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<journal-title><![CDATA[Revista Colombiana de Ciencias Pecuarias]]></journal-title>
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<publisher-name><![CDATA[Facultad de Ciencias Agrarias, Universidad de Antioquia]]></publisher-name>
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<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Role of leptin and its receptor on bovine mammary gland]]></article-title>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Papel de la leptina y su receptor en la glándula mamaria bovina]]></article-title>
<article-title xml:lang="pt"><![CDATA[Papel da leptina e seu receptor na glândula mamária bovina]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[La leptina es una hormona proteínica que participa en procesos fisiológicos relacionados con la regulación del metabolismo energético, reproducción, inmunidad, cáncer, lactancia, entre otros. Su receptor se expresa en casi la totalidad de los tejidos, presentando seis isoformas a partir de un mismo ARNm. La isoforma predominante en la glándula mamaria bovina es la Ob-Rb, a través de la cual se puede desencadenar una cascada de señalización por medio de las moléculas JAK-STAT, para inducir proliferación, diferenciación y apoptosis celular de acuerdo al estadio reproductivo de la hembra. En pequeños rumiantes, tales como ovejas y cabras, los niveles de leptina y su receptor varían considerablemente durante la preñez y lactancia: son altos al inicio de la gestación, tienden a descender hasta la mitad de esta etapa y permanecen bajos hasta la finalización de la lactancia. En la glándula mamaria de bovinos aún no se ha establecido un patrón de expresión de los receptores durante diferentes etapas reproductivas, estudio que se considera importante y necesario para comprender el efecto de la leptina sobre su receptor en glándula mamaria, especialmente durante la lactancia, período durante el cual sufre una remodelación celular del tejido glandular para sostener una alta producción láctea. En la presente revisión se plantea una hipótesis de cómo podría ser la vía de señalización desencadenada por el receptor de leptina en la glándula mamaria durante la lactancia.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="pt"><p><![CDATA[A leptina é um hormônio protéico envolvido em processos fisiológicos relacionados com a regulação do metabolismo energético, reprodução, imunidade, câncer, lactação, entre outros. Seu receptor é expresso em quase todos os tecidos e apresenta seis isoformas a partir do mesmo mRNA. A isoforma predominante na glândula mamária bovina é a Ob-Rb, através da qual é desencadeada uma cascata de sinalização através das moléculas JAK-STAT para induzir a diferenciação, proliferação e apoptose de acordo com o estágio reprodutivo da fêmea. Em pequenos ruminantes, como ovinos e caprinos, os níveis de leptina e seu receptor variam consideravelmente durante a gravidez e a lactação. São altos no início da gravidez, tendem a cair na metade dessa fase e permanecem baixos até o final da lactação. Ainda não foi estabelecido um padrão de expressão do receptor de leptina na glândula mamária de bovinos durante diferentes estágios reprodutivos. O estudo deste tema é importante e necessário para entender o efeito da leptina sobre o seu receptor na glândula mamária, especialmente durante a lactação, periodo no qual a glândula mamária sofre remodelação do tecido glandular com a finalidade de sustentar a alta produção de leite. A presente revisão apresenta uma hipótese sobre a via de sinalização que é desencadeada pelo receptor da leptina na glândula mamária durante a lactação.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"size="2">     <p align="right"><b>REVISIONES DE LITERATURA</b></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><font size="4"><b>Role of leptin and its receptor on bovine mammary gland   <sup><a href="#0">&curren;</a><a name="b0"></a></sup> </b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><font size="3"><b>Papel de la leptina y su receptor en la gl&aacute;ndula mamaria bovina</b></font></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center"><font size="3"><b>Papel da leptina e seu receptor na gl&acirc;ndula mam&aacute;ria bovina</b></font></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center">&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Diana M Echeverry<sup>1*</sup>, MV; Felipe Penagos<sup>1</sup>, Estud MV; Zulma Tatiana Ruiz-Cort&eacute;s<sup>1</sup>, MV, Msc, PhD.</p>     <p>&nbsp;</p>     <p>* Autor para correspondencia: Diana Mar&iacute;a Echeverry. Grupo de investigaci&oacute;n Biog&eacute;nesis, Facultad de Ciencias Agrarias, Universidad de Antioquia. Carrera   75 N&ordm; 65-87 Bloque 46-202, AA 1226, Medell&iacute;n, Colombia. Correo electr&oacute;nico: <a href="mailto:dianaecheverrymv@hotmail.es">dianaecheverrymv@hotmail.es</a> </p>     <p><sup>1</sup> Grupo de Investigaci&oacute;n Biog&eacute;nesis, Facultad de Ciencias Agrarias, Universidad de Antioquia, AA 1226, Medell&iacute;n, Colombia.</p>     <p>&nbsp;</p>     <p>(Recibido: 18 julio, 2011; aceptado: 8 mayo, 2012)</p>     <p>&nbsp;</p> <hr noshade size="1">     <p><b>Summary</b></p>     <p>Leptin is a hormone-like protein involved in physiological processes related to the regulation of energy   metabolism, reproduction, immunity, cancer, breastfeeding, among others. Leptin receptor is expressed   in almost all tissues and generates six isoforms from a single mRNA. The predominant isoform in bovine   mammary gland is the Ob-Rb, which triggers a signaling cascade through JAK-STAT molecules to induce   proliferation, differentiation and apoptosis, according to the female reproductive stage. In small ruminants,   such as sheep and goats, leptin and its receptor levels vary widely, being high at the beginning of pregnancy,   tending to fall in mid-gestation, and remaining low until the end of lactation. An expression pattern of   leptin receptor has not yet been established for the various reproductive stages in bovine mammary gland.   Such study is considered important and necessary to understand the effect of leptin via its receptor in   mammary gland, especially during lactation when the gland undergoes tissue remodeling to sustain high   milk production. This review presents a hypothesis about the signaling pathway triggered by leptin receptor   in the mammary gland during bovine lactation.</p>     <p><b>Key words:</b> bovine, lactancy, leptin, leptin receptor, mammary gland, ruminants.