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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[CAPACIDAD ANATIOXIDANTE DURANTE LA MADURACIÓN DE ARAZÁ (Eugenia stipitata Mc Vaugh)]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[In order to know the evolution in some antioxidants from the pulp of araza fruit during its ripening, fruits were harvested in their physiological maturity and stored at 25 °C during 6 days. Fruits showed a climacteric maximum after 2 days of storage; at 6th day their sensorial characteristics were widely deteriorated. Ascorbic acid, free and bound phenolics were depleted during storage. Ascorbic acid, phenolics and antioxidant activity showed that antioxidant contribution of araza pulp to human diet is important.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font size="2" face="verdana">      <p>    <center><font size="4"><b>CAPACIDAD ANATIOXIDANTE DURANTE LA MADURACI&Oacute;N DE ARAZ&Aacute; (<i>Eugenia stipitata Mc Vaugh</i>)</b></font></center></p>      <p>    <center><font size="3"><b>ANTIOXIDANT CAPACITY DURING THE RIPENING OF ARAZA (<i>Eugenia stipitata Mc Vaugh</i>)</b></font></center></p>      <p><b>Adri&aacute;n Mauricio Vargas<sup>1</sup>&aacute;ngela Patricia Rivera Camelo<sup>2</sup>Carlos Eduardo Narv&aacute;ez Cuenca<sup>3</sup></b>    <p>      <p><sup>1</sup>Programa de Ingenier&iacute;a de Alimentos, Universidad de la Amazonia, Florencia-Caquet&aacute;, Colombia.    <br> <sup>2</sup>Facultad de Ciencias, Universidad de la Amazonia, Florencia-Caquet&aacute;, Colombia.    <br> <sup>3</sup>Departamento de Qu&iacute;mica, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional de Colombia, Bogot&aacute;, Colombia.Correo electr&oacute;nico: <a href="mailto:cenarvaezc@unal.edu.co">cenarvaezc@unal.edu.co</a></p>  <hr size="1">      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>RESUMEN</b></p>      <p>Con el prop&oacute;sito de conocer la evoluci&oacute;n de algunos componentes antioxidantes de la pulpa de araz&aacute; durante el almacenamiento de los frutos, &eacute;stos se cosecharon en su madurez fisiol&oacute;gica y se almacenaron durante seis d&iacute;as a 25 &deg;C. Se encontr&oacute; que los frutos presentan su m&aacute;ximo  climat&eacute;rico luego de dos d&iacute;as de almacenamiento y, al llegar al sexto d&iacute;a, sus caracter&iacute;sticas sensoriales est&aacute;n marcadamente deterioradas. Los contenidos de &aacute;cido asc&oacute;rbico y fen&oacute;licos disminuyeron durante el almacenamiento. Los niveles encontrados de &aacute;cido asc&oacute;rbico, compuestos fen&oacute;licos y la actividad anti-oxidante muestran que la contribuci&oacute;n de la pulpa de araz&aacute; al potencial antioxidante, cuando se compara con otros alimentos, en la dieta humana es buena.</p>       <p><b>Palabras clave:</b> araz&aacute;, <i>Eugenia stipitata</i> Mc Vaugh, sistema antioxidante, compuestos fen&oacute;licos, &aacute;cido asc&oacute;rbico.</p>  <hr size="1">      <p><b>ABSTRACT</b></p>      <p>In order to know the evolution in some antioxidants from the pulp of araza fruit during its ripening, fruits were harvested in their physiological maturity and stored at 25 &deg;C during 6 days. Fruits showed a climacteric maximum after 2 days of storage; at 6<sup>th</sup> day their sensorial characteristics were widely deteriorated. Ascorbic acid, free and bound phenolics were depleted during storage. Ascorbic acid, phenolics and antioxidant activity showed that antioxidant contribution of araza pulp to human diet is important.</p>       <p><b>Key words:</b> araza, <i>Eugenia stipitata</i> Mc Vaugh, antioxidant system, phenolics, ascorbic acid.