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<journal-title><![CDATA[Revista Colombiana de Ciencias Pecuarias]]></journal-title>
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<publisher-name><![CDATA[Facultad de Ciencias Agrarias, Universidad de Antioquia]]></publisher-name>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Vías implicadas en la luteólisis bovina]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Universidad de Antioquia Facultad de Ciencias Agrarias Grupo Fisiología y Biotecnología de la Reproducción]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The corpus luteum is a transient gland that produces progesterone during a period of time that is determined by the length of gestation. When there is no gestation the corpus luteum undergoes regression, a process commonly known as luteolysis. This process has been divided in: functional, since there is a lost of the capacity to synthesize progesterone; and structural, because there is a disruption of the cellular structure. PGF2&alpha;, is the principal luteolytic factor, but there are other parallel pathway mediated by calcium, cytokines, reactive oxygen species and endothelins. All these routes end up in inhibition of steroidogenesis and/or apoptosis. In this article we try to integrate the information present in the literature and propose a map depicting the major cellular and molecular events taking place in this process that is fundamental en bovine reproduction.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p><b>V&iacute;as implicadas en la lute&oacute;lisis bovina<Sup>&#182; </Sup></b></P >     <p><I>Bovine luteolysis: intracellular signals</I></P >     <p>&nbsp;</P >     <p>Martha Olivera A, DMV, Dr. Sci. Agr.; Ariel Tarazona M, Zoot MS; Tatiana Ru&iacute;z C, MV, MS, PhD; Carlos Giraldo E<Sup><I>*</I></Sup>, MV, MS.</P >     <p>Grupo Fisiolog&iacute;a y Biotecnolog&iacute;a de la Reproducci&oacute;n, Facultad de Ciencias Agrarias, Universidad de Antioquia.    Medell&iacute;n, Colombia.</P >     <p><a href="mailto:cargiraldo@gmail.com">cargiraldo@gmail.com</a></P >     <p>(Recibido: 18 septiembre, 2006; aceptado: 31 mayo, 2007)</P >     <p>&nbsp;</P >     <p><I>Resumen</I></P >     <p><I>El cuerpo l&uacute;teo es una gl&aacute;ndula endocrina transitoria que produce progesterona durante un tiempo </I><I>determinado por la gestaci&oacute;n. Cuando no hay  pre&ntilde;ez, el cuerpo l&uacute;teo sufre un proceso de regresi&oacute;n conocido </I><I>como lute&oacute;lisis, el cual divide en: funcional, por la p&eacute;rdida de  la capacidad de sintetizar progesterona; y </I><I>estructural, por la p&eacute;rdida de integridad celular.  La lute&oacute;lisis es inducida principalmente por la PGF</I><Sub><I>2&alpha;</I></Sub><I>, y </I><I>de manera secundaria a trav&eacute;s de otras rutas paralelas mediadas por calcio, citoquinas, especies reactivas </I><I>de ox&iacute;geno y endotelinas. Todos estos factores conducen finalmente a la inhibici&oacute;n de la esteroidog&eacute;nesis </I><I>y/o en la inducci&oacute;n de la apoptosis. En este art&iacute;culo tratamos de integrar la informaci&oacute;n disponible en la </I><I>literatura y proponemos un mapa de los eventos celulares y moleculares que dan cuenta de este fen&oacute;meno </I><I>fundamental en la reproducci&oacute;n de la especie bovina.</I></P >     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Palabras clave:<I> </I><I>apoptosis, inhibici&oacute;n de la esteroidog&eacute;nesis, oxitocina, PGF</I><Sub><I>2&alpha;.