</p>  <hr noshade size="1">     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Resumen</b></p>     <p>   La leptina es una hormona prote&iacute;nica que participa en procesos fisiol&oacute;gicos relacionados con la   regulaci&oacute;n del metabolismo energ&eacute;tico, reproducci&oacute;n, inmunidad, c&aacute;ncer, lactancia, entre otros. Su   receptor se expresa en casi la totalidad de los tejidos, presentando seis isoformas a partir de un mismo   ARNm. La isoforma predominante en la gl&aacute;ndula mamaria bovina es la Ob-Rb, a trav&eacute;s de la cual se   puede desencadenar una cascada de se&ntilde;alizaci&oacute;n por medio de las mol&eacute;culas JAK-STAT, para inducir proliferaci&oacute;n, diferenciaci&oacute;n y apoptosis celular de acuerdo al estadio reproductivo de la hembra. En   peque&ntilde;os rumiantes, tales como ovejas y cabras, los niveles de leptina y su receptor var&iacute;an considerablemente   durante la pre&ntilde;ez y lactancia: son altos al inicio de la gestaci&oacute;n, tienden a descender hasta la mitad de   esta etapa y permanecen bajos hasta la finalizaci&oacute;n de la lactancia. En la gl&aacute;ndula mamaria de bovinos   a&uacute;n no se ha establecido un patr&oacute;n de expresi&oacute;n de los receptores durante diferentes etapas reproductivas,   estudio que se considera importante y necesario para comprender el efecto de la leptina sobre su receptor   en gl&aacute;ndula mamaria, especialmente durante la lactancia, per&iacute;odo durante el cual sufre una remodelaci&oacute;n   celular del tejido glandular para sostener una alta producci&oacute;n l&aacute;ctea. En la presente revisi&oacute;n se plantea   una hip&oacute;tesis de c&oacute;mo podr&iacute;a ser la v&iacute;a de se&ntilde;alizaci&oacute;n desencadenada por el receptor de leptina en la   gl&aacute;ndula mamaria durante la lactancia.</p>     <p><b>Palabras clave:</b> bovinos, gl&aacute;ndula mamaria, lactancia, leptina, receptor de leptina, rumiantes.</p>  <hr noshade size="1">     <p><b>Resumo</b></p>     <p>   A leptina &eacute; um horm&ocirc;nio prot&eacute;ico envolvido em processos fisiol&oacute;gicos relacionados com a regula&ccedil;&atilde;o   do metabolismo energ&eacute;tico, reprodu&ccedil;&atilde;o, imunidade, c&acirc;ncer, lacta&ccedil;&atilde;o, entre outros. Seu receptor &eacute; expresso   em quase todos os tecidos e apresenta seis isoformas a partir do mesmo mRNA. A isoforma predominante   na gl&acirc;ndula mam&aacute;ria bovina &eacute; a Ob-Rb, atrav&eacute;s da qual &eacute; desencadeada uma cascata de sinaliza&ccedil;&atilde;o   atrav&eacute;s das mol&eacute;culas JAK-STAT para induzir a diferencia&ccedil;&atilde;o, prolifera&ccedil;&atilde;o e apoptose de acordo com o   est&aacute;gio reprodutivo da f&ecirc;mea. Em pequenos ruminantes, como ovinos e caprinos, os n&iacute;veis de leptina e seu   receptor variam consideravelmente durante a gravidez e a lacta&ccedil;&atilde;o. S&atilde;o altos no in&iacute;cio da gravidez, tendem   a cair na metade dessa fase e permanecem baixos at&eacute; o final da lacta&ccedil;&atilde;o. Ainda n&atilde;o foi estabelecido um   padr&atilde;o de express&atilde;o do receptor de leptina na gl&acirc;ndula mam&aacute;ria de bovinos durante diferentes est&aacute;gios   reprodutivos. O estudo deste tema &eacute; importante e necess&aacute;rio para entender o efeito da leptina sobre o seu   receptor na gl&acirc;ndula mam&aacute;ria, especialmente durante a lacta&ccedil;&atilde;o, periodo no qual a gl&acirc;ndula mam&aacute;ria   sofre remodela&ccedil;&atilde;o do tecido glandular com a finalidade de sustentar a alta produ&ccedil;&atilde;o de leite. A presente   revis&atilde;o apresenta uma hip&oacute;tese sobre a via de sinaliza&ccedil;&atilde;o que &eacute; desencadeada pelo receptor da leptina na   gl&acirc;ndula mam&aacute;ria durante a lacta&ccedil;&atilde;o.</p>     <p> <b>Palavras chave:</b> bovinos, gl&acirc;ndula mam&aacute;ria, lacta&ccedil;&atilde;o, receptor a leptina, leptina, ruminantes.</p>  <hr noshade size="1">     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>     <p>   La leptina es una hormona de tipo prote&iacute;nico,   descubierta en 1994 por Friedman y colaboradores,   y que se asoci&oacute; principalmente con la obesidad,   denomin&aacute;ndose as&iacute; con las siglas ''Ob'' (Zhang   <i>et al.</i>, 1994). Esta hormona no s&oacute;lo participa en   la regulaci&oacute;n energ&eacute;tica, recientemente se ha   descubierto que regula diversas funciones a nivel fisiol&oacute;gico, incrementando su importancia en investigaci&oacute;n.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>   La leptina es una prote&iacute;na glucosilada producida   a partir de un precursor de 167 amino&aacute;cidos y con   un peso molecular de 16 kDa, con dos puentes   disulfuro necesarios para su actividad biol&oacute;gica   (Acosta, 2006). Su receptor (Ob-R) fue descubierto   en los plexos coroideos de rat&oacute;n (Tartaglia, 1997)   y tiene una alta similitud con los receptores de   la familia de las interleuquinas. Presenta seis   isoformas (Ob-Ra, Ob-Rb, Ob-Rc, Ob-Rd, Ob-   Re y Ob-Rf), siendo la segunda, la de mayor   longitud que presenta dominio intracelular (extremo   carboxiloterminal) requerido para desencadenar la   cascada de se&ntilde;alizaci&oacute;n y activaci&oacute;n de quinasas   y, la de mayor abundancia en la mayor&iacute;a de tejidos (Butte <i>et al.</i>, 1997; Aizawa-Abe <i>et al.</i>, 2000).</p>     <p>La diferencia de las seis isoformas del receptor   se encuentra en su extremo carboxiloterminal;   la isoforma OB-Re solo presenta un dominio   extracelular, careciendo de dominio transmembrana   y citoplasm&aacute;tico, se estima que es secretado y se   transforma en prote&iacute;na s&eacute;rica de uni&oacute;n a leptina   (Gavrilova <i>et al.</i>, 1997; Gallardo <i>et al.</i>, 2005). Los   receptores se expresan en la mayor&iacute;a de tejidos, lo   que lleva a concluir que la leptina es una hormona   ubicua (Tartaglia, 1997). La expresi&oacute;n de los   receptores en gl&aacute;ndula mamaria, al unirse con la   hormona, desencadenan por v&iacute;as de se&ntilde;alizaci&oacute;n celular un efecto importante en el desarrollo e   involuci&oacute;n de dicho tejido en diferentes estadios   fisiol&oacute;gicos (Bonnet <i>et al.</i>, 2002). En los humanos,   estos efectos est&aacute;n siendo estudiados por su relaci&oacute;n   con el c&aacute;ncer de seno y la lactancia (Ishikawa et   al., 2004; Zanardo <i>et al.</i>, 2005); sin embargo, en   bovinos no hay suficientes reportes sobre dichos   efectos en la gl&aacute;ndula mamaria. El objetivo   de esta revisi&oacute;n es describir la importancia del   receptor de leptina en la gl&aacute;ndula mamaria bovina,   espec&iacute;ficamente durante la lactancia, partiendo   de conocimientos sobre otras especies y plantear   hip&oacute;tesis a partir de dichos estudios acerca del   efecto de la leptina y la v&iacute;a de se&ntilde;alizaci&oacute;n que   desencadenar&iacute;a en este &oacute;rgano tan importante para la producci&oacute;n l&aacute;ctea.