</p>  <hr size="1">      <p><b><font size="3">INTRODUCCI&Oacute;N</font></b></p>      <p>Los compuestos antioxidantes, presentes en forma natural en los alimentos, cada d&iacute;a cobran mayor importancia debido al papel que desempe&ntilde;an en la salud humana, puesto que previenen y eliminan aquellas sustancias potencialmente nocivas y generadoras de des&oacute;rdenes y enfermedades en el ser humano. La protecci&oacute;n que las frutas y los vegetales brindan contra las enfermedades degenerativas como c&aacute;ncer, enfermedades cardiovasculares, cerebrovasculares y sus propiedades antimutag&eacute;nicas y antienvejecimiento ha sido atribuida a su alto contenido de diversos antioxidantes (1-10).</p>       <p>Los procesos degenerativos se han relacionado con la acci&oacute;n de especies reactivas de ox&iacute;geno (EROS) que da&ntilde;an los componentes celulares, y los efectos terap&eacute;uticos sobre estas enfermedades est&aacute;n vinculados con el sistema antioxidante. Las EROS son sustancias inestables tales como radical super&oacute;xido (O2<sup>-.</sup>), ox&iacute;geno singulete (<sup>1</sup>O<sub>2</sub>), per&oacute;xido de hidr&oacute;geno (H<sub>2</sub>O<sub>2</sub>) y radical hidroxilo (<sup>.</sup>OH); estas especies atacan las prote&iacute;nas de los tejidos, los fosfol&iacute;pidos poliinsaturados de las membranas celulares y los &aacute;cidos nucleicos de las c&eacute;lulas. Al actuar, se activan reacciones en cadena que pueden incluso llevar a la muerte de las c&eacute;lulas (7).</p>       <p>Durante el metabolismo celular se producen EROS con un prop&oacute;sito espec&iacute;fico o por accidente qu&iacute;mico. En las c&eacute;lulas vegetales estas especies se generan durante los procesos de maduraci&oacute;n y se incrementan durante la senescencia (11); adem&aacute;s, su producci&oacute;n puede verse anormalmente incrementada frente a diversas condiciones de estr&eacute;s (6). Por su parte, las EROS pueden llegar al organismo humano por ingesti&oacute;n de grasas deterioradas, por acci&oacute;n de los rayos UV, algunas drogas, metales pesados, sustancias org&aacute;nicas y contaminantes atmosf&eacute;ricos (7).</p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Si bien la producci&oacute;n de EROS es un fen&oacute;meno natural, din&aacute;mico y continuo, el da&ntilde;o que estos compuestos pueden provocar depende de un delicado equilibrio con los sistemas antioxidantes que protegen a las c&eacute;lulas de los organismos. Los mecanismos de defensa en tejidos vegetales para mantener unos niveles adecuados de estas especies son m&uacute;ltiples y variados, y pueden dividirse en dos grupos: enzim&aacute;tico, en donde se encuentran la catalasa, super&oacute;xido dismutasa, glutati&oacute;n peroxidasa, glutati&oacute;n reductasa, ascorbato peroxidasa, guaiacol peroxidasa, entre otras, y un segundo grupo, no enzim&aacute;tico, en donde se ubican tocoferoles, carotenoides, &aacute;cido asc&oacute;rbico, glutati&oacute;n, polifenoles, flavonoides, sustancias nitrogenadas y oligoelementos (1-9). As&iacute; como los vegetales poseen un sistema estructurado para el control de EROS, los humanos est&aacute;n provistos tambi&eacute;n de un sistema enzim&aacute;tico similar al vegetal con algunas excepciones (por ejemplo no se encuentra la guaiacol peroxidasa), y de un sistema no enzim&aacute;tico, de      origen end&oacute;geno, como glutati&oacute;n, urato, ubiquinol y prote&iacute;nas plasm&aacute;ticas (7). El papel importante que en este &aacute;mbito juegan las frutas y hortalizas radica en que tras su consumo, el sistema antioxidante humano se ve potenciado puesto que los componentes no enzim&aacute;ticos de los vegetales pueden ser utilizados como tal por las c&eacute;lulas animales.