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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Remoción de los inhibidores de la fermentación etanólica usando membranas de polidimetilsiloxano (PDMS) por pervaporación]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Removal of ethanolic fermentation inhibitors using polydimethylsiloxane (PDMS) membranes by pervaporation]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Pretreatment and fermentation are previous processes for ethanol production from lignocellulosic material. During pretreatment, several undesirable compounds are formed. These compounds, known as inhibitors, reduce yeast activity and they are one of the main limiting factors of ethanol yield in the fermentation process. Although, several biological, physical, and chemical processes have been proposed in the literature to remove inhibitor compounds, little attention has received membrane technology as a removal alternative. To date, there are not known studies where pervaporation has been used as a removal technology for inhibitors. In this work, a membrane of polydimethylsiloxane (PDMS) was prepared and experimentally evaluated for removal of inhibitors usually produced from pretreatment and acid hydrolysis of bagasse and leaves of sugar cane. The prepared membrane is able to remove acetic acid, formic acid and furfural. Levulinic acid, xylose, glucose and hydroxymethylfurfural (HMF) did not permeate through the membrane. These results show that it is possible to detoxicate hydroxylates from bagasse and leaves of sugar cane by pervaporation.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[   <font size="2" face="Verdana">   <font size="4">       <br>    <center><b>Remoci&oacute;n de los inhibidores de la fermentaci&oacute;n etan&oacute;lica usando    <br> membranas de polidimetilsiloxano (PDMS) por pervaporaci&oacute;n</b></center></font> 		     <p align="center">Oscar Johnny Jaramillo Pineda; Miguel &Aacute;ngel G&oacute;mez Garc&iacute;a;    <br> Javier Fontalvo Alzate<sup>*</sup></p> 	     <p align="center">Universidad Nacional de Colombia - Sede Manizales - Facultad de Ingenier&iacute;a y Arquitectura -    <br> Departamento de Ingenier&iacute;a Qu&iacute;mica â€“ Laboratorio de Intensificaci&oacute;n de Procesos y Sistemas H&iacute;bridos -    <br> GIANT: Grupo de Investigaci&oacute;n en Aplicaci&oacute;n de Nuevas Tecnolog&iacute;as -    <br> Cra 27 No. 64-60, Manizales, Apartado a&eacute;reo 127 - Colombia.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> <sup>*</sup><a href="mailto:jfontalvoa@unal.edu.co">jfontalvoa@unal.edu.co</a></p>  </p>       <p align="right"><i> Fecha Recepci&oacute;n: 15 de enero de 2012    <br> Fecha Aceptaci&oacute;n: 5 de abril de 2012</i></p>   <hr>  <font size="3">     <br>    <p><b><left>Resumen</left></b></p></font>      <p align="justify">La producci&oacute;n de etanol a partir de materiales lignocelul&oacute;sicos incluye procesos de pretratamiento, hidr&oacute;lisis y fermentaci&oacute;n. Durante la etapa de pretratamiento e hidr&oacute;lisis se producen compuestos no deseables para la fermentaci&oacute;n. La toxicidad de estos compuestos, llamados inhibidores, sobre los microorganismos es uno de los principales factores limitantes en el rendimiento de etanol durante la fermentaci&oacute;n. Aunque han sido propuestos en la literatura diferentes m&eacute;todos biol&oacute;gicos, f&iacute;sicos y qu&iacute;micos para eliminar estos compuestos inhibidores, el uso de tecnolog&iacute;as de membrana ha recibido poco inter&eacute;s como m&eacute;todo de remoci&oacute;n, y espec&iacute;ficamente, hasta la fecha no se conocen estudios en donde se use la pervaporaci&oacute;n como m&eacute;todo de detoxificaci&oacute;n. En este estudio se prepar&oacute; y evalu&oacute; el desempe&ntilde;o de una membrana de polidimetilsiloxano (PDMS) para la remoci&oacute;n de inhibidores presentes frecuentemente en el pretratamiento e hidr&oacute;lisis &aacute;cida de material lignocelul&oacute;sico proveniente del bagazo y las hojas de ca&ntilde;a de az&uacute;car. La membrana preparada permite la remoci&oacute;n de &aacute;cido ac&eacute;tico, &aacute;cido f&oacute;rmico y furfural. No se encontr&oacute; permeaci&oacute;n alguna del &aacute;cido levul&iacute;nico, xilosa, glucosa y hidroximetilfurfural (HMF). Los resultados indican que es posible realizar la detoxificaci&oacute;n de hidrolizados del bagazo y las hojas de la ca&ntilde;a de az&uacute;car mediante pervaporaci&oacute;n.</p> 	     <p align="justify"><i><b>Palabras clave:</b> pervaporaci&oacute;n, hidr&oacute;lisis de bagazo, inhibidores, intensificaci&oacute;n de procesos, tecnolog&iacute;a de membranas.</i></p>  <font size="3">      <p><b>    <center>Removal of ethanolic fermentation inhibitors using    <br> polydimethylsiloxane (PDMS) membranes by pervaporation</center></b></p></font>  <font size="3">      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b><left>Abstract</left></b></p></font> 	     <p align="justify">Pretreatment and fermentation are previous processes for ethanol production from lignocellulosic material. During pretreatment, several undesirable compounds are formed. These compounds, known as inhibitors, reduce yeast activity and they are one of the main limiting factors of ethanol yield in the fermentation process. Although, several biological, physical, and chemical processes have been proposed in the literature to remove inhibitor compounds, little attention has received membrane technology as a removal alternative. To date, there are not known studies where pervaporation has been used as a removal technology for inhibitors. In this work, a membrane of polydimethylsiloxane (PDMS) was prepared and experimentally evaluated for removal of inhibitors usually produced from pretreatment and acid hydrolysis of bagasse and leaves of sugar cane. The prepared membrane is able to remove acetic acid, formic acid and furfural. Levulinic acid, xylose, glucose and hydroxymethylfurfural (HMF) did not permeate through the membrane. These results show that it is possible to detoxicate hydroxylates from bagasse and leaves of sugar cane by pervaporation.