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<journal-title><![CDATA[Revista Colombiana de Ciencias Pecuarias]]></journal-title>
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<publisher-name><![CDATA[Facultad de Ciencias Agrarias, Universidad de Antioquia]]></publisher-name>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Aislamiento de Paramphistomidae en vacas de leche y en el hospedador intermediario (Lymnaea truncatula y Lymnaea columella) en una granja del trópico alto en el occidente de Colombia]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Paramphistomidae isolation from dairy cows and its intermediate host (Lymnaea truncatula and Lymnaea columella) in a dairy farm in western Colombian high tropical region]]></article-title>
<article-title xml:lang="pt"><![CDATA[Isolamento de Paramphistomidae em vacas leiteiras e no hospedeiro intermediário (Lymnaea truncatula y Lymnaea columella) numa fazenda do trópico alto no ocidente da Colômbia]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Universidad de Antioquia Grupo de Microbiología Ambiental ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Some Paramphistomidae (Region Trematoda: Digenea) parasitize the digestive system of economically important ruminants worldwide. Two species of these flukes have been recorded in cattle from the Caribbean Coast and eastern plains of Colombia. The objective of this study was to determine the frequency of paramphistomids in both dairy cattle (n = 71) and snails on a dairy farm in Rionegro (Antioquia), located in the western Andes. Four quarterly fecal samples were taken in the farm from July 2004 to July 2005. Faeces were collected from lactating dairy cows for diagnosis by using the Dennis technique. Snails were captured in diverse aquatic ecosystems of the locality and their infection status was confirmed by dissection under stereoscopic exam. The eggs and intra-mollusc stages of the parasite were described and photographed. The frequency of the paramphistomid was 100% in the 71 cows evaluated, of which 51 (80%) also presented fasciolid flukes. Eggs of the two digeneid species were differentiated based on their coloration, and the identity of the family confirmed through eclosion of the miracidia. In all 1146 snails were collected and identified as Lymnaea truncatula and a further 335 as L. columella, whose rates of infection to the paramphistomid were 25, 47 and 1.79% respectively. The morphologies of the intra-mollusc stages obtained were compatible with members of the families Paramphistomidae and Fasciolidae. This constitutes the first record of a focus of bovine paramphistomosis in the high Andean zone of western Colombia. The presence in sympatry of the paramphistomid with Fasciola hepatica is noteworthy, as is the finding of two host snail species for both digeneids. The frequencies of infection in the snails indicate that L. truncatula acts as the principal intermediate host of the paramphistomid and L. columella as its alternate intermediate host. Although the frequency of paramphistomids in the herd was very high, presence of the parasite was unsuspected until the present study. This explains the absence of measures for its control.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="pt"><p><![CDATA[Alguns Paramphistomidae (Trematoda: Digenea) parasitam o sistema digestivo de ruminantes de importância econômica no mundo. Na Colômbia têm sido identificadas duas espécies em bovinos da Costa Caribe e dos Llanos Orientais Nacionais. Este trabalho de pesquisa teve como objetivo determinar a freqüência de um paramfistómido em bovinos e caracóis de uma fazenda localizada em Rionegro, Antioquia. Nesta fazenda foram feitas quatro amostragens trimestrais entre julho de 2004 e julho de 2005 coletando fezes de bovinos em ordenho, para fazer o diagnóstico mediante a técnica de Dennis. Os caracóis foram capturados em diversos ecossistemas aquáticos do lugar e sua infecção estabelecida mediante dissecção. Os ovos e os estádios intramolusco do parasito foram descritos e fotografados. A freqüência do paramfistómido foi de 100% nos 71 bovinos avaliados, de estes, o 80% (51 bovinos) apresentaram ademais um fasciólido. Os ovos de ambos digêneos diferenciaram-se mediante sua coloração e a família se confirmou mediante a eclosão dos miracidios. Foram coletados 1.146 caracois catalogados como Lymnaea truncatula e 335 catalogados como Lymnaea columella, cujas freqüências de infeção pelo paramfistomido foram 25, 47 e 1.79%, respectivamente. A morfologia dos estádios intramolusco obtidos foi compatível com as familias Paramphistomidae e Fasciolidae. Isto constitui o primeiro registro de um foco de paramfistomosis bovina numa região alto andina, no ocidente da Colômbia, donde destaca-se a presença em simpatría com Fasciola hepatica e duas espécies de moluscos hospedeiros de ambos digêneos. As freqüências de infecção nos caracóis, sugerem L. truncatula como hospedeiro intermediário principal do paramfistómido e L. columella como hospedeiro intermediário alternativo do mesmo. A alta freqüência do paramfistomido pode obedecer ao desconhecimento de sua presença no rebanho e por tanto à ausência de medidas para seu controle.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Bos taurus]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right"><b><font face="Verdana, Arial, Helvetica-Normal, sans-serif" size="2">ART&Iacute;CULOS    ORIGINALES</font></b></font></p>         <p>&nbsp;</p>         <p><b><font face="Verdana, Arial, Helvetica-Normal, sans-serif" size="4">Aislamiento de <I>Paramphistomidae</I> en vacas de leche y en el hospedador intermediario (<I>Lymnaea truncatula</I> y <I>Lymnaea columella</I>) en una granja del tr&oacute;pico alto en el occidente de Colombia<Sup>&#182;</Sup></font></b></p>         <p>&nbsp;</p>         <p><b><font face="Verdana, Arial, Helvetica-Normal, sans-serif" size="3"><I>Paramphistomidae isolation from dairy cows and its intermediate host (Lymnaea truncatula and Lymnaea columella) in a dairy farm in western Colombian high tropical region.</I></font></b></p>         <p>&nbsp;</p>         <p><b><font face="Verdana, Arial, Helvetica-Normal, sans-serif" size="3"><I>Isolamento de Paramphistomidae em vacas leiteiras e no hospedeiro intermedi&aacute;rio </I><I>(Lymnaea truncatula y Lymnaea columella) numa fazenda do tr&oacute;pico alto no </I><I>ocidente da Col&ocirc;mbia</I></font></b></p>     <p>&nbsp;</p>       <p>&nbsp;</p>       <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>Laura P L&oacute;pez<Sup><I>1</I></Sup>,<Sup> </Sup>MB; Johanna Romero<Sup><I>1</I></Sup>,<Sup> </Sup>MB; Luz E Vel&aacute;squez<Sup><I>1,2</I></Sup>, MS.