</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3"><b>La hormona leptina y su receptor</b></font></p>     <p>   El gen de la leptina consiste de tres exones   con dos regiones codificantes separadas por dos   intrones, dicho gen codifica para un ARNm de 4.5   kb que da lugar a un producto de 167 amino&aacute;cidos   y una secuencia se&ntilde;al de 21 amino&aacute;cidos que son   indicativos de una prote&iacute;na secretora (Houseknecht,   1998). Dicha hormona consta de cuatro &alpha;-h&eacute;lices   (A, B, C y D), es miembro de la familia de las   citoquinas, y sus primeras funciones conocidas se   relacionaron con el control de la ingesta de comida   y la home&oacute;stasis energ&eacute;tica, debido a su efecto sobre el n&uacute;cleo arcuato del hipot&aacute;lamo.</p>     <p>La hormona leptina es secretada principalmente   por las c&eacute;lulas del tejido adiposo, pero tambi&eacute;n   por muchas otras c&eacute;lulas de &oacute;rganos como h&iacute;gado,   placenta, cerebro, est&oacute;mago, m&uacute;sculos, gl&aacute;ndula   mamaria, entre otros. Su actividad sobre las c&eacute;lulas   se puede considerar como paracrina, autocrina y   endocrina, y est&aacute; mediada a trav&eacute;s del receptor   transmembrana Ob-Rb (Tartaglia, 1997). El dominio   extracelular del Ob-R est&aacute; conformado por 816   amino&aacute;cidos, contiene dos dominios de uni&oacute;n a   citoquinas en los amino&aacute;cidos 251-325 y 551-627,   donde cada dominio contiene motivos de uni&oacute;n   a Trip-Ser-X-Trip-Ser; un dominio de uni&oacute;n a   inmunoglobulina y un dominio tipo II y otro tipo III de fibronectina (<a href="/img/revistas/rccp/v25n3/v25n3a17f1.jpg" target="_blank">Figura 1</a>) (Munzberg <i>et al.</i>, 2004).</p>     <p>Debido a su estructura, el receptor se ha   clasificado dentro de la familia de receptores   de citoquinas de clase I, a la que pertenecen los   receptores de Interleuquina 2 (IL-2), hormona del   crecimiento (GH) e Interfer&oacute;n (IFN). Cuando la   leptina se une a las isoformas cortas, el receptor   dimerizado desencadena la v&iacute;a de la fosforilaci&oacute;n   de una IRS (Insuline Receptor Sustrate) y   consecuentemente se activa la v&iacute;a de la MAPK   (Mitogenactivated Protein Kinase). Sin embargo,   la v&iacute;a de se&ntilde;alizaci&oacute;n y su importancia no est&aacute;   claramente establecida (Munzberg <i>et al.</i>, 2004; Gertler, 2009).</p>     <p>La activaci&oacute;n de MAPK por cualquiera de las   dos v&iacute;as tiene un efecto de proliferaci&oacute;n celular y   efectos en la oxidaci&oacute;n de &aacute;cidos grasos (Yamaji   <i>et al.</i>, 2007). La uni&oacute;n de la hormona a la isoforma   larga del receptor inicia la v&iacute;a de se&ntilde;alizaci&oacute;n por   el sistema JAK2 (Janus Kinasa 2, de la familia   tirosina quinasa), el cual genera fosforilaci&oacute;n de los   residuos de tirosina, que luego activan mol&eacute;culas   de transcripci&oacute;n STAT 1, 3 y 5 (Signal Transducer   and Activators of Transcription) (Munzberg <i>et al.</i>,   2004; Aizawa-Abe <i>et al.</i>, 2000; Miralles <i>et al.</i>,   2006; Yamaji <i>et al.</i>, 2007). Ob-Rb es selectivo para   activar JAK2 e inducir fosforilaci&oacute;n del complejo   formado por la hormona, el receptor y JAK2; luego   se da inicio a una cascada de fosforilaciones que   involucra diversos sistemas enzim&aacute;ticos; el primero   es JAK2 que fosforila todas las prote&iacute;nas con   dominios SH2, las cuales pertenecen a tres familias   diferentes: ERK (Extracelullar signal regulated   kinase), las prote&iacute;nas STAT3 (que act&uacute;an como   reguladoras transcripcionales) y, las IRS (Insulin   receptor sustrate) o prote&iacute;nas acopladoras asociadas   al complejo hormona &#8211; Ob-Rb &#8211; JAK2 (Butte <i>et al.</i>, 1997; Laud <i>et al.</i>, 1999; Bernotiene <i>et al.</i>, 2006).</p>     <p>Una vez se ha dado la uni&oacute;n de la hormona al   receptor, &eacute;ste sufre un cambio conformacional por   transfosforilaci&oacute;n que activa a JAK, generando la   fosforilaci&oacute;n de residuos de tirosina en la regi&oacute;n   citoplasm&aacute;tica del receptor de leptina (Gertler,   2009). La fosforilaci&oacute;n en la tirosina 1138 del   receptor es seguida por una asociaci&oacute;n de las   prote&iacute;nas STAT3, las cuales tambi&eacute;n se fosforilan   y causan la disociaci&oacute;n del receptor y se translocan   al n&uacute;cleo para regular la expresi&oacute;n g&eacute;nica (Gertler, 2009).</p>     <p>Las prote&iacute;nas STAT5 fosforiladas desencadenan   una v&iacute;a de se&ntilde;alizaci&oacute;n hacia la mitocondria   relacionada con la apoptosis celular (Gertler, 2009).   La activaci&oacute;n y se&ntilde;alizaci&oacute;n de la mol&eacute;cula STAT1,   v&iacute;a JAK2, a&uacute;n no se ha clarificado completamente,   pero se sugiere que por esta v&iacute;a la leptina puede inducir una respuesta a las citoquinas (Interfer&oacute;n).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La leptina induce una fuerte activaci&oacute;n de   STAT1 en ausencia de STAT3, lo que sugiere que   STAT3 puede reprimir la activaci&oacute;n de STAT1   (Gertler, 2009). Por su parte, las prote&iacute;nas IRS   pueden ser fosforiladas por varios sistemas de   tirosina quinasa, ya sea relacionados con las   isoformas larga o corta, y por esta v&iacute;a activar la   fosfatidilinositol 3-quinasa (PI3-K) que a su vez   puede desencadenar otras v&iacute;as de se&ntilde;alizaci&oacute;n   intr&iacute;nseca a trav&eacute;s de prote&iacute;nas AKT (Activity   Tirosine Kinase), relacionadas con la s&iacute;ntesis de   glic&oacute;geno y metabolismo de la glucosa (<a href="/img/revistas/rccp/v25n3/v25n3a17f2.jpg" target="_blank">Figura 2</a>)   (Butte <i>et al.</i>, 1997). Esta &uacute;ltima v&iacute;a de se&ntilde;alizaci&oacute;n   puede alterarse desencadenando un fen&oacute;meno   conocido como resistencia a la leptina, modelo   estudiado en roedores obesos en los cuales tambi&eacute;n   se encontr&oacute; resistencia a la insulina, por lo que   una disfunci&oacute;n del Ob-R se relaciona con diabetes   (Munzberg <i>et al.</i>, 2004; M&uuml;nzberg <i>et al.</i>, 2005).   Es tal vez por esto que se encuentran individuos   obesos con niveles elevados de leptina, situaci&oacute;n   que se puede comparar con la diabetes tipo II, en la   cual hay un elevado nivel de producci&oacute;n de insulina   mientras se exhibe resistencia a ella (Tartaglia, 1997; Cheng <i>et al.</i>, 2009).</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3"><b>Leptina y gl&aacute;ndula mamaria</b></font></p>     <p>   El adecuado desarrollo de la gl&aacute;ndula mamaria   es un punto cr&iacute;tico para la futura lactancia en   especies dom&eacute;sticas como la vaca lechera. Durante   la gestaci&oacute;n, los lactocitos aumentan en n&uacute;mero,   y de cu&aacute;n significativa sea esta proliferaci&oacute;n,   depender&aacute; la producci&oacute;n de leche. Algunos estudios   realizados plantean que la leptina tiene un papel en   la regulaci&oacute;n directa del crecimiento y desarrollo   del par&eacute;nquima de la gl&aacute;ndula mamaria, ejerce   un rol paracrino y autocrino en la proliferaci&oacute;n,   diferenciaci&oacute;n y apoptosis de las c&eacute;lulas epiteliales   mamarias (CEM), de los adipocitos y de las c&eacute;lulas   mioepiteliales (Laud <i>et al.