</p>       <p>El fruto de araz&aacute;, de la regi&oacute;n amaz&oacute;nica colombiana, se proyecta d&iacute;a tras d&iacute;a como un elemento productivo tendiente a mejorar el rengl&oacute;n socioecon&oacute;mico de la regi&oacute;n; sus caracter&iacute;sticas organol&eacute;pticas lo hacen apetecible y sus componentes nutricionales prometen un beneficio para la salud de las personas principalmente de esta regi&oacute;n que lo consumen dentro de sudieta regular. La pulpa del fruto se caracteriza por poseer pH (2,0), &deg;Brix (4,0) bajos y unos contenidos en base seca de carbohidratos entre 70 a 80,6%, prote&iacute;na 6,0 a 10,9%, pectina 3,4%, vitamina C0,77 a 7,4%, calcio 0,16 a 0,22%, magnesio de 0,08 a 0,12%, entre otros (12). Este trabajo se plante&oacute; con el objetivo de evaluar la variaci&oacute;n en la concentraci&oacute;n de algunos constituyentes antioxidantes solubles no enzim&aacute;ticos de la pulpa de araz&aacute; durante el almacenamiento de frutos frescos a condiciones de su regi&oacute;n de origen, para de esta manera entrar a analizar el potencial antioxidante que tienen los frutos cuando alcanzan su madurez de consumo.</p>      <p><b><font size="3">MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</font></b></p>      <p><b>Frutos de araz&aacute;.</b> Fueron adquiridos de cultivos aleda&ntilde;os al casco urbano del municipio de Florencia, Caquet&aacute;, en la Amazonia colombiana. Debido a que estos frutos son muy susceptibles a sufrir da&ntilde;o mec&aacute;nico durante su cosecha y transporte, especialmente cuando est&aacute;n maduros, la cosecha se debe realizar cuando el fruto no ha llegado a su madurez organol&eacute;ptica: como criterio de selecci&oacute;n se us&oacute; el color (10% amarillo en corteza). Una vez desinfectados se almacenaron durante 6 d&iacute;as en condiciones ambientales de la ciudad de Florencia (25 &deg;C, H.R. 80%, precipitaci&oacute;n anual de 3600 mm<sup>3</sup>, 400 m.s.n.m). En los frutos enteros se midi&oacute; la intensidad respiratoria cada d&iacute;a y en la pulpa el contenido de &aacute;cido asc&oacute;rbico, fen&oacute;licos libres, enlazados, totales y actividad antioxidante cada dos d&iacute;as. Todos los reactivos empleados fueron grado anal&iacute;tico.</p>       <p><b>Patr&oacute;n respiratorio y evoluci&oacute;n de la maduraci&oacute;n.</b>En los frutos enteros se evalu&oacute; la producci&oacute;n de CO<sub>2</sub> cada d&iacute;a como se describe en un trabajo previo (13). Adem&aacute;s, se recurri&oacute; a la descripci&oacute;n de las caracter&iacute;sticas sensoriales del fruto entero y de la pulpa cada dos d&iacute;as, a trav&eacute;s de un panel entrenado conformado por seis miembros.</p>       <p><b>Cuantificaci&oacute;n de &aacute;cido asc&oacute;rbico.</b> Se efectu&oacute; en la pulpa cada dos d&iacute;as, de acuerdo con el m&eacute;todo de la 2–Nitroanilina, para lo cual se hizo lectura de absorbancia a 540 nm empleando una curva de calibraci&oacute;n con &aacute;cido asc&oacute;rbico (14).</p>       <p><b>Determinaci&oacute;n de fen&oacute;licos libres, enlazados y totales.</b> La t&eacute;cnica se bas&oacute; en la aplicada en un trabajo previo (15). La extracci&oacute;n se efectu&oacute; por macerado y posterior agitaci&oacute;n durante 2 horas de 1 g de pulpa con 2 ml de metanol acuoso al 80% para obtener los compuestos fen&oacute;licos libres, o 2 ml de metanol acidulado (80-19-1, metanol-agua-HCl) para extraer los compuestos fen&oacute;licos totales y posterior centrifugaci&oacute;n. Sobre el p&eacute;let se realiz&oacute; una segunda extracci&oacute;n. La medida de los compuestos fen&oacute;licos en el sobrenadante se hizo usando el reactivo de Folin-Ciocalteu y lectura espectrofotom&eacute;trica a 765 nm. Para evaluar la evoluci&oacute;n de la concentraci&oacute;n de los compuestos fen&oacute;licos los resultados fueron expresados como mg de D(+)catequina/ g pulpa seca, para lo cual se efectu&oacute; una curva de calibraci&oacute;n con D(+)catequina. Adem&aacute;s, en la madurez sensorial de los frutos, para ampliar el espectro de comparaci&oacute;n con otros vegetales, los resultados fueron expresados como mg &aacute;cido g&aacute;lico/g pulpa seca, empleando  una curva de calibraci&oacute;n con patr&oacute;n de &aacute;cido g&aacute;lico. Los compuestos fen&oacute;licos enlazados fueron hallados por diferencia entre los totales y los libres. A trav&eacute;s de una curva de calibraci&oacute;n de &aacute;cido asc&oacute;rbico se corrigi&oacute; la respuesta que este compuesto da en la cuantificaci&oacute;n de fen&oacute;licos.