</b></font></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><Sup><I>1</I></Sup>Grupo de Microbiolog&iacute;a Ambiental, Universidad de Antioquia, AA1226, Medell&iacute;n, Colombia. </b></font></p>        <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><Sup><I>2 </I></Sup>Programa de Estudio y Control de Enfermedades Tropicales, PECET, Universidad de Antioquia, Medell&iacute;n, Colombia.</b></font></p>        <p>&nbsp;</p>        <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">(Recibido: 6 agosto, 2007; aceptado: 24 enero, 2008)</b></font></p>       <p>&nbsp;</p>       <p>&nbsp;</p>   <hr size="1">       <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b><I>Resumen</I></b></font></p>       <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><I>Algunos Paramphistomidae (Trematoda: Digenea) parasitan el sistema digestivo de rumiantes de </I><I>importancia econ&oacute;mica en el mundo. En Colombia han sido rese&ntilde;adas dos especies en bovinos de la </I><I>costa Caribe y de los llanos orientales. Esta investigaci&oacute;n tuvo como objetivo determinar la frecuencia de </I><I>un paramfist&oacute;mido en bovinos y caracoles de una hacienda localizada en Rionegro, Antioquia. En &eacute;sta </I><I>se hicieron cuatro muestreos trimestrales entre julio de 2004 y julio de 2005. Se colectaron heces de los </I><I>vacunos en orde&ntilde;o para hacer diagn&oacute;stico mediante la t&eacute;cnica de Dennis. Los caracoles se capturaron en </I><I>diversos ecosistemas acu&aacute;ticos del lugar y su infecci&oacute;n fue establecida mediante disecci&oacute;n. Los huevos y </I><I>los estad&iacute;os intramolusco del par&aacute;sito fueron descritos y fotografiados. La frecuencia del paramfist&oacute;mido </I><I>fue del 100% en los 71 bovinos evaluados; de estos, el 80% (51 vacunos) presentaron adem&aacute;s un fasci&oacute;lido. </I><I>Los huevos de ambos digeneos se diferenciaron mediante su coloraci&oacute;n y la familia se confirm&oacute; mediante </I><I>la eclosi&oacute;n de los miracidios. Se colectaron 1.146 caracoles determinados como </I>Lymnaea truncatula <I>y 335 </I><I>determinados como </I>Lymnaea columella<I>, cuyas frecuencias de infecci&oacute;n por el paramfistomido fueron 25, </I><I>47 y 1.79%, respectivamente. La morfolog&iacute;a de los estad&iacute;os intramolusco obtenidos fue compatible con las </I><I>familias Paramphistomidae y Fasciolidae. Este constituye el primer registro de un foco de paramfistomosis </I><I>bovina en una zona alto andina, al occidente de Colombia, donde se destaca la presencia en simpatr&iacute;a </I><I>con </I>Fasciola hepatica<I> y de dos especies de moluscos hospedadoras de ambos dig&eacute;neos. Las frecuencias </I><I>de infecci&oacute;n en los caracoles, sugieren a </I>L. truncatula<I> como hospedador intermediario principal del </I><I>paramfist&oacute;mido y a </I>L. columella<I> como hospedador intermediario alterno del mismo. La alta frecuencia </I><I>del paramfistomido puede obedecer al desconocimiento de su presencia en el hato y por ende a la ausencia </I><I>de medidas para su control.</I></b></font></p>       <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>Palabras clave</b><I>: </I><I>Bos</I> <I>taurus</I><I>, </I><I>Fasciola</I> <I>hepatica</I><I>, </I><I>Lymnaea</I> <I>columella</I><I>, </I><I>Lymnaea</I> <I>truncatula, </I><I>Paramphistomidae. </I></b></font></p>       <p>&nbsp;</p> <hr size="1">       ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b><I>Summary</I></b></font></p>       <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><I>Some Paramphistomidae (Region Trematoda: Digenea) parasitize the digestive system of economically </I><I>important ruminants worldwide. Two species of these flukes have been recorded in cattle from the </I><I>Caribbean Coast and eastern plains of Colombia. The objective of this study was to determine the frequency </I><I>of paramphistomids in both dairy cattle (n = 71) and snails on a dairy farm in Rionegro (Antioquia), </I><I>located in the western Andes. Four quarterly fecal samples were taken in the farm from July 2004 to </I><I>July 2005. Faeces were collected from lactating dairy cows for diagnosis by using the Dennis technique. </I><I>Snails were captured in diverse aquatic ecosystems of the locality and their infection status was confirmed </I><I>by dissection under stereoscopic exam. The eggs and intra-mollusc stages of the parasite were described </I><I>and photographed. The frequency of the paramphistomid was 100% in the 71 cows evaluated, of which </I><I>51 (80%) also presented fasciolid flukes. Eggs of the two digeneid species were differentiated based on </I><I>their coloration, and the identity of the family confirmed through eclosion of the miracidia. In all 1146 </I><I>snails were collected and identified as </I>Lymnaea truncatula<I> and a further 335 as </I>L. columella, <I>whose rates </I><I>of infection to the paramphistomid were 25, 47 and 1.79% respectively. The morphologies of the intra-</I><I>mollusc stages obtained were compatible with members of the families Paramphistomidae and Fasciolidae. </I><I>This constitutes the first record of a focus of bovine paramphistomosis in the high Andean zone of western </I><I>Colombia. The presence in sympatry of the paramphistomid with </I>Fasciola hepatica<I> is noteworthy, as is </I><I>the finding of two host snail species for both digeneids. The frequencies of infection in the snails indicate </I><I>that </I>L. truncatula<I> acts as the principal intermediate host of the paramphistomid and </I>L. columella<I> as </I><I>its alternate intermediate host. Although the frequency of paramphistomids in the herd was very high, </I><I>presence of the parasite was unsuspected until the present study. This explains the absence of measures </I><I>for its control.