</i>, 1999; Meyer <i>et al.</i>, 2006; Li <i>et al.</i>, 2010)</p>     <p>Algunos an&aacute;lisis de ARNm de leptina en   gl&aacute;ndula mamaria realizados por Reacci&oacute;n en   Cadena de la Polimerasa con Transcriptasa Reversa   ( RT-PCR) han mostrado que la expresi&oacute;n de este   gen es regulada durante la gestaci&oacute;n y distintas   etapas de la lactancia en ovejas, en las cuales   los niveles de ARNm son altos en el inicio de la   gestaci&oacute;n, tienden a decaer hasta la mitad de la   gestaci&oacute;n y permanecen bajos hasta la finalizaci&oacute;n   de la lactancia (Laud <i>et al.</i>, 1999). Sin embargo, este   an&aacute;lisis careci&oacute; de la medici&oacute;n de la prote&iacute;na para verificar si hab&iacute;a traducci&oacute;n del ARNm.</p>     <p>En bovinos que reciben dietas altamente   energ&eacute;ticas durante la pubertad, se han reportado   mayores niveles de leptina en plasma que coinciden   con un inadecuado desarrollo de la gl&aacute;ndula   mamaria (Silva <i>et al.</i>, 2002). Si bien es claro que   la producci&oacute;n de leptina por otros tejidos distintos   a gl&aacute;ndula mamaria podr&iacute;a ejercer un efecto sobre   su par&eacute;nquima, el principal efecto est&aacute; dado por   los niveles de leptina producidos por los adipocitos   presentes en este &oacute;rgano. Por lo tanto, no se puede   establecer que la variaci&oacute;n de la leptina circulante   pueda ejercer o no un efecto directo sobre el par&eacute;nquima mamario, dado que la gl&aacute;ndula   mamaria sintetiza la leptina y expresa sus receptores   as&iacute; como puede realizarlo con otras hormonas y   nutrientes, de acuerdo al estadio de reproducci&oacute;n.</p>     <p>El patr&oacute;n de expresi&oacute;n de receptores en gl&aacute;ndula   mamaria de una especie no se puede extrapolar a los   de otras especies, ya que los efectos desencadenados   por las v&iacute;as de se&ntilde;alizaci&oacute;n pueden diferir de   acuerdo a condiciones fisiol&oacute;gicas y de manejo.   A&uacute;n falta establecer dichos patrones en los bovinos,   dilucidar las v&iacute;as de se&ntilde;alizaci&oacute;n que se pueden   desencadenar durante la pubertad, la gestaci&oacute;n, el   parto, la lactancia y el periodo seco, y comparar   resultados con diversas condiciones ambientales,   de manejo y de raza para, determinar qu&eacute; tanto se   puede variar o modificar ese patr&oacute;n de expresi&oacute;n de   receptores.</p>     <p>En la gl&aacute;ndula mamaria bovina se han encontrado   receptores de leptina Ob-Ra y Ob-Rb, &eacute;ste   &uacute;ltimo en mayor cantidad (Kawachi <i>et al.</i>, 2007).   Estos receptores pueden inducir proliferaci&oacute;n,   diferenciaci&oacute;n y apoptosis celular a trav&eacute;s de las   mol&eacute;culas STAT. Se cree que en hembras con dietas   energ&eacute;ticas altas, el efecto en la inhibici&oacute;n del   desarrollo adecuado de la gl&aacute;ndula mamaria estar&iacute;a   dirigido por la se&ntilde;alizaci&oacute;n generada por la uni&oacute;n   de la leptina al Ob-Rb, dando lugar a la inhibici&oacute;n   de la secreci&oacute;n del factor de crecimiento insul&iacute;nico   (IGF) y antagonizando la s&iacute;ntesis de ADN de las   CEM bovinas, de esta forma se afecta el crecimiento   y desarrollo; pero a&uacute;n no se ha descrito bien este mecanismo (Silva <i>et al.</i>, 2002).</p>     <p>Durante el primer tercio de la gestaci&oacute;n, donde   se inicia la proliferaci&oacute;n de las CEM, Bonnet   <i>et al.</i>, encontraron un incremento de leptina en   sangre, sugiriendo que tanto la leptina sangu&iacute;nea,   como la de gl&aacute;ndula mamaria, v&iacute;a receptores de   leptina, ejercen un control endocrino sobre la   mamog&eacute;nesis (Bonnet <i>et al.</i>, 2002). Sin embargo,   para confirmar que tanto la leptina mamaria como la   leptina sist&eacute;mica ejercen dicho efecto sin&eacute;rgico, se   requiere realizar estudios que permitan cuantificar   la expresi&oacute;n de receptores y prote&iacute;nas, y controlar   variables como condici&oacute;n corporal, alimentaci&oacute;n, raza, entre otros.</p>     <p>Actualmente, se dispone de novedosas   herramientas moleculares para ser m&aacute;s precisos   en estos an&aacute;lisis cuantitativos y cualitativos. Es   importante recalcar que la producci&oacute;n de leche   en la hembra bovina no est&aacute; correlacionada con la   condici&oacute;n corporal, ni la cantidad de tejido graso   del animal (Maza <i>et al.</i>, 2001); es un evento que   busca garantizar una fuente suficiente de nutrientes   para el neonato, as&iacute; la gl&aacute;ndula mamaria inicia un   proceso de proliferaci&oacute;n celular para cumplir con   dicha funci&oacute;n. En esta proliferaci&oacute;n celular tambi&eacute;n   se ha estudiado el papel de la leptina, encontr&aacute;ndose   datos interesantes, como por ejemplo que no tiene   ninguna relaci&oacute;n con el ingreso de la glucosa a   la gl&aacute;ndula mamaria para la s&iacute;ntesis de lactosa,   que es la que finalmente determina el volumen de   leche producida (Accorsi <i>et al.</i>, 2005). Por otro   lado, se ha encontrado que puede desencadenar   una v&iacute;a de se&ntilde;alizaci&oacute;n a trav&eacute;s de las mol&eacute;culas   JAK2 y STAT3, para activar transcripci&oacute;n de   genes mitog&eacute;nicos (Gertler, 2009). A&uacute;n falta por   aclarar detalles de estas cascadas de se&ntilde;alizaci&oacute;n   celular y experimentar si pueden ser modificadas   de alguna manera para que la proliferaci&oacute;n celular   de lactocitos directa o indirectamente, tenga efecto sobre la producci&oacute;n l&aacute;ctea en bovinos.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Durante el periodo seco y la lactancia de los   bovinos, Bartha <i>et al.</i> no encontraron diferencias   en los niveles de ARNm de leptina en gl&aacute;ndula   mamaria (Bartha <i>et al.</i>, 2005). Un alto n&uacute;mero de   c&eacute;lulas adiposas en el tejido conectivo de animales   en periodo seco son responsables de una alta   producci&oacute;n de leptina; las CEM ser&iacute;an las que la   producen durante la lactancia, pero la expresi&oacute;n   de sus receptores no fue cuantificada (Zigman,   2003). Estos resultados en las concentraciones   de la hormona coinciden con los hallados en   mujeres (Butte <i>et al.</i>, 1997), donde los niveles no   variaron entre lactantes y no lactantes y difieren   de los encontrados en cabras, en las cuales la   concentraci&oacute;n de leptina mamaria fluct&uacute;a durante los diferentes estadios fisiol&oacute;gicos (Li <i>et al.</i>, 2010).