</p>      <p align="justify"><i><b>Keywords:</b> pervaporation, hydrolysis of bagasse, inhibitors, process intensification, membrane technology.</i></p>  <hr>  <font size="3">		     <br>    <p><b><left>Introducci&oacute;n</left></b></p></font>      <p align="justify">Para el a&ntilde;o 2013 se estima que en Colombia la producci&oacute;n de bioetanol alcanzar&aacute; m&aacute;s de 513ML cuando entren en operaci&oacute;n las plantas de Bioenergy (Meta) y de Agrifuels (Magdalena). Y en el 2015, con la entrada en operaci&oacute;n de tres proyectos m&aacute;s, la producci&oacute;n de alcohol podr&iacute;a alcanzar m&aacute;s de 800ML &#91;1&#93;. Las plantas productoras de etanol existentes y las nuevas que entrar&aacute;n en operaci&oacute;n producir&aacute;n el etanol a partir del jugo de la ca&ntilde;a de az&uacute;car. Esto implica que s&oacute;lo se puede ampliar la producci&oacute;n sembrando m&aacute;s tierra. Por ejemplo para la planta Bioenergy, con la cual se estima una capacidad de producci&oacute;n de 0,48ML de etanol diarios, se deben sembrar y cosechar 125x10<sup>6</sup> m<sup>2</sup> m&aacute;s para cumplir con los requerimientos de 6,8kt diarias de ca&ntilde;a de az&uacute;car &#91;2&#93;. No obstante, si se aprovechan los residuos agroindustriales de la ca&ntilde;a de az&uacute;car, ca&ntilde;a panelera y ca&ntilde;a miel se puede producir m&aacute;s etanol sin aumentar el &aacute;rea cultivada.    <br> El microorganismo con mayor capacidad para la fermentaci&oacute;n de la xilosa es la levadura de la <i>Pichia stipitis</i>, que en fermentaciones por lotes produce entre 41 y 50x10<sup>-3</sup>kg/L de etanol con rendimientos del 0,44-0,48kg etanol/kg de xilosa &#91;3,4&#93;. Sin embargo, en general, las levaduras que fermentan xilosa cuando se comparan con la levadura <i>Saccharomyces cerevisiae</i> son m&aacute;s vulnerables a los compuestos inhibidores como el furfural y compuestos fen&oacute;licos &#91;5,6&#93;. Para convertir la xilosa en etanol es necesario detoxificar el hidrolizado, y as&iacute; realizar la fermentaci&oacute;n en tiempos cortos y obtener rendimientos mayores al 80&#37;p.    <br> Entre los principales compuestos t&oacute;xicos que se generan en la hidr&oacute;lisis &aacute;cida de materiales lignocelul&oacute;sicos est&aacute;n los compuestos fen&oacute;licos, los furaldeh&iacute;dos (hidroximetilfurfural - HMF y furfural) y los &aacute;cidos alif&aacute;ticos (ac&eacute;tico, f&oacute;rmico y levul&iacute;nico) todos ellos formados durante la etapa de pretratamiento. El proceso de remoci&oacute;n de inhibidores se puede llevar a cabo por m&eacute;todos biol&oacute;gicos, qu&iacute;micos y f&iacute;sicos &#91;7â€“9&#93;. Los acondicionamientos biol&oacute;gicos generalmente remueven los compuestos fen&oacute;licos de forma efectiva (&#126;80-90&#37;); no obstante, tienen tiempos de detoxificaci&oacute;n de d&iacute;as y a veces no remueven los furaldeh&iacute;dos y generan p&eacute;rdidas de az&uacute;car &#91;10,11&#93;. Evaporaci&oacute;n, nanofiltraci&oacute;n, electrodi&aacute;lisis y extracci&oacute;n (en fase l&iacute;quida o s&oacute;lida) est&aacute;n incluidos entre los acondicionamientos f&iacute;sicos. La evaporaci&oacute;n remueve completamente el furfural y gran parte del &aacute;cido ac&eacute;tico y f&oacute;rmico (&#126;40-70&#37;p) pero no remueve efectivamente los compuestos fen&oacute;licos &#91;11,12&#93;. Las tecnolog&iacute;as de membrana como la nanofiltraci&oacute;n y electrodi&aacute;lisis han sido usadas para la detoxificaci&oacute;n y concentraci&oacute;n simult&aacute;nea de los hidrolizados hemicelul&oacute;sicos, pero la literatura reporta p&eacute;rdidas de az&uacute;car y poco acerca de la eficacia en la remoci&oacute;n de los compuestos t&oacute;xicos &#91;13â€“16&#93;. Entre los solventes efectivos para la extracci&oacute;n en fase l&iacute;quida de los compuestos fen&oacute;licos est&aacute; el acetato de etilo con remociones hasta del 80&#37;, aunque casi siempre por esta t&eacute;cnica hay que evaporar para retirar la fracci&oacute;n remanente de solvente &#91;17,18&#93;. Por extracci&oacute;n en fase s&oacute;lida las resinas de intercambio ani&oacute;nico o cati&oacute;nico, las zeolitas y el carb&oacute;n de madera son efectivos en la remoci&oacute;n de furfural y los compuestos fen&oacute;licos con remociones de ambos mayores al 70&#37;, no obstante, la resina y las zeolitas generan p&eacute;rdidas de az&uacute;cares mayores al 5&#37; &#91;11,19,20&#93;. Por &uacute;ltimo est&aacute;n los acondicionamientos qu&iacute;micos en donde los compuestos t&oacute;xicos reaccionan con agentes reductores convirtiendo los furaldeh&iacute;dos (HMF y furfural) y compuestos fen&oacute;licos en sustancias menos t&oacute;xicas &#91;21&#93;. La desventaja del acondicionamiento qu&iacute;mico son las p&eacute;rdidas de az&uacute;cares &#91;22&#93; y la formaci&oacute;n de un precipitado que requiere una filtraci&oacute;n posterior.    <br> Hasta el momento no se conocen estudios de pervaporaci&oacute;n como m&eacute;todo de acondicionamiento de hidrolizados y concretamente el uso de membranas de polidimetilsiloxano (PDMS). Sagehashi <i>et al.</i> &#91;23&#93; estudiaron la remoci&oacute;n de furfural, &aacute;cido ac&eacute;tico y fenoles por pervaporaci&oacute;n de una soluci&oacute;n acuosa generada a partir de la descomposici&oacute;n de material lignocelul&oacute;sico por pir&oacute;lisis, los factores de enriquecimiento oscilaron entre 20-70 para furfural y fenoles en el intervalo de temperatura de 40-120&deg;C.    <br> En este estudio se prepar&oacute; y evalu&oacute; el desempe&ntilde;o de membranas de polidimetilsiloxano PDMS en la remoci&oacute;n selectiva de compuestos inhibidores. Se determinan las permeancias y selectividades de los az&uacute;cares (glucosa y xilosa), &aacute;cidos org&aacute;nicos (ac&eacute;tico, f&oacute;rmico y levul&iacute;nico) y furaldeh&iacute;dos (hidroximetilfurfural y furfural) para establecer si las membranas son eficientes en la remoci&oacute;n de los compuestos t&oacute;xicos sin p&eacute;rdidas de az&uacute;cares con el objetivo de contribuir en la soluci&oacute;n de uno de los principales obst&aacute;culos en la fermentaci&oacute;n de las pentosas y hexosas para la producci&oacute;n de etanol.</p>  <font size="3">		     ]]></body>