</p>      <p><b>Cuantificaci&oacute;n de la capacidad antioxidante.</b> Se midi&oacute; de acuerdo con el m&eacute;todo de la decoloraci&oacute;n del  &beta;-caroteno (1). Se adicionaron 500 L de soluci&oacute;n clorof&oacute;rmica de &beta;-caroteno 0,4 mg/mL en un recipiente de vidrio de 100 mL, y se evapor&oacute; al vac&iacute;o a temperatura ambiente. Se incorporaron 20 &micro;L de &aacute;cido linol&eacute;ico, 200 &micro;L de Tween 20 y 200 &micro;L del extracto metan&oacute;lico acidulado. Posteriormente se adicionaron 50 mL de agua destilada oxigenada a 50 &deg;C y se agit&oacute; fuertemente. La mezcla se incub&oacute; a 50 &deg;C durante 2 h. Se ley&oacute; la absorbancia a 470 nm a intervalos de 10 min durante 2 h. Se corri&oacute; un testigo adicionando la soluci&oacute;n acuosa de metanol acidulado, en lugar del extracto de la pulpa. Para calcular la actividad antioxidante se evalu&oacute; la pendiente al graficar la absorbancia de la suspensi&oacute;n en funci&oacute;n del tiempo de reacci&oacute;n y se expres&oacute; como:</p>       <p>AA/g pulpa seca = (Pendiente muestra–Pendiente testigo)*100/Pendiente testigo*g pulpa seca</p>      <p><b>Humedad.</b> Para expresar los resultados del contenido de &aacute;cido asc&oacute;rbico, fen&oacute;licos y actividad antioxidante con base en la materia seca, se determin&oacute; la humedad de la pulpa por secado en estufa a 65 &deg;C hasta peso constante.</p>        ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>An&aacute;lisis de datos.</b> El almacenamiento de los frutos se realiz&oacute; por triplicado en un dise&ntilde;o completamente al azar, y sobre cada fruto se efectuaron las determinaciones antes mencionadas. Sobre las variables de respuesta se efectuaron los ANOVA, se calcularon los valores promedio y las desviaciones est&aacute;ndar, y se compar&oacute; la diferencia entre los promedios por la prueba de Tukey.</p>        <p><b><font size="3">RESULTADOS Y AN&Aacute;LISIS</font></b></p>      <p><b>Patr&oacute;n respiratorio y evoluci&oacute;n de la maduraci&oacute;n.</b> Los frutos de araz&aacute; presentaron el patr&oacute;n t&iacute;pico de un fruto climat&eacute;rico, con un m&aacute;ximo en su respiraci&oacute;n luego de dos d&iacute;as de la recolecci&oacute;n (<a href="#fig1">Figura 1</a>); este climaterio est&aacute; en relaci&oacute;n con una serie de eventos bioqu&iacute;micos que llevan a que los frutos desarrollen sus caracter&iacute;sticas sensoriales para alcanzar su madurez de consumo. El m&aacute;ximo respiratorio obtenido aqu&iacute; es menor al reportado cuando estos frutos son almacenados a 20 &deg;C momento en que aparece el m&aacute;ximo en la intensidad respiratoria luego de 6 d&iacute;as de almacenamiento (16). La r&aacute;pida p&eacute;rdida de peso (<a href="#fig1">Figura 1</a>) de los frutos muestra un factor importante para manejar durante su comercializaci&oacute;n.</p>       <p>    <center><a name="fig1"></a><img src="img/revistas/rcq/v34n1/v34n1a05fig1.gif"></center></p>      <p>En los frutos cosechados en su madurez fisiol&oacute;gica (D&iacute;a 0) el color de la corteza fue verde y ocupaba aproximadamente un 90% del fruto, el restante era amarillo claro; el olor era caracter&iacute;stico de frutos verdes y la textura firme al tacto. La pulpa era blanca con matices verdes y firme al tacto, su aroma era t&iacute;pico de frutos verdes, su sabor caracter&iacute;stico no estaba presente y se resaltaba el astringente.