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<journal-title><![CDATA[Revista Colombiana de Química]]></journal-title>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[INDUCCIÓN DIFERENCIAL DE LA ENZIMA PEROXIDASA Y SU RELACIÓN CON LIGNIFICACIÓN EN LOS MECANISMOS DE DEFENSA DEL CLAVEL (Dianthus caryophyllus L.) DURANTE SU INTERACCIÓN CON Fusarium oxysporum f. sp. Dianthi]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[DIFFERENTIAL INDUCTION OF PEROXIDASE ENZYME AND ITS RELATIONSHIP WITH LIGNIFICATION IN CARNATION DEFENSE (Dianthus caryophyllus L.) MECHANISM AGAINST Fusarium oxysporum f. sp. Dianthi]]></article-title>
<article-title xml:lang="pt"><![CDATA[INDUCAO DIFERENCIAL DA ENZIMA PEROXIDASEEASUARELACAO COM A LENHIFICACAO NOS MECANISMOS DE DEFESA DE CRAVO (Dianthus caryophyllus L.) DURANTE A SUAINTERACCAO COM Fusarium oxysporum f. sp. Dianthi]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Peroxidase (POD) enzymatic activity and lignin content in carnation stems (Diant-hus cayophyllus L.) infected with the fungus Fusarium oxysporum f.sp. dianthi race 2 were evaluated with the purpose of determining the possible enzyme participation in the plant defense response and in the resistance to the vascular wilting. Initially, the conditions for extraction and determination of enzymatic activity were selected. It was found that when citrate buffer 100 mM pH 5.0 with 3% PVPP was employed, the results of POD activity in enzyme extract obtained from carnation stems were higher. Best conditions were set for POD activity measure through oxidation reaction of o-dianisidine and H2O2 at 460 nm. A reaction mixture with a concentration of o-dianisidine 0,6mM and H2O2 2.0 mM in citrate buffer 100 mM pH 5.5 at 45 ºC displayed the best results for enzyme quantification. Once conditions were established, tolerant and susceptible vascular wilting carnation cuttings were inoculated with the pathogen. In each treatment at stem level, different postinoculation times were evaluated for enzyme activity levels and lignin accumulation. Tolerant variety (Barbara) showed a POD induction at 8 and 48 h pos-inoculation and an increase in lignin content at 48 and 72 h. At the same time, in susceptible variety (Delphi) there were no significant changes in POD levels or lignin contents. Therefore, it was established that POD activity induction is associated to lignification which, at stem level, is part of the mechanisms associated to defense in carnation (Dianthus caryophyllus L.) against Fusarium oxysporum f. sp. dianthi.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="pt"><p><![CDATA[Foram avaliadas a actividade enzimática peroxidasa (POD) e o conteúdo de lignina em talos de estacas de cravo (Dianthus cayophyllus L.) inoculados com o fungo Fusarium oxysporum f.sp. dianthi raça 2, com o propósito de determinar a sua possível participação na resposta de defensa e à resistência da planta ao murchamento vascular. Inicialmente foram seleccionadas as condiciones para a extracção e determinação da actividade enzimática. Foi encontrado que o tratamento com buffer citrato 100 mM pH 5,0 com 3% de PVPP, apresentou os melhores resultados de actividade peroxidasa na extracção da enzima a partir de talos de cravo. Foram determinadas as melhores condições para medir a actividade enzimática POD a través da reacção de oxidação de o-dianisidi na com H2O2 e com seguimento a 460 nm. Uma mistura de reacção com uma concentração 0,6 mM de o-dianisidina e 2,0 mM de H2O2 em buffer citrato 100 mM a pH 5,5 e 45 °C, apresentou os melhores resultados para a quantificação da enzima. Uma vez estabelecidas as condições, estacas de cravo de uma variedade tolerante e uma susceptível ao murchamento