<body><![CDATA[<br>    <p><b><left>Metodolog&iacute;a</left></b></p></font>      <p align="justify">La ca&ntilde;a de az&uacute;car usada en este estudio fue recolectada en la zona rural del departamento de Caldas por FEDEPANELA, variedad POJ28-78. La caracterizaci&oacute;n de las hojas y el bagazo se llev&oacute; a cabo siguiendo el procedimiento de laboratorio &quot;Determination of Structural Carbohydrates and Lignin in Biomass&quot; de la agencia NREL &#91;24&#93;.    <br> La membrana se fabric&oacute; por recubrimiento de PDMS sobre soportes cer&aacute;micos tubulares de 3mm de di&aacute;metro y 0,3m de longitud mediante la t&eacute;cnica de &quot;dip-coating&quot; con espesores de aproximadamente 1micr&oacute;metro &#91;25&#93;. Los soportes constituidos de &alpha;-Al<sub>2</sub>O<sub>3</sub> tienen una porosidad del 30&#37; con di&aacute;metros de poro de 300nm, sobre el soporte se deposit&oacute; &gamma;- Al<sub>2</sub>O<sub>3</sub> con un tama&ntilde;o de poro inferior a 80nm &#91;26&#93;. Como capa superficial se deposit&oacute; el PDMS.    <br> Los experimentos de pervaporaci&oacute;n se llevaron a cabo en un vaso enchaquetado a diferentes temperaturas (35, 50 y 65&deg;C). En este vaso se ubic&oacute; la soluci&oacute;n de retenido y la membrana <a href="#f01">Figura 1</a>. El volumen de retenido (2L) fue suficientemente elevado para asegurar composiciones del retenido en esencia constantes durante cada experimento. Mayores detalles de este equipo experimental se pueden encontrar en otra parte &#91;26â€“28&#93;. La presi&oacute;n del permeado (&lt; 500N/m<sup>2</sup>) se obtuvo mediante una bomba de vac&iacute;o y el permeado fue condensado con una trampa con nitr&oacute;geno l&iacute;quido.</p>      <p align="center"><a name="f01"></a><img src="img/revistas/rion/v25n1/v25n1a07f1.jpg"></p>      <p align="justify">La composici&oacute;n qu&iacute;mica de la soluci&oacute;n de retenido permaneci&oacute; esencialmente constante durante todo el experimento, siendo: glucosa (1,9g/L), xilosa (22,7g/L), &aacute;cido f&oacute;rmico (0,89g/L), &aacute;cido ac&eacute;tico (2,9g/L), &aacute;cido levul&iacute;nico (0,95g/L), HMF (0,56g/L) y furfural (0,47g/L).    <br> El retenido fue mezclado con un agitador magn&eacute;tico (900rpm) para minimizar los efectos de resistencia a la transferencia de masa y calor sobre la superficie de la membrana. Se tomaron muestras de retenido y permeado en funci&oacute;n del tiempo por periodos de 0,33 a 0,58h. El tiempo de estabilizaci&oacute;n se identific&oacute; cuando las diferencias relativas entre los datos de flujo m&aacute;sico total en funci&oacute;n del tiempo fueron bajas (&lt; 1,3&#37;), esto ocurri&oacute; en general despu&eacute;s de 5 mediciones o periodos.    <br> La masa total (M<sub><i>total</i></sub>) del permeado se determin&oacute; por gravimetr&iacute;a y el flujo m&aacute;sico total a trav&eacute;s de la membrana (kg/m<sup>2</sup>h) se determin&oacute; as&iacute;:</p>      <p align="center"><img src="img/revistas/rion/v25n1/v25n1a07e1.jpg"></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">El flujo m&aacute;sico por componente a trav&eacute;s de la membrana se determina a partir del flujo m&aacute;sico total a trav&eacute;s de la membrana y la composici&oacute;n del permeado. Las composiciones de retenido y permeado se determinaron por cromatograf&iacute;a l&iacute;quida de alta presi&oacute;n (HPLC) con un detector de &iacute;ndice de refracci&oacute;n y una columna ROH-801 (Transgenomic), con una temperatura del horno de 50&deg;C y temperatura del detector de 35&deg;C por  eluci&oacute;n isocr&aacute;tica (flujo de 4.2x10<sup>-2</sup> L/h, fase m&oacute;vil: H<sub>2</sub>SO<sub>4</sub> 0,0025N).</p>      <p align="justify">A continuaci&oacute;n se presentan algunas definiciones que se utilizan en este art&iacute;culo para evaluar el desempe&ntilde;o de las membranas &#91;29&#93;. Las definiciones se aplican para mezclas binarias y se extienden para sistemas multicomponentes cuando el componente j representa el remanente de la mezcla.</p>      <p align="justify">Flujo molar:</p>      <p align="center"><img src="img/revistas/rion/v25n1/v25n1a07e2.jpg"></p>      <p align="justify">Factor de separaci&oacute;n (con frecuencia llamado selectividad por algunos autores):</p>      <p align="center"><img src="img/revistas/rion/v25n1/v25n1a07e3.jpg"></p>      <p align="justify">Permeabilidad &#91;29&#93;:</p>      <p align="center"><a name="e04"></a><img src="img/revistas/rion/v25n1/v25n1a07e4.jpg"></p>      <p align="justify">Permeancia &#91;29&#93;:</p>      <p align="center"><img src="img/revistas/rion/v25n1/v25n1a07e5.jpg"></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Selectividad &#91;29&#93;:</p>      <p align="center"><a name="e06"></a><img src="img/revistas/rion/v25n1/v25n1a07e6.jpg"></p>      <p align="justify">Donde <i>Ci<sup>P</sup></i> y <i>Ci<sup>R</sup></i> son las concentraciones molares del componente <i>i</i> en el permeado y retenido, respectivamente; <i>j<sub>i</sub></i> es el flujo molar; <i>J<sub>i</sub></i> es el flujo m&aacute;sico; <i>M<sub>i</sub></i> es