</p>       <p>Luego de dos d&iacute;as de almacenamiento el color de los frutos cambi&oacute; notablemente y el color amarillo brillante predomin&oacute;; el aroma del fruto entero y de la pulpa fue caracter&iacute;stico frutal, &aacute;cido, maduro; el fruto se abland&oacute; de acuerdo con un estado de madurez sensorial. El sabor frutal y poco astringente, y el color amarillo caracter&iacute;stico, se desarrollaron.</p>       <p>A partir del cuarto d&iacute;a algunas caracter&iacute;sticas sensoriales decayeron. Los frutos exhibieron un color amarillo oscuro con manchas difusas de color caf&eacute; que ocuparon alrededor de un 20% de la superficie; el aroma sigui&oacute; siendo caracter&iacute;stico; los frutos fueron m&aacute;s blandos de lo normal. El color amarillo de la pulpa se acentu&oacute;, pero perdi&oacute; su sabor caracter&iacute;stico y se not&oacute; blanda y disgregada.</p>       <p>Al sexto d&iacute;a de almacenamiento hubo un deterioro avanzado en las caracter&iacute;sticas sensoriales. Aparecieron manchas entre marr&oacute;n y negro que ocuparon entre un 40 y un 60% de la superficie de los frutos; el aroma t&iacute;pico desapareci&oacute;; hubo ablandamiento excesivo. La pulpa perdi&oacute; su sabor caracter&iacute;stico y cobr&oacute; importancia el sabor avinagrado; su color fue amarillo- naranja, con algunas manchas de color caf&eacute; y mayor grado de disgregaci&oacute;n.</p>       <p>De acuerdo con la evoluci&oacute;n de las caracter&iacute;sticas sensoriales y el patr&oacute;n respiratorio es de sugerir que el climaterio de los frutos de araz&aacute; se da dos d&iacute;as luego de cosechado y almacenado a 25 &deg;C. La r&aacute;pida maduraci&oacute;n, en relaci&oacute;n con un alto metabolismo oxidativo, puede conducir a una alta producci&oacute;n de EROS (11), por lo que ser&iacute;a de esperar un consumo intenso de sus antioxidantes; esto se muestra a continuaci&oacute;n.</p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Cuantificaci&oacute;n de &aacute;cido asc&oacute;rbico.</b> Tras la evaluaci&oacute;n del contenido de &aacute;cido asc&oacute;rbico (<a href="#fig2">Figura 2</a>A) se encontr&oacute; que &eacute;ste disminuye de manera significativa durante el almacenamiento. En un trabajo previo se reporta una tendencia similar cuando los frutos de araz&aacute; fueron almacenados entre 7 a 20 &deg;C (16). En su madurez sensorial el contenido de &aacute;cido asc&oacute;rbico de la pulpa de araz&aacute; (1,92 mg/g pulpa seca &oacute; 0,30 mg/g pulpa h&uacute;meda) se ubica en el extremo inferior de los niveles de este componente en la parte comestible de frutos clasificados como ricos en vitamina C, dentro de los cuales se ubican la guayaba (<i>Psidium guajava</i> L.) (14,3 mg/g pulpa seca) en el l&iacute;mite superior, y el an&oacute;n (<i>Annona squamosa</i> L.) (1,32 mg/g pulpa seca) en el l&iacute;mite inferior (17). Teniendo en cuenta que se precisa un consumo de 60 mg de &aacute;cido asc&oacute;rbico/ d&iacute;a (18), se requerir&iacute;a de 200 g de pulpa de araz&aacute; (B.H.) para satisfacer la necesidad m&iacute;nima de este componente, por lo que esta fruta puede    entrar a complementar la dosis requerida en conjunto con otras fuentes de esta vitamina.</p>       <p>    <center><a name="fig2"></a><img src="img/revistas/rcq/v34n1/v34n1a05fig2.gif"></center></p>      <p>La disminuci&oacute;n observada en los niveles de &aacute;cido asc&oacute;rbico durante la maduraci&oacute;n, muy marcada durante los 2 primeros d&iacute;as de almacenamiento, puede estar asociada a su alta tasa respiratoria (<a href="#fig1">Figura 1</a>), en la que se generan EROS. En este panorama, enzimas como ascorbato peroxidasa y ascorbato reductasa, encargadas de detoxificar las c&eacute;lulas, pueden jugar un papel importante al usar el &aacute;cido asc&oacute;rbico como sustrato. Por otro lado, el &aacute;cido asc&oacute;rbico como tal puede actuar como antioxidante interactuando directamente con este tipo de especies, con la consecuente disminuci&oacute;n de sus niveles (7, 19).