos realizados con propofol, en los cuales los animales presentaron aumento de la frecuencia card&iacute;aca (4, 22, 23); este aumento se explica como una respuesta refleja a la hipotensi&oacute;n inducida por el propofol (6). </P >     <p>Otro factor que influye en el aumento de la frecuencia card&iacute;aca es la intubaci&oacute;n endotraqueal. La laringoscopia e intubaci&oacute;n traqueal producen un marcado incremento de la frecuencia card&iacute;aca y de la presi&oacute;n arterial (30), con mayor intensidad despu&eacute;s de una inducci&oacute;n anest&eacute;sica de secuencia r&aacute;pida (5). Esta respuesta est&aacute; asociada con una importante liberaci&oacute;n de catecolaminas, que son responsables de dichos cambios hemodin&aacute;micos (24). Por otra parte, se ha reportado que la xilacina, con frecuencia, puede producir bradicardia (7); sin embargo, esto no sucedi&oacute; en nuestro estudio, lo cual podr&iacute;a, en principio, explicarse por los efectos contrarios de la atropina y la ketamina.</P >     <p><I>Oximetr&iacute;a</I>. Los valores obtenidos para la oximetr&iacute;a de pulso hacen pensar que las mezclas anest&eacute;sicas usadas no tienen ingerencia sobre esta variable fisiol&oacute;gica. Los mayores valores obtenidos con el protocolo 4 pueden explicarse por la acci&oacute;n positiva directa de la ketamina sobre el sistema cardiovascular y por su efecto m&iacute;nimo sobre el sistema respiratorio; en estos pacientes, se esperar&iacute;a una muy buena perfusi&oacute;n tisular, con buena saturaci&oacute;n de ox&iacute;geno en sangre, que garantice la supervivencia del paciente. Por el contrario, los menores valores obtenidos en el protocolo 3, pueden ser debidos al efecto depresor cardiovascular del propofol (3).</P >     <p>Valores de saturaci&oacute;n de la hemoglobina por debajo del 90% (75-90%), significan que el paciente est&aacute; frente a una hipoxemia (20), la cual, en nuestro experimento, pudo ser debida a la hipoventilaci&oacute;n por el hecho de que los animales fueron intubados con sonda endotraqueal y no fueron conectados a la m&aacute;quina de anestesia inhalada. Debe recordarse, adem&aacute;s, que el adaptador del capn&oacute;grafo produce aumento del espacio muerto. En casos en los cuales la hipoxemia es grave (&lt; 75%), es necesario realizar ventilaci&oacute;n asistida o aumentar la concentraci&oacute;n de ox&iacute;geno en la m&aacute;quina de anestesia, lo cual no fue necesario en nuestro estudio.</P >     <p><I>Capnograf&iacute;a. </I>El aumento espor&aacute;dico y focalizado de los niveles de bi&oacute;xido de carbono en aire expirado en los protocolos 1 y 2, pudo ser generado por el aumento de la actividad muscular en algunos pacientes, cuando se despertaban de manera abrupta (o no entraron f&aacute;cilmente en anestesia) y hab&iacute;a la necesidad de aplicar dosis repetidas de ketamina, propofol, o ambos (v&eacute;ase Figura 5); esta situaci&oacute;n fue posiblemente la causa del aumento en las concentraciones de CO<Sub>2</Sub>, ya que los incrementos en el volumen final de CO<Sub>2 </Sub>( ETCO<Sub>2 </Sub>) pueden reflejar estados hipermetab&oacute;licos tales como hipertermia, asociada con estr&eacute;s (8, 19).</P >     <p> Para el protocolo 3, el aumento en la capnograf&iacute;a coincidi&oacute; con los &uacute;ltimos minutos de anestesia, en los cuales los pacientes presentan un mayor grado de profundizaci&oacute;n, lo cual sucede siempre que se usa propofol ya que este disminuye la sensibilidad del sistema nervioso central a los niveles de CO<Sub>2</Sub> (26), aument&aacute;ndose los niveles de CO<Sub>2 </Sub>exhalados. </P >     <p><I>Presi&oacute;n sist&oacute;lica y diast&oacute;lica</I>. Los promedios de la presi&oacute;n arterial para el protocolo 4 siempre fueron superiores con relaci&oacute;n a los tres protocolos restantes, lo cual puede atribuirse a la aplicaci&oacute;n de ketamina, tanto en inducci&oacute;n como en preanestesia. En estos pacientes, se utiliz&oacute; la dosis m&aacute;s alta de ketamina (17 mg/kg en promedio), lo cual pudo haber influido de manera determinante en este aumento (<a href="#f6">v&eacute;anse Figuras 6 y 7</a>). Algunos autores afirman que la ketamina puede inducir aumentos en variables tales como la temperatura corporal (10), la presi&oacute;n intraocular (11, 17), el ritmo card&iacute;aco y la presi&oacute;n arterial (10).