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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[EVALUACIÓN DE LA RETROGRADACIÓN DEL ALMIDÓN EN HARINA DE YUCA PRECOCIDA]]></article-title>
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<article-title xml:lang="pt"><![CDATA[AVALIAÇÃO DA RETROGRADAÇÃO DO AMIDO EM FARINHA DE MANDIOCA PRECOZIDA]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Universidad del Valle Facultad de Ingeniería Departamento de Ingeniería de Alimentos]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Starch modifications during the processing of precooked cassava flour was monitored using techniques as differential scanning calorimetry (DSC), pasting behaviour, wide angle X-ray diffraction and iodine binding capacity. Cassava flour was obtained from parenchyma pieces cooked either in steam or in boiling water and then stored either at 5 ºC or at -20 ºC for 24 h. The temperature during the rest period of the cooked parenchyma was not a significant factor in the starch retrogradation results. For a rest period at 5 ºC, flour from parenchyma cooked in steam presented a slightly higher melting enthalpy of retrograded starch and crystallinity as compared to that from parenchyma cooked in boiling water. Whereas for conditioning period at -20 ºC, the cooking method had no significant effect on the enthalpy of retrogradation, crystallinity and blue value index.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="pt"><p><![CDATA[As modificações do amido durante o processo de elaboração de farinha de mandioca precozida, foram avaliadas utilizando as técnicas de calorimetria diferencial de varredura (CDV), difração de raios X, comportamento no empastamento e capacidade de formação de complexo de iodo. A farinha precozida obteve-se de troços do parênquima da mandioca cozidos com vapor o em água em ebulição, os quais foram armazenados depois a 5 ºC ou -20 ºC por 24 h . A temperatura do armazenamento do parênquima cozido no foi um factor significativo nos resulta dos de retrogradação do amido. A entalpia de fusão e cristalinidade do amido retrogradado da farinha proveniente do parênquima cozido no vapor foi levemente maior, do que aquela elaborada do parênquima cozido em água em ebulição e armazenada a 5 ºC. Além disso, o método de cozimento não teve efeito significativo na entalpia de fusão do amido retrogradado, na cristalinidade o no índice de valor azul (IVA).]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[harina de yuca]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[  <font size="2" face="verdana">     <p><b>    <center><font size="4">EVALUACI&Oacute;N DE LA RETROGRADACI&Oacute;N DEL ALMID&Oacute;N   EN HARINA DE YUCA PRECOCIDA</font></center></b></p>     <p><b>    <center><font size="4">EVALUATION OF STARCH RETROGRADATION IN CASSAVA FLOUR FROM PRECOOKED PARENCHYMA</font></center></b></p>     <p><b>    <center><font size="4">AVALIA&Ccedil;&Atilde;O DA RETROGRADA&Ccedil;&Atilde;O DO AMIDO EM FARINHA DE MANDIOCA PRECOZIDA</font></center></b></p>     <p align="center"><i>Eduardo Rodr&iacute;guez-Sandoval<sup>1</sup>, Ang&eacute;lica Sandoval-Aldana, Alejandro Fern&aacute;ndez-Quintero</i></p>     <p><sup>1</sup> Departamento de Ingenier&iacute;a de Alimentos, Facultad de Ingenier&iacute;a, Universidad del Valle, Ciudad Universitaria Mel&eacute;ndez, Cali, Valle, Colombia. <a href="mailto:edurosa@univalle.edu.co">edurosa@univalle.edu.co</a>.</p>     <p align="center">Recibido: 09/05/06 &ndash; Aceptado: 14/12/06</p> <hr size="1">     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>RESUMEN</b></p>     <p>  Las modificaciones del almid&oacute;n, que ocurren durante el proceso de elaboraci&oacute;n de   harina de yuca precocida, se evaluaron    utilizando t&eacute;cnicas como calorimetr&iacute;a diferencial de barrido (CDB), difracci&oacute;n de   rayos X, comportamiento al empastamiento y capacidad de formaci&oacute;n de complejo con yodo. La harina precocida se   obtuvo a partir de trozos de par&eacute;nquima   de yuca cocinados en vapor o en agua a   ebullici&oacute;n, los cuales fueron posteriormente almacenados a 5 &ordm;C o a -20 &ordm;C por   24 h. La temperatura utilizada durante el   periodo de almacenamiento del par&eacute;nquima cocinado no es un factor significativo   en los resulta dos de retrogradaci&oacute;n del almid&oacute;n. La entalp&iacute;a de fusi&oacute;n y cristalinidad del almid&oacute;n retrogradado de la harina   proveniente del par&eacute;nquima cocinado en   vapor fue ligeramente mayor, comparado   con la elaborada a partir de par&eacute;nquima   cocinado en agua a ebullici&oacute;n para el periodo de almacenamiento a 5 &ordm;C. Por otra   parte, en el periodo de almacenamiento a   -20&ordm;C, el m&eacute;todo de cocci&oacute;n no tuvo   efecto significativo sobre la entalp&iacute;a de   fusi&oacute;n del almid&oacute;n retrogradado, la cristalinidad y el &iacute;ndice del valor azul.</p>     <p><b>Palabras clave:</b> harina de yuca, CDB, difracci&oacute;n de rayos X, retrogradaci&oacute;n.</p> <hr size="1">     <p><b>ABSTRACT</b></p>     <p>  Starch modifications during the processing of precooked cassava flour was monitored using techniques as differential   scanning calorimetry (DSC), pasting   behaviour, wide angle X-ray diffraction   and iodine binding capacity. Cassava   flour was obtained from parenchyma pieces cooked either in steam or in boiling   water and then stored either at 5 &ordm;C or at   -20 &ordm;C for 24 h. The temperature during the rest period of the cooked parenchyma   was not a significant factor in the starch   retrogradation results. For a rest period at   5 &ordm;C, flour from parenchyma cooked in   steam presented a slightly higher melting   enthalpy of retrograded starch and crystallinity as compared to that from parenchyma cooked in boiling water. Whereas for conditioning period at -20 &ordm;C,   the cooking method had no significant   effect on the enthalpy of retrogradation,   crystallinity and blue value index.</p>     <p><b> Key words:</b> cassava flour, DSC,   X-ray diffraction, retrogradation.</p>   <hr size="1">       <p><b>RESUMO</b></p>       <p>As modifica&ccedil;&otilde;es do amido durante o processo de elabora&ccedil;&atilde;o de farinha de mandioca precozida, foram avaliadas utilizando as t&eacute;cnicas de calorimetria     diferencial de varredura (CDV), difra&ccedil;&atilde;o     de raios X, comportamento no empastamento e capacidade de forma&ccedil;&atilde;o de complexo de iodo. A farinha precozida obteve-se de tro&ccedil;os do par&ecirc;nquima da     mandioca cozidos com vapor o em &aacute;gua     em ebuli&ccedil;&atilde;o, os quais foram armazenados     depois a 5 &ordm;C ou -20 &ordm;C por 24 h . A temperatura do armazenamento do par&ecirc;nquima cozido no foi um factor significativo     nos resulta dos de retrograda&ccedil;&atilde;o do amido. A entalpia de fus&atilde;o e cristalinidade do     amido retrogradado da farinha proveniente do par&ecirc;nquima cozido no vapor foi     levemente maior, do que aquela elaborada do par&ecirc;nquima cozido em &aacute;gua em     ebuli&ccedil;&atilde;o e armazenada a 5 &ordm;C. Al&eacute;m disso, o m&eacute;todo de cozimento n&atilde;o teve efeito     significativo na entalpia de fus&atilde;o do amido retrogradado, na cristalinidade o no   &iacute;ndice de valor azul (IVA).</p>       <p><b>Palavras chave:</b> farinha de mandioca,   CDV, difra&ccedil;&atilde;o de raios X, retrograda&ccedil;&atilde;o.