</p>      <p><b>Determinaci&oacute;n de fen&oacute;licos libres y totales.</b> Despu&eacute;s de la evaluaci&oacute;n del contenido de los compuestos fen&oacute;licos se observ&oacute; una disminuci&oacute;n durante la maduraci&oacute;n (<a href="#fig2">Figura 2</a>B). En otros trabajos se reporta una disminuci&oacute;n en el contenido de fen&oacute;licos totales durante la maduraci&oacute;n de fresa; por el contrario, en frambuesa, este mismo tipo de compuestos aumenta durante la maduraci&oacute;n (5). Sumado a lo anterior, durante la maduraci&oacute;n de diversos cultivos de pimentones el contenido de fen&oacute;licos totales se incrementa en unas variedades y disminuye en otras (4).</p>       <p>En su madurez de consumo el contenido de fen&oacute;licos totales en mg de catequina/ g pulpa en araz&aacute; (7,8 B.S. &oacute; 1,2 B.H.) se encuentra en el intervalo de contenido en mg de catequina/g de materia seca de diferentes frutas, hortalizas y tub&eacute;rculos estudiadas, con &lsquo;&lsquo;cranberry&rsquo;&rsquo; (<i>Vaccinium oxycoccus</i>) en el l&iacute;mite superior (46 mg catequina/g materia seca) y papa (<i>Solanum tuberosum</i>) en el l&iacute;mite superior (1,7 mg catequina/g materia seca) (2,3). De otro lado, al efectuar la comparaci&oacute;n expresando el contenido de fen&oacute;licos como mg &aacute;cido g&aacute;lico/g pulpa en la madurez sensorial del araz&aacute; (4,1 B.S. &oacute; 0,64 B.H.), contra los contenidos en diversos vegetales se encuentra que el contenido en el araz&aacute; se ubica en el intervalo, con &lsquo;&lsquo;crowberry&rsquo;&rsquo; (<i>Empetrum nigrum</i>) (50,8 mg &aacute;cido g&aacute;lico/g materia seca) en el l&iacute;mite superior, y arveja (<i>Pisum sativum</i>) (0,4 mg &aacute;cido g&aacute;lico/g materia seca) en el l&iacute;mite inferior (9). Las anteriores comparaciones indican que  la contribuci&oacute;n que hace el araz&aacute; en compuestos de car&aacute;cter fen&oacute;lico es buena, si bien el valor absoluto debe ser visto en complemento con la identidad qu&iacute;mica, no evaluada en este trabajo, puesto que es conocido que la capacidad antioxidante es dependiente del tipo de fenol en estudio (8, 10).</p>       <p>Los compuestos fen&oacute;licos enlazados disminuyeron de manera importante (<a href="#fig2">Figura 2</a>B) durante los dos primeros d&iacute;as de almacenamiento y permanecieron constantes durante los d&iacute;as cuatro y seis; el descenso significativo durante los d&iacute;as dos y cuatro respecto al d&iacute;a de la cosecha debe estar asociado a una alta actividad glucosidasa. Esta actividad glucosidasa genera los carbohidratos y las respectivas agliconas, por lo que el contenido de fen&oacute;licos libres deber&iacute;a verse incrementado. A pesar de esto, se observa que los compuestos fen&oacute;licos libres en la pulpa de araz&aacute; tambi&eacute;n disminuyeron de manera significativa durante los d&iacute;as dos y cuatro respecto al momento de la cosecha.</p>       <p>Es conocido que los compuestos fen&oacute;licos libres pueden ser atacados a una mayor velocidad que los enlazados por enzimas como polifenoloxidasa y peroxidasa. Estas enzimas pueden actuar sobre este tipo de sustratos bajando los niveles de EROS con la consecuente generaci&oacute;n de colores pardos como resultado de la polimerizaci&oacute;n de las quinonas (generadas durante la acci&oacute;n de estas enzimas) a melaninas (20, 21), disminuyendo por lo tanto sus niveles. Adem&aacute;s, en general los fen&oacute;licos libres –en mayor medida que los enlazados– pueden contribuir a la disminuci&oacute;n de EROS por formaci&oacute;n de especies m&aacute;s estables reduci&eacute;ndose as&iacute; los niveles de los compuestos de car&aacute;cter fen&oacute;lico (8, 10); como resultado final se obtiene la disminuci&oacute;n de los  compuestos fen&oacute;licos durante el almacenamiento del araz&aacute;.