</I></b></font></p>       <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>Key words:</b> <I>Bos taurus, Paramphistomidae, Fasciola hepatica, Lymnaea columella, Lymnaea truncatula</I></b></font></p>       <p>&nbsp;</p> <hr size="1">       <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b><I>Resumo</I></b></font></p>       <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><I>Alguns Paramphistomidae (Trematoda: Digenea) parasitam o sistema digestivo de ruminantes de </I><I>import&acirc;ncia econ&ocirc;mica no mundo. Na Col&ocirc;mbia t&ecirc;m sido identificadas duas esp&eacute;cies em bovinos da </I><I>Costa Caribe e dos Llanos Orientais Nacionais. Este trabalho de pesquisa teve como objetivo determinar </I><I>a freq&uuml;&ecirc;ncia de um paramfist&oacute;mido em bovinos e carac&oacute;is de uma fazenda localizada em Rionegro, </I><I>Antioquia. Nesta fazenda foram feitas quatro amostragens trimestrais entre julho de 2004 e julho de 2005 </I><I>coletando fezes de bovinos em ordenho, para fazer o diagn&oacute;stico mediante a t&eacute;cnica de Dennis. Os carac&oacute;is </I><I>foram capturados em diversos ecossistemas aqu&aacute;ticos do lugar e sua infec&ccedil;&atilde;o estabelecida mediante </I><I>dissec&ccedil;&atilde;o. Os ovos e os est&aacute;dios intramolusco do parasito foram descritos e fotografados. A freq&uuml;&ecirc;ncia </I><I>do paramfist&oacute;mido foi de 100% nos 71 bovinos avaliados, de estes, o 80% (51 bovinos) apresentaram </I><I>ademais um fasci&oacute;lido. Os ovos de ambos dig&ecirc;neos diferenciaram-se mediante sua colora&ccedil;&atilde;o e a fam&iacute;lia </I><I>se  confirmou mediante a eclos&atilde;o dos miracidios. Foram coletados 1.146 caracois catalogados como </I>Lymnaea truncatula<I> e 335 catalogados como </I>Lymnaea columella<I>, cujas freq&uuml;&ecirc;ncias de infe&ccedil;&atilde;o pelo </I><I>paramfistomido foram 25, 47 e 1.79%, respectivamente. A morfologia dos est&aacute;dios intramolusco obtidos </I><I>foi compat&iacute;vel com as familias Paramphistomidae e Fasciolidae. Isto constitui o primeiro registro de um </I><I>foco de paramfistomosis bovina numa regi&atilde;o alto andina, no ocidente da Col&ocirc;mbia, donde destaca-se a </I><I>presen&ccedil;a em  simpatr&iacute;a com </I>Fasciola hepatica<I> e duas esp&eacute;cies de moluscos hospedeiros de ambos dig&ecirc;neos. </I><I>As freq&uuml;&ecirc;ncias de infec&ccedil;&atilde;o nos carac&oacute;is, sugerem </I>L. truncatula<I> como hospedeiro intermedi&aacute;rio principal </I><I>do paramfist&oacute;mido e </I>L. columella<I> como hospedeiro intermedi&aacute;rio alternativo do mesmo. A alta freq&uuml;&ecirc;ncia </I><I>do paramfistomido pode obedecer ao desconhecimento de sua presen&ccedil;a no rebanho e por tanto &agrave; aus&ecirc;ncia </I><I>de medidas para seu controle.</I></b></font></p>       <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>Palavras chave</b><I>: </I><I>Bos</I> <I>taurus</I><I>, Paramphistomidae, </I><I>Fasciola</I> <I>hepatica</I><I>, </I><I>Lymnaea</I> <I>columella</I><I>, </I><I>Lymnaea</I> <I>truncatula</I></b></font></p>       <p>&nbsp;</p> <hr size="1">     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="3"><b>Introducci&oacute;n</b></font>   </p> </p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Los Paramphistomidae (Trematoda: Digenea) son organismos endopar&aacute;sitos con ciclo de vida indirecto, en el que interviene un hospedador intermediario (molusco) y uno definitivo, generalmente un mam&iacute;fero. Los paramfist&oacute;midos son de distribuci&oacute;n mundial, pero en las regiones tropicales y subtropicales tienen mayor impacto sobre la salud de bovinos y ovinos. Las formas adultas de los paramfist&oacute;midos se localizan en el rumen e intestino delgado de los rumiantes como bovinos, ovinos, cabras, b&uacute;falos y ant&iacute;lopes. Ocasionalmente se registran formas err&aacute;ticas en  el h&iacute;gado (2).</font></p>    <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Los rumiantes se infectan por v&iacute;a oral al ingerir la forma qu&iacute;stica de los Paramphistomidae, denominada metacercaria. En el abomaso se desenquistan, liberan los par&aacute;sitos j&oacute;venes que migran hacia el duodeno y el &iacute;leon, y se localizan en la submucosa, donde generan inflamaci&oacute;n y edema. Aqu&iacute; alcanzan la madurez sexual y  migran al rumen, donde se inicia la liberaci&oacute;n de huevos, los cuales salen del hospedador a trav&eacute;s de las heces (12, 28). </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">El cuadro cl&iacute;nico que producen los paramfist&oacute;midos se denomina paramfistomosis, caracterizada por ocasionar enteritis severa, patolog&iacute;a que se manifiesta durante la permanencia de las formas juveniles de los par&aacute;sitos en la submucosa. Entre los s&iacute;ntomas m&aacute;s frecuentes de la paramfistomosis est&aacute;n la desnutrici&oacute;n y la p&eacute;rdida de peso, que conllevan el deterioro de la salud de los rumiantes, y al mismo tiempo causan disminuci&oacute;n en la producci&oacute;n de la leche y en la capacidad reproductiva, lo que genera p&eacute;rdidas econ&oacute;micas. Los efectos m&aacute;s severos se han rese&ntilde;ado en bovinos mayores de un a&ntilde;o, con una mortalidad del 90% (19). </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">En la familia Paramphistomidae se destacan las especies de los g&eacute;neros <I>Paramphistomum </I>y <I>Cotylophoron</I> por su impacto en la salud de animales de importancia econ&oacute;mica. La distribuci&oacute;n de C<I>otylophoron </I>en Colombia cubre los llanos orientales y el pie de monte llanero, entre los 0 y 1800 msnm (11). A su vez, las diferentes especies de <I>Paramphistomum</I> est&aacute;n asociadas a regiones con alta humedad y presencia de caracoles acu&aacute;ticos(2). Ambas rese&ntilde;as, mencionan la presencia de los g&eacute;neros <I>Cotylophoron </I>y<I> Paramphistomum</I>, en ganado bovino, pero en ninguno de estos trabajos se estableci&oacute; el hospedador intermediario.</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Las especies de los g&eacute;neros <I>Paramphistomum </I>y <I>Cotylophoron</I> presentan ciclos de vida complejos semejantes entre s&iacute;, puesto que el par&aacute;sito pasa por varios estad&iacute;os de desarrollo que se cumplen en diferentes especies hospedadoras. Los huevos proceden de la reproducci&oacute;n sexual de los par&aacute;sitos adultos y su desarrollo embrionario se inicia cuando caen en un ambiente h&uacute;medo; en uno de sus extremos poseen un op&eacute;rculo, por el que sale el miracidio luego de 14 a 16 d&iacute;as. Este es el estad&iacute;o larvario m&aacute;s joven. Su cuerpo ciliado facilita el desplazamiento en el agua, hasta encontrar el caracol hospedador (3). Cuando encuentra al molusco entra por su cavidad respiratoria y a trav&eacute;s de la epidermis; si no logra colonizarlo, muere en un periodo de 24 horas. En el caracol, el miracidio se transforma en esporocisto o redia y se ubica en el hepatop&aacute;ncreas del molusco (29).