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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[FLAVONOIDES AISLADOS DE LAS INFLORESCENCIAS DE Piper hispidum Kunth (PIPERACEAE) Y DERIVADOS ACETILADOS ISOLATED]]></article-title>
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<article-title xml:lang="pt"><![CDATA[DERIVATIVES FLAVONOIDES ISOLADOS DAS INFLORESCÊNCIAS DE Piper hispidum Kunth (PIPERACEAE) E DERIVADOS ACETILADOS]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[From the ethanolic extract of the inflorescences of Piper hispidum Kunth (Piperaceae) were isolated three flavonoids 5-hydroxy-7-methoxyflavanone, 5-hydroxy-4,7-dimethoxyflavanone and 2,4,6-trimethoxydihydrochalcone. The acetylated derivatives 5-acetoxy- 7-methoxyflavanone and 5-acetoxy- 4,7- dimethoxyflavanone were synthesized from the isolated pure flavanones. Characterization was mainly achieved by spectroscopic techniques and compared with literature data. Natural compounds and derivatives were subjected to brine shrimp lethality bioassay. The most toxic compound was the flavonoid 5-hydroxy- 7-methoxyflavanone with a LC50 1,8 [1]g/ml.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="pt"><p><![CDATA[A partir do extracto etanílico das inflorescancias da especie Piper hispidum Kunth (Piperaceae) foram isolados tras flavonoides: 5-hidroxi-7-metoxiflavanona, 5-hidroxi-4,7-dimetoxiflavanona y 2,4,6-trimetoxidihidrochalcona. Das flavanonas isoladas foram sintetizados os derivados acetilados 5-acetoxi-7-metoxiflavanona y 5-acetoxi-4,7-dimetoxiflavanona. As estruturas foram elucidadas empregando técnicas espectrocópicas e por comparasau com dados da literatura. Os compostos naturais e seus derivados foram submetidos a bioensaáos de letalidade frente a Artemia salina. O flavonoide 5-hidroxi-7-metoxiflavanona presenta uma major atividad toxica frente aos microcrustaceos CL50 1,8 [1]g/ml.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font size="2" face="verdana"></font>     <p align="center"><font size="4" face="verdana"><b>FLAVONOIDES AISLADOS DE LAS INFLORESCENCIAS DE Piper   hispidum Kunth (PIPERACEAE) Y DERIVADOS ACETILADOS</b></font></p>     <p align="center"><b><font size="3" face="verdana">ISOLATED FLAVONOIDS FROM INFLORESCENCES OF Piper hispidum Kunth (PIPERACEAE) AND ACETYLATED </font></b></p>     <p align="center"><b><font size="3" face="verdana">DERIVATIVES   FLAVONOIDES ISOLADOS DAS INFLORESC&Ecirc;NCIAS DE Piper   hispidum Kunth (PIPERACEAE) E DERIVADOS ACETILADOS</font></b></p> <font size="2" face="verdana">     <p>Erika A. Plazas G.<sup>1</sup>, Luis E. Cuca S.<sup>1,2</sup>, Wilman A. Delgado A.<sup>1</sup></p>     <p><sup>1</sup> Departamento de Qu&iacute;mica, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional de Colombia, sede Bogot&aacute;, Bogot&aacute;, Colombia.   <a href="mailto:eaplazasg@unal.edu.co">eaplazasg@unal.edu.co</a>     <br><sup>2</sup> <a href="mailto:lecucas@unal.edu.co">lecucas@unal.edu.co</a></p>     <p>   Recibido: 14/04/08 &ndash; Aceptado: 22/08/08 </p>   <hr size="1">     <p><b>RESUMEN</b></p>     <p>A partir del extracto etan&oacute;lico de las inflorescencias   de la especie Piper hispidum   Kunth (Piperaceae) fueron aislados   tres flavonoides: 5-hidroxi-7-metoxiflavanona,   5-hidroxi-4&rsquo;,7-dimetoxiflavanona   y 2&rsquo;,4&rsquo;,6&rsquo;-trimetoxidihidrochalcona.   De las flavanonas aisladas fueron obtenidos   los derivados acetilados: 5-acetoxi-   7-metoxiflavanona y 5-acetoxi-4&rsquo;,7-   dimetoxiflavanona. Las estructuras fueron   elucidadas empleando t&eacute;cnicas espectrosc&oacute;picas   y por comparaci&oacute;n con datos   de literatura. Los compuestos naturales y   sus derivados fueron sometidos al bioensayo   de letalidad frente a Artemia salina.   