</p>         <p>La mayor velocidad de degradaci&oacute;n de &aacute;cido asc&oacute;rbico y de compuestos fen&oacute;licos se present&oacute; durante los dos primeros d&iacute;as, lo que coincide con el pico climat&eacute;rico. Este fen&oacute;meno se relaciona con la mayor producci&oacute;n de EROS que se espera se presente durante el alto metabolismo oxidativo vinculado al climaterio.</p>      <p><b>Evaluaci&oacute;n de la actividad antioxidante.</b> La actividad antioxidante, expresada en base seca (<a href="#fig3">Figura 3</a>), fue m&aacute;xima en los frutos sensorialmente maduros. Teniendo en cuenta que el contenido de &aacute;cido asc&oacute;rbico y fen&oacute;licos disminuy&oacute; durante la maduraci&oacute;n, es de suponer que hay otros antioxidantes m&aacute;s efectivos que hacen que la evoluci&oacute;n de la actividad antioxidante medida por el m&eacute;todo del -caroteno muestre el comportamiento aqu&iacute; observado. En los frutos maduros el valor de actividad antioxidante (AA/g materia seca) es superior al reportado en productos como papa morada (<i>Solanum tuberosum </i>L.) (7600) y germen de trigo (8112), e inferior al de cebolla cabezona (<i>Allium cepa</i> L.) (11275), mora (<i>Vaccinium corymbosum</i> L.) (11512) y cereza (<i>Prunus avium</i> L.) (10312) (1). Si bien estos valores ponen al araz&aacute; como una buena fuente de actividad antioxidante es necesario complementar este tipo de estudio <i>in vitro</i> con estudios <i>in vivo</i> en donde se eval&uacute;e el efecto ben&eacute;fico que se puede lograr en la salud humana tras el consumo de este fruto.</p>        ]]></body>
<body><![CDATA[<p>    <center><a name="fig3"></a><img src="img/revistas/rcq/v34n1/v34n1a05fig3.gif"></center></p>      <p>Aunque durante la maduraci&oacute;n del araz&aacute; el &aacute;cido asc&oacute;rbico y los compuestos fen&oacute;licos disminuyeron, la actividad antioxidante tendi&oacute; a aumentar; esto significa que durante la maduraci&oacute;n podr&iacute;an generarse productos de condensaci&oacute;n o incremento en algunos compuestos fen&oacute;licos que aporten a una mayor actividad antioxidante, o que hay otro tipo de compuestos que contribuyen de manera significativa con el potencial antioxidante, no estudiados aqu&iacute;. Por otro lado, este estudio muestra que el araz&aacute; es una fuente de vitamina C, de compuestos fen&oacute;licos y de actividad antioxidante, proyect&aacute;ndose como un fruto ben&eacute;fico con un excelente potencial antioxidante.</p>       <p><b><font size="3">BIBLIOGRAF&Iacute;A</font></b></p>      <!-- ref --><p>1. Velioglu, Y. 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Comparative studies of H2O2 detoxifying enzymes in green and greening barley seedling under cadmium stress. <i>Plant Sci</i>. <b>160</b>, 1085-1093.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000062&pid=S0120-2804200500010000500006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7. Hansberg, T. W. Biolog&iacute;a de las especies de ox&iacute;geno reactivas (2002). <i>Mensaje bioqu&iacute;mico</i> <b>26</b>, 19-54.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000063&pid=S0120-2804200500010000500007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8. Heim, K. E.; Tagliaferro, A. R.; Bobilya, D. J. (2002). Flavonoid antioxidant: chemistry and structure- activity relationships. <i>J. Nutricional Biochem</i>. <b>13</b>, 572-584.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000064&pid=S0120-2804200500010000500008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9. Kähkönen, M. P.; Hopia, A. I.; Vuorela, H. J.; Rauha, J-P.; Pihlakja, K.; Kujala, T. S.; Heinonen, M. (1999). Antioxidant activity of plant extracts conteing phenolic compounds. <i>J Agric. Food Chem</i>. <b>47</b>, 3954-3962.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S0120-2804200500010000500009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10. Sakihama, Y.; Cohen, M. F.; Grace, S. C.; Yamasaki, H. (2002). Plant phenolic antioxidant and prooxidant activities: phenolics-induced oxidative damage mediated by metals in plants. <i>Toxicology</i> <b>177</b>, 67-80.