</p>     <p>En un estudio m&aacute;s reciente realizado por   Mehta y Petrova (2011), se concluy&oacute; que existe   una disminuci&oacute;n de la leptina y otros p&eacute;ptidos   biol&oacute;gicamente activos durante el primer mes de lactancia en gl&aacute;ndula mamaria de mujeres (Gertler, 2009). Es importante aclarar que la metodolog&iacute;a usada en los estudios var&iacute;a con el tiempo, lo cual puede representar diferencias importantes en los hallazgos de las investigaciones recientes comparadas con aquellas realizadas a&ntilde;os atr&aacute;s.</p>     <p>Es probable que la leptina producida en las   CEM sea transferida a la leche, mientras que la   leptina producida por el tejido adiposo mamario   act&uacute;e localmente en la gl&aacute;ndula mamaria o entre a   circulaci&oacute;n sangu&iacute;nea (Smith y Sheffield, 2002).   Otros estudios hallaron diferencias significativas en   los niveles de expresi&oacute;n de receptores de leptina en   gl&aacute;ndula mamaria de cabras durante los diferentes   estadios reproductivos, lo que sugiere que el efecto   local de la hormona tambi&eacute;n es distinto en estas etapas (Li <i>et al.</i>, 2010).</p>     <p>   Muchos estudios concuerdan en que la expresi&oacute;n   de los receptores de leptina es directamente   proporcional a los niveles de la hormona (Li <i>et al.</i>,   2010). Si esto se cumpliera en todas las especies,   se podr&iacute;a suponer que en bovinos no hay una   diferencia en la expresi&oacute;n de los receptores durante   el periodo seco y la lactancia y, por lo tanto, no   existir&iacute;a un efecto marcado generado por la leptina   en cualquiera de las dos etapas. Esta suposici&oacute;n no   tiene fundamentos suficientes ya que en gl&aacute;ndula   mamaria de ovinos se ha encontrado una variaci&oacute;n   considerable en la expresi&oacute;n de la leptina y de su   receptor durante la gestaci&oacute;n y la lactancia. La   relaci&oacute;n hormona-receptor en bovinos, no ha sido   descrita, y los hallazgos que se reportan dejan   mayores inc&oacute;gnitas por resolver. </p>     <p>Es importante citar los resultados hallados por   Bonnet <i>et al.</i>, donde la determinaci&oacute;n cuantitativa   de los niveles de ARNm por RT-PCR en tiempo   real, mostraron que la expresi&oacute;n de leptina en   peque&ntilde;os rumiantes fue alta durante la primera   mitad de la gestaci&oacute;n y, menos marcada durante el   periparto; mientras que los niveles de ARNm de   los receptores de leptina fueron mayores entre los   70 y 106 d&iacute;as de gestaci&oacute;n y, menores durante la   finalizaci&oacute;n de la misma y el inicio de la lactancia.   Adem&aacute;s, se han observado diferencias en la   proporci&oacute;n de isoformas corta y larga del Ob-R en   el tejido mamario de ovinos y bovinos, ya que las   CEM de esta &uacute;ltima especie expresan en mayor   medida la isoforma larga, mientras que en los   ovinos predomina la expresi&oacute;n de la isoforma corta (Bonnet <i>et al.</i>, 2002).</p>     <p>Otra asociaci&oacute;n importante que se ha encontrado,   es que el momento de mayor expresi&oacute;n de los   receptores de leptina, que es el d&iacute;a 70 de la   gestaci&oacute;n, coincidi&oacute; con un incremento perif&eacute;rico   en las concentraciones de estradiol y con cambios   marcados en otras hormonas como la progesterona,   prolactina, lact&oacute;geno placentario y hormona del   crecimiento. Esta asociaci&oacute;n encontrada por los   autores a&uacute;n no se comprende en su totalidad, pero   se sabe que est&aacute; relacionada con el cambio que   empieza a sufrir el lactocito para poder sostener   una futura s&iacute;ntesis de los componentes de la leche (Bonnet <i>et al.</i>, 2002).</p>     <p>Ha sido posible identificar la leptina en   gl&aacute;ndula mamaria de cabras por medio de an&aacute;lisis   inmunohistoqu&iacute;micos y se determin&oacute; que la   hormona se encontraba en los adipocitos mamarios   durante estadios tempranos de gestaci&oacute;n, en CEM   y principalmente en su membrana apical justo   despu&eacute;s del parto, y en c&eacute;lulas mioepiteliales   durante la lactancia. Mientras que el receptor de   leptina fue exclusivamente localizado en CEM por   hibridizaci&oacute;n <i>in situ</i> (Li <i>et al.</i>, 2010). En ovejas, la   s&iacute;ntesis de leptina por los adipocitos al inicio de la   gestaci&oacute;n probablemente juegue un rol paracrino en   la proliferaci&oacute;n y/o diferenciaci&oacute;n de las CEM, las   cuales tambi&eacute;n est&aacute;n expresando muchos receptores   para la hormona durante esa misma &eacute;poca. Luego   del parto, la leptina se localiz&oacute; en las c&eacute;lulas   mioepiteliales, probablemente producida por estas   mismas. Al mismo tiempo, el receptor de leptina   se encontr&oacute; expresado en las CEM; por lo que se   cree que la leptina puede participar en el control del   crecimiento y apoptosis de las CEM en esta especie (Li <i>et al.</i>, 2010).</p>     <p>En otros rumiantes como las cabras se conoce   que la leptina induce la expresi&oacute;n del receptor OBRb   en gl&aacute;ndula mamaria y controla el desarrollo   y funci&oacute;n fisiol&oacute;gica en la gl&aacute;ndula mamaria   por uni&oacute;n al receptor (Vernon <i>et al.</i>, 2002). La   leptina estimula la proliferaci&oacute;n y diferenciaci&oacute;n   de c&eacute;lulas del epitelio ductal en la pre&ntilde;ez por v&iacute;a de se&ntilde;alizaci&oacute;n JAK-MAPK, activa la expresi&oacute;n de &alpha; case&iacute;na en cultivos de gl&aacute;ndula mamaria por v&iacute;a JAK-STAT5 y, permite que en el estadio de involuci&oacute;n el ducto desaparezca y se induzca apoptosis de las CEM, as&iacute; como su restituci&oacute;n por adipocitos, a trav&eacute;s de la v&iacute;a de se&ntilde;alizaci&oacute;n JAKSTAT3. (<a href="/img/revistas/rccp/v25n3/v25n3a17f3.jpg" target="_blank">Figura 3</a>) (Li <i>et al.</i>, 2010).</p>     <p>En esta especie, la s&iacute;ntesis de leptina por los   adipocitos mamarios en la etapa de la pubertad es   alta, similar a lo que ocurre al inicio de la pre&ntilde;ez.   En el segundo tercio de la gestaci&oacute;n disminuye   la expresi&oacute;n de leptina, debido a la involuci&oacute;n de   tejido adiposo mamario, y en el &uacute;ltimo tercio, los   niveles de leptina vuelven a ser similares a los del   primer tercio (Li <i>et al.</i>, 2010); esto se debe a que las   CEM pueden secretar leptina en la pre&ntilde;ez avanzada   y en la lactancia, pero durante esta &uacute;ltima etapa, la   leptina permanece baja debido al efecto inhibitorio   de la prolactina, la insulina, el cortisol y la   somatotropina (Aoki <i>et al.</i>, 1999). En la involuci&oacute;n   de la gl&aacute;ndula mamaria el tejido adiposo aumenta   al igual que la cantidad de leptina. En todo el ciclo   de desarrollo de la gl&aacute;ndula mamaria del caprino,   los niveles de leptina y OB-Rb est&aacute;n positivamente   correlacionados. La leptina por lo tanto, tiene   un efecto paracrino y autocrino para regular el   crecimiento, desarrollo y funci&oacute;n de la gl&aacute;ndula mamaria a trav&eacute;s de su receptor.