</P >     <p>En un estudio realizado con 28 perras (divididas en dos grupos) sometidas a ovariohisterectom&iacute;a, usando propofol como agente anest&eacute;sico, detectaron disminuci&oacute;n de las presiones sist&oacute;lica, diast&oacute;lica, media durante los primeros minutos de cirug&iacute;a, pero estos par&aacute;metros se recuperaron r&aacute;pidamente (alrededor de 8 minutos en todos los casos). En este mismo estudio no se encontraron diferencias significativas en cuanto a los valores de presi&oacute;n arterial media (29). </P >     <p>En conclusi&oacute;n, al asociar los resultados de las variables anestesiol&oacute;gicas y fisiol&oacute;gicas con el comportamiento cl&iacute;nico de los pacientes, podemos deducir que el mejor protocolo fue el n&uacute;mero 3 (combinaci&oacute;n ketamina-propofol), a pesar de que no fue el m&aacute;s barato, ya que con este se presentaron mejores planos de profundidad anest&eacute;sica, p&eacute;rdida completa del reflejo interdigital, completa relajaci&oacute;n de la pared abdominal, adecuada duraci&oacute;n y buena recuperaci&oacute;n de la anestesia, despertar tranquilo y r&aacute;pido, menores tiempos de latencia y recuperaci&oacute;n anest&eacute;sica, mayor duraci&oacute;n de la anestesia, menor grado de hipotermia, menor depresi&oacute;n de la frecuencia respiratoria, valores normales de presi&oacute;n arterial y frecuencia card&iacute;aca, y niveles adecuados de hemoglobina en sangre y de bi&oacute;xido de carbono en aire expirado.</P >     <p>&nbsp;</P >     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Agradecimientos</P >     <p>Los autores expresan su agradecimiento a todos los estudiantes de medicina veterinaria y auxiliares que colaboraron en la realizaci&oacute;n de las cirug&iacute;as; a los profesores Jorge Fern&aacute;ndez y Jairo Alonso Rivera Posada, por su asesor&iacute;a permanente; al doctor Jorge Ossa Londo&ntilde;o, por su colaboraci&oacute;n en la preparaci&oacute;n del manuscrito; al grupo de Investigaci&oacute;n en Ciencias Veterinarias CENTAURO, Escuela de Medicina Veterinaria, Facultad de Ciencias Agrarias, Universidad de Antioquia (Medell&iacute;n, Colombia) por la financiaci&oacute;n parcial del proyecto de investigaci&oacute;n.</P >     <p>&nbsp;</P >     <p>Referencias </P >     <!-- ref --><p>1.	Abreu A, Duque E. Caracterizaci&oacute;n de la poblaci&oacute;n canina y felina de &aacute;rea urbana del municipio de Medell&iacute;n para el primer semestre de 1993. Medell&iacute;n: Universidad de Antioquia; 1993. 65p.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0120-0690200700030000400001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2.	Booth N, Mcdonald L. Farmacolog&iacute;a y terap&eacute;utica veterinaria. 5&ordf; ed. Zaragoza: Acribia; 1988. 820 p.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0120-0690200700030000400002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3.	Botana L, Landoni M, Jim&eacute;nez T. Farmacolog&iacute;a y terap&eacute;utica veterinaria. 2&ordf; ed. Medell&iacute;n: McGraw-Hill Interamericana; 2002. 734 p.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0120-0690200700030000400003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4.	Branson KR, Gross ME. Propofol in veterinary medicine. J Am Vet Med Ass 1994; 204:1888-1890.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0120-0690200700030000400004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5.	Brossy MJ, mames MF, Janick PK. Haemodynamic and catecholamine changes after induction of anaesthesia with either tiopentone o propofol with suxamethonium. Br J Anaesth 1994; 19:596-598.		</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0120-0690200700030000400005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6.	Chambers JP. Induction of anaesthesia in dogs with alfentanil and propofol. J Ass Vet Anaesth 1989; 16:14-17.