</I></Sub></P >     <p><I>Summary</I></P >     <p><I>The corpus luteum is a transient gland that produces progesterone during a period of time that is </I><I>determined by the length of gestation. When there is no gestation the corpus luteum undergoes regression, </I><I>a process commonly known as luteolysis. This process has been divided in: functional, since there is a </I><I>lost of the capacity to synthesize progesterone; and structural, because there is a disruption of the cellular </I><I>structure. PGF</I><Sub><I>2</I></Sub><Sub><I>&alpha;</I></Sub><I>, is the principal luteolytic factor, but there are other parallel pathway mediated by calcium, </I><I>cytokines, reactive oxygen species and endothelins. All these routes end up in inhibition of steroidogenesis </I><I>and/or apoptosis. In this article we try to integrate the information present in the literature and propose a </I><I>map depicting the major cellular and molecular events taking place in this process that is fundamental en </I><I>bovine reproduction.</I></P >     <p><I>Key words: </I><I>apoptosis, oxitocin, PGF</I><Sub><I>2</I></Sub><Sub><I>&alpha;</I></Sub><I>, steroidogenesis inhibition.</I></P >     <p>&nbsp;</P >     <p>Introducci&oacute;n</P >     <p>El fol&iacute;culo est&aacute; compuesto por dos tipos de c&eacute;lulas: las c&eacute;lulas de la teca, productoras de androsteniediona a partir de la progesterona y,  las c&eacute;lulas de la granulosa que reciben este metabolito, lo aromatizan y lo convierten en estradiol. Poco antes de la ovulaci&oacute;n, durante el pico preovulatorio de la hormona luteinizante (LH), las c&eacute;lulas de la granulosa que recubren el fol&iacute;culo preovulatorio adquieren la capacidad de producir progesterona a partir de colesterol y pierden la capacidad de producir estr&oacute;genos debido a la inhibici&oacute;n de la producci&oacute;n de la enzima aromatasa. A este fen&oacute;meno de diferenciaci&oacute;n celular se le conoce como luteinizaci&oacute;n. Luego de la ovulaci&oacute;n se forma el cuerpo l&uacute;teo (CL) a partir de la hipertrofia de  las c&eacute;lulas de la granulosa y de la teca que por su cambio morfol&oacute;gico comienzan a denominarse c&eacute;lulas luteales grandes (GCL) y c&eacute;lulas luteales peque&ntilde;as (PCL), respectivamente. Entre los dos a tres d&iacute;as post-ovulaci&oacute;n, el CL desarrolla una intensa angiog&eacute;nesis (12), lo que lo convierte, proporcionalmente, en uno de los &oacute;rganos m&aacute;s vascularizados del organismo.</P >     <p>El cuerpo l&uacute;teo es una gl&aacute;ndula endocrina transitoria, cuyo principal producto de secreci&oacute;n es la progesterona y  participa en m&uacute;ltiples procesos como el reconocimiento, la adhesi&oacute;n e implantaci&oacute;n del conceptus, el mantenimiento de la gestaci&oacute;n en sus estadios tempranos y la regulaci&oacute;n de la din&aacute;mica folicular.  </P >     <p>La producci&oacute;n de progesterona es estimulada principalmente por la actividad luteotr&oacute;pica de la    LH y en menor proporci&oacute;n por otras hormonas como la GnRH, la prolactina y la catecolamina. El receptor para LH tiene siete segmentos transmembranales y pertenece al grupo de receptores acoplados a prote&iacute;na G. Cuando la LH se une al receptor se activa la adenilil ciclasa (AC), lo que aumenta los niveles de AMPc y este estimula quinasas para la fosforilaci&oacute;n de la aromatasa p450scc, induciendo la producci&oacute;n de progesterona. La vida media del cuerpo l&uacute;teo en bovinos es de 12 a 15 d&iacute;as despu&eacute;s de los cuales pierde su funcionalidad y su morfolog&iacute;a; a este &uacute;ltimo proceso se le denomina lute&oacute;lisis.