</p>   <hr size="1">       <p><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La yuca (<i>Manihot esculenta Crantz</i>) es un     alimento econ&oacute;micamente importante en     las regiones tropicales debido a que es     una fuente de almid&oacute;n. Las ra&iacute;ces de yuca     sufren un r&aacute;pido deterioro despu&eacute;s de ser     cosechadas, lo cual genera una restricci&oacute;n considerable en su utilizaci&oacute;n     agroindustrial. S&iacute;ntomas visibles del deterioro fisiol&oacute;gico poscosecha de las ra&iacute;ces se presentan despu&eacute;s de 24 horas, a no     ser que sean mantenidas en condiciones     especiales de almacenamiento (1). Hasta     el momento no existe una t&eacute;cnica econ&oacute;micamente factible de almacenamiento de     ra&iacute;ces de yuca cosechadas a gran escala     por largos periodos, excepto en forma de   &ldquo;chips&rdquo; secos o harina (2).</p>       <p>En la Universidad del Valle se est&aacute;n     realizando investigaciones sobre masas     de yuca elaboradas con harina de yuca     precocida. Esta harina se ha obtenido a     partir de par&eacute;nquima precocido y almacenado a baja temperatura durante 24 h, el     cual posteriormente se seca y se muele.     El almid&oacute;n gelatinizado en las ra&iacute;ces precocidas probablemente puede presentar     el fen&oacute;meno de la retrogradaci&oacute;n durante     el periodo de al macenamiento a baja temperatura. Algunos trabajos de investigaci&oacute;n sobre procesamiento de papa para la     elaboraci&oacute;n de hojuelas secas precocidas     han demostrado los efectos ben&eacute;ficos de     incluir un per&iacute;odo de reposo a baja temperatura inmediatamente despu&eacute;s de una     etapa de calentamiento o precocci&oacute;n del     tub&eacute;rculo, dando como resultado hojuelas secas m&aacute;s granulares y con menor   contenido de almid&oacute;n libre (3, 4).</p>       <p>La retrogradaci&oacute;n del almid&oacute;n es un     proceso que ocurre cuando las mol&eacute;culas en     los gr&aacute;nulos de almid&oacute;n gelatinizados comienzan a reasociarse en una estructura ordenada (5). El comportamiento reol&oacute;gico     de las pastas cambia, siendo evidente el incremento en su firmeza y rigidez. La p&eacute;rdida de la capacidad de retenci&oacute;n de agua y la     restauraci&oacute;n de la cristalinidad tambi&eacute;n se     presentan durante el envejecimiento de los     geles de almid&oacute;n gelatinizados (6). La cristalizaci&oacute;n durante el envejecimiento ocurre     solo en geles con un contenido de amilopectina entre 10 y 80% (6, 7).</p>       <p>La retrogradaci&oacute;n es un fen&oacute;meno     complejo y depende de varios factores,     tales como la fuente y concentraci&oacute;n de     almid&oacute;n, la temperatura de cocci&oacute;n y enfriamiento, el pH y la presencia de solutos     (7, 8). La calorimetr&iacute;a y la difracci&oacute;n de     rayos X se pueden utilizar para determinar la retrogradaci&oacute;n debido a que hay un     proceso de recristalizaci&oacute;n. El desarrollo     de la estructura retrogradada puede monitorearse con calorimetr&iacute;a diferencial de     barrido (CDB, en in gl&eacute;s DSC) por la magnitud de la endoterma de fusi&oacute;n de la amilopectina recristalizada, mientras que con     la difracci&oacute;n de rayos X, la cristalinidad     total de amilopectina y amilosa se sigue     por la evoluci&oacute;n del patr&oacute;n B (6, 7, 9, 10).     El proceso de recristalizaci&oacute;n de los geles     de almid&oacute;n se puede considerar que obedece aun mecanismo cl&aacute;sico de tres etapas     parecido a la cristalizaci&oacute;n de pol&iacute;meros     sint&eacute;ticos: nucleaci&oacute;n, propagaci&oacute;n o crecimiento del cristal, y maduraci&oacute;n (7).</p> 	    <p>El desarrollo de la estructura en geles 	  de almid&oacute;n en corto tiempo est&aacute; sujeto a la 	  gelaci&oacute;n de la amilosa; este proceso se 	  considera como una separaci&oacute;n en una 	  fase rica de este pol&iacute;mero dispersa en una 	  fase rica en solvente (8). Esto trae como 	  consecuencia el aumento de la concentraci&oacute;n local de amilosa y provoca asociaciones entre las cadenas moleculares (7). 	  Los cristales de amilosa formados en el 	  gel contienen largas secuencias helicoidales y se funden a altas temperaturas (8).</p> 	    <p>El desarrollo de la cristalizaci&oacute;n del 	  almid&oacute;n alcabo de un tiempo prolongado 	  se atribuye a la fracci&oacute;n de amilopectina y 	  puede ser reversible calentando a 100 &ordm;C 	  (6, 11). La endoterma de un gel retrogradado, observado en el intervalo de temperatura de 40-100 &ordm;C se refiere a la endoterma de fusi&oacute;n de la amilopectina 	  recristalizada (12). La amilosa retrogradada exhibe una temperatura de fusi&oacute;n alrededor de 160 &ordm;C (10).</p> 	    <p>Durante el almacenamiento de geles de 	  almid&oacute;n, las cadenas cortas de amilopectina forman dobles h&eacute;lices que vuelven a ordenarse en agregaciones semicristalinas. 	  El tama&ntilde;o de estos dominios cristalinos es 	  m&aacute;s peque&ntilde;o comparado con el del almid&oacute;n nativo, y probablemente limitado a las 	  ramificaciones de una cadena principal. 	  La estructura super-helicoidal presente en 	  el almid&oacute;n nativo no se recobra de nuevo     durante la retrogradaci&oacute;n (13).</p> 	    <p>Algunos trabajos han estudiado la retrogradaci&oacute;n del almid&oacute;n de yuca. El efecto de 	  la modificaci&oacute;n &aacute;cida de almidones de tapioca (yuca) sobre su estabilidad en la congelaci&oacute;n fue investigado por Atichokudomchai y cols. (12), y encontraron que el 	  incremento en el tiempo de hidr&oacute;lisis &aacute;cida 	  de los almidones podr&iacute;a haber aumentado la 	  proporci&oacute;n de cadenas cortas de amilosa y 	  amilpectina, lo cual fue adecuado para la 	  formaci&oacute;n de dobles h&eacute;lices, provocando una mayor velocidad de retrgradaci&oacute;n del    gel. Abera y Rakshit (2) evaluaron la retrogradaci&oacute;n de pastas de almidones de yuca enfr&iacute;adas y almacenadas a 4 &ordm;C por 7 d&iacute;as, y reportaron que los almidones provenientes de “chips” secos tuvieron una mayor entalp&iacute;a de retrogradaci&oacute;n que los almidones procedentes de ra&iacute;ces frescas. Charles y cols. (14) compararon las propiedades reol&oacute;gicas din&aacute;micas de geles de almid&oacute;n de yuca de diferentes cultivares y concluyeron que el enfriamiento de los geles de almid&oacute;n contribuy&oacute; a la resistencia al corte y a un mayor m&oacute;dulo de elasticidad. La influencia del xiloglucano en la retrogradaci&oacute;n del almid&oacute;n de tapioca fue estudiado por Temsiriponga y cols. (15), que sugirieron que el xiloglucano forma una fase l&iacute;quida continua en una suspensi&oacute;n de almid&oacute;n, impartiendo una mejor estabilidad mec&aacute;nica durante el almacenamiento pero acelerando el reordenamiento de los polisac&aacute;ridos del almid&oacute;n. A pesar de las investigaciones realizadas sobre retrogradaci&oacute;n de almid&oacute;n de yuca, no hay reportes en la literatura sobre la retrogradaci&oacute;n del almid&oacute;n en el par&eacute;nquima precocido y reposado a baja temperatura. </p> 	    <p> El objetivo de este trabajo fue estudiar el efecto de los tratamientos de cocci&oacute;n de las ra&iacute;ces de yuca y la temperatura en el periodo de reposo del par&eacute;nquima precocido sobre la retrogradaci&oacute;n del