</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Por cada miracidio se desarrollan de uno a cuatro esporocistos, son semejantes a un saco con c&eacute;lulas germinales; y presentan un poro de nacimiento por donde emergen generaciones subsecuentes de redias, las cuales migran a trav&eacute;s de la hemolinfa y &oacute;rganos del caracol. Las redias producen cercarias. Larvas que tienen el cuerpo pigmentado y opaco, con dos manchas oculares; presentan una cola larga sin coloraci&oacute;n; salen del caracol 43 a 46 d&iacute;as despu&eacute;s de la exposici&oacute;n al miracidio y, cuando lo hacen, nadan hacia la superficie del agua (16, 18, 21).</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La cercaria pierde la cola al entrar en contacto con una superficie, como hojas, tallos y ra&iacute;ces de plantas, en las que se adhiere; se cubre de capas hasta transformase en un quiste denominado metacercaria (8). Esta es la forma infectante para los mam&iacute;feros, que se caracteriza por su resistencia a las condiciones ambientales (29). </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Los rumiantes se infectan al ingerir plantas contaminadas con metacercarias. Durante el tr&aacute;nsito de los quistes por el abomaso, se liberan los par&aacute;sitos j&oacute;venes que migran hacia el duodeno y el &iacute;leon. El proceso irrita las mucosas, desencadenando una descamaci&oacute;n que obliga a los par&aacute;sitos a penetrar en la submucosa, en donde generan inflamaci&oacute;n y edema. Aqu&iacute; permanecen hasta alcanzar la madurez sexual, que puede tardar de seis semanas a cuatro meses, seg&uacute;n la especie. Los par&aacute;sitos adultos migran, se adhieren a las paredes del rumen y se observan como gr&aacute;nulos de forma c&oacute;nica y color rojizo. Esta etapa en el ciclo de vida de los par&aacute;sitos se caracteriza por la liberaci&oacute;n de huevos, los cuales salen del hospedador a trav&eacute;s de las heces (8, 12).</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Los hospedadores intermediarios de los paramfist&oacute;midos son caracoles acu&aacute;ticos, pulmonados. En &Aacute;frica, Asia y Australia, predominan las familias <I>Planorbidae</I> y <I>Bulinidae</I>, y en Am&eacute;rica y Europa la familia <I>Lymnaeidae</I> (19). Los paramfist&oacute;midos cuentan entre sus hospederos definitivos a los bovinos y de ellos los m&aacute;s afectados pertenecen a la especie  de la raza holstein (<I>Bos taurus</I>) (24). </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">El hallazgo de estad&iacute;os intramolusco compatibles con los registrados para los paramfist&oacute;midos en los lymneidos de una hacienda localizada en el municipio de Rionegro, Antioquia, motiv&oacute; la realizaci&oacute;n de esta investigaci&oacute;n, que tuvo como objetivo establecer el hospedador definitivo y la frecuencia del digeneo en este y en el hospedador intermediario.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="3"><b>Materiales y m&eacute;todos</b></font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><I><b>Autorizaci&oacute;n del Comit&eacute; de &eacute;tica</b></I></font></p>    <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">El protocolo del presente trabajo cumpli&oacute; con los lineamientos establecidos por el Comit&eacute; de &Eacute;tica para experimentaci&oacute;n con Animales de la Universidad de Antioquia, seg&uacute;n el acta N&deg; 17 de diciembre 2 de 2004.</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><I><b>Ubicaci&oacute;n</b></I></font></p>    <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">El sitio de estudio corresponde a una hacienda ganadera ubicada a 6&deg; 07&acute;19" N y 75&deg; 26&acute; 58" O, en la vereda Tablacito del municipio de Rionegro (Antioquia), sobre las riberas del R&iacute;o Negro. El sector presenta una altitud de 2.140 m.s.n.m., con una temperatura y precipitaci&oacute;n promedio anuales de 17.2 &ordm;C y 1.600 mm, respectivamente. Seg&uacute;n Holdridge (14), la zona de vida corresponde a bosque h&uacute;medo montano bajo (bh-MB) y bosque muy h&uacute;medo montano bajo (bmh-MB).</font></p>     <p><b><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><I>Recolecci&oacute;n y clasificaci&oacute;n de los moluscos</I></font></b></p>    <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">En los ecosistemas acu&aacute;ticos l&eacute;nticos y l&oacute;ticos de la hacienda, se colectaron caracoles pulmonados. La captura fue realizada por cuatro personas durante dos horas, en cada ecosistema; la temperatura del agua se registr&oacute; con un term&oacute;metro de mercurio (15, 22). Los moluscos se dispusieron en frascos pl&aacute;sticos con agua del medio para ser transportados al moluscario del Laboratorio de Malacolog&iacute;a M&eacute;dica del PECET (Universidad de Antioquia). Se realizaron cuatro muestreos en un a&ntilde;o, con intervalos de tres meses entre cada uno.</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Los moluscos capturados se instalaron separados por taxones, en acuarios acondicionados con agua declorinada y aireada, a 21 &deg;C, con fotoper&iacute;odo de 12:12; se alimentaron con lechuga fresca y se les hizo recambio del agua cada tres d&iacute;as. Luego de dos d&iacute;as de aclimataci&oacute;n, en los caracoles capturados durante la primera salida de campo se estimul&oacute; la emisi&oacute;n cercariana, para establecer la presencia de digeneos. Los moluscos se individualizaron en recipientes con agua declorinada y aireada. Luego se pusieron bajo una fuente luminosa por ocho horas y se observaron en el estereomicroscopio cada cuatro horas (1). Los moluscos emisores fueron instalados en un acuario acondicionado para ellos y los no emisores se relajaron con nembutal al 0.05% durante cuatro horas, para disectarlos en busca de formas larvarias del trem&aacute;todo, bajo estereomicroscopio. A los caracoles colectados en las salidas posteriores no se les indujo la emisi&oacute;n cercariana, todos fueron relajados, disectados y analizados. El porcentaje de moluscos infectados se calcul&oacute; de la siguiente manera: n&uacute;mero de moluscos infectados, en relaci&oacute;n al n&uacute;mero de moluscos recolectados.