</P >     <p>La lute&oacute;lisis ha sido analizada en dos pasos, aparentemente consecutivos: a) lute&oacute;lisis funcional, que es la p&eacute;rdida de la capacidad de sintetizar progesterona; y b) lute&oacute;lisis estructural, que es la involuci&oacute;n del CL acompa&ntilde;ada de la p&eacute;rdida en la integridad de sus c&eacute;lulas (19). La PGF<Sub>2</Sub><Sub>&alpha;</Sub>, que es la principal luteolisina, se produce en las c&eacute;lulas endometriales y tambi&eacute;n en el cuerpo l&uacute;teo en  menor concentraci&oacute;n; es transportada a trav&eacute;s de un mecanismo de contracorriente de la vena uterina, a la arteria ov&aacute;rica ipsilateral al ovario donde se ha formado el cuerpo l&uacute;teo. Para que el CL sea sensible a la PGF<Sub>2</Sub><Sub>&alpha;</Sub> debe alcanzar cierto estado de madurez, caracterizado por una amplia vascularizaci&oacute;n y por la producci&oacute;n de progesterona que lleva a niveles por encima de 1ng/mL; esto ocurre hacia el d&iacute;a 5 del ciclo estral. La acci&oacute;n de la prostaglandina que conduce a la lute&oacute;lisis consiste en la inhibici&oacute;n de la esteroidog&eacute;nesis y la inducci&oacute;n de la apoptosis, mediante el desencadenamiento de cascadas de se&ntilde;alizaci&oacute;n que involucran hormonas como la prolactina; citoquinas como el Factor de Necrosis Tumoral alpha (TNF&alpha;), el Interfer&oacute;n gamma (IFN&gamma;) y el Fas ligando (FasL); especies reactivas de ox&iacute;geno (ROS), endotelina-1(E1) y la prote&iacute;na 70 (HSP70) de choque t&eacute;rmico, entre otros (9).</P >     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El receptor de PGF<Sub>2</Sub><Sub>&alpha;</Sub> (rPGF), es miembro de la familia de receptores acoplados a prote&iacute;na G y consta de siete dominios transmembranales. En el cuerpo l&uacute;teo de bovinos se han encontrado  receptores  en las  GCL y PCL, as&iacute; como en  c&eacute;lulas del endotelio microvascular. El rPGF existe en dos formas, de alta y baja afinidad, cuya expresi&oacute;n depende de la cantidad de oxitocina producida por las GCL; niveles bajos de oxitocina estimulan la exposici&oacute;n de los rPGF de alta afinidad a los que se unen peque&ntilde;as concentraciones de PGF<Sub>2</Sub><Sub>&alpha;</Sub> que en ese momento produce el endometrio. A medida que transcurre el ciclo estral, aumenta la secreci&oacute;n de oxitocina, lo que induce la producci&oacute;n de niveles altos de PGF<Sub>2</Sub><Sub>&alpha;</Sub> con lo que se activan los receptores de baja afinidad que, a su vez,  incrementan la secreci&oacute;n cada vez mayor de oxitocina con la consecuente activaci&oacute;n de la cascada que induce la reducci&oacute;n en la secreci&oacute;n de progesterona (rutas 1, 3 y 4) (<a href="#f1">v&eacute;ase Figura 1</a>).</P >     <p><img src="/img/revistas/rccp/v20n3/v20n3a17f1.png"><a name="f1" id="f1"></a></P >     <p>En la literatura existe informaci&oacute;n sobre los mecanismos asociados a la lute&oacute;lisis pero hace falta un tratamiento integrado y tal es el objetivo del presente art&iacute;culo.</P >     <p>Regulaci&oacute;n de la exocitosis de la oxitocina</P >     <p>En las GCL y PCL, la uni&oacute;n de la PGF<Sub>2</Sub><Sub>&alpha;</Sub><Sub> </Sub>al rPG (ruta 1) activa la fosfolipasa C &beta; (FLC &beta;), mediante el acoplamiento a la prote&iacute;na Gq/11, lo que causa la hidr&oacute;lisis del fosfatidilinositol-4,5-fosfato (IP2) para formar diacilglicerol (DAG) e inositol trifosfato (IP3) como segundos mensajeros. El IP3 se une a sus receptores en el ret&iacute;culo endopl&aacute;smico (RE) y estimula la liberaci&oacute;n de iones de Ca<Sup>2+</Sup> que elevan la concentraci&oacute;n de Ca intracitoplasm&aacute;tico, induciendo rutas internas de se&ntilde;alizaci&oacute;n como las MARKS (ruta 1 y 3) y otras desconocidas.