El flavonoide 5-hidroxi-7-metoxiflavanona   presenta la mayor actividad t&oacute;xica   frente a los microcrust&aacute;ceos CL<sub>50</sub> 1.8 &micro;g/ml.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Palabras Clave</b>: Piper hispidum   kunth, Piperaceae, flavanonas, dihidrochalconas,   derivados acetilados y ensayo de letalidad frente a Artemia salina.</p> <hr size="1">     <p><b>ABSTRACT</b></p>     <p>From the ethanolic extract of the inflorescences   of Piper hispidum Kunth (Piperaceae)   were isolated three flavonoids   5-hydroxy-7-methoxyflavanone,   5-hydroxy-4&rsquo;,7-dimethoxyflavanone and   2&rsquo;,4&rsquo;,6&rsquo;-trimethoxydihydrochalcone.   The acetylated derivatives 5-acetoxy-   7-methoxyflavanone and 5-acetoxy- 4&rsquo;,7-   dimethoxyflavanone were synthesized   from the isolated pure flavanones. Characterization   was mainly achieved by   spectroscopic techniques and compared   with literature data. Natural compounds   and derivatives were subjected to brine   shrimp lethality bioassay. The most toxic   compound was the flavonoid 5-hydroxy-   7-methoxyflavanone with a LC<sub>50</sub> 1,8 &micro;g/ml.</p>     <p><b>Key Words</b>:Piper hispidum Kunth,   Piperaceae, flavanones, dihydrochalcones,   acetylated derivatives and brine shrimp lethality assay.</p> <hr size="1">     <p><b>RESUMO</b></p>     <p>A partir do extracto etan&oacute;lico das infloresc&ecirc;ncias   da especie Piper hispidum   Kunth (Piperaceae) foram isolados tr&ecirc;s   flavon&oacute;ides: 5-hidroxi-7-metoxiflavanona,   5-hidroxi-4&rsquo;,7-dimetoxiflavanona y   2&rsquo;,4&rsquo;,6&rsquo;-trimetoxidihidrochalcona. Das   flavanonas isoladas foram sintetizados os   derivados acetilados 5-acetoxi-7-metoxiflavanona   y 5-acetoxi-4&rsquo;,7-dimetoxiflavanona.   As estruturas foram elucidadas   empregando t&eacute;cnicas espectrosc&oacute;picas e   por comparasa&otilde; com dados da literatura.   Os compostos naturais e seus derivados   foram submetidos a bioensa&iacute;os de letalidade   frente a Artemia salina. O flavonoide   5-hidroxi-7-metoxiflavanona presenta   uma major atividad t&oacute;xica frente aos microcrust&aacute;ceos CL<sub>50</sub> 1,8 &micro;g/ml.</p>     <p><b>Palavras-Chave</b>:Piper hispidum   Kunth, Piperaceae, flavanonas, dihidrochalconas,   derivados acetilados e ensaios de letalidade frente a Artemia salina.</p> <hr size="1">     <p><b>INTRODUCCION</b></p>     <p>La familia Piperaceae es originaria del   sudoeste de la India y constituye una de   las m&aacute;s antiguas. La pimienta (Piper nigrum)   es la especie m&aacute;s representativa de   esta familia. La historia de su uso se remonta   al siglo IV a.C., &eacute;poca en la cual se   conoc&iacute;a por su nombre en s&aacute;nscrito Pippali (1).</p>     <p>En Colombia las especies del g&eacute;nero   Piper se conocen popularmente como   cordoncillos o anises y son empleadas en   el tratamiento de diversas enfermedades,   entre ellas diarrea, disenter&iacute;a, dolores de   est&oacute;mago, caries dentales, y como cicatrizante   (1). Los ind&iacute;genas de las tribus   motilones y bari en Norte de Santander   mastican los tallos de Piper erithroxyloides   (Achikaira) para prevenir la caries y   como estimulante, produciendo un efecto   narc&oacute;tico que duerme la lengua y se dice   que tiene una acci&oacute;n similar a la de la coca   (5). Uno de los departamentos con mayor   profusi&oacute;n de usos etnobot&aacute;nicos es el   Choc&oacute;: all&iacute; las comunidades ind&iacute;genas   embera emplean las diversas especies   como antiinflamatorios, analg&eacute;sicos, antirreum&aacute;ticos   y contra picadura de serpientes (6).