almid&oacute;n en la harina. El conocimiento generado en este estudio ser&aacute; &uacute;til para la aplicaci&oacute;n tecnol&oacute;gica de harinas de yuca precocidas en el procesamiento de productos con alto valor agregado. </p> 	    <p><b> MATERIALES Y M&Eacute;TODOS </b></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b> Preparaci&oacute;n de la muestra </b></p> 	    <p> Ra&iacute;ces de yuca variedad Valencia (CR-30) importadas de Costa Rica y comprados en un supermercado local (Massy, Francia) fueron utilizadas en esta experimentaci&oacute;n. Las ra&iacute;ces se pelaron manualmente y se cortaron en trozos cil&iacute;ndricos ( 10 cm de alto). Lotes de 0,8 kg de trozos de yuca se cocinaron por 15 min mediante dos m&eacute;todos de cocci&oacute;n, cocci&oacute;n en vapor utilizando un equipo de escaldado (Hydrolock, ACB, Nantes, Francia) a una presi&oacute;n de vapor de 15 psi y cocci&oacute;n en agua a ebullici&oacute;n en una marmita. Despu&eacute;s de la etapa de cocci&oacute;n, algunos trozos se cortaron en rodajas peque&ntilde;as y se secaron inmediatamente a 50 &ordm;C en un secador de bandejas (Mellert UE/BE, GmbH+Co KG, Schwabach, Germany) hasta un contenido de humedad final de 7-10% (b.h.), mientras que otros trozos se almacenaron a 5 &ordm;C o a -20 &ordm;C por 24 h, despu&eacute;s se cortaron en tajadas peque&ntilde;as y se secaron a 50 &ordm;C en el mismo secador de bandejas. Los materiales secos se trituraron en un molino de laboratorio (A10, Janke &amp; Kunkel GmbH+Co KG, Ika-Werk, Staufen, Germany) y las fracciones fueron separadas utilizando un equipo de tamizado (Fritsch analysette SPARTAN, Obertein, Germany). El contenido de humedad de las harinas se determin&oacute; secando 1 g de harina en un horno (M. Chopin &amp; Cia, Boulogne, France) a 130 &ordm;C por 4 h. </p> 	    <p> <b>Determinaci&oacute;n de la capacidad de formaci&oacute;n de complejo con yodo </b></p> 	    <p> El complejo de amilosa con yodo produce un color azul, su intensidad indica el nivel de amilosa libre en una soluci&oacute;n de almid&oacute;n soluble (16, 17) . El &iacute;ndice del valor azul (IVA) se determin&oacute; por el m&eacute;todo adaptado de Lamberti y cols. (4). </p> 	    <p> Una muestra ( 5 g , b.h.) de harina de yuca precocida se calent&oacute; en 200 ml de agua destilada a 60 &plusmn; 3 &ordm;C por 20 min. Despu&eacute;s del proceso de extracci&oacute;n por calentamiento, la suspensi&oacute;n se filtr&oacute; por gravedad. Luego, 0,2 ml de soluci&oacute;n de I<sub>2</sub> -KI (2 mg/ml I<sub>2</sub> + 20 mg/ml KI) y 45 ml de agua destilada se adicionaron a 5 ml del filtrado. La absorbancia se determin&oacute; en cubetas de 2,5 ml con un espectrofot&oacute;metro Cary100 Scan UV (Varian Inc., Paso Alto, Ca., USA) a 635 nm, frente al valor del blanco (1 ml de soluci&oacute;n de I<sub>2</sub> -KI y 49 ml de agua destilada). Las medidas fueron realizadas por triplicado. El IVA se calcul&oacute; con base en el peso neto de 1 g de muestra inicial seca como se muestra en la ecuaci&oacute;n [1]:  </p> 	    <p>    <center><a name="img1"></a><img src="img/revistas/rcq/v36n1/v36n1a02img1.gif"></center></p> 	    <p> donde IVA es el &iacute;ndice del valor azul,  <i>A<sub>635</sub></i>es la absorbancia a 635 nm de longitud de onda, <i>w</i> es el peso de la muestra (g), <i>dm </i>es la materia seca de la muestra (g/100g), <i>V<sub>1</sub></i> es el volumen de la diluci&oacute;n (200 ml) y <i>V<sub>2</sub></i> es el volumen del filtrado (5 ml). </p> 	    <p><b> Medidas de calorimetr&iacute;a diferencial de barrido (CDB) </b></p> 	    <p> Las transiciones t&eacute;rmicas en harinas de yuca nativa se monitorearon utilizando un calor&iacute;metro Perkin-Elmer DSC-7 (Perkin-Elmer Corp., Norwalk, Conn., USA). La calibraci&oacute;n fue realizada utilizando indio (In) y como referencia se empleo un recipiente de aluminio vac&iacute;o. Las muestras de harina de yuca         (aprox. 11 mg) se pesaron cuidadosamente en recipientes de DSC de aluminio, y se les adicion&oacute; agua en relaci&oacute;n 1:2 harina/agua. Los recipientes fueron sellados herm&eacute;ticamente y se dejaron en reposo por 30 min antes de cada an&aacute;lisis. Las muestras se calentaron de 20 &ordm;C a 130 &ordm;C a una velocidad de calentamiento de 10 &ordm;C/min y se enfriaron a 20 &ordm;C a una velocidad de enfriamiento de 50 &ordm;C/min (18, 19). Un segundo barrido de 20 &ordm;C a 130 &ordm;C se efectu&oacute; inmediatamente despu&eacute;s para determinar la l&iacute;nea base (20) . Las muestras de harinas de yuca precocidas para los estudios de retrogradaci&oacute;n fueron evaluadas bajo las mismas condiciones previamente expuestas. </p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p> Cada endoterma de CDB se caracteriz&oacute; por medio de la temperatura inicial (T<sub>o</sub> ), la temperatura m&aacute;xima de pico (T<sub>p</sub> ), la temperatura final (T<sub>f</sub> ), el intervalo de fusi&oacute;n ( &Delta;T = T<sub>f</sub> – T<sub>o</sub> ), y el cambio de la entalp&iacute;a de fusi&oacute;n ( &Delta;H). Adem&aacute;s, el porcentaje de retrogradaci&oacute;n se calcul&oacute; como se muestra en la Ec. [2] (21, 22). Las muestras fueron analizadas por triplicado. </p> 	    <p>    <center><a name="img2"></a><img src="img/revistas/rcq/v36n1/v36n1a02img2.gif"></center></p> 	</font>     <p><font size="2" face="verdana"> donde <i>%R</i> es el porcentaje de retrogradaci&oacute;n &Delta;<i>H<sub>R</sub> </i>es la entalp&iacute;a de fusi&oacute;n de los cristales retrogradados del almid&oacute;n gelatinizado en las harinas precocidas y &Delta;H es la entalp&iacute;a de gelatinizaci&oacute;n del almid&oacute;n en la harina nativa. </font></p> 	<font size="2" face="verdana">    <p> <b>Difracci&oacute;n de rayos X </b></p> 	    <p> Los difractogramas de las muestras de harina se obtuvieron utilizando un difract&oacute;metro Bruker D5005 (Bruker AXS, UK) de &aacute;ngulo ancho equipado con una fuente de cobre operado a 40 kV y 50 mA produciendo una radiaci&oacute;n de CuK&alpha; con 1.54&Aring; de longitud de onda. Las muestras de harina se almacenaron en un contenedor sobre una soluci&oacute;n saturada de NaCl (75% H. R.) a 5 &ordm;C por 2 semanas con el fin de garantizar similares contenidos de humedad. El espectro de rayos X se registr&oacute; por 2&theta; en un intervalo de 4&ordm; y 34&ordm; con pasos de 0.05&ordm; (1 s de exposici&oacute;n) (23). Los niveles de cristalinidad en los gr&aacute;nulos de almid&oacute;n se calcularon por la integraci&oacute;n de las &aacute;reas relativas de los picos cristalinos. Cada muestra se midi&oacute; una sola vez. </p> 	    <p><b> Comportamiento de empastamiento </b></p> 	    <p> El comportamiento de empastamiento se estudi&oacute; utilizando un viscoamil&oacute;grafo RVA serie 4 (Newport Scientific, NSW, Australia). Una muestra de harina ( 3,44 g , b.s.) se mezcl&oacute; con 25 g de agua destilada para obtener, despu&eacute;s de la correcci&oacute;n original del contenido de humedad de las harinas, una concentraci&oacute;n de 10 g/kg. El perfil de tiempo-temperatura empleado fue el siguiente: El sistema se sostuvo a 25 &ordm;C por 5 min, luego se calent&oacute; de 25 &ordm;C a 95 &ordm;C con una velocidad de 14 &ordm;C/min, posteriormente se mantuvo a 95 &ordm;C por 4 min, la muestra se enfri&oacute; a 25 &ordm;C en 5 min, seguido por un periodo de 2 min donde la temperatura se mantuvo a 25 &ordm;C (2, 23, 24). Cinco par&aacute;metros caracter&iacute;sticos fueron