</p>     <p>Yamaji <i>et al.</i> (2007), observaron en cultivos   in vitro tridimensionales que la leptina inhibe la   proliferaci&oacute;n de las CEM bovinas, a&uacute;n cuando &eacute;stas   fueron suplementadas con factores de crecimiento   como Hepatocyte Growth-Factor (HGF), compuesto   que interviene la proliferaci&oacute;n de las CEM, durante   la morfog&eacute;nesis de las estructuras ductales (Yamaji   <i>et al.</i>, 2007; Sunil <i>et al.</i>, 2002). Esto coincide con   un estudio de Silva <i>et al.</i> (2008), donde se demostr&oacute;   in vivo que la aplicaci&oacute;n de leptina por el canal   del pez&oacute;n regula la proliferaci&oacute;n del epitelio de   los conductos y los alv&eacute;olos mamarios, ya que   disminuye en un 48% la cantidad de CEM en la   fase S del ciclo celular, mediante la expresi&oacute;n de   caspasa 3 (Silva <i>et al.</i>, 2008). Lo anterior, sugiere   que la disminuci&oacute;n de los niveles de leptina en   el segundo tercio de la gestaci&oacute;n permite que se   d&eacute; la formaci&oacute;n de conductos glandulares. El   incremento de los niveles de leptina en el &uacute;ltimo   tercio de la gestaci&oacute;n y durante la lactancia,   coinciden con un aumento de las concentraciones   de prolactina, teniendo actividad sin&eacute;rgica sobre   explantes cultivados de gl&aacute;ndula mamaria bovina   <i>in vitro </i>(Motta <i>et al.</i>, 2004). Se ha encontrado   que la interacci&oacute;n de la leptina con las hormonas   lactog&eacute;nicas, como la prolactina, la insulina, la   somatotropina y el cortisol, controla la proliferaci&oacute;n de CEM (Aoki <i>et al.</i>, 1999; Yonekura <i>et al.</i>, 2006)</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Se ha observado que la leptina regula el efecto   de la prolactina sobre la s&iacute;ntesis de &aacute;cidos grasos,   alfa case&iacute;na y beta lacto-albumina, aumentado   la s&iacute;ntesis de estos componentes de la leche en   cultivos <i>in vitro</i> de explantes de tejido mamario   de vacas; por otro lado, la prolactina aument&oacute; 25   veces la expresi&oacute;n del receptor de leptina, lo que   sugiere que la prolactina aumenta la sensibilidad   a la leptina y que en ausencia de prolactina, el   mecanismo desencadenado sobre la c&eacute;lula ser&iacute;a la   apoptosis a trav&eacute;s de la caspasa 3 (Feuermann et   al., 2004; Motta <i>et al.</i>, 2004; Silva <i>et al.</i>, 2008). As&iacute;,   se ha demostrado que los efectos fisiol&oacute;gicos, las   interacciones endocrinas y las v&iacute;as de se&ntilde;alizaci&oacute;n   desencadenadas por la leptina en las CEM, podr&iacute;an   contribuir a encontrar estrategias que mejoren la calidad nutricional de la leche.</p>     <p>Adem&aacute;s de la complejidad de funciones sobre la   gl&aacute;ndula mamaria, la leptina es secretada en leche   por lo que se cree que su rol en el neonato tiene una   mayor importancia de la que hasta ahora se conoce   (Ehrhardt <i>et al.</i>, 2001). Estudios sugieren que una   alta concentraci&oacute;n de leptina en el calostro puede   tener efectos sobre el intestino del potro, adem&aacute;s   de llevar a cabo mecanismos termorreguladores,   metab&oacute;licos u hormonales para inducir el control de   la saciedad en el neonato (Romagnoli <i>et al.</i>, 2007).   En el reci&eacute;n nacido humano, se ha encontrado que   la leptina act&uacute;a al unirse a receptores localizados   en la mucosa gastrointestinal y est&aacute; involucrada   en la citoprotecci&oacute;n de esta mucosa en procesos   inflamatorios y en la secreci&oacute;n de hormonas   g&aacute;stricas como la gastrina y somatostatina, y en   la proliferaci&oacute;n de c&eacute;lulas intestinales. Tambi&eacute;n   participa en la inmunidad del neonato, ya que   la leptina modula la producci&oacute;n de citoquinas,   el tama&ntilde;o del timo, la activaci&oacute;n de monocitos,   macr&oacute;fagos y la proliferaci&oacute;n y apoptosis de   linfocitos T citot&oacute;xicos y T ayudadores (Bonnet   <i>et al.</i>, 2002). Una adecuada ingesta de leptina   en neonatos humanos podr&iacute;a prevenir futuros problemas de obesidad (Palou, 2009).</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3"><b>Conclusiones</b></font></p>     <p>   En peque&ntilde;os rumiantes, el efecto de la leptina   en gl&aacute;ndula mamaria ha sido muy estudiado en los   diferentes estadios reproductivos. Sin embargo, en   bovinos a&uacute;n no se han dilucidado completamente   los niveles de expresi&oacute;n del receptor de leptina en   gl&aacute;ndula mamaria durante estos per&iacute;odos. Antes de   la lactancia, la ubre sufre cambios morfofisiol&oacute;gicos   para poder mantener la producci&oacute;n l&aacute;ctea, de ah&iacute;   la importancia de evaluar si hay variaciones en la   expresi&oacute;n de OB-Rb durante diferentes momentos   de esta etapa, y poder determinar si existe una   asociaci&oacute;n entre las variaciones de los niveles de   expresi&oacute;n del receptor, con los cambios en gl&aacute;ndula   mamaria y la producci&oacute;n de leche en bovinos.</p>     <p>   Hasta ahora se conoce que la leptina juega un   papel importante en la regulaci&oacute;n del crecimiento y   desarrollo del par&eacute;nquima de la gl&aacute;ndula mamaria,   ejerciendo un rol paracrino y autocrino en la   proliferaci&oacute;n, diferenciaci&oacute;n y apoptosis de las   CEM, los adipocitos y las c&eacute;lulas mioepiteliales,   mediante la interacci&oacute;n con la prolactina; proceso indispensable para desencadenar la s&iacute;ntesis de   las principales prote&iacute;nas de la leche y algunos   &aacute;cidos grasos (Silva <i>et al.</i>, 2008). Tal vez en este   mecanismo se encuentre la clave para comprender   como influye la leptina en la s&iacute;ntesis de los   componentes l&aacute;cteos de inter&eacute;s para el consumo   humano y con base en esto, ser&iacute;a posible plantear   estrategias de mejoramiento gen&eacute;tico de hatos   lecheros, manipulaci&oacute;n gen&eacute;tica u organismos   transg&eacute;nicos, entre otros. Adem&aacute;s, la industria   l&aacute;ctea podr&iacute;a desarrollar alimentos funcionales, o   estrategias que permitan aumentar la producci&oacute;n   l&aacute;ctea o modificar su composici&oacute;n, a partir de los   resultados obtenidos durante la investigaci&oacute;n de   esta hormona y su funci&oacute;n en la gl&aacute;ndula mamaria   bovina.</p>     <p>Por otra parte, los eventos y factores moleculares   que definen la v&iacute;a de se&ntilde;alizaci&oacute;n celular que   la leptina desencadena en las CEM bovinas   (JAK2-STAT1, JAK2-STAT3 o JAK2-STAT5) y   que regulan su tasa de proliferaci&oacute;n, todav&iacute;a no   est&aacute;n dilucidados completamente. Conocerlos   permitir&iacute;a comprender m&aacute;s a fondo la fisiolog&iacute;a   de la leptina en la lactancia, lo que abrir&iacute;a las   puertas al desarrollo de posibles estrategias   farmacol&oacute;gicas para el tratamiento de disfunciones   en la gl&aacute;ndula mamaria, as&iacute; como terapias que   inhiban la proliferaci&oacute;n celular asociada a la leptina   en carcinomas mamarios y otras neoplasias, como   el p&eacute;ptido allo-aca, que tal vez salga al mercado   como parte de los repertorios para la terapia anticancer&iacute;gena (Otvos <i>et al.