</P >     <p>En contraste con otras especies, donde la PGF<Sub>2</Sub><Sub>&alpha;</Sub> inhibe la acumulaci&oacute;n de AMPc por la acci&oacute;n de las gonadotropinas sobre la AC, en bovinos la capacidad de la PGF<Sub>2</Sub><Sub>&alpha;</Sub><Sub> </Sub>de amplificar la acumulaci&oacute;n de AMPc inducido por agonistas est&aacute; mediado por prote&iacute;na quinasa C (PKC) (ruta 3).</P >     <p>La enzima IP3-3-quinasa (IP3K), es una de las enzimas dependientes de Ca-calmodulina (CaM) activada luego del tratamiento con PGF<Sub>2</Sub><Sub>&alpha;</Sub>; esta enzima fosforila a IP3 para producir una isoforma de IP4 que puede regular la entrada de Ca a trav&eacute;s de la membrana de las c&eacute;lulas luteales bovinas (ruta 2). Algunos efectos de la PGF<Sub>2</Sub><Sub>&alpha;</Sub> requieren la activaci&oacute;n de las enzimas dependientes de CaM, que son activadas por el calcio intracelular.</P >     <p>La PGF<Sub>2</Sub><Sub>&alpha;</Sub> estimula la exocitosis de oxitocina <I>in </I><I>vivo</I> e <I>in vitro</I>  mediante la activaci&oacute;n del sistema de se&ntilde;alizaci&oacute;n FLC/PKC (prote&iacute;na quinasa C) (rutas 1 y 3). Las GCL bovinas contienen grandes cantidades de ves&iacute;culas transportadoras de gr&aacute;nulos densos de oxitocina durante la fase media del ciclo estral (d&iacute;as 7 a 14), dispuestos en grupos cercanos al n&uacute;cleo, diferente al patr&oacute;n difuso observado en ovejas y cerdas. La administraci&oacute;n de PGF<Sub>2</Sub><Sub>&alpha;</Sub> estimula la exocitosis de oxitocina luteal, incrementando sus niveles s&eacute;ricos (5).</P >     <p>Para  la exocitosis de oxitocina se propone un modelo que involucra a la prote&iacute;na MARCKS (sustrato de PKC rico en alanina myristoilada); el dominio efector de MARCKS est&aacute; unido a la actina del citoesqueleto (ruta 3) y cuando es fosforilado por la PKC, se libera, induciendo la remodelaci&oacute;n del mismo al incrementar la polimerizaci&oacute;n de los filamentos de actina, lo que conlleva a la migraci&oacute;n de los gr&aacute;nulos de oxitocina hacia la membrana plasm&aacute;tica y a su exocitosis.</P >     <p>V&iacute;as de inhibici&oacute;n de la esteroidog&eacute;nesis</P >     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La uni&oacute;n de PGF<Sub>2</Sub><Sub>&alpha;</Sub><Sub> </Sub>a su receptor puede activar mediante &eacute;steres de forbol (e-forbol) a una PKC, desencadenando la cascada luteol&iacute;tica mediada por fosforilaciones secuenciales de prote&iacute;na quinasa activada por mit&oacute;genos (MAPK) (ruta 4i). La PKC que es sensible a e-forbol, fosforila y activa a Raf-1 y B-Raf (MAPKKKs), las cuales a su vez fosforilan a MEK1 (MAPKK) lo que promueve, por fosforilaci&oacute;n, la translocaci&oacute;n al n&uacute;cleo de Erk1 y Erk2 (MAPKs). En el n&uacute;cleo, Erk1 y Erk2 inhiben la trascripci&oacute;n de ARNm para StAR (Prote&iacute;na reguladora aguda de la esteroidog&eacute;nesis) (15, 14). Durante la luteinizaci&oacute;n la producci&oacute;n de StAR es inducida por la LH (ruta 4a), cumpliendo funciones de se&ntilde;alizaci&oacute;n para la producci&oacute;n de progesterona. La v&iacute;a de se&ntilde;alizaci&oacute;n por MAPK mediada por PGF<Sub>2</Sub><Sub>&alpha;</Sub> puede conducir a la expresi&oacute;n de oncogenes de respuesta inmediata-temprana como c-<I>fos</I> y c-<I>jun </I>(ruta 4i). El factor de transcripci&oacute;n p62 se activa al ser fosforilado por Erk, induciendo la trascripci&oacute;n de c-<I>fos</I> y c-<I>jun </I>(9). Las prote&iacute;nas Fos y Jun traducidas son factores de trascripci&oacute;n para la prote&iacute;na activadora 1 (AP-1), la cual regula la trascripci&oacute;n de numerosos genes, posiblemente involucrados en la apoptosis inducida  por PGF<Sub>2</Sub><Sub>&alpha;</Sub> (9).