medidos de la curva de empastamiento: Temperatura de empastamiento (Tgel) es la temperatura en la que se inicia el aumento en la viscosidad de la suspensi&oacute;n, viscosidad m&aacute;xima (P) es la viscosidad aparente m&aacute;xima obtenida     durante la elevaci&oacute;n a 95 &ordm;C , estabilidad de la viscosidad (P-H) es la diferencia entre la viscosidad m&aacute;xima (P) y la viscosidad m&aacute;s baja a 95 &ordm;C (H), asentamiento (C-H) es la diferencia entre la viscosidad aparente a 50 &ordm;C (C) y la viscosidad m&aacute;s baja a 95 &ordm;C (H) (25). </p> 	    <p><b> An&aacute;lisis estad&iacute;stico </b></p> 	    <p> En este estudio se utiliz&oacute; un dise&ntilde;o factorial de 2x3 con los siguientes factores: M&eacute;todo de cocci&oacute;n (vapor y agua a ebullici&oacute;n) y condici&oacute;n del periodo de reposo (sin reposo, con reposo a 5 &ordm;C y a -20 &ordm;C ). El an&aacute;lisis de varianza (ANOVA) se emple&oacute; para determinar las diferencias entre tratamientos a un nivel de significancia de 5%. El an&aacute;lisis estad&iacute;stico se llev&oacute; a cabo utilizando el programa Design Expert 6.0 (Stat-Ease Inc., Minneapolis, USA). </p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b> RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N </b></p> 	    <p> <b>Cambios en la capacidad de formaci&oacute;n del complejo con yodo </b> </p> 	    <p> La caracterizaci&oacute;n de almid&oacute;n libre (amilosa) en harina de yuca precocida por el &iacute;ndice del valor azul (IVA) se presenta en la <a href="#fig1">Fig. 1</a>. El m&eacute;todo de cocci&oacute;n de las ra&iacute;ces de yuca y la temperatura en el periodo de reposo del par&eacute;nquima precocido no afectaron significativamente el valor de IVA . Sin embargo, hay diferencias significativas entre las harinas de par&eacute;nquima cocinado con y sin periodo de almacenamiento. La harina proveniente de par&eacute;nquima cocinado con periodo de reposo tuvo valores de IVA m&aacute;s bajos que la obtenida sin  reposo despu&eacute;s de la cocci&oacute;n. Lo anterior sugiere que el almacenamiento a baja temperatura de par&eacute;nquima de yuca cocinado reduce el contenido de almid&oacute;n libre, por la agregaci&oacute;n de amilosa como un resultado de la retrogradaci&oacute;n del almid&oacute;n (26). </p>     <p>    <center><a name="fig1"></a><img src="img/revistas/rcq/v36n1/v36n1a02fig1.gif"></center></p>      <p> En el caso de la elaboraci&oacute;n de pur&eacute; de papa, ya se ha observado que procesos de congelaci&oacute;n y descongelaci&oacute;n disminuyen sustancialmente el &iacute;ndice del valor azul (IVA) del pur&eacute;, lo cual se interpret&oacute; como retrogradaci&oacute;n (3) . Lamberti y cols. (4) encontr&oacute; que el IVA de pur&eacute; de papa decrece durante un periodo de 6 h, esto confirm&oacute; la fuerte tendencia de agregaci&oacute;n de la amilosa. Una disminuci&oacute;n r&aacute;pida de la amilosa soluble en papa cocinada y almacenada a 4 &ordm;C por 8 h, fue el resultado de la agregaci&oacute;n de la fracci&oacute;n de amilosa lineal en complejos insolubles (27) . </p>     <p> <b>An&aacute;lisis t&eacute;rmico </b> </p>     <p> La calorimetr&iacute;a diferencial de barrido (CDB) es una t&eacute;cnica utilizada para medir la energ&iacute;a absorbida o liberada por una muestra cuando ocurre una transici&oacute;n de fase (28). En el caso del almid&oacute;n retrogradado, la cantidad de energ&iacute;a absorbida durante la fusi&oacute;n de la amilopectina recristalizada y la temperatura, en la cual ocurre este cambio, puede medirse por CDB (29). Los termogramas obtenidos para harinas de yucas nativas y tratadas se muestran en <a href="#fig2">Fig. 2</a> y los correspondientes par&aacute;metros calorim&eacute;tricos se resumen en la <a href="tab1">Tabla 1</a>. </p>     <p>    <center><a name="fig2"></a><img src="img/revistas/rcq/v36n1/v36n1a02fig2.gif"></center></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>    <center><a name="tab1"></a><img src="img/revistas/rcq/v36n1/v36n1a02tab1.gif"></center></p>     <p> Las temperaturas de transici&oacute;n t&eacute;rmica de los almidones de las harinas de yuca precocidas y con un periodo de almacenamiento a baja temperatura fueron apreciablemente menores que la temperatura de gelatinizaci&oacute;n del almid&oacute;n en la harina de yuca nativa. Cuando el almid&oacute;n se gelatiniza y almacena a baja temperatura, las mol&eacute;culas de almid&oacute;n se reasocian, pero con una forma estructural y molecular m&aacute;s d&eacute;bil que en las mol&eacute;culas nativas (30). Esto se manifiesta en menores valores de T<sub>o</sub> , T<sub>p</sub> y T<sub>f</sub> cuando se compara con el almid&oacute;n nativo gelatinizado (31). Por otra parte, el m&eacute;todo de cocci&oacute;n y la temperatura en el per&iacute;odo de reposo del par&eacute;nquima de yuca no influyeron significativamente en los valores de T<sub>o</sub> , T<sub>p</sub> y T<sub>f</sub> . </p>     <p> El rango de temperatura de fusi&oacute;n ( &Delta;T) de la harina precocida de yuca con un tratamiento de almacenamiento a baja temperatura fue mayor que la de harina de yuca nativa; sin embargo, los valores de &Delta;T no fueron significativamente afectados por el tipo de cocci&oacute;n y la temperatura en el periodo de reposo. El &Delta;T se podr&iacute;a utilizar como un &iacute;ndice de la calidad y heterogeneidad de la amilopectina recristalizada. As&iacute;, un valor amplio de &Delta;T podr&iacute;a implicar una gran cantidad de cristales de estabilidad variable, por otro lado un rango limitado podr&iacute;a sugerir cristales de una calidad homog&eacute;nea y con una estabilidad similar (32). Por consiguiente, los &Delta;T m&aacute;s extensos ( 19 &ordm;C – 21 &ordm;C ) se obtuvieron para harinas de yuca precocidas con un tratamiento de almacenamiento, indicando que una mezcla heterog&eacute;nea de cristales de amilopectina puede haberse formado durante el periodo de reposo a baja temperatura del par&eacute;nquima cocinado. </p>     <p> La entalp&iacute;a de fusi&oacute;n de cristales retrogradados (&Delta;H<sub>R</sub> ) de la harina de yuca precocida con un periodo de almacenamiento fue mucho menor comparada con la entalp&iacute;a de gelatinizaci&oacute;n del almid&oacute;n en la harina de yuca nativa. Esto indica que la energ&iacute;a requerida para fragmentar las asociaciones intermoleculares de almid&oacute;n recristalizado fue menor que la energ&iacute;a necesaria para gelatinizar el almid&oacute;n en la harina nativa (31). Adem&aacute;s, no hubo diferencias significativas entre el m&eacute;todo de cocci&oacute;n y la temperatura en el periodo de reposo en esta propiedad, a pesar de no presentarse diferencias significativas, se puede resaltar que los valores de &Delta;H<sub>R</sub> y el porcentaje de retrogradaci&oacute;n (<i>%R</i>) para harina de par&eacute;nquima cocinado en vapor y almacenado a 5 &ordm;C fueron mayores que los observados para harina elaborada a partir de par&eacute;nquima cocinado en agua a ebullici&oacute;n y almacenado a la misma temperatura. De hecho, la harina del tratamiento de cocci&oacute;n en vapor tuvo menor IVA comparado con la harina del tratamiento de cocci&oacute;n en agua a    ebullici&oacute;n. La ausencia de caracter&iacute;sticas t&eacute;rmicas alrededor de 60 &ordm;C para harinas de yuca cocinadas sin tratamiento de reposo indica que no ocurri&oacute; recristalizaci&oacute;n de la amilopectina (<a href="#tab1">Tabla 