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0120-0690200700030000400006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7.	Cullen L, Reynoldson J. Xylazina or medetomidina premedication before propofol anaesthesia. Vet Rec 1993; 132:378-383.		</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0120-0690200700030000400007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8.	Gravenstein JS, Paulus DA, Hayes TJ. Clinical indications. In: Gravenstein JS, Paulus DA editores. Capnography in clinical practice. Butterworth:  Hayes; 1989. p.43-49.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0120-0690200700030000400008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9.	Hall L, Clarke K. Veterinary anesthesia. 9&ordf; ed. London: Bailliere; 1991. p. 51-322.	</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0120-0690200700030000400009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10.	Haskins SC, Farver TB, Patz JD. Ketamine in dogs. Am J Vet Res 1985; 46:1855-1860.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0120-0690200700030000400010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11.	Hellyer P. General anesthesia for dogs and cats. Vet Med 1996; 91:314-325.  </P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0120-0690200700030000400011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12.	Jacobson J, Hartsfields S, Haskins S, Mcgrath C. Introduction to veterinary anestesiology. Virginia: Publishing BM; 1995. 248p.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0120-0690200700030000400012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13.	Kelawala NH, Parsania RR. Preliminary studies on propofol, ketamine and propofol-ketamine anaesthesia in diazepam premedicated goats (Capra hircus)-physiological profiles. Indian Vet J 1992; 69:725-729.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0120-0690200700030000400013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14.	Komar E, Fau D, Silmanowicz P, Balicki I. Effects of propofol on haemodynamic parameters in dogs. Rev Med Vet 1992; 143:741-744.	</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0120-0690200700030000400014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15	Lamele G. Las drogas tranquilizantes en medicina veterinaria.Buenos Aires: Inter-Vet E; 1990. 199 p.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0120-0690200700030000400015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>16.	Londo&ntilde;o LN, P&eacute;rez OGI, Mart&iacute;nez DHD, Beltr&aacute;n PFE. Censo muestral de la poblaci&oacute;n canina y felina del municipio de Medell&iacute;n. Trabajo de grado, Medicina veterinaria. Facultad de Ciencias Agrarias, Universidad    de Antioquia. Medell&iacute;n, 1983. 70p. </P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0120-0690200700030000400016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17.	Muir I. Anesthetics and techniques. In: Slatter DH, editor. Textbook of small animal surgery. 2<Sup>nd</Sup> ed. Philadelphia: Saunders; 1993. p.2245-2251.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0120-0690200700030000400017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18.	Muir W, Hubell J. Manual de anestesia veterinaria. Zaragoza: Acribia; 1992. 375p.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0120-0690200700030000400018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19.	Nobel J. Carbon-dioxide monitors: exhaled gas (capnographs,capnometry, end-tidaI CO<Sub>2</Sub> monitors). Pediatr Emerg Care 1993; 9:244-246.	</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0120-0690200700030000400019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>20.	Paddleford RR. Manual de anestesia en peque&ntilde;os                      animales. 2&ordf; ed. Buenos Aires: Interm&eacute;dica; 2001. p.11-70.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0120-0690200700030000400020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>21.	