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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[A greenhouse experiment was carried out to determine the mycorrhizal dependency of laurel (>Ocotea sp.). In order to do this, a completely randomized experimental design was used, with six treatments in a factorial array of 3x2 and five repetitions. The treatments involved a combination of three Phosphorus (P) levels in soil solution (0.002, 0.02 and 0.2 mg L-1) and two levels of mycorrhizal inoculation, either inoculated or non-inoculated with Glomus aggregatum Schenck & Smith. The leaf P content as a function of time was used as an output variable. Shoot dry matter, shoot P content, mycorrhizal colonization of roots, and mycorrhizal dependence were measured at harvest. The results indicated that the leaf P content increased significantly when using the mycorrhizal inoculation in laurel at P level 0.2 mg L -1, but not in the other P levels, on some of the sampling days. Shoot dry weight and total plant P content did not increase at all levels of soil available P. Mycorrhizal dependency of laurel reached 28%, which allows this species to be classified as moderately dependent on mycorrhiza.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="pt"><p><![CDATA[Realizou-se uma experiência num invernadeiro para determinar a dependencia micorrizal (dm) do louro (Ocotea sp.). Para tal fim se utilizou um desenho experimental completamente aleatório. Os tratamentos tiveram um arranjo fatorial de 3x2 com cinco repetições, os quais consistiram na combinação de três níveis de fósforo (P) na solución do solo (0.002, 0.02 e 0.2 mg L-1) e dois níveis de inoculação micorrizal (inoculado e não inoculado) com Glomus aggregatum Schenck & Smith. Empregaram-se como variáveis em resposta ao conteúdo de P foliar em função do tempo. No momento da colheita, se determinou a massa seca aérea, com P total absorvido na parte aérea, na colonização micorrizal e a dm. Os resultados indicam que em alguns dias de amostra o conteúdo do P foliar aumentou significativamente com a inoculação micorrizal no louro ao nível de P na solução de 0.2 mg L-1 mas não em outros níveis de P. O conteúdo de P total absorvido não incrementou significativamente. A DM foi de 28%, o que permitiu classificar esta espécie como moderadamente dependente.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <FONT SIZE="2" FACE="VERDANA"> </FONT>     <p align="center"><font size="4" face="VERDANA"><B>DEPENDENCIA MICORRIZAL DE LAUREL  (<i>Ocotea</i> sp.)</B></font></p>     <p align="center"><font size="3" face="VERDANA"><B>Laurel (<i>Ocotea</i> sp.) mycorrhizal  dependence</B></font></p>     <p align="center"><font size="3" face="VERDANA"><B>Depend&ecirc;ncia micorrizal do Louro (<i>Ocotea</i> sp.)</B></font></p> <FONT SIZE="2" FACE="VERDANA">     <p>Jorge A. Sierra-Escobar<SUP>1</SUP>, Dagoberto Castro Restrepo<SUP>2</SUP> &amp;  Walter Osorio Vega<SUP>3</SUP></p>     <p><SUP>1</SUP>Universidad Cat&oacute;lica de Oriente, A.A. 050956, Rionegro, Antioquia. Correspondencia:  <A HREF="mailto:jsierra@uco.edu.co">jsierra@uco.edu.co</A>      <BR><SUP>2</SUP>Unidad de Biotecnolog&iacute;a Vegetal, Universidad Cat&oacute;lica de Oriente, A.A. 050956, Rionegro, Antioquia.  <A HREF="mailto:dcastro@uco.edu.co">dcastro@uco.edu.co</A>      <BR><SUP>3</SUP>Laboratorio de Microbiolog&iacute;a del Suelo, Universidad Nacional de Colombia, A.A. 3840, Medell&iacute;n, Antioquia.  <A HREF="mailto:nwosorio@unal.edu.co">nwosorio@unal.edu.co</A></p>      <p>Recepci&oacute;n: Marzo 7 de 2009/Aprobaci&oacute;n: Abril 16 de 2009</p>  <hr>     <p><B>RESUMEN</B></p> Se realiz&oacute; un experimento en invernadero para determinar la dependencia micorrizal (DM) de laurel (<i>Ocotea sp.