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La determinaci&oacute;n taxon&oacute;mica de los caracoles se realiz&oacute; por disecci&oacute;n del aparato reproductor, bas&aacute;ndose en las descripciones realizadas por Paraense (20) y por Samadi <I>et al</I> (27); se utilizaron 10 caracoles de cada morfotipo. Los caracoles se relajaron en nembutal al 0.05%/4 h; ya relajados se sacrificaron en agua a 70 &deg;C/45 seg, y se fijaron en soluci&oacute;n Railliet-Henry (20). Las observaciones se realizaron en un est&eacute;reomicroscopio. Ejemplares de cada especie se depositaron en la colecci&oacute;n de referencia de moluscos vectores de la Universidad de Antioquia - VHET 37, adscrita al Instituto Alexander von Humboldt. </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Para la obtenci&oacute;n de cercarias y formas larvarias precercariales, 10 caracoles del acuario de los emisores se relajaron en nembutal al 0.05%. Despu&eacute;s de 4 h se sacrificaron por desprendimiento de la concha; luego se diseccionaron bajo estereomicroscopio y se retiraron las diferentes formas larvarias del par&aacute;sito. En el microscopio se montaron en fresco para observar las partes m&aacute;s relevantes de su anatom&iacute;a interna y se fotografiaron para crear el archivo de im&aacute;genes. </font></p>     <p><b><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><I>Muestreo de los bovinos </I></font></b></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Puesto que los paramfist&oacute;midos son par&aacute;sitos de rumiantes, se realizaron cuatro muestreos trimestrales para colectar heces del recto de los bovinos de la raza holstein de la hacienda, durante el orde&ntilde;o de la tarde. Las muestras se tomaron utilizando guantes obst&eacute;tricos individuales para cada animal; se conservaron en recipientes herm&eacute;ticos y posteriormente se marcaron. Una vez en el laboratorio, se almacenaron a 4 &deg;C hasta el an&aacute;lisis. Para establecer la frecuencia del par&aacute;sito en los bovinos, se buscaron huevos en las heces por la t&eacute;cnica de Dennis modificada seg&uacute;n par&aacute;metros del laboratorio de Malacolog&iacute;a M&eacute;dica. Cada muestra se proces&oacute; en un envase de vidrio de 1000 ml, donde 25 g de heces diluidas en 200 ml de agua corriente se depositaron a trav&eacute;s de un embudo con una gasa doblada en cuatro; luego se a&ntilde;adieron 600 ml de agua y se dejaron reposar por 15 min. El sobrenadante se descart&oacute; y el procedimiento se repiti&oacute; hasta que el agua del sobrenadante estuviera totalmente clara. El precipitado se vaci&oacute; en una caja de Petri y se agregaron 5 ml de agua destilada para su posterior observaci&oacute;n al estereomicroscopio para buscar la presencia de huevos grises brillantes, t&iacute;picos de los <I>Paramphistomidae</I> (13). El porcentaje de mam&iacute;feros infectados se estim&oacute; as&iacute;: n&uacute;mero de coprol&oacute;gicos positivos, en relaci&oacute;n al n&uacute;mero de coprol&oacute;gicos totales.</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Los huevos fueron separados por el color, puesto que en el ganado de la hacienda investigada se conoce la presencia de <I>Fasciola hepatica</I> y el principal car&aacute;cter para diferenciar los huevos de ambos grupos de digeneos, es la coloraci&oacute;n. Los mismos fueron incubados durante 15 d&iacute;as, en agua destilada a 21 &deg;C, en la oscuridad. Cada 4 d&iacute;as se hizo recambio de agua. Luego de este periodo, se estimul&oacute; la eclosi&oacute;n de los miracidios con una fuente luminosa (16). Los miracidios se observaron al microscopio con el fin de establecer caracter&iacute;sticas morfol&oacute;gicas que permitieran separar los paramfist&oacute;midos de <I>F. hepatica.</I> Este procedimiento s&oacute;lo se realiz&oacute; con las muestras de materia fecal obtenidas durante la primera salida de campo.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><b><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="3">Resultados</font></b></p>    <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Los bovinos en la hacienda investigada fueron vacas <I>Bos taurus</I> de la raza holstein. Del hato, se hizo diagn&oacute;stico parasitol&oacute;gico a los 71 ejemplares que estuvieron en orde&ntilde;o durante las fechas de muestreo. El examen parasitol&oacute;gico demostr&oacute; que el 100% de los bovinos analizados se encontraba parasitado por un digeneo de la familia Paramphistomidae. Sin embargo, es importante aclarar que durante el primer muestreo se diagnostic&oacute; un bovino como negativo, que posteriormente, durante el tercer muestreo fue diagnosticado como positivo (<a href="#t1">v&eacute;ase Tabla 1</a>). Como era de esperarse, tambi&eacute;n se diagnostic&oacute; <I>F. hepatica</I> en las muestras examinadas. La frecuencia de este digeneo correspondi&oacute; al 80%. Esto implica que de los bovinos diagnosticados, 51 ejemplares se hallaron infectados por los dos par&aacute;sitos.</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><img src="/img/revistas/rccp/v21n1/v21n1a02t01.jpg"></font><a name="t1"></a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Durante esta investigaci&oacute;n se colectaron dos especies de moluscos de la familia Lymnaeidae, que fueron determinadas como <I>Lymnaea columella</I>  (<a href="#f1">v&eacute;ase Figura 1A</a>) y <I>Lymnaea truncatula </I>(<a href="#f1">v&eacute;ase Figura 1B</a>). Adem&aacute;s, se colectaron espec&iacute;menes de la familia Physidae, determinados como <I>Physa acuta </I>(<a href="#f1">v&eacute;ase Figura 1C</a>), los cuales fueron negativos para digeneos; por lo tanto, no se incluyeron en las tablas de datos. Las tres especies se capturaron tanto en las acequias como en los bebederos artificiales de la hacienda.</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Respecto de la abundancia de los lymneidos, se observ&oacute; como las poblaciones de ambas especies variaban a trav&eacute;s del tiempo. En la primera salida de campo, por ejemplo, s&oacute;lo se colectaron <I>L. truncatula</I>, mientras que en los dem&aacute;s muestreos se colectaron ejemplares de ambas. Sin embargo, se destac&oacute; la poblaci&oacute;n de <I>L. truncatula</I> por ser la m&aacute;s abundante durante todas las colectas (<a href="#t2">v&eacute;ase Tabla 2</a>).</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><img src="/img/revistas/rccp/v21n1/v21n1a02f01.jpg"><a name="f1"></a></font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">&nbsp;</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Sobre las frecuencias de la infecci&oacute;n del paramfist&oacute;mido en los lymneidos, se se&ntilde;ala que estas siempre fueron mayores en <I>L. truncatula</I> que en <I>L. columella </I>y el rango de infecci&oacute;n fue muy amplio, como por ejemplo el de <I>L</I>.<I> truncatula</I> que oscil&oacute; entre 4.32 y 41.0% (<a href="#t2">v&eacute;anse Tabla 2</a> y <a href="#f2">Figura 2</a>).