Diferentes vías de lipólisis como posibles opciones terapéuticas de la obesidad

Different routes of lipolysis as possible new therapeutic approaches of obesity

Diana Vargas, Luis Celis, Fernando Lizcano, Bogotá, D.C. (Colombia).

Dres. Diana Vargas y Luis Celis: Centro de investigación biomédica, Universidad de la sabana. Chía (Cundinamarca); Dr. Fernando lizcano: PhD, Centro de investigación biomédica, Universidad de la sabana. Fundación Cardio-infantil iC. bogotá, D.C. (Colombia).

Correspondencia. Dr. Fernando lizcano L. Facultad de Medicina. Universidad de la sabana. Campus Universitario del Puente del Común. Chía. Cundinamarca. Colombia. e-mail: fernando.lizcano@unisabana.edu.co

Recibido: 17/IV/2012 aceptado: 31/VIII/2012

Resumen

Objetivo: la obesidad ha aumentado en todo el mundo, no obstante existen pocas opciones terapéuticas novedosas y la inclinación a actividades cruentas para la terapia de obesidad y diabetes mellitus 2 no dejan de ser un riesgo. Con el fin de valorar el efecto de compuestos sobre la actividad de la célula grasa, estudiamos en forma preclínica la actividad de ácido valproico, tricostatin a (inhibidor de histonas deacetilasas) y EID1 (inhibidor de EP300), el cual reduce la actividad de PPARg en un modelo de células preadipocíticas 3T3-l1.

Métodos: se realizó transfecciones transitorias con lipofectamina a las células 3T3-l1 y 293. las células unipotentes 3T3-L1 fueron sometidas a diferenciación con el coctel específico para diferenciación y se les adicionaron los compuestos a concentraciones fisiológicas para las células. Se valoró la expresión de UCP1 mediante Western blot y los experimentos se realizaron por triplicado.

Conclusiones: EID1 es una proteína que puede ser referente para inducir una célula adiposa calorigénica más activa, reduciendo la acumulación de lípidos en célula grasa. el efecto de ácido valproico y tricostatin a pueden servir de parámetro para la búsqueda de nuevos planes terapéuticos dirigidos a la obesidad. (Acta Med Colomb 2012; 37: 125-130).

Palabras claves: diferenciación adipocito, EID1, tricostatin A, ácido valproico, UCP1.

Abstract

Objective: obesity has increased worldwide, but there are currently few novel therapeutic options and the tendency to invasive procedures for the therapy of obesity and diabetes mellitus 2 are still an important risk. in order to assess the effect of compounds on the fat cell activity, we studied preclinically the activity of valproic acid, tricostatin a (histone deacetylase inhibitor) and EID1 (EP300 inhibitor) which reduces the activity of PPARg, in a model of preadipocyte 3T3-l1 cells.

Methods: transient transfections were performed with lipofectamine in 3T3-l1 and 293 cells. Unipotent 3T3-L1 cells underwent differentiation with the specific cocktail and the compounds were added to cells in physiological concentrations. We assessed the UCP1 expression through western blot, and the experiments were performed in triplicate.

Results: we observed that the effect of tricostatin a was higher than that of the valproic acid in regard to lipolytic activity; however, both compounds exert an additive effect on EID1 activity in adipose cell differentiation. EID1 is able to stimulate the activity of protein UCP1, whose expression is characteristic of brown adipocyte.

Conclusions: EID1 is a reference protein to induce in the adipose cell higher caloric activity, reducing the accumulation of lipids in the adipocyte. The effect of valproic acid and tricostatin a can serve as a parameter for the search of new targeted therapeutic plans for obesity. (Acta Med Colomb2012; 37: 125-130).

Keywords: adipocyte differentiation, EID1, trichostatin A, valproic acid, UCP1.