</i>). Para tal fin se utiliz&oacute; un dise&ntilde;o experimental completamente al azar. Los tratamientos tuvieron un arreglo factorial 3x2 con cinco repeticiones, los cuales consistieron en la combinaci&oacute;n de tres niveles de f&oacute;sforo (P) en la soluci&oacute;n del suelo (0.002, 0.02 y 0.2 mg L<SUP>-1</SUP>) y dos niveles de inoculaci&oacute;n micorrizal (inoculado y no inoculado) con <i>Glomus aggregatum</i> Schenck &amp; Smith. Se emplearon como variables respuesta el contenido de P foliar en funci&oacute;n del tiempo. Al momento de la cosecha, se determinaron la masa seca a&eacute;rea, el P total absorbido en la parte a&eacute;rea, la colonizaci&oacute;n micorrizal y la DM. Los resultados indican que en algunos d&iacute;as de muestreo el contenido de P foliar aument&oacute; significativamente con la inoculaci&oacute;n micorrizal en laurel al nivel de  P en soluci&oacute;n de 0.2 mg L<SUP>-1</SUP> pero no en los otros niveles de P. El contenido de P total absorbido no increment&oacute; significativamente. La DM fue del 28%, lo que permite  clasificar esta especie como moderadamente dependiente.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><B><i>Palabras clave</i></B>: micorriza, fijaci&oacute;n de f&oacute;sforo, <i>Ocotea</i>.</p> <hr>     <p><B>ABSTRACT</B></p>     <p>A greenhouse experiment was carried out to determine the mycorrhizal dependency of laurel  (<i>>Ocotea</i> sp.). In order to do this, a completely randomized experimental design was used, with six  treatments in a factorial array of 3x2 and five repetitions. The treatments involved a combination of three Phosphorus (P) levels in soil solution (0.002,  0.02 and 0.2 mg L<SUP>-1</SUP>) and two levels of mycorrhizal inoculation, either inoculated or non-inoculated with  <i>Glomus aggregatum</i> Schenck &amp; Smith. The leaf P content as a function of time was used as an output variable. Shoot dry matter,  shoot P content, mycorrhizal colonization of roots, and mycorrhizal dependence were measured at harvest. The results  indicated that the leaf P content increased significantly when using the mycorrhizal inoculation in laurel at P level 0.2 mg L <SUP>-1</SUP>, but not in the other P levels, on some of the sampling days. Shoot dry weight and total plant P content did not increase at all  levels of soil available P. Mycorrhizal dependency of laurel reached 28%, which allows this  species to be classified as moderately dependent on mycorrhiza.     <p><B><i>Keywords</i></B>: mycorrhiza, phosphorus fixation, <i>Ocotea</i>.</p> <hr>     <p><B>RESUMO</B></p>     <p>Realizou-se uma experi&ecirc;ncia num invernadeiro para determinar a dependencia micorrizal  (dm) do louro (<i>Ocotea</i> sp.). Para tal fim se utilizou um desenho experimental completamente aleat&oacute;rio. Os tratamentos tiveram um arranjo fatorial de 3x2 com cinco repeti&ccedil;&otilde;es, os quais consistiram na combina&ccedil;&atilde;o de tr&ecirc;s n&iacute;veis de f&oacute;sforo (P) na soluci&oacute;n do solo (0.002, 0.02 e 0.2 mg L<SUP>-1</SUP>) e dois n&iacute;veis de inocula&ccedil;&atilde;o micorrizal (inoculado e n&atilde;o inoculado) com Glomus aggregatum Schenck &amp; Smith. Empregaram-se como vari&aacute;veis em resposta ao conte&uacute;do de P foliar em fun&ccedil;&atilde;o do tempo. No momento da colheita, se determinou a massa seca a&eacute;rea, com P total absorvido na parte a&eacute;rea, na coloniza&ccedil;&atilde;o micorrizal e a dm. Os resultados indicam que em alguns dias de amostra o conte&uacute;do do P foliar aumentou significativamente com a inocula&ccedil;&atilde;o micorrizal no louro ao n&iacute;vel de P na solu&ccedil;&atilde;o de 0.2 mg L-1 mas n&atilde;o em outros n&iacute;veis de P. O conte&uacute;do de P total absorvido n&atilde;o incrementou significativamente. A DM foi de 28%, o que permitiu classificar esta esp&eacute;cie como moderadamente dependente.</p>     <p><B><i>Palavras chave:</i></B> Micorriza, fixa&ccedil;&atilde;o do f&oacute;sforo, <i>Ocotea</i>.</p> <hr>     <p><B>INTRODUCCI&Oacute;N</B></p>     <p>Una de las estrategias m&aacute;s exitosas desarrolladas por las plantas para superar el  estr&eacute;s que se presenta durante la colonizaci&oacute;n de ecosistemas terrestres es la  capacidad de las ra&iacute;ces para establecer simbiosis ben&eacute;ficas con microorganismos del suelo (Allen 1996, Rilling 2004). Ejemplo de ello son  las asociaciones simbi&oacute;ticas mutualistas entre las ra&iacute;ces del 95% de las  especies vegetales y ciertos grupos de hongos micorrizales (S&aacute;nchez 1999).  