1</a>). </p>     <p> <b>Medidas de difracci&oacute;n de rayos X </b> </p>     <p> Los patrones de difracci&oacute;n de rayos X y la cristalinidad correspondiente observada para los almidones en las harinas nativas y tratadas se muestran en la <a href="#fig3">Fig. 3</a> y la <a href="#tab2">Tabla 2</a>, respectivamente. La harina de yuca nativa mostr&oacute; un patr&oacute;n t&iacute;pico de almid&oacute;n tipo A con fuertes picos a 2&theta; cercanos a 15.3&ordm;, 17.3&ordm;, 18&ordm; y 23.3, como se ha observado en estudios previos (33 - 37). El valor de cristalinidad del almid&oacute;n en la harina nativa fue de 17.5% y esta de acuerdo al reportado por Asaoka y cols. (34), pero fue levemente mayor que el reportado por Moorthy (37) y mucho menor que el reportado (38%) por Zobel (38), lo cual puede ser debido a las diferencias en el m&eacute;todo experimental. En el presente estudio los resultados se analizaron sobre un rango angular de 4&ordm; a 34&ordm;. </p>     <p>    <center><a name="fig3"></a><img src="img/revistas/rcq/v36n1/v36n1a02fig3.gif"></center></p>     <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center><a name="tab2"></a><img src="img/revistas/rcq/v36n1/v36n1a02tab2.gif"></center></p>     <p> El principal componente cristalino en el gr&aacute;nulo de almid&oacute;n nativo es la amilopectina, mientras que tanto la amilosa como la amilopectina est&aacute;n involucradas en la reasociaci&oacute;n molecular durante el envejecimiento de los geles de almid&oacute;n (7). El almid&oacute;n retrogradado tiene un patr&oacute;n de difracci&oacute;n parecido al “tipo B” y este es acompa&ntilde;ado por un gran incremento en la rigidez y la separaci&oacute;n de fases entre el pol&iacute;mero y el solvente (sin&eacute;resis) (7, 11, 39, 40). Como se muestra en la <a href="#fig3">Fig. 3</a>, los difractogramas de rayos X de harinas tratadas tienen un pico sobresaliente a 2&theta; cercano a 17&ordm;, siendo similar a un patr&oacute;n tipo B. As&iacute;, el patr&oacute;n de difracci&oacute;n de estas harinas implica que se formaron nuevos cristales durante el periodo de almacenamiento a baja temperatura. La harina con el tratamiento de cocci&oacute;n en vapor y el periodo de reposo a 5 &ordm;C tuvo la mayor cristalinidad comparada con la del tratamiento de cocci&oacute;n en agua a ebullici&oacute;n y el periodo de almacenamiento a la misma temperatura. </p>     <p> El contenido de agua conjuntamente con la temperatura de almacenamiento son factores muy importantes debido a que controlan la velocidad y el porcentaje de retrogradaci&oacute;n (6, 29) . Slade y Levine (41) han enfatizado el papel del agua como un plastificante y la importancia de la temperatura de transici&oacute;n v&iacute;trea en el procesamiento de los alimentos. Para explicar este fen&oacute;meno tomaron como ejemplo el enfriamiento r&aacute;pido de un pol&iacute;mero fundido que se recristaliza; si la temperatura de enfriamiento cae por debajo de la temperatura de transici&oacute;n v&iacute;trea (Tg), entonces el material se vuelve ‘v&iacute;treo', esto quiere decir que el movimiento molecular es tan bajo que la cristalizaci&oacute;n no ocurre en un periodo de tiempo finito. Sin embargo, por encima de la Tg y por debajo de la temperatura de fusi&oacute;n de los cristales (Tm) el material es ‘gomoso' y hay suficiente movimiento del pol&iacute;mero permitiendo la cristalizaci&oacute;n (8, 41). </p> </font> 	    <p><font size="2" face="verdana"> En el caso de las harinas cocinadas cuyo par&eacute;nquima fue almacenado a 5 &ordm;C , los valores del porcentaje de retrogradaci&oacute;n (<i>%R</i>) y de cristalinidad fueron mayores para el tratamiento de cocci&oacute;n en vapor que los reportados para el tratamiento de cocci&oacute;n en agua a ebullici&oacute;n. La retrogradaci&oacute;n de los geles de almid&oacute;n depende solamente del contenido de agua presente durante el envejecimiento, y no de la cantidad de agua empleada en la gelatinizaci&oacute;n (42) . Los trozos de par&eacute;nquima de yuca , cuyo contenido de humedad fue de 61&plusmn; 1,6 %, incrementaron su peso despu&eacute;s de la etapa de cocci&oacute;n debido a la absorci&oacute;n de agua. El incremento despu&eacute;s de la cocci&oacute;n en agua a ebullici&oacute;n fue de 5-8%, mientras que despu&eacute;s de la cocci&oacute;n en vapor estuvo en un rango de 1-3%. La velocidad de recristalizaci&oacute;n del almid&oacute;n se reduce con el incremento en la humedad por encima de 50%, presumiblemente debido a la diluci&oacute;n de los componentes cristalizables en la matriz de almid&oacute;n gelatinizado (6, 43). Por esta raz&oacute;n, es posible interpretar los resultados en t&eacute;rminos del contenido de agua dentro del par&eacute;nquima cocinado, el decrecimiento en la recristalizaci&oacute;n del almid&oacute;n presente en el par&eacute;nquima cocinado en agua a ebullici&oacute;n posiblemente es el resultado de la mayor cantidad de agua absorbida durante el tratamiento de cocci&oacute;n. </font></p>     <font size="2" face="verdana">    <p>La temperatura de almacenamiento afecta considerablemente la retrogradaci&oacute;n. La cristalizaci&oacute;n ocurre a mayor grado y velocidad a una baja temperatura de almacenamiento, si se encuentra por encima de la Tg. El almacenamiento a temperaturas de congelaci&oacute;n por debajo de la Tg virtualmente inhibe la recristalizaci&oacute;n (44). El almacenamiento a temperaturas por debajo de la temperatura de fusi&oacute;n (Tm) reduce la retrogradaci&oacute;n; de hecho, a temperaturas de refrigeraci&oacute;n se promueve la formaci&oacute;n de cristalitos menos perfectos pero a una mayor velocidad si se compara con el almacenamiento a temperatura ambiente (6, 7, 39). </p> </font>         <p><font size="2" face="verdana"> Para la harina de yuca de par&eacute;nquima cocinado y almacenado a -20 &ordm;C , los resultados de IVA, cristalinidad y porcentaje de retrogradaci&oacute;n fueron similares para ambos tratamientos de cocci&oacute;n. Las harinas de yuca con un tratamiento de reposo a -20 &ordm;C tuvieron valores de cristalinidad y <i>%R</i> levemente menores comparados con los valores obtenidos para las harinas de par&eacute;nquima cocinado en vapor y con un periodo de reposo a 5 &ordm;C . Probablemente, la c&aacute;mara de congelaci&oacute;n utilizada en este trabajo present&oacute; una velocidad de congelaci&oacute;n lenta, lo cual determin&oacute; el porcentaje de retrogradaci&oacute;n del almid&oacute;n en el par&eacute;nquima precocido y almacenado a -20&ordm; C (45). Sin embargo, cuando la temperatura de almacenamiento descendi&oacute; por debajo de la Tg, la retrogradaci&oacute;n se inhibi&oacute;, lo cual se debe comprobar determinando el diagrama de estado del par&eacute;nquima de yuca. </font></p>     <font size="2" face="verdana">    <p> <b>An&aacute;lisis de perfil de empastamiento </b> </p>     <p>Un m&eacute;todo com&uacute;nmente utilizado para estudiar las propiedades del almid&oacute;n es medir los cambios en la viscosidad durante el calentamiento programado de una suspensi&oacute;n acuosa de almid&oacute;n (6, 29) . Los perfiles de empastamiento de las harinas de yuca y sus correspondientes propiedades medidas por RVA se presentan en las <a href="#fig4">Fig. 4</a>, <a href="#fig5">Fig. 5</a> y <a href="#tab3">Tabla 3</a>, respectivamente. Comparado con la harina nativa, las harinas tratadas presentaron menor viscosidad m&aacute;xima, estabilidad y temperatura de empastamiento, mientras que