</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><img src="/img/revistas/rccp/v21n1/v21n1a02t02.jpg"><a name="t2"></a></font></p>     <p align="center"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><img src="/img/revistas/rccp/v21n1/v21n1a02f02.jpg"><a name="f2"></a></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> </font></p>    <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Otro aporte de importancia epidemiol&oacute;gica fue el hallazgo de estad&iacute;os intra-molusco, pertenecientes a digeneos cuyas caracter&iacute;sticas morfol&oacute;gicas permitieron asignarlos a las familias Paramphistomidae y Fasciolidae. Ambos tipos de larvas se encontraron en las dos especies de lymneidos, pero en ninguno de los moluscos se present&oacute; doble infecci&oacute;n. La frecuencia del fasci&oacute;lido no se estableci&oacute; por ser objeto de otra investigaci&oacute;n simult&aacute;nea. Sin embargo, los rasgos morfol&oacute;gicos que permitieron diferenciar las larvas se describen a continuaci&oacute;n. </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La redia del fasci&oacute;lido es alargada, y posee una ventosa oral seguida de un saco digestivo desarrollado, el cual se destaca por una coloraci&oacute;n amarillo ocre. Presenta adem&aacute;s dos o cuatro proyecciones laterales a lo largo de su cuerpo (<a href="#f3">v&eacute;ase Figura 3A</a>). A su vez, la redia del paramfist&oacute;mido, mide un tercio de la anterior, no presenta saco digestivo diferenciable por tama&ntilde;o y coloraci&oacute;n, y su cuerpo carece de proyecciones laterales (<a href="#f3">v&eacute;ase Figura 3B</a>).</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><img src="/img/revistas/rccp/v21n1/v21n1a02f03.jpg"><a name="f3"></a></font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">&nbsp;</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Ambos tipos de cercarias presentan morfolog&iacute;a a primera vista semejante, sin embargo, bajo el microscopio se precisaron diferencias que permitieron establecer la familia a la que pertenec&iacute;an. En el caso del fasciolido la cercaria carec&iacute;a de manchas oculares, pero eran muy evidentes las gl&aacute;ndulas cist&oacute;genas (<a href="#f4">v&eacute;ase Figura 4A</a>). Por su parte, la cercaria del Paramphistomidae present&oacute; dos manchas oculares y el acet&aacute;bulo en el extremo posterior del cuerpo (<a href="#f4">v&eacute;ase Figura 4B</a>)<I>.</I></font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><img src="/img/revistas/rccp/v21n1/v21n1a02f04.jpg"><a name="f4"></a></font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">A partir de los miracidios eclosionados, se confirm&oacute; la presencia de dos digeneos parasitando los bovinos examinados. De acuerdo con sus caracter&iacute;sticas morfol&oacute;gicas, el miracidio procedente de los huevos amarillos pertenec&iacute;a a la familia Fasciolidae, ya que presentaba una mancha ocular oscura (<a href="#f5">v&eacute;ase Figura 5A</a>), mientras que el miracidio eclosionado de los huevos plateados carec&iacute;a de ella, lo que lo hace compatible con los Paramphistomidae (<a href="#f5">v&eacute;ase Figura 5B</a>).</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><b><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="3">Discusi&oacute;n</font></b></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">En este estudio se demuestra por primera vez la presencia de un foco de paramfistomosis en un hato de ganado lechero (<I>Bos taurus</I>) situado en la regi&oacute;n del tr&oacute;pico alto en el occidente de Colombia. Los trabajos anteriores se&ntilde;alan la presencia de paramfist&oacute;midos para la costa norte y los llanos orientales (11, 23), regiones localizadas en el tr&oacute;pico bajo colombiano. </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><img src="/img/revistas/rccp/v21n1/v21n1a02f05.jpg"><a name="f5"></a></font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">&nbsp;</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">De otro lado, en este trabajo se comprob&oacute; la eficacia de la t&eacute;cnica de Dennis para diagnosticar dos digeneos en simpatr&iacute;a, usando como par&aacute;metro de comparaci&oacute;n la coloraci&oacute;n de los huevos, rasgo que se sugiere como herramienta &uacute;til para diferenciar infecciones por fasciolidos y por paramfist&oacute;midos. Para confirmar estas familias se propone separar los huevos por colores hasta obtener los miracidios. </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Con esta investigaci&oacute;n se estableci&oacute; la presencia del primer foco de paramfistomosis bovina en Colombia, donde est&aacute;n involucrados dos moluscos hospedadores en simpatr&iacute;a, <I>L. columella</I> y <I>L. </I><I>truncatula.</I> Las frecuencias del paramfist&oacute;mido en los caracoles permiten considerar a <I>L. truncatula </I>como el hospedador intermediario principal, y a <I>L. </I><I>columella</I> como el hospedador intermediario alterno. Este no es un caso aislado puesto que en M&eacute;jico (7), y en Francia (9) tambi&eacute;n han sido rese&ntilde;ados dos lymneidos en simpatr&iacute;a, como hospedadores de <I>Fasciola hepatica</I> y de <I>Paramphistomum </I><I>daubney, </I>respectivamente. Adem&aacute;s, se confirma la importancia de la familia Lymnaeidae en la transmisi&oacute;n de paramfist&oacute;midos en Am&eacute;rica (6): es as&iacute; como en Venezuela se ha notificado a <I>Fossaria </I><I>spp</I>. y a <I>Lymnaea humilis</I> como hospedadores de <I>Cotylophoron</I> <I>cotylophorum </I>(10). A su vez, en M&eacute;xico se ha se&ntilde;alado a <I>Lymnaea palustris</I> como hospedadora de <I>Paramphistomum cervi </I>(5)<I>. </I>A diferencia de estos pa&iacute;ses, en Colombia se rese&ntilde;&oacute; a <I>Physa</I> sp. como el hospedador de <I>Cotylophoron </I><I>cotylophorum</I> en un sector de los llanos orientales (25). Sin embargo, los <I>Physa acuta</I> capturados durante el presente estudio no se encontraron parasitados con digeneos. </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">En cuanto al fasci&oacute;lido, las evidencias permiten considerar que se trata de <I>F. hepatica</I>, pues la morfolog&iacute;a de huevos y larvas corresponden con la descrita para dicho digeneo; a esto se suma el hecho que por m&aacute;s de una d&eacute;cada en la hacienda investigada se viene haciendo extracci&oacute;n <I>post</I> <I>mortem </I>de adultos de dicho par&aacute;sito, en el h&iacute;gado de los bovinos sacrificados (Le&oacute;n P&eacute;rez, m&eacute;dico veterinario, comunicaci&oacute;n personal 2007). Por consiguiente, el presente es el primer registro de un foco doble de trematodiasis (fasciolosis y paramfistomosis) en un hato ganadero de Am&eacute;rica. Hasta el momento se desconoce el impacto que generan los digeneos en simpatr&iacute;a, <I>F. hepatica</I> y el paramfist&oacute;mido, en