Aunque el 95% de las especies vegetales establecen este tipo de asociaciones,  s&oacute;lo se han examinado en un 3% de ellas (Smith &amp; Read 1997) y es mucho  m&aacute;s incipiente la informaci&oacute;n acerca de su dependencia por la condici&oacute;n  micorrizal. Otros autores opinan que s&oacute;lo el 80% de los ecosistemas  terrestres del mundo poseen alg&uacute;n tipo de asociaci&oacute;n micorrizal y que la clase  de asociaci&oacute;n depende de la zona de vida (Cuenca 2001). Son varias las ventajas que  ofrece la asociaci&oacute;n micorrizal a las plantas: aumenta la toma de nutrientes del  suelo, especialmente de P, contribuye significativamente a mejorar la estructura del suelo,  incrementa la resistencia de la planta al estr&eacute;s bi&oacute;tico y abi&oacute;ti co, y favorece el establecimiento de interacciones con otros microorganismos  ben&eacute;ficos (Sieverding 1991, Haselwandter &amp; Bowen 1996, Barea  <i>et al</i>. 2002, Mansfeld <i>et al</i>. 2002, Elsen et al. 2003, Johansson  <i>et al</i>. 2004). En tal sentido, para poder utilizar con &eacute;xito los hongos micorrizo arbusculares  (HMA) y mejorar la eficiencia en el uso de P por parte de las plantas, y a su vez aprovechar las otras  ventajas anteriormente mencionadas, es necesario conocer el grado de relaci&oacute;n entre el hongo y el hospedero (planta).  En algunas especies de plantas la asociaci&oacute;n con HMA es indispensable para su  crecimiento, sin embargo, el grado de DM var&iacute;a con la especie vegetal. La  DM es definida como el grado en el cual una especie de planta depende de la condici&oacute;n  micorrizal para alcanzar su m&aacute;ximo crecimiento o producci&oacute;n (Gerdemann 1968).  &Eacute;sta se determina como el porcentaje de la diferencia entre la producci&oacute;n de  masa seca total de plantas inoculadas y no inoculadas sobre la producci&oacute;n total de  masa seca de plantas inoculadas (Plenchette <i>et al</i>. 1983). Nuestra hip&oacute;tesis es  que las especies que crecen naturalmente en los suelos de los bosques altoandinos,  caracter&iacute;sticamente bajos en P disponible, establecen alg&uacute;n tipo de  asociaci&oacute;n micorrizal y dependen de ella para su establecimiento  y desarrollo inicial. Por tal motivo, el objetivo de la presente investigaci&oacute;n fue  determinar la dependencia micorrizal del laurel (<i>Ocotea</i> sp.) especie t&iacute;pica de  interior de bosque perteneciente a la zona de vida bosque h&uacute;medo montano bajo (Holdridge  1967).      <p><B>METODOLOG&Iacute;A</B></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El experimento se realiz&oacute; en el invernadero de la Universidad Cat&oacute;lica de  Oriente (6&deg; 9&acute; 15.2&rdquo; N, 75&deg; 22&acute; 10.4&rdquo; O, a una altitud de  2112 msnm en Rionegro, Colombia). El sitio presenta una temperatura promedio de 17&deg; C y  una precipitaci&oacute;n anual de 1700 mm y se ubica en la zona de vida bosque h&uacute;medo  montano bajo (Holdridge 1967).</p>      <p>El suelo en el que crecieron las plantas correspondi&oacute; a una muestra del horizonte Bw de un Andisol de la estaci&oacute;n experimental Piedras Blancas (6&deg;  15&acute; 38&rdquo; N, 75&deg; 30&acute; 23&rdquo; O; altitud: 2484 msnm). Se utiliz&oacute;  esta muestra de suelo subsuperficial para reducir la influencia del P org&aacute;nico sobre  el P disponible. El suelo se sec&oacute; al aire y se tamiz&oacute; a 4 mm y luego se  analiz&oacute; en el Laboratorio de Suelos de la Universidad Nacional de Colombia, Sede  Medell&iacute;n. Los resultados fueron: arena 92%, limo 4%, arcilla 4%, textura A  (Bouyucos), pH 5.7 (agua, 1:1, V: V), materia org&aacute;nica 11% (Walkley y Black), calcio,  magnesio y potasio, 1.7, 0.1 y 0.05 cmolc kg<SUP>-1 </SUP>(acetato de amonio 1M, pH 7), respectivamente;  f&oacute;sforo 1 mg kg<SUP>-1 </SUP>(Bray II); hierro, manganeso, cobre y zinc 64, 1, 1 y 1 mg kg <SUP>-1 </SUP>(Olsen-edta); boro no detectable mg kg<SUP>-1</SUP>(agua caliente); nitrato 3 mg kg <SUP>-1</SUP>(sulfato de aluminio 0.025M) y amonio 18 mg kg<SUP>-1</SUP> (KCL 1M).      <p>El pH del suelo se ajust&oacute; a 5.9 con 2 g de CaCO<SUB>3 </SUB> por kg de suelo para evitar niveles altos de aluminio y optimizar la solubilidad de P.  