mostraron un mayor tiempo para alcanzar la viscosidad m&aacute;xima. La harina de yuca nativa exhibi&oacute; un comportamiento de empastamiento caracter&iacute;stico de almidones de tub&eacute;rculos, con un r&aacute;pido incremento en la viscosidad dentro de un angosto intervalo de temperatura y con una clara viscosidad m&aacute;xima (46). Cuando los gr&aacute;nulos de almid&oacute;n se calientan por encima de la temperatura de gelatinizaci&oacute;n en una suspensi&oacute;n acuosa absorben gran cantidad de agua y la viscosidad se incrementa. La temperatura de inici&oacute; de este aumento en la viscosidad puede considerarse como el punto en el cual comienza la gelatinizaci&oacute;n. La temperatura de empastamiento nos da un indicio de la temperatura m&iacute;nima requerida para cocinar suspensiones de almid&oacute;n (47). La temperatura de empastamiento de la harina de yuca nativa fue mayor que la temperatura de inicio de la gelatinizaci&oacute;n obtenida por el m&eacute;todo de CDB. Estas diferencias fueron consistentes con datos reportados en otro estudio (19). </p>     <p>    <center><a name="fig4"></a><img src="img/revistas/rcq/v36n1/v36n1a02fig4.gif"></center></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>    <center><a name="fig5"></a><img src="img/revistas/rcq/v36n1/v36n1a02fig5.gif"></center></p>     <p>    <center><a name="tab3"></a><img src="img/revistas/rcq/v36n1/v36n1a02tab3.gif"></center></p>     <p> Los valores de asentamiento han sido utilizados como un indicador de la tendencia de retrogradaci&oacute;n del almid&oacute;n (25, 29). Sin embargo, no se encontraron diferencias significativas entre la harina nativa y las harinas tratadas, por esta raz&oacute;n, este par&aacute;metro no se tom&oacute; en cuenta para la determinaci&oacute;n de la retrogradaci&oacute;n del almid&oacute;n en este estudio. La viscosidad m&aacute;xima y la estabilidad no tuvieron tampoco diferencias significativas entre tratamientos. </p>     <p> En el caso del tratamiento sin periodo de almacenamiento, la temperatura de empastamiento para harina proveniente de par&eacute;nquima cocinado en agua a ebullici&oacute;n fue significativamente mayor que la reportada para harinas con tratamiento de cocci&oacute;n en vapor. Adicionalmente, se presentaron diferencias significativas entre harinas de par&eacute;nquima cocinado sin y con tratamiento de reposo, estas &uacute;ltimas tuvieron una mayor temperatura de empastamiento. Los resultados previos sugirieron que las harinas sin reposo desarrollaron viscosidad a 25 &ordm;C comparadas con las harinas que tuvieron un tratamiento de reposo, probablemente el alto nivel de amilosa libre (<a href="#fig1">Fig. 1</a>) y la falta de almid&oacute;n retrogradado (<a href="#tab1">Tabla 1</a>) causaron este comportamiento. </p>     <p> Las harinas de yuca cocinadas sin un tratamiento de reposo desarrollan viscosidad en agua a baja temperatura (<a href="#fig4">Fig 4 </a>y <a href="#fig5">Fig 5</a>). Adem&aacute;s, estas harinas tuvieron la mayor cantidad de amilosa soluble como se indica en los valores de IVA (<a href="#fig1">Fig 1</a>). Estos resultados confirman que existen fuerzas asociativas d&eacute;biles en las suspensiones de estas harinas, las cuales facilitaron la penetraci&oacute;n de agua en las zonas amorfas liberando amilosa del gr&aacute;nulo (48) . Por otra parte, las harinas de yuca cocinadas del tratamiento con reposo no presentaron viscosidad a 25 &ordm;C como se muestra en los perfiles de empastamiento, lo cual puede ser debido a la agregaci&oacute;n de la amilosa y la retrogradaci&oacute;n del almid&oacute;n durante el periodo de almacenamiento. </p>     <p> <b>CONCLUSION </b> </p>     <p> Los resultados de CDB, IVA y cristalinidad confirmaron que la retrogradaci&oacute;n del almid&oacute;n ocurri&oacute; en el par&eacute;nquima tratado de acuerdo a las condiciones propuestas en este estudio. Los tratamientos con un periodo de reposo tanto a 5 &ordm;C como a -20 &ordm;C no presentaron diferencias significativas en los resultados de retrogradaci&oacute;n de las harinas. En el periodo de almacenamiento a 5 &ordm;C , las harinas del tratamiento de cocci&oacute;n en vapor tuvieron mayor porcentaje de retrogradaci&oacute;n y cristalinidad, y menores valores de IVA comparado con las del tratamiento de cocci&oacute;n en agua a ebullici&oacute;n. Estos resultados indica que el contenido de agua del par&eacute;nquima durante el envejecimiento a baja temperatura afect&oacute; el grado de retrogradaci&oacute;n del almid&oacute;n en las harinas. La mayor cantidad de agua absorbida durante la cocci&oacute;n en agua a ebullici&oacute;n redujo la recristalizaci&oacute;n del almid&oacute;n posiblemente debido a la diluci&oacute;n del componente cristalizable. Las harinas del tratamiento con reposo a -20 &ordm;C no presentaron diferencias significativas entre los resultados del porcentaje de retrogradaci&oacute;n, cristalinidad y IVA cuando se compararon ambos m&eacute;todos de cocci&oacute;n.    Las harinas de yuca precocidas sin periodo de reposo tuvieron los mayores valores de IVA, desarrollaron viscosidad en agua a 25 &ordm;C y no presentaron ninguna endoterma de CDB alrededor de 60 &ordm;C . </p>     <p>Estos resultados indican que estas harinas mostraron una fracci&oacute;n alta de amilosa soluble y no conten&iacute;an amilopectina recristalizada.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> <b>AGRADECIMIENTOS </b> </p>     <p> E. Rodriguez-Sandoval y A. Sandoval-Aldana agradecen a Colciencias por el cr&eacute;dito-beca “Apoyo a doctorados nacionales”. Tambi&eacute;n se reconoce la ayuda ofrecida por Gerard Cuvelier y Perla Relkin de l Laboratoire de Biophysique des Mat&eacute;riaux Alimentaires del ENSIA (Massy, Francia) para realizar esta investigaci&oacute;n. </p>     <p><b> REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS </b></p>     <!-- ref --><p>1. Isamah, G. K. ATPase, peroxidase and lipoxygenase activity during post-harvest deterioration of cassava (Manihot esculenta Crantz) root tubers <i>. </i><i>International Biodeterioration &amp; Biodegradation </i>. 2004. <b>54, </b> 319-323. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0120-2804200700010000200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2. Abera, S.; Rakshit, S. K. Comparison of physicochemical and functional properties of cassava starch extracted from fresh root and dry chips <i>. </i><i>Starch/St&auml;rke </i>. 2003. <b>55, </b> 287-296. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0120-2804200700010000200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3. Ooraikul, B.; Packer, G. J. K.; Hadziyev, D. Starch and pectin substances as affected by a freeze-thaw granule process <i>. </i><i>J of Food Sci </i>. 1974. <b>39, </b> 358-364. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0120-2804200700010000200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4. Lamberti, M.; Geiselmann, A.; Conde-Petit, B.; Escher, F. Starch transformation and structure development in production and reconstitution of potato flakes <i>. </i><i>LWT-Food Science and Technology </i>. 2004. <b>37, </b> 417-427. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0120-2804200700010000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5. Atwell, W.A., Hood, L. F.; Lineback, D. R.; Varriano-Marston, E.; Zobel, H. F. The terminology and methodology associated with basic starch phenomena <i>. </i><i>Cereal Foods World </i>. 1988. <b>33 </b>(3), 306-311. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0120-2804200700010000200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6. Eliasson, A. C.; Gudmundsson, M. Starch: physicochemical and functional aspects. En: Carbohydrates in food. Eliasson, A. C. (Editor). New York : Marcel Dekker Inc. p. 1996. 431-503. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0120-2804200700010000200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7. Biliaderis, C. G. Structures and phase transitions of starch polymers. En: Polysaccharide association structures in food. Walter, R.H. (Editor). New York : Marcel Dekker, Inc. 1998. p. 57-168. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0120-2804200700010000200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8. Morris, V. J. Starch gelation and retrogradation <i>. </i><i>Trends in Food Science and Technology </i>. 1990. <b>1, </b> 2-6. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0120-2804200700010000200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9. Miles, M. J., Morris, V. J.; Orford, P. D.; Ring, S. G. The roles of amylose and amylopectin in gelation and retrogradation of starch <i>. </i><i>Carbohydrate Research </i>. 1985. <b>135, </b> 271-281. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0120-2804200700010000200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10. Russell, P. L. The ageing of gels from starches of different amylose/amylopectin content studied by differential scanning calorimetry. <i>J of Cereal Sci </i>. 1987. <b>6, </b> 147-158. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0120-2804200700010000200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11. Orford, P.D., Ring, S. G.; Carroll, V.; Miles, M. J.; Morris, V. J. The effect of concentration and botanical source on the gelation and retrogradation of starch <i>. </i><i>Journal of the Science of Food and Agriculture </i>. 1987. <b>39, </b> 169-177. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0120-2804200700010000200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12. Atichokudomchai, N.; Varavinit, S. ; Chinachoti, P. A study of annealing and freeze-thaw stability of acid-modified tapioca starches by differential scanning calorimetry (DSC) <i>. </i><i>Starch/St&auml;rke </i>. 2002. <b>54, </b> 343-349. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0120-2804200700010000200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13. Keetels, C. J. A. M.; Oostergetel, G.T.; van Vliet, T. Recrystallization of amylopectin in concentrated starch gels <i>. </i><i>Carbohydrate Polymers </i>. 1996. <b>30, </b> 61-64. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0120-2804200700010000200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14. Charles, A. L., Chang, Y. H.; Ko, W. C.; Sriroth, K.; Huang, T. C. Some physical and chemical properties of starch isolates of cassava genotypes <i>. </i><i>Starch/St&auml;rke </i>. 2004. <b>56, </b> 413-418. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0120-2804200700010000200014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15. Temsiriponga, T., Pongsawatmanit, R.; Ikeda, S.; Nishinari, K. Influence of xyloglucan on gelatinization and retrogradation of tapioca starch <i>. </i><i>Food Hydrocolloids </i>. 2005. <b>19, </b> 1054-1063. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0120-2804200700010000200015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>16. Mondrag&oacute;n, M., Bello-P&eacute;rez, L. A.; Agama-Acevedo, E.; Betancur-Ancona, D.; Pe&ntilde;a, J. L. Effect of cooking time, steeping and lime concentration on starch gelatinization of corn during nixtamalization <i>. </i><i>Starch/St&auml;rke </i>. 2004. <b>56, </b> 248-253. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0120-2804200700010000200016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17. Morrison, W. R.; Laignelet, B. An improved colorimetric procedure for determining apparent and total amylose in cereal and other starches <i>. </i><i>J of Cereal Sci </i>. 1983. <b>1, </b> 9-20. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0120-2804200700010000200017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18. Moorthy, S. N.; Rickard, J. E.; Blanshard, J. M. V. Influence of gelatinization characteristics of cassava starch and flour on the textural properties of some food products. En: Cassava flour and starch: Progress in research and development. Dufour, D.; O`Brien, G. M. ; Best, R. (Editores). Cali: CIAT, Colombia. 1996. p. 150-154. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0120-2804200700010000200018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19. Perez, E. E.; Breene, W. M.; Bahnassey, Y. A. Variations in the gelatinization profiles of cassava, sagu and arrowroot native starches as measured with different thermal and mechanical methods <i>. </i><i>Starch/St&auml;rke </i>. 1998. <b>50 </b>(2-3), 70-72. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0120-2804200700010000200019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>20. Roulet, P.; MacInnes, W. M.; W&uuml;rsch, P.; Sanchez, R. M.; Raemy, A. A comparative study of the retrogradation kinetics of gelatinized wheat starch in gel and powder form using X-ray, differential scanning calorimetry and dynamic mechanical analysis <i>. </i><i>Food Hydrocolloids </i>. 1988. <b>2 </b>(5), 381-396. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0120-2804200700010000200020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>21. Baker, L.A. ; Rayas-Duarte, P. Retrogradation of amaranth starch at different storage temperatures and the effect of salt and sugars <i>. </i><i>Cereal Chemistry </i>. 1998. <b>75 </b>(3), 308-314. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S0120-2804200700010000200021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>22. Vandeputte, G. E.; Vermeylen, R.; Geeroms, J.; Delcour, J. A. Rice starches. III. Structural aspects provide insight in amylopectin retrogradation properties and gel texture <i>. </i><i>Journal of Cereal Science </i>. 2003. <b>38, </b> 61-68. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0120-2804200700010000200022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>23. Farhat, I. A., Oguntona, T.; Neale, R.J. Characterisation of starches from west african yams <i>. </i><i>Journal of the Science of Food and Agriculture </i>. 1999. <b>79, </b> 2105-2112. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S0120-2804200700010000200023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>24. Shi, X.; BeMiller, J. N. Effects of food gums on viscosities of starch suspensions during pasting <i>. </i><i>Carbohydrate Polymers </i>. 2002. <b>50, </b> 7-18. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0120-2804200700010000200024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>25. Dengate, H. N. Swelling, pasting and gelling of wheat starch., in Advances in cereal science and technology. Pomeranz, Y. (Editor). St. Paul , Minnesota : AACC. 1984. p. 49-82. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000120&pid=S0120-2804200700010000200025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>26. Collison, R. Starch retrogradation, in Starch and its derivatives. Radley J. A. (Editor). London : Chapman &amp; Hall. 1968. p. 198-202. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0120-2804200700010000200026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>27. Jankowski, T. Influence of starch retrogradation on the texture of cooked potato tuber <i>. </i><i>International Journal of Food Science and Technology </i>. 