Introducción

El ácido valproico (VPA) es un fármaco antiepiléptico que impide la aparición de las crisis convulsivas y es un estabilizador del estado de ánimo para el tratamiento del trastorno bipolar y cefaleas crónicas. el VPA presenta efectos secundarios tales como: sedación y cambios en el peso. en estudios in vitro VPA puede reducir el contenido de triglicéridos y modificar la diferenciación del preadipocito (5). aunque algunos pacientes que toman la medicación pueden tender a incrementar de peso, es posible que los mecanismos de acción de este medicamento tengan un espectro amplio que incluya una acción orexígena en el centro del hambre y saciedad en el hipotálamo (6). el tricostatin a (TSA) es un compuesto orgánico que sirve como antibiótico y antifúngico, que inhibe selectivamente la clase i y ii de las histonas de acetilasas (HDAC) (7). el TSA promueve la apoptosis en células cancerosas, retardando la progresión del cáncer y su actividad represora de la transcripción depende del tipo celular (8,9). el papel de la actividad HDAC en la diferenciación del adipocito no está bien definido. Sin embargo, algunos trabajos han estudiado la inhibición en la activación transcripcional de los genes adipogénicos in vitro, incluidas la proteína potenciadora de unión a CCA-AT (C/EBP), el receptor de proliferación del peroxisome (PPARg), y la proteína de unión regulada por elementos esteroides SREBP (10).

En los últimos años hemos trabajado con la proteína EID1 (EP300 inhibitor of differentiation 1) descrito inicialmente como inhibidor de diferenciación muscular (11, 12). no obstante, nuestras observaciones han evidenciado que puede inhibir la célula preadiposa y reducir la cantidad de lípidos acumulados (13). el mecanismo mediante el que puede ejercer esta función no esta absolutamente determinado pero teóricamente puede inhibir la actividad de PPARg y una posible inhibición adicional de la proteína del retinoblastoma (pRb) que posee un papel importante en las fases iniciales de la diferenciación de la célula adiposa (14).

En el presente trabajo valoramos el papel de VPA, TSA y EID1 sobre células preadiposas. nuestras observaciones evidencian que la actividad lipolítica de EID1 es incrementada con la adición de estos dos inhibidores de las histonas acetilasas. es posible que el papel de EID1 sobre la proteína del retinoblastoma quien ejerce su función en relación con la unión con proteínas histonas deacetilasas puede ser el factor clave en la función de EID1. Consideramos que la utilización de compuestos que ejerzan una influencia directa sobre la célula grasa podría ser un determinante importante para terapias contra la obesidad.

Material y métodos

Cultivo celular y diferenciación

Se utilizaron las líneas celulares 3T3-l1 y U2OS provenientes de la colección ATCC (American Tissue Culture Collection). las células fueron mantenidas en medio de Dulbecco´s modificado de Eagle´s (DMEM) con suero fetal bovino inactivado (Fbs) al 10% y penicilina/estreptomicina al 1%, e incubadas a 37ºC y 5% de Co₂.

Para la diferenciación de 3T3-l1, dos días después de que las células alcanzaron una confluencia de 100%, se agregó un coctel para inducir la diferenciación que contenía dexametasona 1μM, metil isobutil xantina 0.5 mM y rosiglitazona a 1 μM. luego de 48 horas se cambió el medio de cultivo y el coctel de diferenciación por solo el medio de cultivo. Posteriormente se cambió el medio DMeM cada dos días. el VPA 1mm, TSA 5nm fueron diluidos en ME2SO <0.1% y adicionados hasta el día ocho de la diferenciación. Finalmente se realizaron observaciones a los 0, 2, 4, 6, días después de la aplicación del coctel de diferenciación. las células son teñidas con rojo aceite y cuantificadas como lo describen Kasturi y joshi (15). se realizó una extracción de lípidos con 5 ml de isopropanol para luego leer la absorbancia del extracto a 510 nm.

Plásmidos

Vectores de expresión que contenían PPARg se hallaban psV. sPorT1 en el sitio Sali. el elemento de respuesta de PPARg se hallaba subclonado en PPre-lUC) PPre derivado del gen aP2 y fueron obtenidos del Dr. bruce spiegelman (Dana Farber Institute) (16). EID1 y el mutante ΔEID1 fueron creados por la subclonación en los sitios de restricción BamHi and Ecori en el plásmido pcDna3-T7 (17); ΔEID1 es un mutante que carece de los residuos 53–63 y 92-115, los que componen el dominio acídico que facilita la interacción con el cofactor p300.