Para determinar el requerimiento de cal se realiz&oacute; una curva de incubaci&oacute;n con CaCO <SUB>3 </SUB>(Uchida &amp; Hue 2000). El suelo se esteriliz&oacute; con vapor a 80&deg; C y durante una hora.</p>      <p>La fertilizaci&oacute;n del sustrato consisti&oacute; en la adici&oacute;n S 204, Zn 10, Cu 5, B 0.8 y Mo  0.5. El sustrato se de urea 0.17 mg kg<SUP>-1</SUP>, CaSO<SUB>4</SUB> 2H<SUB>2</SUB>O 0.73 mg kg <SUP>-1</SUP>, MgSO<SUB>4</SUB>, 7H<SUB>2</SUB>O 0.93 mg kg<SUP>-1</SUP>, y K<SUB>2</SUB> SO <SUB>4 </SUB>0.21 mg kg<SUP>-1</SUP>. As&iacute; mismo, se aplic&oacute; P en forma de KH <SUB>2</SUB>PO<SUB>4 </SUB>para obtener tres concentraciones de P en la soluci&oacute;n del  suelo 0.002, 0.02 y 0.2 mg L<SUP>-1</SUP>, seg&uacute;n lo propuesto por Habte &amp; Manjunath (1991) para estudios de  DM. Para este fin se realiz&oacute; una isoterma de adsorci&oacute;n de P de acuerdo al m&eacute;todo de Fox &amp; Kamprath  (1970) cuyos resultados se muestran en la (<A HREF="#FIG1">Figura 1</A>). Las cantidades de KH<SUB>2</SUB> PO<SUB>4 </SUB>fueron 2, 3.8 y 17.6 g kg<SUP>-1</SUP>. Luego, el sustrato est&eacute;ril y  fertilizado se trasfiri&oacute; a bolsas pl&aacute;sticas con 18 cm de di&aacute;metro por 29.5  cm de altura.</p>      <p>    <CENTER><A NAME="FIG1"></A><IMG SRC="img/revistas/cofo/v12n1/v12n1a02fig1.jpg"></CENTER></p>     <p>Cada unidad experimental recibi&oacute; quincenalmente la soluci&oacute;n  nutritiva Hogland libre de P a las siguientes dosis (mg L<SUP>-1</SUP>): N 50, K 132,  Mg 106, mantuvo entre un 50-60% de la m&aacute;xima capacidad de retenci&oacute;n de agua  (39 y 47% respectivamente), para lo cual se aplic&oacute; agua corriente o la  soluci&oacute;n nutritiva mencionada.</p>      <p>Las semillas de laurel se obtuvieron de poblaciones naturales de &aacute;rboles ubicados  en el Santuario de Flora y Fauna Ot&uacute;n Quimbaya (Risaralda, Colombia). Todas las  semillas se lavaron con agua destilada, se desinfectaron con hipoclorito de sodio al 1%, se  trasfirieron a bandejas de germinaci&oacute;n (temperatura ambiente) que conten&iacute;an  arena esterilizada hasta su germinaci&oacute;n. Una vez germinadas, cada pl&aacute;ntula se  trasplant&oacute; a potes pl&aacute;sticos que conten&iacute;an arena est&eacute;ril donde  permanecieron hasta alcanzar 10 o 15 cm de altura, para posteriormente pasarlas a una bolsa  pl&aacute;stica en su respectiva unidad experimental.</p>     <p>Se utiliz&oacute; un in&oacute;culo crudo de <i>Glomus aggregatum</i> de efectividad  comprobada, el cual conten&iacute;a esporas, fragmentos de ra&iacute;ces infectadas e hifas  del hongo suspendidas en una matriz s&oacute;lida compuesta por suelo y cuarzo (1:1).  El in&oacute;culo tuvo 8500 prop&aacute;gulos micorrizales infectivos por kg de suelo de terminado por el m&eacute;todo del n&uacute;mero m&aacute;s probable (NMP) (Porter 1979).  Este hongo fue originalmente suministrado por M. Habte de la Universidad de Hawai (Honolulu,  EEUU) y multiplicado en ra&iacute;ces de sorgo y kudz&uacute; (Habte &amp; Osorio 2001) en el La boratorio de Microbiolog&iacute;a del Suelo de la Universidad Nacional de Colombia. La efectividad de este  HMA para incrementar la absorci&oacute;n de P y el crecimiento vegetal en suelos con bajo contenido de  P soluble ha sido comprobada por Jaramillo <i>et al</i>. (2004), Osorio <i>et al</i>.  (2008) y Gonz&aacute;lez &amp; Osorio (2008). Al momento de la siembra, 20 g de in&oacute;culo crudo de  <i>G. aggregatum</i> por kg de suelo se mezclaron uniformemente en cada unidad experimental.  El suelo no inoculado recibi&oacute; 20 g de suelo est&eacute;ril por kg, adem&aacute;s de  filtrados de una suspensi&oacute;n del in&oacute;culo crudo (10%) luego de remover las estruc turas de los hongos con papel filtro Schleicher &amp; Schuell (tama&ntilde;o de poro: 2 &micro;m).</p>      <p>Se utiliz&oacute; un dise&ntilde;o experimental completamente al azar. Los tratamientos  tuvieron un arreglo factorial 3x2 con cinco repeticiones y consistieron en la  combinaci&oacute;n de los tres niveles de P (0.002, 0.02 y 0.2 mg L<SUP>-1</SUP>) y los dos niveles de inoculaci&oacute;n micorrizal de  <i>G. aggregatum</i> (inoculado y no inoculado).