</P >     <p>La PGF<Sub>2</Sub><Sub>&alpha;</Sub><Sub> </Sub>a trav&eacute;s de un mecanismo a&uacute;n desconocido y mediado por &aacute;cido lisofosfat&iacute;dico, (ruta 5) activa las prote&iacute;nas Rho, prote&iacute;nas involucradas en la regulaci&oacute;n de la actina, que hacen perder la arquitectura del citoesqueleto con la posible incapacidad de que la progesterona sea secretada por la c&eacute;lula luteal (17).</P >     <p>Se ha propuesto que el tratamiento con PGF<Sub>2</Sub><Sub>&alpha;</Sub><Sub> </Sub>puede inducir un incremento en las especies reactivas de ox&iacute;geno (ROS) (4) a nivel de c&eacute;lulas luteales, con la subsecuente inhibici&oacute;n de el citocromo P450c (ruta 9). Las ROS se producen bajo condiciones fisiol&oacute;gicas en todas las c&eacute;lulas y cumplen funciones de se&ntilde;alizaci&oacute;n, ocasionando cambios en la citoarquitectura, que conllevan a la p&eacute;rdida de funcionalidad celular y disminuyen adem&aacute;s la esteroidog&eacute;nesis al inhibir la se&ntilde;alizaci&oacute;n para STAR, mediada por LH (ruta 5 y 9) (2). En c&eacute;lulas luteales bovinas en regresi&oacute;n, ocurre un cambio en la fase de transici&oacute;n liquida-gel de la membrana, probablemente por reorganizaci&oacute;n de los  fosfol&iacute;pidos (3), lo que conllevar&iacute;a al aumento de la peroxidaci&oacute;n y producci&oacute;n de ROS que favorecen, a su vez,  la lute&oacute;lisis por el efecto sobre los componentes citopl&aacute;smicos.</P >     <p>V&iacute;as que desencadenan procesos apopt&oacute;ticos</P >     <p>En bovinos, la prote&iacute;na y el ARNm para FAS y FasL (ruta 6)  parecen mediar tambi&eacute;n la lute&oacute;lisis por apoptosis (11), a trav&eacute;s de la activaci&oacute;n  de caspasa-3, una caspasa efectora central (6). El receptor de FasL es un d&iacute;mero proteico con un solo segmento transmembranal  que en su porci&oacute;n intracitoplasm&aacute;tica tiene un dominio de uni&oacute;n de muerte celular (DD), al cual se une la prote&iacute;na FADD, que a su vez tiene un dominio efector de muerte (DED), que es el sitio de uni&oacute;n de la procaspasa-8 para formar el complejo se&ntilde;alizador para la inducci&oacute;n de muerte (DISC). Las procaspasas-8 reclutadas, se clivan para activarse en caspasa-8. La ruta apopt&oacute;tica (13) se desencadena cuando la caspasa-8 activa a la prote&iacute;na Bid para formar el poro de transici&oacute;n de permeabilidad mitocondrial (PTP) que permite la salida de citocromo c (cit-c), SMAC/Diablo e IAP. En las c&eacute;lulas luteales bovinas se forma el complejo apoptosoma (cit-c, Apaf 1, dATP y procaspasa-9) que media la apoptosis a trav&eacute;s de la activaci&oacute;n consecutiva de caspasa 9 y caspasa 3.</P >     <p>Receptores para TNF<Sub>&alpha;</Sub><Sub> </Sub>se ha encontrado de dos tipos: TNFRI o TNFRII, tanto en las GLC y PLC como en las c&eacute;lulas endoteliales; en estas &uacute;ltimas con sitios de uni&oacute;n de baja y alta afinidad. Se sabe que hay un incremento de ARNm para TNFRI en las c&eacute;lulas luteales bovinas, durante toda la fase l&uacute;tea del ciclo estral y en la lute&oacute;lisis mediada por PGF<Sub>2</Sub><Sub>&alpha;</Sub>.</P >     <p>Al igual que FAS, la activaci&oacute;n del receptor de TNF<Sub>&alpha;</Sub><Sub> </Sub>est&aacute; asociada con un DD que recluta a la prote&iacute;na TRADD; &eacute;sta puede servir como  adaptadora con FADD para unir la se&ntilde;al de muerte del TNF<Sub>&alpha;</Sub><Sub> </Sub>a la ruta por FAS/FasL. A su vez, TNF<Sub>&alpha;</Sub> puede amplificar la se&ntilde;al de muerte celular inducida por IFN&gamma; (ruta 8) en las c&eacute;lulas luteales bovinas. Durante la respuesta inflamatoria mediada por TNF<Sub>&alpha;</Sub>, se produce la activaci&oacute;n de dos factores de transcripci&oacute;n (ruta 7), el factor nuclear kappa B (NF&kappa;B) y la prote&iacute;na activadora 1 (AP-1), que median la trascripci&oacute;n de genes pro o anti apopt&oacute;ticos y genes relacionados con inflamaci&oacute;n. El NF&kappa;B se encuentra en el citoplasma en forma inactiva ligado a I&kappa;B, la que tiene que fosforilarse y as&iacute; la NFkB se libera y trasloca al n&uacute;cleo.