</i>, 2011).</p>     <p>El estudio de la leptina y sus receptores es   un campo abierto a la investigaci&oacute;n en todas   las especies animales en un nivel productivo, reproductivo y de salud.</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3"><b>Referencias</b></font></p> </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">   1. Accorsi PA, Gamberoni M, Isani G, Govoni N, Viggiani R,   Monari M, De Ambrogi M, Munno A, Tamanini C, Seren E.   Leptin does not seem to nfluence glucose uptake by bovine   mammary explants. J Physiol Pharmaco 2005; 56:689-698.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0120-0690201200030001700001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   2. Acosta A. Rol de la leptina en la fisiolog&iacute;a reproductiva. Sirivs   2006:1-9.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0120-0690201200030001700002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   3. Aizawa-Abe M, Ogawa Y, Masuzaki H, Ebihara K, Satoh   N, Iwai H, Matsuoka N, Hayashi T, Hosoda K, Inoue   G. Pathophysiological role of leptin in obesity-related   hypertension. J Clin Invest 2000; 105:1243-1243.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0120-0690201200030001700003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   4. Aoki N, Kawamura M, Matsuda T. Lactation-dependent down   regulation of leptin production in mouse mammary gland.   Biochim Biophys Acta 1999; 1427:298-306.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0120-0690201200030001700004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   5. Bartha T, Sayed-Ahmed A, Rudas P. Expression of leptin and   its receptors in various tissues of ruminants. Domest Anim   Endocrinol 2005; 29:193-202.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0120-0690201200030001700005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   6. Bernotiene E, Palmer G, Gabay C. The role of leptin in innate   and adaptive immune responses. Arthritis Res Ther 2006;   8:217-220.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0120-0690201200030001700006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   7. Bonnet M, Delavaud C, Laud K, Gourdou I, Leroux C, Djiane   J, Chilliard Y. Mammary leptin synthesis, milk leptin and their   putative physiological roles. Reprod Nutr Dev 2002; 42:399-   413.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0120-0690201200030001700007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   8. Butte N, Hopkinson J, Nicolson M. Leptin in human   reproduction: serum leptin levels in pregnant and lactating   women. J Clin Endocrinol Metab 1997; 82:585-592.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0120-0690201200030001700008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   9. Cheng S, Chi C, Tzen C, Yang T, Lee J, Liu T, Liu C.   Clinicopathologic significance of leptin and leptin receptor   expressions in papillary thyroid carcinoma. Surgery 2009;   147:847-853.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0120-0690201200030001700009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   10. Ehrhardt R, Slepetis R, Bell A, Boisclair Y. Maternal leptin is   elevated during pregnancy in sheep. Domest Anim Endocrinol   2001; 21:85-96.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0120-0690201200030001700010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   11. Feuermann Y, Mabjeesh S, Shamay A. Leptin affects prolactin   action on milk protein and fat synthesis in the bovine mammary   gland. J Dairy Sci 2004; 87:2941-2946.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0120-0690201200030001700011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   12. Gertler A. Leptin and Leptin Antagonists. Austin: Landes   Bioscience; 2009.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0120-0690201200030001700012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   13. Ghilardi N, Skoda R. The leptin receptor activates janus kinase   2 and signals for proliferation in a factor-dependent cell line.   Mol Endocrinol 1997; 11:393-399.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0120-0690201200030001700013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   14. Houseknecht K, Portocarrero C. Leptin and its receptors:   regulators of whole-body energy homeostasis. Domest Anim   Endocrinol 1998; 15:457-475.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0120-0690201200030001700014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   15. Ishikawa M, Kitayama J, Nagawa H. Enhanced expression of   leptin and leptin receptor (OB-R) in human breast cancer. Clin   Cancer Res 2004; 10:4325-4331.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0120-0690201200030001700015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   16. Kawachi H, Yang SJ, Hamano A, Matsui T, Smith SB, Yano H.   Molecular cloning and expression of bovine (Bos taurus) leptin   receptor isoform mRNAs. Comp Biochem Physiol B Biochem   Mol Biol 2007; 148:167-173.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0120-0690201200030001700016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   17. Laud K, Gourdou I, B&eacute;lair L, Keisler DH, Djiane J. Detection   and regulation of leptin receptor mRNA in ovine mammary   epithelial cells during pregnancy and lactation. FEBS Lett 1999;   463:194-198.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0120-0690201200030001700017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   18. Li M, Li Q, Gao X. Expression and function of leptin and its   receptor in dairy goat mammary gland. J Dairy Res 2010;   77:213-219.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0120-0690201200030001700018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19. Maza L, Salgado RD, Vergara G. Efecto de la condici&oacute;n   corporal al parto sobre el comportamiento reproductivo y   variaci&oacute;n de peso corporal postparto de vacas mestizas lecheras. Rev MVZ C&oacute;rdoba 2001; 6:75-80.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0120-0690201200030001700019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   20. Meyer M, Capuco A, Ross D, Lintault L, Van Amburgh M.   Developmental and nutritional regulation of the prepubertal   bovine mammary gland: II. Epithelial cell proliferation,   parenchymal accretion rate, and allometric growth. J Dairy Sci   2006; 89:4298-4304.