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Se realizaron mediciones peri&oacute;dicas del contenido de P en las hojas j&oacute;venes  completamente maduras (Habte &amp; Osorio 2001). Para tal fin, una porci&oacute;n circular  del tejido foliar se removi&oacute; con un perforador (6 mm de di&aacute;metro).  El contenido de P se expres&oacute; en t&eacute;rminos de &micro;g por disco de hoja.  El P fue determinado por el m&eacute;todo del azul de molibdato (Murphy &amp; Riley 1962)  luego de reducir los discos de hoja a cenizas en mufla a 500&deg; C por 3 horas. Este  m&eacute;todo de muestreo no destructivo fue originalmente propuesto por Aziz &amp; Habte  (1987).</p>     <p>Al final del periodo de crecimiento de las plantas se cosech&oacute; la parte  a&eacute;rea. Las muestras se llevaron a estufa y se secaron a 60&deg; C durante 72 horas.  Luego se determin&oacute; la masa seca a&eacute;rea (MSA). El P total absorbido en la  parte a&eacute;rea fue determinado al final de la cosecha como se describi&oacute;  anteriormente. Para esto se utiliz&oacute; la concentraci&oacute;n de P en el disco de  hoja al momento de la cosecha (Habte <i>et al</i>. 1987). Para medir la colonizaci&oacute;n  micorrizal las ra&iacute;ces finas de las plantas se sometieron a koh para aclaraci&oacute;n  (Phillips &amp; Hayman 1970), luego se ti&ntilde;eron con fucsina &aacute;cida (Kormanik  <i>et al</i>. 1980) y posteriormente se determin&oacute; la colonizaci&oacute;n micorrizal  siguiendo el m&eacute;todo del intercepto de cuadr&iacute;cula propuesto por Giovannetti  &amp; Mosse (1980). Con los datos de masa seca total se determin&oacute; la DM usando para  ello la f&oacute;rmula propuesta por Plenchette <i>et al</i>. (1983):</p>      <p>DM= (Masa seca plantas inoculadas - Masa seca plantas no inoculadas) x 100 / (Masa seca plantas inoculadas)</p>      <p>Luego, la DM de las especies vegetales se clasific&oacute; de acuerdo a lo propuesto por  Manjunath &amp; Habte (1990) y Habte &amp; Manjunath (1991).</p>      <p>Los datos obtenidos fueron sometidos al an&aacute;lisis de varianza (prueba F) para  determinar si exist&iacute;an diferencias significativas en funci&oacute;n de los  tratamientos. La prueba de la Diferencia M&iacute;nima Significativa (LSD) se us&oacute;  para separar promedios con respecto al control no inoculado en cada uno de los niveles de P.  Para los an&aacute;lisis estad&iacute;sticos se emple&oacute; un nivel de significancia (P)  &le; 0.05 y se utiliz&oacute; el paquete estad&iacute;stico StatGraphics versi&oacute;n 4.0.</p>      <p><B>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</B></p>     <p>La inoculaci&oacute;n micorrizal no tuvo efectos significativos sobre el contenido de  P foliar del laurel en los diferentes niveles de P en la soluci&oacute;n de suelo y para  todas las fechas de muestreo (<A HREF="#FIG2">Figura 2</A>).</p>      <p>    <CENTER><A NAME="FIG2"></A><IMG SRC="img/revistas/cofo/v12n1/v12n1a02fig2.jpg"></CENTER></p>     <p>Por otro lado, la concentraci&oacute;n de P en la soluci&oacute;n del suelo de 0.2  mg L<SUP>-1 </SUP> increment&oacute; significativamente el contenido de P foliar en todos  los d&iacute;as de muestreo con respecto al nivel m&aacute;s bajo de P disponible.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Aunque la MSA del laurel fue mayor con la inoculaci&oacute;n micorrizal (M), estas  diferencias no alcanzaron a ser significativas (P &le; 0.05). Adem&aacute;s, se  encontr&oacute; que en la medida en que el P en soluci&oacute;n se increment&oacute;, la  MSA fue significativamente menor (<A HREF="#FIG3">Figura 3</A>).</p>      <p>El f&oacute;sforo total absorbido (PTA) del laurel fue ligeramente mayor con la  inoculaci&oacute;n micorrizal (M), pero estas diferencias no alcanzaron a ser  significativas (P &le; 0.05) (<A HREF="#FIG3">Figura 3</A>).</p>      <p>    <CENTER><A NAME="FIG3"></A><IMG SRC="img/revistas/cofo/v12n1/v12n1a02fig3.jpg"></CENTER></p>     <p>Para la colonizaci&oacute;n micorrizal del laurel no se detectaron estructuras en  ninguno de los tratamientos inoculados y no inoculados, posiblemente a causa de la gran  cantidad de taninos encontrados en las ra&iacute;ces de esta especie, los cuales no  permitieron una lectura de la colonizaci&oacute;n satisfactoria.