Las células fueron cultivadas en discos de 12 pozos y cuando presentaban una confluencia de 70% fueron transitoriamente transfretadas mediante lipofectamine™ 2000 (invitrogen) con la siguiente concentración de los plásmidos: Plásmido reportero ligado a luciferasa, PPre-luc (0.85 μg/pozo), vector de expresión con PPARg (0.2 μg/pozo) y concentraciones similares para EID1 y ΔEID1. la cantidad total de aDn fue estandarizada para todos los experimentos agregando la cantidad correspondiente de pcDna3.1 en los pozos correspondientes. El control de eficiencia de la transfección fue realizado con el plásmido CMV-bgal a una concentración de 0.5 mg/pozo.

Veinticuatro horas luego de la transfección el medio fue cambiado por DMeM suplementado con 10% de carbón activado y resinas de intercambio iónico. se disolvió 1 μM de rosiglitazona en dimethyl sulfoxide (DMSO) y adicionado a las células. Una concentración de 0.2% de DMSO sólo fue utilizado como control. luego de 24 h, las células fueron obtenidas de los pozos de cultivo mediante el buffer Triton X-100, y se realizó la medición de luciferasa y b-galactosidasa. Para la valoración del efecto de sobre expresión de EID1 en la diferenciación de los adipocitos las células fueron crecidas hasta obtener una confluencia del 90% y transfectada con 1.6 mg de EID1 in 4 ml of lipofectamine™ 2000 (invitrogen). pcDna3.1 fue utilizado como control. 48 h luego de la transfección las células fueron lisadas y se obtuvo las proteínas. Todos los experimentos fueron realizados por triplicados.

Análisis Western Blot

Los cultivos celulares de 3T3-l1 fueron lisados con 100 ml/pozo del buffer riPa (1X Pbs, 1% nonidet P-40, 0.1% sDs and 7 mg/ml de un inhibidor de proteasas, roche). luego de centrifugación, 100 mg del total de proteínas fueron mezcladas con un volumen similar del buffer de las muestras y se las proteínas se desnaturalizaron a 95°C durante 3 min. se realizó una electroforesis en gel de SDS-poliacrilamida al 8% y las muestras fueron trasladas a una membrana de nitrocelulosa. la membrana fue bloqueada con leche al 5% disuelta a en Pbs conteniendo 0.1% (v/v) Tween 20 (Pbs-T) durante 1h temperatura ambiente. la membrana fue incubada con el anticuerpo UCP1 (Rabbit anti-mouse) a una dilución durante la noche 1:1000 (Millipore ab 3036). luego de cuatro lavados con Pbs, la membrana fue incubada durante 1 h con un segundo anticuerpo conjugado con HrP-anti-Rabbit (1:1000). Una solución eCl solución (amersham) fue aplicada a la membrana y las imágenes de las bandas fueron capturadas mediante autorradiografía de acuerdo a las instrucciones del fabricante.

Análisis estadístico

Se realizó la prueba de análisis de varianza (anova) y las diferencias fueron consideradas estadísticamente significativas cuando el valor de la media con error estándar fue de p < 0.05. Dado que en los estudios de transfección se realizó un cotransfección con β-galactosidasa, permite normalizar los datos y evita la dispersión de los resultados. β-galactosidasa cuenta con un promotor diferente al vector con el reportero con lo cual no interfiere con los resultados. Se utilizó el programa statView (versión original), en las cajas de 12 pozos cada pozo contiene ± 5 X 10⁵ células considerando cada célula un sujeto de estudio, se realiza la comparación de tres estudios diferentes realizados por triplicado. se utilizó la t de Student para comparación de dos tratamientos los cuales fueron realizados por triplicado en tres diferentes experimentos.

Resultados

Inicialmente realizamos transfecciones transitorias para valorar la actividad de PPARg en estimular la transcripción y el efecto de la proteína EID1 sobre esta actividad. se observó que PPARg produce un aumento significativo en la transcripción de un gen que presenta elementos de respuestas para PPARg (PPre) en este caso aP2, el cual a su vez es reducido en forma significativa al adicionar EID1. Cuando la transfección se realiza con el mutante de ΔEID1 que reduce la unión con el cofactor p300 el efecto de la proteína EID1 se halla ausente (Figura 1). Dado el papel relevante que tiene PPARg en el proceso de diferenciación de la célula adiposa valoramos el efecto de la proteína EID1 sobre la diferenciación de preadipocitos derivados de rata (3T3-l1), observando una reducción significativa en la capacidad de estas células de acumular triglicéridos en la presencia de EID1 (Figura 2).