vascular foram inoculadas com o fungo patogénico, e se avaliaram a diferentes tempos pos-inoculação os níveis de actividade desta enzima e de acumulação de lignina. A variedade tolerante (Bárbara), apresentou uma indução de POD às 8 e 48 h pos-inoculação e um aumento no conteúdo de lignina às 48 y 72 h. Por outro lado, na variedade susceptível (Delphi) não se encontraram mudanças significativas nos níveis de POD nem no conteúdo de lignina. Se estabeleceu, por tanto, que a indução da actividade POD está associada à lignificação que a nível de talo faz parte dos mecanismos associados à defesa no modelo cravo-Fusarium oxysporum f. sp. dianthi raça 2.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p align="center"><font size="4"><b>INDUCCI&Oacute;N DIFERENCIAL DE LA ENZIMA PEROXIDASA Y   SU RELACI&Oacute;N CON LIGNIFICACI&Oacute;N EN LOS MECANISMOS DE DEFENSA DEL CLAVEL <i>(Dianthus caryophyllus </i>L.) DURANTE SU INTERACCI&Oacute;N CON <i>Fusarium   oxysporum </i>f. sp. <i>Dianthi</i></b></font></p>     <p align="center"><b><font size="3">DIFFERENTIAL INDUCTION OF PEROXIDASE ENZYME AND   ITS RELATIONSHIP WITH LIGNIFICATION IN CARNATION DEFENSE <i>(Dianthus   caryophyllus </i>L.) MECHANISM AGAINST <i>Fusarium oxysporum </i>f. sp. <i>Dianthi</i></font></b></p>     <p align="center"><font size="3"><b>INDUCAO DIFERENCIAL DA ENZIMA   PEROXIDASEEASUARELACAO COM A LENHIFICACAO NOS MECANISMOS DE DEFESA DE CRAVO <i>(Dianthus caryophyllus </i>L.) DURANTE A SUAINTERACCAO COM <i>Fusarium   oxysporum </i>f. sp. <i>Dianthi</i></b></font></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p><i>Diana C. Cuervo<sup>1</sup>, Sixta T. Martinez<sup>1</sup>' <sup>2</sup>,   Harold D. Ardila<sup>1</sup>, Bianca L. Higuera<sup>1 </sup></i></p>     <p>1 Departamento de Qu&iacute;mica, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional de   Colombia, sede Bogot&aacute;, Bogot&aacute;, Colombia.</p>     <p>2 <a href="mailto:stmartinezp@unal.edu.co">stmartinezp@unal.edu.co</a></p>     <p>Recibido: 14/07/09 - Aceptado: 15/12/09</p> <hr>     <p><b>RESUMEN</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Se evalu&oacute; la actividad enzim&aacute;tica peroxidasa (POD) y el contenido de lignina   en tallos de esquejes de clavel <i>(Dianthus cayophyllus </i>L.) inoculados con   el hongo <i>Fusarium oxysporum </i>f.sp. <i>dianthi </i>(Fod) raza 2, con el fin   de determinar su posible participaci&oacute;n en la respuesta de defensa y en la   resistencia de la planta al marchitamiento vascular. Inicialmente se   seleccionaron las condiciones para la extracci&oacute;n y determinaci&oacute;n de la actividad   enzim&aacute;tica. Se encontr&oacute; que el tratamiento con buffer citrato 100 mM pH 5,0 con   3% de PVPP present&oacute; los mejores resultados de actividad peroxidasa para la   extracci&oacute;n de la enzima a partir de tallos de clavel. Se determinaron las   mejores condiciones para la medida de actividad enzim&aacute;tica POD a trav&eacute;s de la   reacci&oacute;n de oxidaci&oacute;n de o-dianisidina con H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> seguida a   460 nm. Una mezcla de reacci&oacute;n con una concentraci&oacute;n 0,6 mM de o-dianisidina y   2,0 mM de H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> en buffer citrato 100 mM a pH 5,5 y 45&deg;C,   present&oacute; los mejores resultados para la cuantificaci&oacute;n de la enzima. Una vez   establecidas las condiciones, esquejes de clavel de una variedad tolerante y una   susceptible al marchitamiento vascular fueron inoculados con el pat&oacute;geno y se   evaluaron los niveles de actividad de POD y de acumulaci&oacute;n de lignina a   diferentes tiempos pos-inoculaci&oacute;n. La