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Los estudios fitoqu&iacute;micos realizados   en diferentes especies del g&eacute;nero Piper   han permitido aislar una gran variedad de   metabolitos: amidas, lignanos, neolignanos, terpenos y flavonoides (7). Los flavonoides de mayor abundancia en el g&eacute;nero Piper son chalconas, dihidrochalconas, flavanonas y algunas flavonas. Las chalconas y dihidrochalconas se caracterizan por no poseer sustituyentes en el anillo B, con excepci&oacute;n de algunas aisladas de las hojas de Piper aduncum y Piper methysticum (<a href="#fig1">figura 1</a>) (8).</p>     <p>    <center><a name="fig1"></a><img src="img/revistas/rcq/v37n2/v37n2a02fig1.gif"></center> </p>     <p>Las dihidrohalconas aisladas del g&eacute;nero   Piper han mostrado actividad antiparasitaria   frente a especies de Leishmania sp.   (9) y Plasmodium falciparum (10). Por   otra parte las flavanonas han presentado   actividad antif&uacute;ngica (11) y citot&oacute;xica (12).</p>     <p>La especie Piper hispidum se encuentra   ampliamente distribu&iacute;da en las Antillas,   Centroam&eacute;rica y la mayor parte de   Suram&eacute;rica. Es un arbusto nodoso, de tama&ntilde;o   y forma variable. Las caracter&iacute;sticas   morfol&oacute;gicas de esta especie son muy   diversas lo cual ha permitido diferenciarla   en m&aacute;s de seis variedades, entre ellas   P. hispidum SW, P. hispidum C.CD, P.   hispidum H.B.K. y P. hispidum Kunth   (13). La especie P. hispidum SW se encuentra   distribuida principalmente en las   Antillas y Centroam&eacute;rica, mientras las   variedades P. hispidum C.CD y P. hispidum   Kunth (especie de estudio) se   encuentran principalmente en Suram&eacute;rica (14).</p>     <p>Los estudios fitoqu&iacute;micos reportados   para la especie Piper hispidum se han realizado   principalmente sobre las hojas de   las variedades P. hispidumSWy P. hispidum   H.B.K. Se han aislado amidas pirrolid&iacute;nicas   N-[7-(3&rsquo;,4&rsquo;-metilendioxifenil)-   2(Z)-4(Z)-heptadienoil]-pirrolidina y N-   [5-(3&rsquo;,4&rsquo;-metilendioxifenil)-2(E)-pentadienoil]-   pirrolidina con actividad antif&uacute;ngica   contra el hongo Cladosporium   sphaerospermu (15). Tambi&eacute;n se han aislado   flavonoides tipo charcona, como   2&rsquo;,3&rsquo;-dihidroxi-4&rsquo;, 6&rsquo;-dimetoxichalcona,   dihidrochalconas 2&rsquo;,6&rsquo;-dihidroxi-4&rsquo;-metoxidihidrochalcona   y 2&rsquo;,4&rsquo;,6&rsquo;-trihidroxidihidrochalcona   que han presentado actividad   frente a Plasmodium falciparum,   el par&aacute;sito causante de la malaria (16), y   flavanonas como 6-hidroxi-5,7-dimetoxiflavanona,   8-hidroxi-5,7-dimetoxiflavanona,   pinostrobina y 5,7,8-trimetoxiflavanona (7).</p>     <p><b>MATERIALES Y METODOS</b></p>     <p><b>General</b></p>     <p>Los puntos de fusi&oacute;n fueron determinados   en un fusi&oacute;metro Fischer-Johns. Los   espectros infrarrojo IR fueron tomados en   el equipo Perkin Elmer FTIR Panagon   500 serie 1000 en pel&iacute;cula. Los espectros   de resonancia magn&eacute;tica nuclear RMN   1H, 13C, experimentos DEPT y bidimensionales   COSY, HMQC y HMBC, fueron   tomados en el equipo Bruker Avance   400, a 400 MHz para <sup>1</sup>H y a 100 MHz   para <sup>13</sup>C, utilizando el solvente deuterado   (CDC<sub>l3</sub>) como est&aacute;ndar interno. Para la   cromatograf&iacute;a en columna CC se emple&oacute;   s&iacute;lica gel 60 (Merck). En la cromatograf&iacute;a   en capa fina CCF se utiliz&oacute; s&iacute;lica gel   60 GF<sub>254</sub>, 0,3 mm espesor (Merck) y reveladores   universales: luz UV de &lambda; 254 y   365 nm y vapores de yodo. Los espectros   de masas de EM (IE) 70 eV fueron tomados en un equipo Shimadzu QP5050.