la producci&oacute;n de carne y leche y en la reproducci&oacute;n de los vacunos (6, 11). </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Con esta investigaci&oacute;n se suma <I>L. truncatula </I>a la lista de hospedadores de <I>F. hepatica</I> en Colombia, puesto que solo se hallaron referencias acerca de <I>L. columella</I> y <I>L. cousini</I> como sus hospedadores intermediarios en el pa&iacute;s. Este molusco es referenciado como el principal hospedador intermediario de <I>F. hepatica</I> en Europa, de donde es originario (4, 17, 26, 30). </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">El registro del 100% de los animales vivos infectados con el paramfist&oacute;mido, contrasta con el desconocimiento de este par&aacute;sito, por parte del personal que tiene a su cargo los vacunos del predio. Finalmente, el alto n&uacute;mero de bovinos infectados as&iacute; como la frecuencia de los par&aacute;sitos en los caracoles, evidencian la falta de estrategias para su control y el riesgo de infecci&oacute;n con <I>F. </I><I>hepatica</I>, para las personas que laboran en el sector.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="3"><b>Agradecimientos</b></font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Las autores expresan su agradecimiento al Dr. Iv&aacute;n Dar&iacute;o V&eacute;lez Bernal, director del Programa de Estudio y Control de enfermedades Tropicales -PECET- (Universidad de Antioquia, Medell&iacute;n, Colombia), por su apoyo a los estudios en trematodiasis. A Le&oacute;n P&eacute;rez, m&eacute;dico veterinario de la hacienda la Alborada, por facilitar el acceso a los predios y a los animales en orde&ntilde;o. A las personas de la hacienda que tienen a su cargo el manejo de los bovinos. A los m&eacute;dicos veterinarios Jos&eacute; Ignacio Calle y Esteban Arroyave, por colaborar con la toma de las muestras de materia fecal y al personal del laboratorio de Malacolog&iacute;a M&eacute;dica y Trem&aacute;todos, por su apoyo permanente. Este proyecto fue financiado por Comit&eacute; para el Desarrollo de la Investigaci&oacute;n -CODI- Universidad de Antioquia (Medell&iacute;n, Colombia).</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><b><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="3">Referencias </font></b></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">1.	Abrous M, Rondelaud D, Dreyfuss G. Influence of low temperatures on the cercarial shedding of <I>Paramphistomum </I><I>daubneyi</I> from the snail <I>Lymnaea truncatula </I>parasite; J Helminthol 2000; 6:85-88. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0120-0690200800010000200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">2.	Benavides OE, Romero NA. Manejo integrado de plagas y enfermedades. El control de los par&aacute;sitos internos en del ganado en los sistemas de pastoreo en el tr&oacute;pico colombiano 2001.URL:<a href="http://www.fedegan.org.co/71manual.html" target="_blank">http://www.fedegan.org.co/71manual.html</a>. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0120-0690200800010000200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">3.	Cheng TC. General parasitology. New York: Academic Press College Division; 1986.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0120-0690200800010000200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">4.	Carrada-Bravo T. <I>Fasciola hepatica:</I> ciclo biol&oacute;gico y potencial biol&oacute;gico. Rev Mex Pat Clin 2007; 54:12-22.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0120-0690200800010000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">5.	Castro Z, Garc&iacute;a J, Casildo L. The susceptibility of lymnaeid snails to <I>Paramphistomum cervi</I> infections in Mexico. Vet Parasitol 1990; 35:157-161.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0120-0690200800010000200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">6.	Cordero del CM, Rojo VF. Parasitolog&iacute;a Veterinaria. 3&ordf; reimpresi&oacute;n. Madrid: McGraw-Hill Interamericana; 2002. p.225-228.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0120-0690200800010000200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">7.	Cruz-Mendoza I, Figueroa JA, Correa D, Ramos-Mart&iacute;nez E, Lecumberri-L&oacute;pez J, <I>et al</I>. Dynamics of <I>Fasciola </I><I>hepatica </I>infection in two species of snails in a rural locality of Mexico. Vet Parasitol 2004; 121:87-93.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0120-0690200800010000200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">8.	Dinnik JA, Dinnik NN. The life cycle of <I>Paramphistomum </I><I>microbothrium</I> Fischoeder, 1901 (Trematoda, Paramphistomatidae). East African Veterinary Research Organization. Muguga, Kenya; 1953. p.285-299. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0120-0690200800010000200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">9.	Dreyfuss G, Vignoles P, Rondelaud D.&nbsp;Natural infections of <I>Omphiscola glabra</I> (Lymnaeidae) with <I>Fasciola hepatica</I> in central France. Parasitol Res 2003; 91:458-461.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0120-0690200800010000200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">10.	Forlano MD, Henr&iacute;quez HR, Mel&eacute;ndez RD. Incidencia y prevalencia de  C<I>otylophoron</I> spp. (Trematoda: Digenea) en bovinos del asentamiento campesino &quot;Las Majaguas&quot;. Portuguesa, Venezuela, 1996-1997. Gac Vet 2001; 7:51-58.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0120-0690200800010000200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">11.	Griffiths IB, Parra DG, Vizca&iacute;no OG, Gallego MI. Prevalence of parasite eggs and cysts in faeces from dairy cows in Colombia. Trop Anim Health Prod 1986; 18:155-157.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0120-0690200800010000200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">12.	Guzm&aacute;n CH, Hern&aacute;ndez HA. Prevalencia de <I>Paramphistomum</I> sp. en bovinos del municipio de Medina, Casanare. Trabajo de grado, Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Universidad Nacional de Colombia, Bogot&aacute;, 1992. 73p. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0120-0690200800010000200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">13.	Happich FA, Boray JC. Quantitative diagnosis of chronic fasciolasis. 1 Comparative studies on quantitative faecal examinations for chronic <I>Fasciola hepatica</I> infection in sheep. Aust Vet J 1969; 45:326-328.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0120-0690200800010000200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">14.	