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0120-0690201200030001700020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   21. Miralles O, S&aacute;nchez J, Palou A, Pic&oacute; C. A Physiological Role   of Breast Milk Leptin in Body Weight Control in Developing   Infants. Obesity 2006; 14:1371-1377.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0120-0690201200030001700021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   22. Motta M, Accornero P, Baratta M. Leptin and prolactin   modulate the expression of SOCS-1 in association with   interleukin-6 and tumor necrosis factor-&#91;alpha&#93; in mammary   cells: a role in differentiated secretory epithelium. Regul Pept   2004; 121:163-170.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0120-0690201200030001700022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   23. Munzberg H, Flier JS, Bjorbaek C. Region-specific leptin   resistance within the hypothalamus of diet-induced obese mice.   Endocrinology 2004; 145:4880-4889.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0120-0690201200030001700023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   24. M&uuml;nzberg H, Myers MG. Molecular and anatomical   determinants of central leptin resistance. Nat neurosci. 2005;   8:566-570.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0120-0690201200030001700024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   25. Otvos JR, Kovalszky I, RiolfiM, Ferla R, Olah J, Sztodola A,   Nama K, Molino A, Piubello Q, Wade J, Surmacz E. Efficacy of   a leptin receptor antagonist peptide in a mouse model of triplenegative   breast cancer. Eur J Cancer 2011; 47:1578-1584.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0120-0690201200030001700025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   26. Palou A, Pic&oacute; C. Leptin intake during lactation prevents obesity   and affects food intake and food preferences in later life.   Appetite 2009, 52:249-252.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0120-0690201200030001700026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   27. Romagnoli U, Macchi E, Romano G, Motta M, Accornero P,   Baratta M. Leptin concentration in plasma and in milk during   the interpartum period in the mare. Anim Reprod Sci 2007;   97:180-185.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0120-0690201200030001700027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   28. Silva L, Etchebarne B, Weber-Nielsen M, Liesman J, Kiupel   M, VandeHaar M. Intramammary infusion of leptin decreases   proliferation of mammary epithelial cells in prepubertal heifers.   J Dairy Sci 2008; 91:3034-3044.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0120-0690201200030001700028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   29. Silva L, VandeHaar M, Weber-Nielsen M, Smith G. Evidence   for a Local Effect of Leptin in Bovine Mammary Gland1. J   Dairy Sci 2002; 85:3277-3286.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0120-0690201200030001700029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   30. Smith J, Sheffield L. Production and regulation of leptin in   bovine mammary epithelial cells. Domest Anim Endocrinol   2002; 22:145-154.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0120-0690201200030001700030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   31. Sunil N, Bennett JM, Haslam SZ. Hepatocyte growth factor is   required for progestin-induced epithelial cell proliferation and   alveolar-like morphogenesis in serum-free culture of normal   mammary epithelial cells. Endocrinology 2002; 143:2953.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0120-0690201200030001700031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>32. Tartaglia L. The leptin receptor. J Biol Chem 1997; 272:6093-   6096.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0120-0690201200030001700032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   33. Vernon R, Denis R, Sorensen A, Williams G. Leptin and the   adaptations of lactation in rodents and ruminants. Horm Metab   Res 2002; 34:678-685.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0120-0690201200030001700033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   34. Yamaji D, Kamikawa A, Soliman MM, Ito T, Ahmed MM,   Makondo K, Watanabe A, Saito M, Kimura K. Leptin inhibits   hepatocyte growth factor-induced ductal morphogenesis of   bovine mammary epithelial cells. Jpn J Vet Res 2007; 54:183-   189.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0120-0690201200030001700034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">   35. Yonekura S, Sakamoto K, Komatsu T, Hagino A, Katoh K and   Obara Y. Growth hormone and lactogenic hormones can reduce   the leptin mRNA expression in bovine mammary epithelial   cells. Domest Anim Endocrinol 2006; 31:88-96.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0120-0690201200030001700035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   36. Zanardo V, Nicolussi S, Cavallin S, Trevisanuto D, Barbato A,   Faggian D, Favaro F, Plebani M. Effect of maternal smoking   on breast milk interleukin-1alpha, beta-endorphin, and leptin   concentrations and leptin concentrations. Environ Health   Perspect 2005; 113:1410-1413.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0120-0690201200030001700036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   37. Zigman JM, Elmquist JK. Minireview: From anorexia to   obesity the yin and yang of body weight control. Endocrinology   2003; 144:3749-3757.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0120-0690201200030001700037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   38. Zhang Y, Proenca R, Maffei M, Barone M, Leopold L,   Friedman JM. Positional cloning of the mouse obese gene and   its human homologue. Nature 1994; 372:425-432.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0120-0690201200030001700038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p>&nbsp;</p>     <p><font size="3"><b>Notas</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><a href="b0"><sup>&curren;</sup></a><a name="0"></a> Para citar este art&iacute;culo: Echeverry DM, Penagos F, Ru&iacute;z-Cort&eacute;z ZT. Papel de la leptina y su receptor en la gl&aacute;ndula mamaria bovina. Rev Colomb Cienc Pecu   2012; 25:500-510.</p> </font>      ]]></body><back>
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<label>1</label><nlm-citation citation-type="journal">
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<surname><![CDATA[Accorsi]]></surname>
<given-names><![CDATA[PA]]></given-names>
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<surname><![CDATA[Gamberoni]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
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<surname><![CDATA[Isani]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
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<surname><![CDATA[Govoni]]></surname>
<given-names><![CDATA[N]]></given-names>
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