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000066&pid=S0120-2804200500010000500010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11. Jim&eacute;nez, A.; G&oacute;mez, J. M.; Navarro, E.; Sevilla, F. (2002). Changes in the antioxidative system in mitochondria during ripening of pepper fruits. <i>Plant Physiol. Biochem</i>. <b>40</b>, 515-520.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0120-2804200500010000500011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12. Ariza, C. A. (2001). Especies promisorias de la Amazonia: conservaci&oacute;n, manejo y utilizaci&oacute;n del germoplasma. Bogot&aacute;. Salvador Rojas Gonz&aacute;lez Ed.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0120-2804200500010000500012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13. Narv&aacute;ez, C. C. E.; Restrepo, P. (2002). Efecto del almacenamiento de la uva caimarona (<i>Pourouma cecropiifolia</i>) a diferentes temperaturas sobre la actividad de polifenoloxidasa y peroxidasa. <i>Rev. Col. Quim</i>. <b>31</b>, 131-44.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0120-2804200500010000500013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14. Bernal, I. (1998). An&aacute;lisis de alimentos. Guadalupe. Bogot&aacute;. pp. 114-116.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0120-2804200500010000500014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15. Narv&aacute;ez, C. C. E. (2004). Efecto del choque t&eacute;rmico de araz&aacute; (<i>Eugenia stipitata Mc Vaugh</i>) sobre la tolerancia al fr&iacute;o. <i>Rev. Col. Quim</i>. <b>32</b>, 93-102.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0120-2804200500010000500015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>16. Hern&aacute;ndez, G. M. S. (2001). Conservaci&oacute;n del fruto de araz&aacute; (<i>Eugeniastipitata</i> Mc Vaugh) durante la poscosecha mediante la aplicaci&oacute;n de diferentes t&eacute;cnicas. Tesis Ph. D. en Ciencias Agrarias. Facultad de Agronom&iacute;a. Universidad Nacional de Colombia. Bogot&aacute;. pp. 71-102.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0120-2804200500010000500016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17. Instituto Colombiano de Bienestar Familiar, ICBF (1978). Tabla de composici&oacute;n de alimentos colombiano. Colombia. pp. 52-53.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0120-2804200500010000500017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18. Badui, D. S. (1999). Qu&iacute;mica de los alimentos, Longman de M&eacute;xico Editores, S. A. M&eacute;xico. p. 357.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0120-2804200500010000500018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19. Horemans, N.; Foyer, C. H.; Potters, G.; Asard, H. (2000). Ascorbate funtion and associated transport system in plants. <i>Plant Physiol. Biochem</i>. 38, 531-540.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0120-2804200500010000500019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>20. Hirota, S.; Shimoda, T.; Takahama, U. (1998). Tissue and spatial distribution of flavonol and peroxidase in onion bulbs and stability of flavonol glucosides during boiling of the scales. <i>J. Agric. Food Chem</i>. <b>46</b>, 3497-3502.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0120-2804200500010000500020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>21. Richard-Forget, F. C.; Gauillard, F. A. (1997). Oxidation of chlorogenic acid, catechins, and 4-methylca-techol in model solutions by combinations of pear (Pyrus communis Cv. Williams) polyphenol oxidase and peroxidase: A possible involvement of peroxidase in enzymatic browning. <i>J. Agric. 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