</p>     <p><b>Material Vegetal</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La especie Piper hispidum Kunth fue recolectada   en el municipio Nocaima, Cundinamarca,   en marzo de 2005, por el profesor   Wilman Delgado, y clasificada por   la bi&oacute;loga Laura Clavijo en septiembre   del mismo a&ntilde;o. Un esp&eacute;cimen reposa en   el Herbario Nacional Colombiano del   Instituto de Ciencias de la Universidad   Nacional de Colombia con el n&uacute;mero de colecci&oacute;n COL-510518.</p>     <p><b>Extraccion y aislamiento</b></p>     <p>Las inflorescencias de Piper hispidum   Kunth secas y troceadas (160 g) se sometieron   a extracci&oacute;n por maceraci&oacute;n con   etanol del 96%. El extracto etan&oacute;lico resultante se concentr&oacute; a presi&oacute;n reducida, obteniendo 16,1 g de extracto crudo. Se sometieron 14,9 g de extracto a fraccionamiento por CC (s&iacute;lica gel, solventes de polaridad creciente EdP, CH<sub>2</sub>Cl<sub>2</sub>, CHC<sub>l3</sub>, iPrOH y MeOH), obteniendo 135 fracciones que fueron agrupadas en 38 fracciones finales de acuerdo con su perfil en cromatograf&iacute;a en capa delgada.</p>     <p>Las fracciones 9-11 (583 mg) se sometieron   a purificaci&oacute;n por CC (s&iacute;lica gel;   C<sub>6</sub>H<sub>5</sub>CH<sub>3</sub>-AcOiPr 9:1), obteniendo cuatro   fracciones. La fracci&oacute;n 3 se someti&oacute; a   lavados sucesivos con MeOH y cristalizaci&oacute;n   en C<sub>6</sub>H<sub>5</sub>CH<sub>3</sub> para obtener el compuesto   (350,6 mg) en forma de l&aacute;minas   blancas con punto de fusi&oacute;n 92-93 &ordm;C.   Las fracciones 13 y 14 de la columna   fraccionamiento se sometieron a CC (s&iacute;lica   gel; C<sub>6</sub>H<sub>5</sub>CH<sub>3</sub>-AcOiPr 8:2), obteniendo   cuatro fracciones finales. Las fracciones   2-3 se reunieron y recristalizaron con   MeOH, obteniendo cristales blancos en   forma de agujas y p.f. 112-113 &ordm;C, compuesto   (509,2 mg). A las fracciones   18-25 (1129,2 mg) se les realiz&oacute; CC (s&iacute;lica   gel; n-hexano-acetona 7:3), obteniendo   doce fracciones. La fracci&oacute;n 7 de esta   columna se someti&oacute; nuevamente a CC   con s&iacute;lica gel y hexano/acetona 6:4; la   fracci&oacute;n 7-3 fue recristalizada con metanol   obteniendo el compuesto (722,6   mg) como un s&oacute;lido amarillo en forma de agujas con p.f. 156-158 &ordm;C.</p>     <p><b>Obtenci&oacute;n de los derivados acetilados</b></p>     <p>En un experimento t&iacute;pico de acetilaci&oacute;n   (17) se adicion&oacute; 1 mL de anh&iacute;drido ac&eacute;tico   y 0,4 mL de piridina a 40,9 mg del   compuesto y 52,4 mg del compuesto .   La mezcla de reacci&oacute;n se someti&oacute; a reflujo   con agitaci&oacute;n constante a 80 &ordm;C. La reacci&oacute;n fue monitoreada por CCF. A las 24 horas se suspendi&oacute; el calentamiento, y a la mezcla de reacci&oacute;n se le adicion&oacute; hielo y HCl al 5% (3*2 mL) hasta pH 5. Se realizaron extracciones con CHCl<sub>3</sub> (3*10 mL). Las fases org&aacute;nicas se reunieron y secaron con CaCl<sub>2</sub>, se filtr&oacute; y el solvente se elimin&oacute; por destilaci&oacute;n a presi&oacute;n reducida. Los compuestos se purificaron por CC (s&iacute;lica gel; C<sub>6</sub>H<sub>5</sub>CH<sub>3</sub>-AcOiPr 8:2), obteniendo el compuesto (35,4 mg) como un aceite amarillo que cristaliz&oacute; r&aacute;pidamente, y el compuesto (38,9 mg) que se obtuvo como cristales blancos en forma de agujas.</p>     <p><b>Ensayo de letalidad con <i>artemia salina</i></b></p>      <p>El ensayo de letalidad en A. salina se realiz&oacute;   de acuerdo con el protocolo sugerido   por McLaughlin y colaboradores (18).   