el peso molecular del componente <i>i</i>; <i>y<sub>i</sub></i> y <i>x<sub>i</sub></i> son las composiciones molares del componente <i>i</i> en el permeado y retenido, respectivamente; <i>l</i> es el espesor de la membrana; <i>pi<sup>0</sup></i> es la presi&oacute;n de vapor del componente <i>i</i> puro; <i>pi<sup>R</sup></i> y <i>pi<sup>P</sup></i> son las presiones parciales del componente <i>i</i> en el retenido y permeado, respectivamente; &gamma;<i><sub>i</sub></i> es el coeficiente de actividad (calculado por el m&eacute;todo de UNIFACDortmund) del componente <i>i</i>; <i>P<sub>i</sub></i> es la presi&oacute;n en el permeado y <i>Pj<sup>G</sup></i> est&aacute; definido por la <a href="#e04">Ecuaci&oacute;n 4</a> aplicada al componente de referencia <i>j</i>. En las selectividades y factores de separaci&oacute;n de cada compuesto, reportados en este art&iacute;culo, se toma el agua como componente de referencia.</p>  <font size="3">		     <br>    <p><b><left>Resultados y discusi&oacute;n</left></b></p></font>      <p align="justify">Los resultados de la caracterizaci&oacute;n de los residuos de la ca&ntilde;a panelera en porcentaje en base seca se reportan en la <a href="#t01">Tabla 1</a>. El contenido de holocelulosa fue del 56,9&#37;p para bagazo y 53,6&#37;p para las hojas. Comparando la composici&oacute;n de los carbohidratos del bagazo y las hojas de la ca&ntilde;a panelera de la regi&oacute;n de Caldas con el resultado promedio calculado a partir de informaci&oacute;n reportada en la literatura &#91;30â€“37&#93;, se encontr&oacute; que el contenido fue menor en 6,4&#37;p para celulosa y 6,0&#37;p para hemicelulosa.    <br> En Colombia en el a&ntilde;o 2009 la superficie total sembrada de ca&ntilde;a panelera fue de 19x10<sup>8</sup>m<sup>2</sup>, por lo tanto, a nivel nacional se producen aproximadamente 2,62Mt de bagazo y 0,72Mt de hojas &#91;38&#93;. Asumiendo rendimientos en la sacarificaci&oacute;n y fermentaci&oacute;n del 80&#37;p en xilosa y del 90&#37;p en glucosa y a partir de los resultados de la <a href="#t01">Tabla 1</a> es posible producir 302 y 278L de etanol por tonelada de bagazo y hojas, respectivamente.</p>      <p align="center"><a name="t01"></a><img src="img/revistas/rion/v25n1/v25n1a07t1.jpg"></p>      <p align="justify">Estos resultados implican que los residuos de la ca&ntilde;a panelera en Colombia representan alrededor de 320ML de etanol al a&ntilde;o, si se utiliza la tercera parte de &eacute;stos.    <br> La composici&oacute;n del hidrolizado sint&eacute;tico se escogi&oacute; de acuerdo con los resultados reportados en la literatura de hidrolizados &aacute;cidos a partir de bagazo de ca&ntilde;a (ver <a href="#t02">Tabla 2</a>). La composici&oacute;n de los residuos de la <a href="#t01">Tabla 1</a> se compar&oacute; con aquellos reportados en las referencias presentadas en la <a href="#t02">Tabla 2</a>. La composici&oacute;n de los residuos est&aacute; dentro de los valores de concentraci&oacute;n reportados en la literatura y consecuentemente se esperan los valores de concentraci&oacute;n de los diferentes inhibidores, como se reportan en la <a href="#t02">Tabla 2</a>.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="t02"></a><img src="img/revistas/rion/v25n1/v25n1a07t2.jpg"></p>      <p align="justify">Del hidrolizado sint&eacute;tico sometido a pervaporaci&oacute;n se determin&oacute; que permearon el agua, el &aacute;cido ac&eacute;tico, el &aacute;cido f&oacute;rmico y el furfural. Por el contrario, no permearon los az&uacute;cares (xilosa, glucosa), el &aacute;cido levul&iacute;nico y el hidroximetilfurfural. Las permeancias del &aacute;cido levul&iacute;nico, HMF, glucosa y xilosa posiblemente son cero porque, los dos primeros compuestos tienen una presi&oacute;n de vapor muy baja y en los az&uacute;cares esta presi&oacute;n es b&aacute;sicamente nula.</p>      <p align="justify">Los valores de flujo por componente a trav&eacute;s de la membrana y los factores de separaci&oacute;n obtenidos a partir de los datos experimentales para diferentes temperaturas se muestran en la <a href="#f02">Figura 2</a>. Cuanto mayor es la temperatura mayor es el flujo por componente (<a href="#f02">Figura 2A</a>) y consecuentemente, el flujo total. El factor de separaci&oacute;n se incrementa levemente con la temperatura para el furfural, &aacute;cido ac&eacute;tico y &aacute;cido f&oacute;rmico, sin embargo para el agua disminuye (<a href="#f02">Figura 2B</a>). Se podr&iacute;a inferir que la membrana es &quot;selectiva&quot; retirando agua (&#946;<sub>H2O</sub> &#8805; 5,0) y furfural (&#946;<sub><i>furfural</i></sub> &#8773; 4,0) porque los factores de separaci&oacute;n son mayores a la unidad, mientras que para &aacute;cido ac&eacute;tico y f&oacute;rmico son menores a la unidad. Sin embargo, factores de separaci&oacute;n mayores a la unidad no implican necesariamente membranas selectivas &#91;29&#93;.</p>      <p align="center"><a name="f02"></a><img src="img/revistas/rion/v25n1/v25n1a07f2.jpg"></p>      <p align="justify">La permeancia es el flujo molar a trav&eacute;s de la membrana por componente normalizado respecto de la fuerza impulsora aplicada. En la <a href="#f03">Figura 3A</a> se observa que la permeancia casi no cambia para el agua. Consecuentemente el flujo de agua a trav&eacute;s de la membrana depende por completo de su fuerza impulsora. Se debe notar que cuanto mayor es la temperatura, mayor es la presi&oacute;n de vapor del agua en el retentado (o mayor la fuerza impulsora). En cambio, las permeancias del &aacute;cido f&oacute;rmico y &aacute;cido ac&eacute;tico cambiaron aun cuando se sustrae el efecto de la fuerza gu&iacute;a, <a href="#f03">Figura 3A</a>. A 35&deg;C la permeancia fue de 0,194kgmol x m<sup>-2</sup>h<sup>-1</sup>bar<sup>-1</sup> para &aacute;cido f&oacute;rmico y de 0,175kgmol x m<sup>-2</sup>h<sup>-1</sup>bar<sup>-1</sup> para &aacute;cido ac&eacute;tico, y a 65&deg;C aumentaron hasta 0,406kgmol x m<sup>-2</sup>h<sup>-1</sup>bar<sup>-1</sup> y 0,286kgmol x m<sup>-2</sup>h<sup>-1</sup>bar<sup>-1</sup>, respectivamente.    <br> En la <a href="#f03">Figura 3B</a> se reporta la selectividad de la membrana (<a href="#e06">Ec. 6</a>) y se traza una l&iacute;nea continua que representa una membrana que no contribuye a la separaci&oacute;n (&alpha;<i>i</i> = 1). En esta figura se observa que la membrana es solo selectiva al agua y que la selectividad aparente de la membrana retirando furfural observada en la <a href="#f02">Figura 2B</a> se debe a su volatilidad. Si se compara con la evaporaci&oacute;n, por ejemplo, en la pervaporaci&oacute;n a 35&deg;C la concentraci&oacute;n de furfural en el permeado deber&iacute;a estar alrededor de los 3,0g/L para igualar el desempe&ntilde;o alcanzado en la evaporaci&oacute;n; sin embargo, experimentalmente se encontr&oacute; una concentraci&oacute;n de aproximadamente 2,0g/L. La separaci&oacute;n de furfural por evaporaci&oacute;n es m&aacute;s selectiva que los valores encontrados experimentalmente para la membrana de PDMS por pervaporaci&oacute;n.</p>      <p align="center"><a name="f03"></a><img src="img/revistas/rion/v25n1/v25n1a07f3.jpg"></p>      <p align="justify">Tambi&eacute;n se observa en la <a href="#f03">Figura 3B</a> que la membrana es m&aacute;s eficiente que la evaporaci&oacute;n para retirar agua a temperaturas menores de 50&deg;C (&alpha;<i>i</i> &#8805; 1 ). A temperaturas mayores esta eficiencia disminuye hasta equipararse con el proceso de la evaporaci&oacute;n a 65&deg;C.    <br> La disminuci&oacute;n en la selectividad de la membrana hacia el agua se debe principalmente al aumento de las permeancias de los &aacute;cidos org&aacute;nicos (aumentando la permeancia desde 0,352kgmol x m<sup>-2</sup>h<sup>-1</sup>bar<sup>-1</sup> a 35&deg;C hasta 0,692kgmol x m<sup>-2</sup>h<sup>-1</sup>bar<sup>-1</sup> a 65&deg;C) y en una menor proporci&oacute;n al incremento de la permeancia del furfural (que aument&oacute; desde 0,464kgmol x m<sup>-2</sup>h<sup>-1</sup>bar<sup>-1</sup> a 35&deg;C hasta 0,593kgmol x m<sup>-2</sup>h<sup>-1</sup>bar<sup>-1</sup> a 65&deg;C). La disminuci&oacute;n en la selectividad de remoci&oacute;n del agua no se debe a la disminuci&oacute;n de la permeancia del agua, la cual permaneci&oacute; aproximadamente constante. Generalmente, si la temperatura aumenta tambi&eacute;n lo hace la difusi&oacute;n y explicar&iacute;a el aumento de la movilidad de los &aacute;cidos org&aacute;nicos y el furfural dentro la membrana. Este efecto tambi&eacute;n se aplica al agua, sin embargo la membrana est&aacute; saturada con una composici&oacute;n tan alta de agua que el efecto es relevante para los componentes que se transfieren en menor proporci&oacute;n. Los di&aacute;metros de Stokes del &aacute;cido f&oacute;rmico, &aacute;cido ac&eacute;tico y el furfural son de 0,323&eta;m, 0,412&eta;m y 0,348&eta;m, respectivamente &#91;16&#93; y los incrementos en las permeancias al aumentar la temperatura desde 35&deg;C hasta 65&deg;C del &aacute;cido f&oacute;rmico, &aacute;cido ac&eacute;tico y el furfural fueron del 109, 82 y 28&#37; respectivamente. Entonces, el aumento en la temperatura incrementa la difusi&oacute;n de estos componentes, pero la difusi&oacute;n en si sola no puede explicar un aumento tan significativo en las permeancias.    <br> Por otro lado, la temperatura afecta la viscosidad reduci&eacute;ndola y aumentando el flux, si el mecanismo de transporte se parece a aquel de flujo viscoso en medios porosos &#91;43&#93;. Consecuentemente, los resultados parecen indicar que existe una contribuci&oacute;n de flujo viscoso en poros sobre el transporte de estos inhibidores a trav&eacute;s de la membrana. En este sentido, la permeancia del agua entonces deber&iacute;a aumentar tambi&eacute;n, sin embargo, la membrana sintetizada en este trabajo es organof&iacute;lica (<a href="#f03">Figura 3</a>) y al aumentar el paso de los componentes org&aacute;nicos se afecta negativamente la permeancia del agua justificando su disminuci&oacute;n leve desde 1,323kgmol x m<sup>-2</sup>h<sup>-1</sup>bar<sup>-1</sup> a 35&deg;C hasta 1,270kgmol x m<sup>-2</sup>h<sup>-1</sup>bar<sup>-1</sup> a 65&deg;C. La remoci&oacute;n de furfural se puede comparar con los resultados de Sagehashi <i>et al.</i> &#91;23&#93;, quienes usaron membranas de PDMS. Las membranas utilizadas por Sagehashi <i>et al.</i> son selectivas a la remoci&oacute;n de furfural en todo el intervalo de temperaturas (40 â€“ 120&deg;C) con una selectividad m&aacute;xima alrededor de los 60&deg;C y luego disminuye, a pesar de esto la membrana siempre es m&aacute;s eficiente removiendo furfural que en un proceso de evaporaci&oacute;n convencional. Las permeancias del furfural obtenidas por Sagehashi <i>et al.</i> y esta investigaci&oacute;n, a 60&deg;C, fueron de 0,106kgmol x m<sup>-2</sup>h<sup>-1</sup>bar<sup>-1</sup>  y 0,570kgmol m<sup>-2</sup>h<sup>-1</sup>bar<sup>-1</sup>, respectivamente. Sin embargo, la membrana de Sagehashi <i>et al.</i> es 20 veces m&aacute;s selectiva al furfural que en este estudio. Las altas permeancias obtenidas en este trabajo se deben a la diferencia de espesores de la membrana, Sagehashi <i>et al.</i> con un espesor de 200&#956;m y en este trabajo con un espesor aproximado de 1&#956;m. Con estos espesores de membrana se calcularon las permeabilidades y se encontr&oacute; que la permeabilidad de la membrana del estudio de Sagehashi <i>et al.</i> 2007 es 37 veces menor comparada con la permeabilidad de la membrana de este estudio. Esto implica que las membranas deben ser preparadas con espesores mucho mayores para mejorar la selectividad, reduciendo el flujo a trav&eacute;s de la membrana. Y sugiere que es la difusi&oacute;n a trav&eacute;s de la membrana el mecanismo que controla principalmente la selectividad de la misma y no la solubilidad de los componentes en el pol&iacute;mero.</p>  <font size="3">		     ]]></body>