</p>      <p>La dependencia micorrizal para el laurel fue moderada acorde con lo propuesto por  Habte &amp; Manjunath (1991) con valor 27.8 %, cuando se aplic&oacute; la formula de  Plenchete et al. (1983).</p>      <p>El laurel es una especie que se puede clasificar ecol&oacute;gicamente como no pionera  (&aacute;rbol de interior del bosque); en tal sentido, los resultados son similares a los  de estudios realizados en bosques h&uacute;medos tropicales por Janos (1980a, 1980b) y  D&iacute;ez (2006), en los cuales las especies pioneras poseen simbiosis micorrizal  facultativa y las especies no pioneras obligada.</p>      <p>Los niveles bajo e intermedio de P disponible (0.002 y 0.02 mg L<SUP>-1</SUP>)  s&oacute;lo tuvieron ligeras variaciones sobre la MSA, lo que indica la gran adapta ci&oacute;n del laurel a suelos con bajo contenido de P. Incluso, el sistema radical vari&oacute; con respecto al  contenido de P: en el nivel alto las ra&iacute;ces tuvieron menor tama&ntilde;o.</p>       <p>Para futuros estudios de DM en especies de bosque h&uacute;medo montano bajo se deben  reevaluar los niveles de P en soluci&oacute;n sugeridos por Manjunath &amp; Habte (1990) y  Habte &amp; Manjunath (1991), en especial el nivel alto (P en soluci&oacute;n de 0.2 mg  L<SUP>-1</SUP>). A este nivel, las pl&aacute;ntulas presentaron s&iacute;ntomas de  necrosis foliar y en algunos casos radical, asociadas posiblemente a problemas  fisiol&oacute;gicos de los individuos (<A HREF="#FIG4">Figura 4</A>); al parecer las concentraciones bajas y  altas de P limitan el crecimiento vegetal y la actividad micorrizal (Osorio <i>et al</i>.  2008). Para el efecto se deben hacer estudios de calibraci&oacute;n y correlaci&oacute;n de  la planta a estudiar versus el P aplicado para definir unos niveles acordes con los  requerimientos de la especie vegetal.</p>       <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<CENTER><A NAME="FIG4"></A><IMG SRC="img/revistas/cofo/v12n1/v12n1a02fig4.jpg"></CENTER></p>     <p>Por &uacute;ltimo, los resultados poseen aplicaci&oacute;n pr&aacute;ctica,  ya que los m&eacute;todos aqu&iacute; utilizados permiten establecer la relaci&oacute;n  de plantas (dependencia micorrizal) con los HMA, lo que puede servir de herramienta de  decisi&oacute;n a la hora de utilizar hongos micorrizales con fines forestales.  Para el caso del laurel (<i>Ocotea</i> sp.) se sugiere utilizar HMA para me jorar y promover el crecimiento de esta especie en plantaciones forestales.</p>    <B>    <p>CONCLUSIONES</p></B>       <p>La DM del laurel fue moderada. Los valores de DM decrecieron al incrementar la concentraci&oacute;n de P  disponible en el suelo as&iacute;: 40.3, 27.8, 22.2 % a los niveles de 0.002, 0.02, y 0.2 mg L <SUP>-1</SUP>, respectivamente. No se observaron estructuras ni prop&aacute;gulos infectivos en las ra&iacute;ces del laurel. El contenido de  P foliar aument&oacute; significativamente con la inoculaci&oacute;n micorrizal a 0.2 mg L <SUP>-1 </SUP>en algunos d&iacute;as de muestreo.</p>    <B>    <p>AGRADECIMIENTOS</p></B>      <p>Este trabajo fue realizado gracias a la financiaci&oacute;n y apoyo de la  Direcci&oacute;n de Investigaci&oacute;n y Desarrollo de la Universidad  Cat&oacute;lica de Oriente, en coordinaci&oacute;n con la Unidad de Biotecnolog&iacute;a  Vegetal de la misma universidad. Adem&aacute;s, se agradece muy especialmente a todos los  integrantes del Grupo de Microbiolog&iacute;a de Suelos de la Universidad Nacional Sede  Medell&iacute;n, quienes con su apoyo permitieron llevar a feliz t&eacute;rmino la  presente investigaci&oacute;n.</p> <B>    <p>REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS</p></B>      <!-- ref --><p>Allen, M. 1996. The ecology of arbuscular mycorrhizas: a look back into the 20th century and a peek  into the 21th. Mycological Research 100: 769-782.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000060&pid=S0120-0739200900010000200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Aziz, T. &amp; M. Habte. 