Holdridge LR. Ecolog&iacute;a basada en zonas de vida. Servicio editorial IICA, Costa Rica; 1987. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0120-0690200800010000200014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">15.	Leimbacher, F. Epid&eacute;miologie de la fasciolose dans le centre ouest de la France. Essais d&acute;adaptation d&acute;une technique de pr&eacute;vision. M&eacute;moire Ing&eacute;nieur CNAM. Paris; 1975 p.1-11.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0120-0690200800010000200015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">16.	Malek EA, Cheng TC. Medical and economic malacology. New York, London: Academic Press; 1974. p.374.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0120-0690200800010000200016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">17.	Malek E, Congswell FB. <I>Lymnaea (Pseudosuccinea) </I><I>columella </I>in Colombia. Nautilus 1980; 94:112-114.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S0120-0690200800010000200017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">18.	Manga GM. Trematodos. En: Cordero del CM, Rojo VF (Eds). Parasitolog&iacute;a Veterinaria. 3&ordf; reimpresi&oacute;n. Madrid: McGraw-Hill Interamericana; 2002. p.225-228.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0120-0690200800010000200018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">19.	Muro AA, Ramajo MV. Paranfistomosis. En: Cordero del CM, Rojo VF (Eds). Parasitolog&iacute;a Veterinaria. 3&ordf; reimpresi&oacute;n. Madrid: McGraw-Hill Interamericana; 2002. p.225-228.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S0120-0690200800010000200019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">20.	Paraense WL. <I>Lymnaea columella</I> in northern Brazil. Mem Inst Oswaldo Cruz 1983. 79:75-81.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0120-0690200800010000200020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">21.	Pinheiro AJ, Maldonado JM. Morphology of the rediae of <I>Echinostoma paraensei</I> (Trematoda: Echinostomatidae) from its intermediate host <I>Lymnaea columella</I> (Mollusca: Gastropoda). Parasitol Res 2004; 93:171-177.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000120&pid=S0120-0690200800010000200021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">22.	Pino LA, Morales G, M&aacute;rquez A. Presencia de <I>Lymnaea </I><I>cubensis</I> hospedador intermediario de <I>Fasciola hepatica</I> en el municipio de La Ca&ntilde;ada de Urdaneta, Estado de Zulia. Vet Trop 1995; 20:85-93.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0120-0690200800010000200022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">23.	Rivera B, Arag&oacute;n R, Parra D. Estudio preliminar sobre la paranfistomiasis bovina en los llanos orientales de Colombia. Rev Col Cienc Pec 1979; 2:93-99.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000122&pid=S0120-0690200800010000200023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">24.	Rinaldi L, Perugini AG, Capuano F, Fenizia D, Musella V, <I>et al.</I> Characterization of the second internal transcribed spacer of ribosomal DNA of <I>Calicophoron daubneyi</I> from various hosts and locations in southern Italy. Vet Parasitol 2005; 131:247-253.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0120-0690200800010000200024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">25.	Rodr&iacute;guez H. Determinaci&oacute;n de un hu&eacute;sped intermediario de la paramphistomiasis bovina en condiciones de piedemonte llanero. Trabajo de grado, Facultad de medicina veterinaria y zootecnia, Universidad Tecnol&oacute;gica de los Llanos Orientales, Villavicencio, 1984. 61 p.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000124&pid=S0120-0690200800010000200025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">26.	Salazar L, Estrada VE, Vel&aacute;squez LE. Effect of the exposure to <I>Fasciola hepatica </I>(Trematoda: Digenea) on life history traits of <I>Lymnaea cousini </I>and <I>Lymnaea </I><I>columella </I>(Gastropoda: Lymnaeidae). Exp Parasitol 2006; 114:77-83.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S0120-0690200800010000200026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">27.	Samadi S, Roumegoux A, Bargues MD, Mas-Coma S, Yong M, <I>et al.</I> Morphological studies of lymnaeid snail from the human fascioliasis endemic zone of Bolivia<I>. </I>J Mol Stud 2000; 66:31-44.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000126&pid=S0120-0690200800010000200027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">28.	Sarmiento JI. Sistema digestivo de rumiantes y aves. 1997. URL: <a href="http://www.monografias.com/trabajos10/ruav/ruav.shtml" target="_blank">http://www.monografias.com/trabajos10/ruav/ruav.shtml</a></font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S0120-0690200800010000200028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">29.	Tatcher VE. Tremat&oacute;deos neotropicais. Manaus: Instituto Nacional de Pesquisas da Amazonia; 1993. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000128&pid=S0120-0690200800010000200029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">30.	Vel&aacute;squez LE. Synonymy between <I>Lymnaea bogotensis </I>Pilsbry, 1935 and <I>Lymnaea cousini </I>Jousseaume, 1887 (Gastropoda: Lymnaeidae). Mem Inst Oswaldo Cruz 2006; 101:795-799.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S0120-0690200800010000200030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">&nbsp;</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><Sup>&#182;	</Sup>Para citar este art&iacute;culo: L&oacute;pez LP, Romero J, Vel&aacute;squez LE. Aislamiento de Paramphistomidae en vacas de leche y en el hospedador intermediario (<I>Lymnaea </I><I>truncatula</I> y <I>Lymnaea columella</I>) en una granja del tr&oacute;pico alto en el occidente de Colombia. Rev Colomb Cienc Pecu 2008; 21:9-18.</font></p>    <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Autor para el env&iacute;o de correspondencia y la solicitud de separatas: Sede de Investigaci&oacute;n Universitaria -SIU, Universidad de Antioquia. Calle 62 N&deg; 52-59, Torre 2, laboratorio 730. Medell&iacute;n, Colombia. E-mail: <a href="mailto:luzelena333@yahoo.com">luzelena333@yahoo.com</a></font></p>     ]]></body>
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<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Influence of low temperatures on the cercarial shedding of Paramphistomum daubneyi from the snail Lymnaea truncatula parasite]]></article-title>
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