Robertson S, Johnston S, Beemsterboer J. Cardiopulmonary, anesthetic, and postanesthetic effects of intravenous infusion of propofol in Greyhounds and non-Greyhounds. Am J Vet Res 1992; 53:1027-1032. </P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0120-0690200700030000400021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>22.	Sadove MS, Shulman M, Hatano S, Fevold N. Analgesic effects of ketamine administered in subdissociative doses. Anesth Analg 1971; 50:452-457.	</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0120-0690200700030000400022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>23.	S&aacute;nchez NR. Proyecto de atenci&oacute;n primaria y control de natalidad de caninos y felinos en el departamento de Antioquia. Medell&iacute;n; 2004. p.25. 	</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0120-0690200700030000400023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>24.	Shribman AJ, Smith G, Achola KJ. Cardiovascular and catecholamine responses to Laringoscopy with and                        without tracheal intubation. Br J Anaesth 1987; 59:295-299.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0120-0690200700030000400024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>25.	Smith J, Gaynor J, Bednarski R, Muir W. Adverse effects of administration of propofol with various preanesthetic regiment in dogs. JAVMA 1993; 202:1111-1115.	</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0120-0690200700030000400025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>26.	Sumano LH, Ocampo L. Farmacolog&iacute;a veterinaria. 2&ordf; ed. M&eacute;xico: McGraw-Hill Interamericana; 2001. p. 349-492.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0120-0690200700030000400026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>27.	Suzuki M, Tsueda K, Lansing PS, Tolan MM, Fuhrman TM. Small-dose ketamine enhances morphine-induced analgesia after outpatient surgery. Anesth Analg 1999; 89:98-103. </P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0120-0690200700030000400027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>28.	Thurmon J, Ko J, Benson W, Olson TW. Hemodinamic and analgesic effects of propofol infusion in medetomidine-premedicate dogs. Am J Vet Res 1994; 55:363-367.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0120-0690200700030000400028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>29.	Tusell JM, Andaluz A, Costa C, Garc&iacute;a F, Prandi D. Effects of epidural anaesthesia-analgesia on intravenous anaesthesia with Propofol. Vet J 2005; 169:108-111.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0120-0690200700030000400029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>30.	Villalonga A, Lapena C. La respuesta refleja a la laringoscop&iacute;a y a la intubaci&oacute;n traqueal. Rev Esp Anestesiol Reanim 1990; 37:373-377.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S0120-0690200700030000400030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>31.	Wanamaker B, Pettes, Christy L. Applied pharmacology                          for the veterinary technician. Philadelphia: Saunders; 1996.  p. 55-75.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0120-0690200700030000400031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>32.	White PF, Way WL, Trevor AJ. Ketamine-its pharmacology and therapeutic uses.  Anesthesiology 1982; 56:119-136.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S0120-0690200700030000400032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p>&nbsp;</P >     <p>&#182;<Sup>	</Sup>Para citar este art&iacute;culo: Pe&ntilde;a JA, S&aacute;nchez RA, Restrepo LF, Ru&iacute;z JD. Comparaci&oacute;n de cuatro protocolos anest&eacute;sicos para ovariohisterectom&iacute;a canina en jornadas de esterilizaci&oacute;n masiva. Rev Col Cienc Pec 2007; 20:260-268.</P >    <p>*<Sup>	</Sup>Autor para el env&iacute;o de la correspondencia y la solicitud de separatas: Escuela de Medicina Veterinaria. Facultad de Ciencias Agrarias, Universidad de Antioquia. AA.1226, Medell&iacute;n, Colombia. E-mail: <a href="mailto:jalpeg@yahoo.es">jalpeg@yahoo.es</a></P >     <p>&nbsp;</P >     ]]></body>
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