Al valorar los hechos previos consideramos evaluar diferentes moléculas que están presente en la célula adiposa y determinar si la adición de EID1 modifica su expresión. Un factor que podría contribuir a especificar esta evaluación, es el hallazgo previo de la unión e inhibición de EID1 sobre la proteína del retinoblastoma (prb). prb además de estar involucrada en la patogénesis de varios tipos de cáncer, media en fases iniciales de la diferenciación de células mesenquimales la decisión de las células progenitoras de continuar el linaje blanco o el de célula adiposa marrón. Por tal motivo entre otras proteínas valoramos UCP1 (proteína desacopladora 1), la cual tiene una papel relevante en el adipocito marrón y no se halla en el adipocito blanco. al realizar la transfección de los preadipocitos con EID1 observamos un aumento significativo de UCP1 (Figura 3).

La actividad de prb en parte cuenta con la ayuda de las histonas acetilasas (HDAC), que reducen la actividad de los genes mediante una modificación de la cromatina. Al utilizar unos compuesto conocidos que tienen efecto inhibidor de HDAC como TSA y VPA observamos una leve reducción en la acumulación de triglicéridos, sin embargo ambos compuestos tiene un efecto aditivo a EID1 sobre la acumulación de triglicéridos en la célula adiposa (Figura 4).

Discusión

En el presente estudio hemos observado que la reducción de acumulación de lípidos ejercido por la proteína EID1 es aumentado por la actividad de VPA y tricostatin a. la reducción de lípidos ejercida por EID1 es concomitante con un aumento de marcadores de actividad calórico, propios de los adipocitos de origen marrón. la proteína desacopladora UCP1, la cual cumple un papel importante en la producción de calor y es expresada especialmente en el tejido adiposo marrón es aumentado por EID1. aunque varios estudios han descrito el papel de EID1 en células musculares su papel en la célula grasa son escasos (11, 12). en consideración a lo observado en la Figura 1, la reducción de la actividad de PPARg puede ser debida a la inhibición del cofactor p300 y como consecuencia responsable en parte de la reducción de la diferenciación del adipocito observado en la Figura 2. (17). no obstante, la actividad de EID1 podría incluir una modulación de la fisiología del adipocito en fases previas, durante el proceso de diferenciación de adipocito blanco o adipocito marrón (18). aunque existe evidencia que el adipocito marrón puede tener un origen adicional desde otras líneas progenitoras, la proteína del retinoblastoma tiene una papel fundamental en este proceso (19). estudios en ratones han demostrado que la deficiencia de pRb previene a la adiposidad y se acompaña de una alta expresión de UCP1 a niveles similares a los observados en las células adiposas marrones (20). en el presente estudio el aumento de la expresión de UCP1 (Figura 3) nos lleva a teorizar que el efecto de EID1 incluye una reducción de la actividad de prb. Parte de la actividad de prb es efectuada a través de la unión con las proteínas deacetilasas de histonas, consideramos que la inhibición efectuada por VPA y TSA sobre estas enzimas puede ser responsable del efecto de reducción de la acumulación de triglicéridos observado en el presente estudio (Figura 4). Hay evidencia clínica de la presencia de adipocito marrón en la persona adulta, incluso las personas que presentan un mayor sobrepeso tienden a presentar menor cantidad de estos adipocitos cuando se realiza el estímulo con frío (21, 22).

Hay una gran cantidad de grupos de investigación básicos y clínicos que están procurando la búsqueda de compuestos biológicos o químicos que puedan estimular la presencia de adipocitos marrones en el adulto. esta podría ser una alternativa terapéutica prometedora para reducir las consecuencias de una pandemia que ha incrementado las enfermedades que inducen riesgo cardiovascular.

Agradecimientos los autores del presente trabajo quieren dar especial agradecimiento a la Dra. elena groot por la colaboración incondicional durante la realización del trabajo. También al Dr. iván Martínez y Carolina romero por la discusión y el aporte intelectual. Este trabajo ha sido financiado mediante el proyecto 123051929210 de Colciencias.

Declaración de fuentes de financiación y conflictos de interés

No hay declaración de conflictos de interés de ninguno de los autores con las empresas productoras de los compuestos que se evaluaron en el presente trabajo.

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