variedad tolerante (B&aacute;rbara), present&oacute;   inducci&oacute;n de dicha enzima a las 8 y 48 h pos-inoculaci&oacute;n y aumento en el   contenido de lignina a 48 y 72 h. A su vez, en la variedad susceptible (Delphi)   no se encontraron cambios significativos en los niveles de POD ni en el   contenido de lignina. Se estableci&oacute;, por tanto, que la inducci&oacute;n de la actividad   POD est&aacute; asociada a la lignificaci&oacute;n, que a nivel del tallo, hace parte de los   mecanismos asociados a defensa en el modelo <i>clavel-Fusarium oxysporum </i>f.   sp. <i>dianthi.</i></p>     <p><b>Palabras clave: </b>clavel, <i>Fusarium oxysporum, </i>defensa vegetal,   peroxidasa, lignina.</p> <hr>     <p><b>ABSTRACT</b></p>     <p>Peroxidase (POD) enzymatic activity and lignin content in carnation stems <i>(Diant-hus cayophyllus </i>L.) infected with the fungus <i>Fusarium oxysporum </i>f.sp. <i>dianthi </i>race 2 were evaluated with the purpose of determining   the possible enzyme participation in the plant defense response and in the   resistance to the vascular wilting. Initially, the conditions for extraction and   determination of enzymatic activity were selected. It was found that when   citrate buffer 100 mM pH 5.0 with 3% PVPP was employed, the results of POD   activity in enzyme extract obtained from carnation stems were higher. Best   conditions were set for POD activity measure through oxidation reaction of   o-dianisidine and H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> at 460 nm. A reaction mixture with   a concentration of <i>o</i>-dianisidine 0,6mM and H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> 2.0   mM in citrate buffer 100 mM pH 5.5 at 45 <sup>o</sup>C displayed the best results for enzyme quantification. Once conditions were established,   tolerant and susceptible vascular wilting carnation cuttings were inoculated   with the pathogen. In each treatment at stem level, different postinoculation   times were evaluated for enzyme activity levels and lignin accumulation.   Tolerant variety (Barbara) showed a POD induction at 8 and 48 h pos-inoculation   and an increase in lignin content at 48 and 72 h. At the same time, in   susceptible variety (Delphi) there were no significant changes in POD levels or   lignin contents. Therefore, it was established that POD activity induction is   associated to lignification which, at stem level, is part of the mechanisms   associated to defense in carnation <i>(Dianthus caryophyllus </i>L.) against <i>Fusarium oxysporum </i>f. sp. <i>dianthi.</i></p>     <p><b>Key words: </b>carnation, <i>Fusarium oxysporum, </i>plant defense,   peroxidase, lignin.</p> <hr>     <p><b>RESUMO</b></p>     <p>Foram avaliadas a actividade enzim&aacute;tica peroxidasa (POD) e o conte&uacute;do de   lignina em talos de estacas de cravo <i>(Dianthus cayophyllus </i>L.) inoculados   com o fungo <i>Fusarium oxysporum </i>f.sp. <i>dianthi </i>ra&ccedil;a 2, com o   prop&oacute;sito de determinar a sua poss&iacute;vel participa&ccedil;&atilde;o na resposta de defensa e &agrave;   resist&ecirc;ncia da planta ao murchamento vascular. Inicialmente foram seleccionadas   as condiciones para a extrac&ccedil;&atilde;o e determina&ccedil;&atilde;o da actividade enzim&aacute;tica. Foi   encontrado que o tratamento com buffer citrato 100 mM pH 5,0 com 3% de PVPP,   apresentou os melhores resultados de actividade peroxidasa na extrac&ccedil;&atilde;o da   enzima a partir de talos de cravo. Foram determinadas as melhores condi&ccedil;&otilde;es para   medir a actividade enzim&aacute;tica POD a trav&eacute;s da reac&ccedil;&atilde;o de oxida&ccedil;&atilde;o de <i>o</i>-dianisidi na com H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> e com seguimento a 460 nm.   