1987. Determining vesicular-arbuscular micorrhizal effectiveness  by monitoring P status of leaf disk. Canadian Journal Microbiology 33: 1097-1101.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000061&pid=S0120-0739200900010000200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Barea, J. M., R. Azc&oacute;n &amp; C. Azc&oacute;n-Aguilar. 2002. Mycorrhizosphere interactions to im prove plant fitness and soil quality. Antonie Van Leewenhoek 81: 343-351.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000062&pid=S0120-0739200900010000200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>D&iacute;ez, M. 2006. Dependencia micorrizal de pino romeron, <i>Retrophyllum rospigliosii</i> ( Pilg.) C. N. Page (Podocarpaceae), bajo diferentes niveles de intensidad lum&iacute;nica.  Informe de tesis presentado a la Universidad Nacional de Colombia, Sede Medell&iacute;n,  Facultad de Ciencias Agropecuarias. Medell&iacute;n.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000063&pid=S0120-0739200900010000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Elsen, A., H. Baimey, R. Swennen &amp; D. De Waele. 2003. Relative mycorrhizal dependency  and mycorrhiza-nematode interaction in banana cultivars (<i>Musa</i> sp.) differing in nematode  susceptibility. Plant and Soil 256: 303-313.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000064&pid=S0120-0739200900010000200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Fox, R. &amp; E. Kamprath. 1970. Phosphate sorption isotherms for evaluating the  phosphate requirements of soils. Soil Science Society of America Proceedings 34: 902-907.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S0120-0739200900010000200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Gerdemann, J. W. 1968. Vesicular-arbuscular mycorrhiza and plant growth. Phytopatol 6: 397-418.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000066&pid=S0120-0739200900010000200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Giovannetti, M. &amp; B. Mosse. 1980. An evaluation of techniques for measuring  vesicular-arbuscular mycorrhizal infection in roots. New PhytoLogy 84: 489-500.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0120-0739200900010000200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Gonz&aacute;lez, O. &amp; N. W. Osorio. 2008. Determinaci&oacute;n de la dependencia micorrizal del lulo.  Acta Biol&oacute;gica Colombiana 13 (2): 163-174.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0120-0739200900010000200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Habte, M., R. Fox &amp; R. Huang. 1987. Determining vesicular-arbuscular micorrhizal effec tiveness by monitoring P status of subleaflets of indicator plants. Communications in Soil  Science and Plant Analysis 18: 1403-1420.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0120-0739200900010000200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Habte, M. &amp; A. Manjunath. 1987. Soil solution phosphorus status and mycorrhizal dependency in  <i>Leucaena leucocephala</i>. Applied and Environmental Microbiology 53: 797-801.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0120-0739200900010000200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Habte, M. &amp; A. Manjunath. 1991. Categories of vesicular-arbuscular mycorrhizal dependency of host species. Mycorrhiza 1: 3-12.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0120-0739200900010000200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Habte, M. &amp; N. W. Osorio. 2001. Arbuscular mycorrhizas: Producing and applying arbuscular  mycorrhizal inoculum. University of Hawaii. Honolulu, Hawai. Pp. 1-47.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0120-0739200900010000200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Haselwandter, K. &amp; G. D. Bowen. 1996. Mycorrhizal relations in trees for agroforestry and land rehabilitation. Forest Ecology and Management 81: 1-17.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0120-0739200900010000200014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Holdridge, L. R. 1967. Life zone ecology. Tropical Science Center.