</P >     <p>La ruta 8 muestra c&oacute;mo el Interfer&oacute;n gama (IFN&gamma;) induce la muerte en c&eacute;lulas luteales bovinas, fosforilando al traductor de se&ntilde;al y activador de transcripci&oacute;n (STAT-1), se trasloca al n&uacute;cleo, en donde se une a los  promotores de genes de respuesta a interfer&oacute;n. Adem&aacute;s, se produce  un incremento en el factor de regulaci&oacute;n de la transcripci&oacute;n de interfer&oacute;n (IRF-1), debido a la se&ntilde;alizaci&oacute;n por citoquinas que utilizan la v&iacute;a de STAT-1 o NF&kappa;B. El IRF-1 ha sido asociado con la activaci&oacute;n de genes reguladores de apoptosis. </P >     <p>Las especies reactivas de ox&iacute;geno adem&aacute;s de inhibir la esteroidog&eacute;nesis, son moduladores de la apoptosis luteal durante el ciclo estral. La PGF<Sub>2</Sub><Sub>&alpha;</Sub><Sub> </Sub>genera condensaci&oacute;n nuclear y activaci&oacute;n de caspasa-3, se relaciona adem&aacute;s con la  acumulaci&oacute;n de ARNm para p53, Bax y COX2. En la fase final del ciclo estral, la apoptosis mediada por H<Sub>2</Sub>O<Sub>2</Sub> es consecuencia de la disminuci&oacute;n en los niveles de Glutation Peroxidasa, mientras que en la fase inicial y media se encuentra controlada por niveles altos de dos isoenzimas de super&oacute;xido dismutasa (tipo Mn y tipo Cu/Zn) y por catalasas (16).</P >     <p>Prostaglandina y endotelio del cuerpo l&uacute;teo</P >     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El CL por su caracter&iacute;stica de &oacute;rgano endocrino  altamente vascularizado, est&aacute; compuesto celularmente en un 50% por c&eacute;lulas endoteliales. La PGF<Sub>2</Sub><Sub>&alpha;</Sub> s&eacute;rica, induce el aumento del flujo sangu&iacute;neo a nivel de arteriolas perif&eacute;ricas del cuerpo l&uacute;teo maduro, a trav&eacute;s de la producci&oacute;n de ON (4). Ese aumento en el flujo sangu&iacute;neo es inmediatamente anterior a la disminuci&oacute;n de las concentraciones s&eacute;ricas de progesterona (7). El aumento en el flujo sangu&iacute;neo induce la expresi&oacute;n de Endotelina 1 y Angiotensina II potentes vasoconstrictores (8). Esto aparentemente induce la disminuci&oacute;n de la producci&oacute;n de progesterona. No se conoce a&uacute;n con claridad la ruta metab&oacute;lica que induce la inhibici&oacute;n de la producci&oacute;n de progesterona (3).</P >     <p>Apoptosis como factor luteol&iacute;tico estructural</P >     <p>Durante la lute&oacute;lisis mediada por PGF<Sub>2</Sub><Sub>&alpha;</Sub> (d&iacute;as 11-21), y una vez declina la producci&oacute;n de progesterona, en las c&eacute;lulas luteales se forman oligonucleosomas (peque&ntilde;as porciones de ADN fragmentado); las c&eacute;lulas disminuyen de tama&ntilde;o, y disminuyen las cantidades totales de prote&iacute;na luteal, de ADN y de progesterona, esto significa que las c&eacute;lulas han entrado en proceso de apoptosis. La progesterona cumple funciones antiapopt&oacute;ticas locales (10), lo que apoya la teor&iacute;a de que la apoptosis en las c&eacute;lulas luteales es una consecuencia de la lute&oacute;lisis funcional (12).