1992. <b>27, </b> 637-642. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000122&pid=S0120-2804200700010000200027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>28. Sandoval-Aldana, A.; Rodriguez-Sandoval, E.; Fern&aacute;ndez-Quintero, A. Aplicaci&oacute;n del an&aacute;lisis por calorimetr&iacute;a diferencial de barrido (DSC) para la caracterizaci&oacute;n de las modificaciones del almid&oacute;n <i>. </i><i>Revista DYNA </i>. 2005. <b>72 </b>(146), 45-53. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0120-2804200700010000200028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>29. Karim, A. A.; Norziah, M. H.; Seow, C. C. Methods for the study of starch retrogradation <i>. </i><i>Food Chemistry </i>. 2000. <b>71, </b> 9-36. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000124&pid=S0120-2804200700010000200029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>30. White, P. J.; Abbas, I. R.; Johnson, L. A. Freeze-thaw stability and refrigerated-storage retrogradation of starches <i>. </i><i>Starch/St&auml;rke </i>. 1989. <b>41 </b>(5), 176-180. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S0120-2804200700010000200030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>31. Grant, L.A. Effects of starch isolation, drying, and grinding techniques on its gelatinization and retrogradation properties <i>. </i><i>Cereal Chemistry </i>. 1998. <b>75 </b>(5), 590-594. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000126&pid=S0120-2804200700010000200031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>32. Fredriksson, H.; Silverio, J.; Andersson, R.; Eliasson, A. C.; Aman, P. The influence of amylose and amylopectin characteristics on gelatinization and retrogradation properties of different starches <i>. </i><i>Carbohydrate Polymers </i>. 1998. <b>35, </b> 119-134. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S0120-2804200700010000200032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>33. Abraham, T. E. Stabilization of paste viscosity of cassava starch by heat moisture treatment <i>. </i><i>Starch/St&auml;rke </i>. 1993. <b>45 </b>(4), 131-135. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000128&pid=S0120-2804200700010000200033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>34. Asaoka, M.; Blanshard J. M. V.; Rickard, J. E. Seasonal effects on the physico-chemical properties of starch from four cultivars of cassava. <i>Starch/St&auml;rke </i>. 1991. <b>43 </b>(12), 455-459. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S0120-2804200700010000200034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>35. Atichokudomchai, N.; Varavinit, S.; Chinachoti, P. Gelatinization transitions of acid-modified tapioca starches by differential scanning calorimetry (DSC) <i>. </i><i>Starch/St&auml;rke </i>. 2002. <b>54, </b> 296-302. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000130&pid=S0120-2804200700010000200035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>36. Matos-Segura, M. E.; P&eacute;rez-Sira, E. E. Characterization of native and modified cassava starches by scanning electron microscopy and X-ray diffraction techniques <i>. </i><i>Cereal Foods World </i>. 2003. <b>48 </b>(2), 78-81. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000131&pid=S0120-2804200700010000200036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>37. Moorthy, S. N. Tuber crop starches. Kurup, G. T. (editor). Kerala , India : Central Tuber Crops Research Institute. 1994. p. 40. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000132&pid=S0120-2804200700010000200037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>38. Zobel, H. F. Molecules to granules: A comprehensive starch review <i>. </i><i>Starch/St&auml;rke </i>. 1988. <b>40 </b>(2), 44-50. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000133&pid=S0120-2804200700010000200038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>39. Durrani, C. M.; Donald, A. M. Physical characterisation of amylopectin gels <i>. </i><i>Polymer Gels and Networks </i>. 1995. <b>3, </b> 1-27. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000134&pid=S0120-2804200700010000200039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>40. Imberty, A.; Bul&eacute;on, A.; Tran, V.; P&eacute;rez, S. Recent advances in knowledge of starch structure <i>. </i><i>Starch/St&auml;rke </i>. 1991. <b>43 </b>(10), 375-384. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000135&pid=S0120-2804200700010000200040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>41. Slade, L.; Levine, H. Water relationships in starch transitions. <i>Carbohydrate Polymers </i>. 1993. <b>21, </b> 105-131. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000136&pid=S0120-2804200700010000200041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>42. Zeleznak, K. J.; Hoseney, R. C. The role of water in the retrogradation of wheat starch gels and bread crumb <i>. </i><i>Cereal Chemistry </i>. 1986. <b>63 </b>(5), 407-411. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000137&pid=S0120-2804200700010000200042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>43. Slade, L.; Levine, H. Structural stability of intermediate moisture foods. A new understanding?. En: Food Structure - Its creation and evaluation. Blanshard J. M. V. y Mitchell, J. R. (Editors). London : Butterworths. 1988. p. 115-147. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000138&pid=S0120-2804200700010000200043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>44. Colwell, K. H.; Axford, W. E.; Chamberlain, N.; Elton, G. A. H. Effect of storage temperature on the ageing of concentrated wheat starch gels <i>. </i><i>Journal of the Science of Food and Agriculture </i>. 1969. <b>20, </b> 550-555.. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000139&pid=S0120-2804200700010000200044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>45. Navarro, A. S.; Martino, M. N.; Zaritzky, N. E. Viscoelastic properties of frozen starch-triglycerides systems <i>. </i><i>Journal of Food Engineering </i>. 1997. <b>34, </b> 411-427. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000140&pid=S0120-2804200700010000200045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>46. Lewandowicz, G.; Fornal, J.; Walkowski, A. Effect of microwave radiation on physico-chemical properties and structure of potato and tapioca starches <i>. </i><i>Carbohydrate Polymers </i>. 1997. <b>34, </b> 213-220 &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000141&pid=S0120-2804200700010000200046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>47. Pongsawatmanit, R.; Thanasukarn, P. Y.; Ikeda, S. Effect of sucrose on RVA viscosity parameters, water activity and freezable water fraction of cassava starch suspensions <i>. </i><i>Science Asia </i>. 2002. <b>28, </b> 129-134. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000142&pid=S0120-2804200700010000200047&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>48. Gomes, A. M. M.; da Silva, E. M.; Ricardo, N. M. P. S. Effects of annealing on the physicochemical properties of fermented cassava starch (polvilho azedo) <i>. </i><i>Carbohydrate Polymers </i>. 2005. <b>60, </b> 1-6.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000143&pid=S0120-2804200700010000200048&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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