<body><![CDATA[<br>    <p><b><left>Conclusiones</left></b></p></font>      <p align="justify">Se prepar&oacute; y evalu&oacute; el desempe&ntilde;o de una membrana de PDMS para la remoci&oacute;n de inhibidores presentes frecuentemente en el pretratamiento de material lignocelul&oacute;sico proveniente del bagazo y las hojas de ca&ntilde;a panelera.    <br> La membrana preparada permite la remoci&oacute;n de &aacute;cido ac&eacute;tico, &aacute;cido f&oacute;rmico y furfural mientras no se present&oacute; permeaci&oacute;n alguna del &aacute;cido levul&iacute;nico, xilosa, glucosa y HMF en el intervalo de temperaturas de 35 a 65 &deg;C.    <br> El aumento de la temperatura incrementa las permeancias en el siguiente orden: &aacute;cido f&oacute;rmico &gt; &aacute;cido ac&eacute;tico &gt; furfural.    <br> Los resultados indican que es posible realizar la detoxificaci&oacute;n de hidrolizados mediante pervaporaci&oacute;n y que para mejorar la selectividad del proceso es necesario preparar membranas con mayores espesores y/o mejores propiedades organof&iacute;licas.    <br> Estos resultados permitir&aacute;n explorar nuevas membranas y nuevos procesos h&iacute;bridos de fermentaci&oacute;n en donde se realiza la remoci&oacute;n simult&aacute;nea de productos e inhibidores por pervaporaci&oacute;n.</p>  <font size="3">		     <br>    <p><b><left>Agradecimientos</left></b></p></font>      <p align="justify">Se agradece el soporte financiero de COLCIENCIAS bajo el proyecto 1119-405-20248 y el contrato CT-018-2007.</p>  <font size="3">		     ]]></body>
<body><![CDATA[<br>    <p><b><left>Referencias</left></b></p></font>      <!-- ref --><p align="justify">&#91;1&#93; Londo&ntilde;o LF. Informe anual 2010-2011. Cali, Valle del Cauca, Colombia; 2011.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0120-100X201200010000700001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">&#91;2&#93; Fl&oacute;rez-Mu&ntilde;oz JL. Que Hacemos. Bioenergy Industrial (sitio en Internet). Bioenergy S.A. Disponible en: <a href="http://www.bioenergy.com.co/espanol/Paginas/QueHacemosSAS.aspx" target="_blank">http://www.bioenergy.com.co/espanol/Paginas/QueHacemosSAS.aspx</a>, Consultado el 15 de enero 2011.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0120-100X201200010000700002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">&#91;3&#93; Jeffries TW, Grigoriev IV, Grimwood J, Laplaza JM, Aerts A, Salamov A, <i>et al.</i> Genome sequence of the lignocellulose-bioconverting and xylose-fermenting yeast Pichia stipitis. Nat. Biotechnol. 2007;25(3):319â€“26.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0120-100X201200010000700003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">&#91;4&#93; Agbogbo FK, Coward-Kelly G. Cellulosic ethanol production using the naturally occurring xylose-fermenting yeast, Pichia stipitis. Biotechnol. Lett. 2008;30(9):1515â€“24.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0120-100X201200010000700004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">&#91;5&#93; Delgenes J. Effects of lignocellulose degradation products on ethanol fermentations of glucose and xylose by Saccharomyces cerevisiae, Zymomonas mobilis, Pichia stipitis, and Candida shehatae. Enzyme Microb. Technol. 1996;19(3):220â€“5.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0120-100X201200010000700005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">&#91;6&#93; Tsao GT, Cao N, Gong CS. Hemicellulose conversion. En: Encyclopedia of Bioprocess Technology, Fermentation, Biocatalysis and Bioseparation. Flickinger MC, Drew SW, Editor. United States of America: John Wiley &amp; Sons, Inc. 1999. p. 1391â€“400.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0120-100X201200010000700006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">&#91;7&#93; Mussatto SI, Santos JC, Roberto IC. Effect of pH and activated charcoal adsorption on hemicellulosic hydrolysate detoxification for xylitol production. J. Chem. Technol. Biotechnol. 2004;79(6):590â€“6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0120-100X201200010000700007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">&#91;8&#93; Palmqvist E. Fermentation of lignocellulosic hydrolysates. I: inhibition and detoxification. Bioresour. Technol. 2000;74(1):17â€“24.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0120-100X201200010000700008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">&#91;9&#93; Pienkos PT, Zhang M. Role of pretreatment and conditioning processes on toxicity of lignocellulosic biomass hydrolysates. Cellulose. 2009;16(4):743â€“62.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0120-100X201200010000700009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">&#91;10&#93; J&ouml;nsson LJ, Palmqvist E, Nilvebrant NO, Hahn-H&auml;gerdal B. Detoxification of wood hydrolysates with laccase and peroxidase from the white-rot fungus Trametes versicolor. Appl. Microbiol. Biotechnol. 1998;49(6):691â€“7.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0120-100X201200010000700010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">&#91;11&#93; Larsson S, Reimann A, Nilvebrant NO, J&ouml;nsson LJ. Comparison of Different Methods for the Detoxification of Lignocellulose Hydrolyzates of Spruce. Appl. Biochem. Biotechnol. 1999;77(1-3):91â€“104.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0120-100X201200010000700011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">&#91;12&#93; Carvalheiro F, Duarte LC, Lopes S, Paraj&oacute; JC, Pereira H, G&iacute;rio FM. Evaluation of the detoxification of brewery&#39;s spent grain hydrolysate for xylitol production by Debaryomyces hansenii CCMI 941. Process Biochem. 2005;40(3-4):1215â€“23.