Uma mistura de reac&ccedil;&atilde;o com uma concentra&ccedil;&atilde;o 0,6 mM de <i>o</i>-dianisidina e 2,0   mM de H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> em buffer citrato 100 mM a pH 5,5 e 45 &deg;C,   apresentou os melhores resultados para a quantifica&ccedil;&atilde;o da enzima. Uma vez   estabelecidas as condi&ccedil;&otilde;es, estacas de cravo de uma variedade tolerante e uma   suscept&iacute;vel ao murchamento vascular foram inoculadas com o fungo patog&eacute;nico, e   se avaliaram a diferentes tempos pos-inocula&ccedil;&atilde;o os n&iacute;veis de actividade desta   enzima e de acumula&ccedil;&atilde;o de lignina. A variedade tolerante (B&aacute;rbara), apresentou   uma indu&ccedil;&atilde;o de POD &agrave;s 8 e 48 h pos-inocula&ccedil;&atilde;o e um aumento no conte&uacute;do de   lignina &agrave;s 48 y 72 h. Por outro lado, na variedade suscept&iacute;vel (Delphi) n&atilde;o se   encontraram mudan&ccedil;as significativas nos n&iacute;veis de POD nem no conte&uacute;do de   lignina. Se estabeleceu, por tanto, que a indu&ccedil;&atilde;o da actividade POD est&aacute;   associada &agrave; lignifica&ccedil;&atilde;o que a n&iacute;vel de talo faz parte dos mecanismos associados   &agrave; defesa no modelo <i>cravo-Fusarium oxysporum </i>f. sp. <i>dianthi </i>ra&ccedil;a   2.</p>     <p><b>Palavras-chave: </b>cravo, <i>Fusarium oxysporum, </i>defesa vegetal,   peroxidasa.</p> <hr>     <p><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></p>     <p>El marchitamiento vascular causado por el pat&oacute;geno <i>Fusarium oxysporum </i>f. sp. <i>dianthi (Fod) </i>es la enfermedad de mayor impacto para el   cultivo del clavel en el mundo. Colombia es el segundo productor mundial de esta   flor, y la presencia de la enfermedad genera p&eacute;rdidas a nivel econ&oacute;mico y una   disminuci&oacute;n significativa en su producci&oacute;n. Para el control del marchitamiento   vascular, el sector floricultor ha implementado un plan integrado de manejo   basado principalmente en evitar la entrada y diseminaci&oacute;n del pat&oacute;geno en los   cultivos (1). Sin embargo, dicho plan, adem&aacute;s de aumentar los costos en la   producci&oacute;n, genera apenas un control aceptable de la enfermedad, siendo   frecuente la aparici&oacute;n de la misma en los cultivos. El desarrollo de nuevas   alternativas de control m&aacute;s eficaces, compatibles con los sistemas de producci&oacute;n   actuales e inocuos para el medio ambiente, se convierten en una necesidad para   el fortalecimiento del cultivo de esta flor en nuestro pa&iacute;s. Alternativas de   control como el cultivo de variedades tolerantes, el control biol&oacute;gico y el uso   de elicitores, han llamado la atenci&oacute;n de la comunidad cient&iacute;fica en este   aspecto. Para el desarrollo de dichas alternativas se requiere un conocimiento   detallado de los mecanismos bioqu&iacute;micos y moleculares involucrados en la   interacci&oacute;n planta-pat&oacute;geno, mecanismos que finalmente van a determinar la   resistencia o susceptibilidad a la enfermedad. Se ha encontrado que la infecci&oacute;n   activa un proceso de defensa multicomponente y compartimentalizado, que tiene   como objetivo localizar el pat&oacute;geno en los tejidos vasculares xilem&aacute;ticos   infectados (2-4). En este proceso, inicialmente se presenta la formaci&oacute;n de   geles, compuestos principalmente de polisac&aacute;ridos y compuestos fen&oacute;licos en los   vasos, ambos exudados de las c&eacute;lulas parenquim&aacute;ticas adyacentes al punto de   infecci&oacute;n. Una vez los fen&oacute;licos se fusionan a la pared y a las gomas, estos   pueden estar sujetos a reacciones de polimerizaci&oacute;n y oxidaci&oacute;n, con el fin de   formar una barrera durable en la interfase de la infecci&oacute;n y los tejidos sanos.   