Los huevos de A. salina se incubaron durante   24 horas a una temperatura de 28 &ordm;C   en un medio de cultivo consistente en una   soluci&oacute;n acuosa de sal marina a una concentraci&oacute;n   de 38 g/L. Los compuestos se   solubilizaron inicialmente en DMSO   (250-500&micro;l) y se prepararon soluciones a   concentraciones de 100, 50, 10 y 1   &micro;g/mL usando medio de cultivo. Se realiz&oacute;   un control negativo empleando DMSO   a la concentraci&oacute;n m&aacute;xima 2% en medio   de cultivo. Los ensayos se realizaron por   triplicado empleando 10 nauplios por   pozo. Al cabo de 24 horas se hicieron las   lecturas, y se registr&oacute; el n&uacute;mero de sobrevivientes en cada pozo.</p>     <p>Los datos obtenidos fueron procesados   con el programa estad&iacute;stico &ldquo;Epa probit   analysis program&rdquo; con el fin de determinar   la concentraci&oacute;n letal 50 (CL<sub>50</sub>) y un rango de confianza de 95%.</p>     <p><b>RESULTADOS Y DISCUSION</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Las cantidades aisladas de (350,6 mg),   (509,2 mg) y (722,6 mg) evidencian la   importante presencia de estos compuestos   en el extracto etan&oacute;lico, lo cual permite   considerarlos como componentes mayoritarios   de las inflorescencias de la   especie Piper hispidum Kunth. Los rendimientos   del aislamiento y purificaci&oacute;n de   estos compuestos a partir del material vegetal   seco son de 0,22%, 0,32% y 0,45%, respectivamente.</p>     <p>Los compuestos - en CCF presentaron   coloraciones amarillas en la luz visible   y verdes fluorescentes en el UV 365   nm por exposici&oacute;n a vapores de amon&iacute;aco.   Este comportamiento es caracter&iacute;stico   para compuestos de tipo flavonoide   (19). Los compuestos y dan prueba   positiva al revelar con FeCl<sub>3</sub> en CCF;   esto indica la presencia de OH fen&oacute;licos en sus estructuras (19).</p>     <p>La caracterizaci&oacute;n de los compuestos   - se realiz&oacute; empleando t&eacute;cnicas espectrosc&oacute;picas   como IR, RMN 1H, 13C, experimentos DEPT y bidimensionales.</p>     <p>El compuesto fue identificado como   5-hidroxi-7-metoxiflavanona, conocido   como pinostrobina, por comparaci&oacute;n con   datos de literatura (20). Esta flavanona ha   sido aislada de diferentes especies como   Boesenbergia rotunda (Zingiberaceae),   en la familia Piperaceae y espec&iacute;ficamente   en el g&eacute;nero Piper de las especies Piper   aduncum y Piper hispidum Sw (hojas) (7).</p>     <p>El compuesto fue caracterizado   como 5-hidroxi-4&rsquo;,7-dimetoxiflavanona.   Esta flavanona ha sido encontrada en especies de las familias Annonaceae (21), Lauraceae (22) y Zingiberaceae (23). Sin embargo, este flavonoide no ha sido reportado en la familia Piperaceae.</p>     <p>    <center><a name="tab1"></a><img src="img/revistas/rcq/v37n2/v37n2a02tab1.gif"></center> </p>     <p>    <center><a name="tab2"></a><img src="img/revistas/rcq/v37n2/v37n2a02tab2.gif"></center> </p>     <p>El compuesto fue identificado   como 2&rsquo;,4&rsquo;,6&rsquo;-trimetoxidihidrochalcona.   No existen   muchos reportes del aislamiento   de esta dihidrochalcona.   En la literatura aparece   como aislada del helecho   Woodsia scopulina (24). Sin   embargo no se reportan los datos   de caracterizaci&oacute;n del compuesto.   Los autores hacen referencia   a otro art&iacute;culo, pero   en este se sintetizan chalconas   y no dihidrochalconas (25).   Teniendo en cuenta que no se   posee un reporte de los datos   de RMN para la identificaci&oacute;n   de este compuesto, a continuaci&oacute;n   se presentan los resultados obtenidos.