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0120-100X201200010000700012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">&#91;13&#93; Murthy GS, Sridhar S, Sunder MS, Shankaraiah B, Ramakrishna M. Concentration of xylose reaction liquor by nanofiltration for the production of xylitol sugar alcohol. Sep. Purif. Technol. 2005;44(3):221â€“8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0120-100X201200010000700013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">&#91;14&#93; Sreenath H, Jeffries TW. Production of ethanol from wood hydrolyzate by yeasts. Bioresour. Technol. 2000;72(3):253â€“60.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0120-100X201200010000700014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">&#91;15&#93; Stoutenburg RM, Perrotta JA, Amidon TE, Nakas JP. Ethanol production from a membrane purified hemicellulosic hydrolysate derived from sugar maple pichia stipitis NRRL Y-7124. BioResources. 2008;3(4):1349â€“58.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0120-100X201200010000700015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">&#91;16&#93; Weng YH, Wei HJ, Tsai TY, Lin TH, Wei TY, Guo GL, <i>et al.</i> Separation of furans and carboxylic acids from sugars in dilute acid rice straw hydrolyzates by nanofiltration. Bioresour. Technol. 2010;101(13):4889â€“94.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0120-100X201200010000700016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">&#91;17&#93; Cruz JM, Dom&iacute;nguez JM, Dom&iacute;nguez H, Paraj&oacute; JC. Solvent extraction of hemicellulosic wood hydrolysates: a procedure useful for obtaining both detoxified fermentation media and polyphenols with antioxidant activity. Food Chem. 1999;67(2):147â€“53.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0120-100X201200010000700017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">&#91;18&#93; Paraj&oacute; JC, Dom&iacute;nguez H, Dom&iacute;nguez JM. Xylitol production from Eucalyptus wood hydrolysates extracted with organic solvents. Process Biochem. 1997;32(7):599â€“604.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0120-100X201200010000700018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">&#91;19&#93; Miyafuji H, Danner H, Neureiter M, Thomasser C, Bvochora J, Szolar O, <i>et al.</i> Detoxification of wood hydrolysates with wood charcoal for increasing the fermentability of hydrolysates. Enzyme Microb. Technol. 2003;32(3-4):396â€“ 400.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0120-100X201200010000700019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">&#91;20&#93; Ranjan R, Thust S, Gounaris CE, Woo M, Floudas CA, Keitz MV, <i>et al.</i> Adsorption of fermentation inhibitors from lignocellulosic biomass hydrolyzates for improved ethanol yield and value-added product recovery. Microporous Mesoporous Mater. 2009;122(1-3):143â€“8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0120-100X201200010000700020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">&#91;21&#93; Persson P, Andersson J, Gorton L, Larsson S, Nilvebrant NO, J&ouml;nsson LJ. Effect of Different Forms of Alkali Treatment on Specific Fermentation Inhibitors and on the Fermentability of Lignocellulose Hydrolysates for Production of Fuel Ethanol. J. Agric. Food Chem. 2002;50(19):5318â€“25.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S0120-100X201200010000700021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">&#91;22&#93; Alriksson B, Sj&ouml;de A, Nilvebrant NO, J&ouml;nsson LJ. Optimal Conditions for Alkaline Detoxification of Dilute-Acid Lignocellulose Hydrolysates. Appl. Biochem. Biotechnol. 2005;130(1-3):599â€“611.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S0120-100X201200010000700022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p align="justify">&#91;23&#93; Sagehashi M, Nomura T, Shishido H, Sakoda A. Separation of phenols and furfural by pervaporation and reverse osmosis membranes from biomass - superheated steam pyrolysis - derived aqueous solution. Bioresour. Technol. 2007;98(10):2018â€“26.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S0120-100X201200010000700023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">&#91;24&#93; Sluiter A, Hames B, Ruiz R, Scarlata C, Sluiter J, Templeton D, <i>et al.</i> Determination of Structural Carbohydrates and Lignin in Biomass Determination of Structural Carbohydrates and Lignin in Biomass (sitio en Internet). Disponible en: <a href="http://www.nrel.gov/biomass/pdfs/42618.pdf" target="_blank">http://www.nrel.gov/biomass/pdfs/42618.pdf</a>. Consultado el 16 de agosto de 2011.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000131&pid=S0120-100X201200010000700024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">&#91;25&#93; Noriega MA. Remoci&oacute;n de etanol en sistemas de fermentaci&oacute;n alcoh&oacute;lica mediante pervaporaci&oacute;n. Manizales, Colombia: Universidad Nacional de Colombia; 2010.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000133&pid=S0120-100X201200010000700025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">&#91;26&#93; Peters TA, Fontalvo J, Vorstman MAG, Benes NE, Van Dam RA, Vroon ZAEP, <i>et al.</i> Hollow fibre microporous silica membranes for gas separation and pervaporation. Synthesis, performance and stability. J. Membr. Sci. 2005;248:73â€“80.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000135&pid=S0120-100X201200010000700026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">&#91;27&#93; Verkerk AW, Male P, Vorstman MAG, Keurentjes JTF. Description of dehydration performance of amorphous silica pervaporation membranes. J. Membr. Sci. 2001;193:227â€“38.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000137&pid=S0120-100X201200010000700027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">&#91;28&#93; Verkerk AW, Male P, Vorstman MAG, Keurentjes JTF. Properties of high flux ceramic pervaporation membranes for dehydration of alcohol/water mixtures. Sep. Purif. Technol. 