Este proceso conocido como lignificaci&oacute;n, es central en la respuesta de defensa   del clavel a este pat&oacute;geno (5, 6). La enzima peroxidasa desempe&ntilde;a un papel   determinante en diversos procesos fisiol&oacute;gicos necesarios para el funcionamiento   de la plantas, incluida la lignificaci&oacute;n (7-9). La participaci&oacute;n de esta enzima   en los mecanismos de defensa ha sido ampliamente documentada para diversas   especies (8-10), y a pesar de que un incremento en la actividad de esta enzima   es frecuente en las condiciones de estr&eacute;s bi&oacute;tico, para muchos modelos   planta-pat&oacute;geno, incluido el estudiado en esta investigaci&oacute;n, dicho aumento en   la actividad no se ha relacionado simult&aacute;neamente con otros procesos de defensa   como la lignificaci&oacute;n. La evaluaci&oacute;n simult&aacute;nea de los fen&oacute;menos bioqu&iacute;micos que   se presentan durante la interacci&oacute;n <i>in vivo </i>entre la planta y el pat&oacute;geno   son un primer paso en la b&uacute;squeda de aquellos procesos que al regular la   respuesta de defensa vegetal, pueden ser finalmente determinantes en la   resistencia a la enfermedad (10). Con el fin de aportar en el conocimiento de   estos fen&oacute;menos bioqu&iacute;micos relacionados con defensa en la interacci&oacute;n <i>clavel-Fusarium oxysporum </i>f. sp. <i>dianthi, </i>en el presente trabajo   se evaluaron de manera simult&aacute;nea los niveles de la enzima peroxidasa y los   niveles de lignina, en variedades con diferentes niveles de tolerancia a la   enfermedad durante el proceso mismo de la interacci&oacute;n entre estos dos   organismos.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></p>     <p><b>Extracci&oacute;n de la enzima POD</b></p>     <p>La primera etapa del presente estudio consisti&oacute; en la selecci&oacute;n de las   condiciones para realizar la extracci&oacute;n de la enzima peroxidasa a partir de   tallos de clavel. Con tal fin se realizaron ensayos de extracci&oacute;n usando   metodolog&iacute;as previamente reportadas para otras enzimas presentes en esta matriz   vegetal (11) (<a href="#t1">Tabla 1</a>). Se pesaron aproximadamente 0,4 g de   tallos y se maceraron vigorosamente con nitr&oacute;geno l&iacute;quido. Se adicion&oacute; la   soluci&oacute;n extractora por evaluar y se agit&oacute; durante 1 h a 4 &deg;C. Se centrifug&oacute; a   12000xg por 30 minutos y el sobrenadante fue separado del precipitado para la   determinaci&oacute;n de actividad y cuantificaci&oacute;n de prote&iacute;na. El mismo procedimiento   se sigui&oacute; con cada uno de los sistemas de extracci&oacute;n denominados (E1, E2, E3 y   E4), usando diferentes aditivos como la PVPP (Polivinil polipirrolidona). La   selecci&oacute;n se realiz&oacute; bajo un dise&ntilde;o experimental completamente aleatorio con 4   tratamientos, realizando triplicado de extracci&oacute;n y duplicado de cuantificaci&oacute;n   de la actividad.</p>     <p align="center"><a name="t1"><img src="img/revistas/rcq/v38n3/v38n3a04-1.jpg"></a></p>     <p><b>Determinaci&oacute;n de actividad enzim&aacute;tica</b></p>     <p>La medida de la actividad peroxidasa se hizo a trav&eacute;s del seguimiento   espectrofotom&eacute;trico a 460 nm cada 10 s por 1 min, de los productos de la   reacci&oacute;n de oxidaci&oacute;n de la <i>o</i>-dianisidina en presencia de   H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> y del extracto enzim&aacute;tico (4). La velocidad de la   reacci&oacute;n se calcul&oacute; a partir de la pendiente de la zona lineal de la gr&aacute;fica   A460nm vs. tiempo y la actividad espec&iacute;fica se defini&oacute; como el cambio de la   absorbancia a 460 nm por minuto por mg de prote&iacute;na (&Delta;Abs<sub>460nm</sub>/min*mg   prote&iacute;na).