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Compuesto 3: IR <i>n</i><sub>m&aacute;x</sub> cm<sup>-1</sup>: 3022,   3004, 2971, 2849, 1691, 1645, 1594,   1446, 1213, 1116; RMN <sup>1</sup>H: ver <a href="#tab1">tabla 1</a>;   RMN <sup>13</sup>C: ver <a href="#tab2">tabla 2</a>; EM (IE) m/z: 300 (M+), 272, 255, 193, 167.</p>     <p>A los compuestos R<sub>f</sub> 0,7 (C<sub>6</sub>H<sub>5</sub>CH<sub>3</sub>-   AcOiPr 9:1) y Rf 0,6 (C6H5CH3-   AcOipR 9:1) se les realiz&oacute; una acetilaci&oacute;n   para obtener los respectivos derivados   Rf 0,5 (C<sub>6</sub>H<sub>5</sub>CH<sub>3</sub>-AcOiPr 9:1) y Rf 0,4   (C<sub>6</sub>H<sub>5</sub>CH<sub>3</sub>-AcOiPr 9:1), con el fin de observar   su toxicidad frente a Artemia salina.   La comparaci&oacute;n de los Rf de los compuestos   y con y permiten inferir la obtenci&oacute;n de los derivados acetilados. Se evidencia un aumento en la polaridad de los compuestos sintetizados respecto a los compuestos naturales, que se debe a la introducci&oacute;n en la mol&eacute;cula de un grupo acetoxi y a la p&eacute;rdida de un grupo hidroxilo que se encuentra quelatado con el carbonilo de la benzopirona. La confirmaci&oacute;n de la obtenci&oacute;n de los compuestos y se realiz&oacute; empleando las t&eacute;cnicas espectrosc&oacute;picas de IR, RMN <sup>1</sup>H y <sup>13</sup>C, y por comparaci&oacute;n con los datos obtenidos para los compuestos y . En el espectro IR de los compuestos y se observa la desaparici&oacute;n de la banda de estiramiento de O-H (3400 cm-1) y la aparici&oacute;n de una banda hacia 1769 cm-1 caracter&iacute;stica para el estiramiento C=O en carbonilos de &eacute;ster que se puede confirmar con la banda en 1158 cm-1 correspondiente a la banda del estiramiento C-O de &eacute;ster. En el espectro de <sup>1</sup>H-RMN del compuesto se observa la desaparici&oacute;n de la se&ntilde;al en &delta; 12,00 (1H, s) correspondiente al prot&oacute;n del OH en la posici&oacute;n 5 que se encuentra quelatado con el grupo carbonilo de la benzopirona. De igual forma se observa la presencia de una se&ntilde;al cerca en &delta; 2,39 (3H, s) correspondiente a los protones del grupo CH<sub>3</sub> unidos al carbonilo del grupo acetilo. Este comportamiento se presenta tambi&eacute;n para el compuesto (<a href="#tab3">tabla 3</a>).</p>     <p>    <center><a name="tab3"></a><img src="img/revistas/rcq/v37n2/v37n2a02tab3.gif"></center> </p>     <p>En el espectro de <sup>13</sup>C-RMN de los   compuestos y se observa la presencia   de las se&ntilde;ales caracter&iacute;sticas para el grupo   acetoxi (13): el carbonilo de &eacute;ster en &delta;   170 y el CH3 unido al carbonilo en &delta; 21,4.   Tambi&eacute;n se presentan diferentes desplazamiento   de las se&ntilde;ales respecto a los compuestos y (<a href="#tab4">tabla 4</a>).</p>     <p>    <center><a name="tab4"></a><img src="img/revistas/rcq/v37n2/v37n2a02tab4.gif"></center> </p>     <p>Los compuestos - fueron sometidos   al bioensayo de letalidad frente a Artemia   salina. En los resultados (<a href="#tab5">tabla 5</a>) se   muestra la concentraci&oacute;n letal para la mitad   de la poblaci&oacute;n de microcrust&aacute;ceos o   concentraci&oacute;n letal 50 (CL50). El compuesto   pinostrobin, presenta la mayor   actividad t&oacute;xica frente a los nauplios   (CL50 1,8 &micro;g/mL). Esta flavanona ha demostrado tener muy buena actividad cito t&oacute;xica frente a c&eacute;lulas cancer&iacute;genas de mama (26) y leucemia (12). Los resultados del bioensayo de toxicidad frente a Artemia salina han evidenciado tener correlaci&oacute;n directa con los resultados en ensayos de actividad citot&oacute;xica en c&eacute;lulas cancer&iacute;genas. Por ejemplo de la especie Piper gibbilimbum se aislaron 4 alquenilfenoles (gibbilimbol A-D) que presentaron CL50 cercanas a 5,0 &micro;g/mL frente a Artemia salina. En el bioensayo de citotoxicidad frente a c&eacute;lulas KB (carcinoma de nasofaringe) se obtuvieron DE50 entre 7,8 y 2,1 &micro;g/mL (27). Esta correlaci&oacute;n se observa igualmente en los resultados de Artemia salina y la marcada actividad citot&oacute;xica de pinostrobina.