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0120-0739200900010000200015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Janos, D. 1980a. Mycorrhizae influence tropical succession. Biotropica 12: 54-64.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0120-0739200900010000200016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Janos, D. 1980b. Vesicular-arbuscular mycorrhizae affect lowland tropical rain forest plant  growth. Ecology 61: 151-162.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0120-0739200900010000200017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Jaramillo, S. P., M. Silva &amp; N. W. Osorio. 2004. Potencial simbi&oacute;tico y efectividad de hongos micorr&iacute;zico arbusculares de tres suelos sometidos a diferentes usos. Medell&iacute;n. Revista Facultad Nacional de Agronom&iacute;a  57: 2203-2214.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0120-0739200900010000200018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Johansson, J. F., L. R. Paul &amp; R. D. Finlay. 2004. Microbial interactions in the mycorrhizosphere and their significance for sustainable agriculture. Fems Microbiology  Ecology 48: 1-13.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0120-0739200900010000200019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Johansson, F., R. Leslie, &amp; R. Finlay. 2004. Microbial interactions in the mycorrhizosphere and their significance for sustainable agriculture. Plant and Soil 0: 1-21.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0120-0739200900010000200020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Kormanik, P.P., A.C. Mcgraw &amp; R.C. Schultz. 1980.  Procedure and equipment for staining a large number of plant samples for endomycorrhizal assay.   Canadian Journal of Microbiology 26:  536-538.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0120-0739200900010000200021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Manjunath, A. &amp; M. Habte. 1990. Establishment of soil solution P levels for studies  involving vesicular-arbuscular micorrizal fungi. Communications in Soil Science and  Plant Analysis 21: 557-566.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0120-0739200900010000200022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Mansfeld-Giese, K., J. Karsen &amp; L. B&oslash;dker. 2002. Bacterial populations  associated with mycelium of the arbuscular mycorrhizal fungus <i>Glomus intrarradices</i>.  Fems Microbiology Ecology 41: 133-140.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0120-0739200900010000200023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Murphy, J. &amp; J. P. Riley. 1962. A modified single solution method for the determination of phosphate in natural waters. Analytica Chimica  Acta 27: 31-35.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0120-0739200900010000200024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Osorio, W., M. C. D&iacute;ez, J. Sierra &amp; L. Paternina. 2008. Consideraciones  ecol&oacute;gicas sobre la asociaci&oacute;n micorrizal en suelos de la region  altoandina. En: J. D. Le&oacute;n (ed.). Ecolog&iacute;a de bosques andinos.  Experiencias de investigaci&oacute;n. La Carreta Editores. Medell&iacute;n. Pp. 181-200.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0120-0739200900010000200025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Phillips, J. M. &amp; D. S. Hayman. 1970. Improved procedures for clearing and staining parasitic and vesicular-arbuscular mycorrhizal fungi for rapid assessment of infection. 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The "most probable number" method for enumerating infective propagules of vesicular arbuscular micorrizal fungi in  soil. Australian Journal of Soil Research 17: 515-519.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0120-0739200900010000200028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Rilling, M. 2004.  Arbuscular mycorrhizae and terrestrial ecosystem processes.   Ecology  Letters 7:  740-754.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0120-0739200900010000200029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>S&aacute;nchez, M. 1999. Endomicorrizas en agroecosistemas colombianos.  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