</P >     <p>Otra v&iacute;a de acci&oacute;n de las citoquinas como el TNF<Sub>&alpha;</Sub><Sub> </Sub>y IFN&gamma; aparte de la descrita en las rutas 7 y 8, ser&iacute;a desencadenar la apoptosis a trav&eacute;s de la generaci&oacute;n de ROS (5) por una v&iacute;a que no est&aacute; completamente dilucidada, pero de la cual se sabe que no involucran las rutas del &aacute;cido araquid&oacute;nico ni del &oacute;xido n&iacute;trico (ON). La ceramida y la esfingomielina son otras rutas propuestas para inducir apoptosis en el CL, a trav&eacute;s de Fas/FasL, ruta que no se desencadena hasta cuando no haya disminuido los niveles de progesterona (18).</P >     <p>&nbsp;</P >     <p>Referencias</P >     <!-- ref --><p>1.	Budnik LT, Mukhopadhyay AK. Lysophosphatidic acid antagonizes the morphoregulatory effects of the luteinizing hormone on luteal cells: possible role of small Rho-G-proteins. Biol Reprod 2001; 65:180-187.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000049&pid=S0120-0690200700030001700001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2.	Chen DB, Fong HW, Davis SJ. Induction of c-fos and c-jun messenger ribonucleic acid expression in prostaglandine F2a is mediated by a proteine kinase c-dependent extracellular signal-regulated kinase mitogenactivated proteine kinase pathway in bovine luteal cells. Endocrinology 2001; 142:887-895.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000050&pid=S0120-0690200700030001700002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3.	Carlson JC, Buhr MM, Wentworth R, Hansel W. Evidence of membrane changes during regression in the bovine corpus luteum. Endocrinology 1982; 110:1472-1476.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000051&pid=S0120-0690200700030001700003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4.	Hanke CJ, Drewett JG, Myers CR, Campbell WB. Nitric oxide inhibits aldosterone synthesis by a guanylyl cyclase-independent effect. Endocrinology 1998; 139:4053-4060.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000052&pid=S0120-0690200700030001700004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5.	Jaroszewski JJ, Hansel W. Intraluteal administration of a nitric oxide synthase blocker stimulates progesterone and oxytocin secretion and prolongs the life span of the bovine corpus luteum. Proc Soc Exp Biol Med 2000; 224:50-55.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000053&pid=S0120-0690200700030001700005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6.	Juengel JL, Garverick HA, Johnson AL, Youngquist RS, Smith MF. Apoptosis during luteal regression in cattle. Endocrinology 1993; 132:249-254.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000054&pid=S0120-0690200700030001700006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7.	Kobayashi S, Berisha B, Amselgruber WM, Schams D, Miyamoto A. production and localization of angiotensin II in the bovine early corpus luteum: a possible interaction with luteal angiogenic factors and prostaglandine F2a. Endocrinology 2001; 170:369-380.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000055&pid=S0120-0690200700030001700007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8.	Miyamoto A, Shirasuna K, Wijayagunawardane MP, Watanabe S, Hayashi M, <I>et al</I>. Blood flow: a key regulatory component of corpus luteum function in the cow. Domest Anim Endocrinol 2005; 29:329-339.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000056&pid=S0120-0690200700030001700008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9.	Nakamura T, Sakamoto K. Reactive oxygen species up-regulates cyclooxygenase-2, p53, and Bax mRNA expression in bovine luteal cells. Biochem Biophys Res Commun 2001; 284:203-210.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000057&pid=S0120-0690200700030001700009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10.	Okuda K, Korzekwa A, Shibaya M, Murakami S, Nishimura R, <I>et al</I>. Progesterone is a suppressor of apoptosis in bovine luteal cells. Biol Reprod 2004; 71:2065-2071.