2001;22-23:689â€“95.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000139&pid=S0120-100X201200010000700028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">&#91;29&#93; Baker RW, Wijmans JG, Huang Y. Permeability, permeance and selectivity: A preferred way of reporting pervaporation performance data. J. Membr. Sci. 2010;248(1-2):346â€“52.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000141&pid=S0120-100X201200010000700029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">&#91;30&#93; Neureiter M, Danner H, Thomasser C, Saidi B, Braun R. Dilute-acid hydrolysis of sugarcane bagasse at varying conditions. Appl. Biochem. Biotechnol. 2002;98-100(1-9):49â€“58.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000143&pid=S0120-100X201200010000700030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">&#91;31&#93; Rabelo SC, Filho RM, Costa AC. A comparison between lime and alkaline hydrogen peroxide pretreatments of sugarcane bagasse for ethanol production. Appl. Biochem. Biotechnol. 2008;144(1):87â€“100.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000145&pid=S0120-100X201200010000700031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">&#91;32&#93; Vargas Betancur GJ, Pereira N. Sugar cane bagasse as feedstock for second generation ethanol production. Part I : Diluted acid pretreatment optimization. Electron. J. Biotechnol. 2010;13(3):1â€“9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000147&pid=S0120-100X201200010000700032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">&#91;33&#93; Lee YJ, Chung CH, Day DF. Sugarcane bagasse oxidation using a combination of hypochlorite and peroxide. Bioresour. Technol. 2009;100(2):935â€“41.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000149&pid=S0120-100X201200010000700033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">&#91;34&#93; Buaban B, Inoue H, Yano S, Tanapongpipat S, Ruanglek V, Champreda V, et al. Bioethanol production from ball milled bagasse using an on-site produced fungal enzyme cocktail and xylose-fermenting Pichia stipitis. J. Biosci. Bioeng. 2010;110(1):18â€“25.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000151&pid=S0120-100X201200010000700034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">&#91;35&#93; Sindhu R, Binod P, Satyanagalakshmi K, Janu KU, Sajna KV, Kurien N, <i>et al.</i> Formic acid as a potential pretreatment agent for the conversion of sugarcane bagasse to bioethanol. Appl. Biochem. Biotechnol. 2010;162(8):2313â€“23.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000153&pid=S0120-100X201200010000700035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">&#91;36&#93; Ferreira-Leit&atilde;o V, Perrone CC, Rodrigues J, Franke APM, Macrelli S, Zacchi G. An approach to the utilization of CO<sub>2</sub> as impregnating agent in steam pretreatment of sugar cane bagasse and leaves for ethanol production. Biotechnol. Biofuels. 2010;3:1â€“8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000155&pid=S0120-100X201200010000700036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">&#91;37&#93; Krishnan C, Sousa LDC, Jin M, Chang L, Dale BE, Balan V. Alkali-based AFEX pretreatment for the conversion of sugarcane bagasse and cane leaf residues to ethanol. Biotechnol. Bioeng. 2010;33(8):1â€“10.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000157&pid=S0120-100X201200010000700037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">&#91;38&#93; Curbelo A, B&aacute;rbara G, Moreda G, Valdes A. Generaci&oacute;n de electricidad a partir de bagazo en Cuba. En: Reuni&oacute;n regional sobre generaci&oacute;n de electricidad a partir de biomasa. Montevideo, Uruguay (sitio en Internet). Oficina regional de la FAO para Am&eacute;rica Latina y el Caribe; 1994. Disponible en: <a href="http://www.fao.org/docrep/T2363s/t2363s0n.htm" target="_blank">http://www.fao.org/docrep/T2363s/t2363s0n.htm</a>. Consultado el 23 de junio de 2011.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000159&pid=S0120-100X201200010000700038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">&#91;39&#93; Aguilar R, Ram&iacute;rez J, Garrote G, V&aacute;zquez M. Kinetic study of the acid hydrolysis of sugar cane bagasse. J. Food Eng. 2002;55(4):309â€“18.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000161&pid=S0120-100X201200010000700039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">&#91;40&#93; Bustos G, Ram&iacute;rez JA, Garrote G, V&aacute;zquez M. Modeling of the hydrolysis of sugar cane bagasse with hydrochloric acid. Appl. Biochem. Biotechnol. 2003;104(1):51â€“68.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000163&pid=S0120-100X201200010000700040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">&#91;41&#93; Rodr&iacute;guez-Chong A. Hydrolysis of sugar cane bagasse using nitric acid: a kinetic assessment. J. Food Eng. 2004;61(2):143â€“52.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000165&pid=S0120-100X201200010000700041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">&#91;42&#93; G&aacute;mez S, Ram&iacute;rez JA, Garrote G, V&aacute;zquez M. Manufacture of fermentable sugar solutions from sugar cane bagasse hydrolyzed with phosphoric acid at atmospheric pressure. J. Agric. Food Chem. 2004;52(13):4172â€“7.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000167&pid=S0120-100X201200010000700042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">&#91;43&#93; Bird RB, Stewart WE, Lightfoot EN. Transport Phenomena. New York: John Wiley &amp; Sons Inc. 2002. p.189-92.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000169&pid=S0120-100X201200010000700043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>  </font>      ]]></body><back>
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