</p>     <p>    <center><a name="tab5"></a><img src="img/revistas/rcq/v37n2/v37n2a02tab5.gif"></center>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El compuesto , 5-hidroxi-   4&rsquo;,7-dimetoxiflavanona, que se   diferencia de pinostrobina por la   presencia de un metoxilo en la posici&oacute;n   4&rsquo;, posee una actividad moderada   frente a Artemia salina (CL<sub>50</sub>   45,8 &micro;g/mL) y por lo menos 40 veces   menor que la de pinostrobina.   Este compuesto no posee reportes   de citotoxicidad en c&eacute;lulas cancer&iacute;genas.   La dihidrochalcona 2&rsquo;, 4&rsquo;,   6&rsquo;-trimetoxidihidrochalcona y los   derivados acetilados: 5-acetoxi-   7-metoxiflavanona y 5-acetoxi- 4&rsquo;,7-dimetoxiflavanona   poseen baja actividad   t&oacute;xica. La acetilaci&oacute;n de los compuestos   y hace que se disminuya la actividad   frente a Artemia salina.   Este efecto es m&aacute;s notorio   para pinostribina,   puesto que su derivado   acetilado es 80 veces   menos activo. Este resultado   implica una importancia   en la presencia   de hidroxilos para la bioactividad.</p>     <p><b>AGRADECIMIENTOS</b></p>     <p>Al grupo de Productos Naturales Vegetales   del Departamento de Qu&iacute;mica de la   Universidad Nacional de Colombia (sede   Bogot&aacute;) y al qu&iacute;mico Sebasti&aacute;n G&oacute;mez   Robles del Laboratorio de RMN por la toma de espectros.</p>     <p><b>REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS</b></p>     <!-- ref --><p>1. De la R&uacute;a, A. El poder curativo de   las hierbas. Bogot&aacute;: C&iacute;rculo de lectores. 1999. p. 145.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0120-2804200800020000200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  2. Mahecha, G. Fundamentos y metodolog&iacute;a   para la identificaci&oacute;n de   plantas. Colombia: Proyecto Biopacifico.   1997. p. 165.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0120-2804200800020000200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  3. Clouatre, D. L. Kava kava: examining   new reports of toxicity. Toxicology   Letters. 2004.150 (1): 85-96.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0120-2804200800020000200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  4. Bol&iacute;var, H.; Betancourt, F. Etnobot&aacute;nica   de las comunidades huaorani   en el norocidente ecuatoriano. Lyonia.   A Journal of ecology and application.   2006.10 (2): 7-17.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0120-2804200800020000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  5. Pi&ntilde;eres, J. Plantas medicinales   (compendio de farmacolog&iacute;a vegetal).   Bogot&aacute;: Escuela de Medicina.   Fundaci&oacute;n Universitaria Juan N.   Corpas. 1991. pp. 202-207.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0120-2804200800020000200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  6. Simposio sobre plantas t&oacute;xicas. Especies   medicinales utilizadas por las comunidades   ind&iacute;genas embera del Choc&oacute;.   Herbario Universidad de Antioquia   (HUA). 1994. pp. 125-127.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0120-2804200800020000200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 7. Parmar, S.; Jain, C.; Bisht, S.; Jain,   R.; Taneja, P.; Jha, A.; Tyagi, O.   