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000058&pid=S0120-0690200700030001700010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11.	Pru JK, Hendry IR, Davis JS, Rueda BR. Soluble Fas ligand activates the sphingomyelin pathway and induces apoptosis in luteal steroidogenic cells independently of stress-activated p38(MAPK). Endocrinology 2002; 143:4350-4357.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000059&pid=S0120-0690200700030001700011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12.	Reynolds LP, Grazul-Bilska AT, Redmer DA. Angiogenesis in the corpus luteum. Endocrine 2000; 12:1-9.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000060&pid=S0120-0690200700030001700012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13.	Rueda BR, Hendry IR, Hendry IW, Stormshak F, Slayden OD, <I>et al</I>. Decreased progesterone levels and progesterone receptor antagonists promote apoptotic cell death in bovine luteal cells. Biol Reprod 2000; 62:269-276.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000061&pid=S0120-0690200700030001700013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14.	Salli U, Saito N, Stormshak F. Spatiotemporal interactions of myristoylated alanine-rich C kinase substrate (MARCKS) protein with the actin cytoskeleton and exocytosis of oxytocin upon prostaglandin F2alpha stimulation of bovine luteal cells. Biol Reprod 2003; 69:2053-2058.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000062&pid=S0120-0690200700030001700014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15.	Salli U, Supancic S, Stormshak F. Phosphorylation of myristoylated alanine-rich C kinase substrate (MARCKS) protein is associated with bovine luteal oxytocin exocytosis. Biol Reprod 2000; 63:12-20.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000063&pid=S0120-0690200700030001700015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>16.	Sugino N, Nakamura Y, Okuno N, Ishimatu M, Teyama T, <I>et al</I>. Effects of ovarian ischemia-reperfusion on luteal function in pregnant rats. Biol Reprod 1993; 49:354-358.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000064&pid=S0120-0690200700030001700016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17.	Tsai S, Wiltbank M. Prostaglandin F2a regulates distinct physiological changes in early and mid-cycle bovine corpora lutea. Biol Reprod 1998; 58:346-352.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S0120-0690200700030001700017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18.	Wright MF, Sayre B, Keith Inskeep EK, Flores JA. Prostaglandin F(2alpha) regulation of the bovine corpus luteum endothelin system during the early and midluteal phase. Biol Reprod 2001; 65:1710-1717.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000066&pid=S0120-0690200700030001700018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19.	Zheng J, Fricke PM, Reynolds LP, Redmer DA. Evaluation of growth, cell proliferation, and cell death in bovine corpora lutea throughout the estrous cycle. Biol Reprod 1994; 51:623-632.</P >    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0120-0690200700030001700019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p>&nbsp;</P >     <P   >&#182;  	Para citar este art&iacute;culo: Olivera-A M, Tarazona-M A, Ru&iacute;z-C T, Giraldo-E C. Modelo de lute&oacute;lisis bovina. Rev Col Cienc Pec 2007; 20:387-393.</P >    <p>*	Autor para el env&iacute;o de la correspondencia y la solicitud de separatas: Facultad de Ciencias Agrarias, Universidad de Antioquia. AA 1226, Medell&iacute;n, Colombia. E-mail: <a href="mailto:cargiraldo@gmail.com">cargiraldo@gmail.com</a></P >     <p>&nbsp;</P >      ]]></body><back>
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