D.; Prasad, K.; Wengel, J.; Olsen,   E.; Boll, M. Phytochemistry of the   genus Piper. Phytochemistry. 1997.   46(4): 597-673.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0120-2804200800020000200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  8. Portet, B. Recherche Bioguidee de   molecules antipaludiques dune   plante guyanaise Piper hostmannianum   var. Berbicense. Ph.D. These.   Universite Paul Sabatier Tolouse III.   2007. p. 16.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0120-2804200800020000200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  9. Hermoso, A.; Jim&eacute;nez, A.; Mamani,   Z.; Bazzocchi, I.; Pi&ntilde;ero, J.; Ravelob,   A.; Valladaresa, B. Antileishmanial   Activities of Dihydrochalcones   from Piper elongatum and   Synthetic Related Compounds.   Structural Requirements for Activity.   Bioorganic and Medicinal   Chemistry. 2003. 11: 3975-3980.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0120-2804200800020000200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  10. Portet, B.; Fabre, N.; Roumy, V.;   Gornitzka, H.; Bourdy, G.; Chevalley,   S.; Sauvain, M.; Valentin, A.;   Moulis, C. Activity-guided isolation   of antiplasmodial dihydrochalcones   and flavanones from Piper hostmannianum   var. Berbicense. Phytochemistry.   2007. 68(2): 1312-1320.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0120-2804200800020000200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  11. Daneluttea, A.; Lago, J.; Young,   M.; Katoa, M. Antifungal flavanones   and prenylated hydroquinones   from Piper crassinervium Kunth.   Phytochemistry. 2003.64 : 555-559.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0120-2804200800020000200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  12. Smolarza, H.; Mendykb, E.; Bogucka-   Kockaa, A.;Kockic, J. Pinostrobin   An Anti-Leukemic Flavonoid from   Polygonum lapathifolium L. ssp. Z.   Naturforsch. 2006.61 : 64-68.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0120-2804200800020000200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  13. Steyermark, J. Flora de Venezuela.   Piperaceae. Caracas. Venezuela.   Instituto Nacional de Parques. Educaci&oacute;n   Ambiental. 1990.2 : 440.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0120-2804200800020000200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14. Trelease, W.; Yuncker, T. The Piperaceae   of northem South America.   Illinois: University of Illinois Press. 1950. pp. 271-277.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0120-2804200800020000200014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  15. Alecio, C.; da Silva, V.; Marx, M.   C.; Kato, M.; Furlan, M. Antifungal   Amide from leaves of Piper hispidum.   Journal Natural Products.   1998. 61: 637-639.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0120-2804200800020000200015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  16. Jenett-Siems, K.; Mockenhaupt, F.;   Bienzle, U.; Gupta, M.; Eich, E. In   vitro antiplasmodial activity of Central   American medicinal plants. Tropical   Medicine and International   Health. 1999.4 : 611-615.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0120-2804200800020000200016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  17. Cano, A.; Espinoza, M.; Ramos,   C.; Delgado, G. New prenilated flavanones   from Esenbeckia berlandieri   ssp Acapulsensis. Journal of the   Mexican Chemical Society. 2006.   50(2): 71-75.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0120-2804200800020000200017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  18. 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