</p>     <p><b>Determinaci&oacute;n de los mejores par&aacute;metros de actividad enzim&aacute;tica</b></p>     <p>Se emple&oacute; un dise&ntilde;o experimental escalonado con el fin de seleccionar las   mejores condiciones para la medida de actividad POD. En primer lugar, se evalu&oacute;   el pH de la reacci&oacute;n en un intervalo de 3 a 10 utilizando las soluciones   reguladoras descritas a continuaci&oacute;n para cada uno de los pH evaluados: &aacute;cido   ac&eacute;tico: acetato de sodio 100 mM para pH 3 y 4; &aacute;cido c&iacute;trico-citrato de sodio   100 mM para pH 4,5, 5 y 5,5; fosfato &aacute;cido de sodio-fosfato di&aacute;cido de sodio 100   mM para pH 6, 6,5, 7, 7,5, 8; y finalmente borato de sodio-&aacute;cido b&oacute;rico 100 mM   para pH 9 y 10. El efecto de la temperatura fue analizado en un rango de 5 a 60   &deg;C, y se evalu&oacute; la concentraci&oacute;n del sustrato o-dianisidina en el intervalo de   0,1 a 1,5mM y de H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> de 0,5 a 15 mM.</p>     <p><b>Cuantificaci&oacute;n de prote&iacute;na</b></p>     <p>Se determin&oacute; seg&uacute;n el m&eacute;todo de Bradford modificado por Zor y Selinger, 1996   (12), empleando como patr&oacute;n alb&uacute;mina de suero bovino.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Material biol&oacute;gico</b></p>     <p>Para realizar el ensayo <i>in vivo </i>se utilizaron esquejes de clavel con 4   semanas de enraizamiento de las variedades Delphi (susceptible) y B&aacute;rbara   (tolerante). Se utiliz&oacute; un aislamiento del pat&oacute;geno obtenido de plantas   susceptibles con s&iacute;ntomas evidentes de marchitamiento, el cual se mantuvo en el   medio comercial PDA (Papa-Dextrosa-Agar) con repiques cada 20 d&iacute;as. El in&oacute;culo   se prepar&oacute; por transferencia del medio s&oacute;lido a medio l&iacute;quido Czapeck Dox-Broth   por 10 d&iacute;as a 25 &deg;C con agitaci&oacute;n de 90 rpm. El micelio se filtr&oacute; en gasa   est&eacute;ril y se prepar&oacute; una suspensi&oacute;n de 1,5x10<sup>6</sup> conidias/mL (por   conteo en el hemocit&oacute;metro). Esta suspensi&oacute;n fue utilizada para la inoculaci&oacute;n   de los esquejes. Todo el material biol&oacute;gico fue suministrado por la empresa   Floram&eacute;rica.</p>     <p><b>Ensayo </b><b><i>in vivo </i></b><b>para determinar la inducci&oacute;n de   POD</b></p>     <p>Para evaluar la din&aacute;mica de la actividad POD en respuesta a la infecci&oacute;n con   el pat&oacute;geno se llev&oacute; a cabo un ensayo <i>in vivo </i>con un dise&ntilde;o experimental   de bloques al azar para 4 tratamientos: variedad susceptible control, variedad   susceptible inoculada, variedad tolerante control y variedad tolerante   inoculada. Para ello, esquejes de clavel de cada una de las variedades (Delphi y   B&aacute;rbara) fueron inoculados por inmersi&oacute;n de sus ra&iacute;ces durante 30 s en la   suspensi&oacute;n de conidias (1,5x10<sup>6</sup> conidias/mL) (13). Los esquejes   fueron sembrados en recipientes con sustrato est&eacute;ril (tierra + cascarilla de   arroz) que conten&iacute;an 300 mL de soluci&oacute;n nutritiva. Para asegurar la infecci&oacute;n de   las plantas con el pat&oacute;geno, la soluci&oacute;n nutritiva ten&iacute;a una concentraci&oacute;n de   1x10<sup>3</sup> coni-dias/mL (11). Esta soluci&oacute;n fue utilizada &uacute;nicamente para   la siembra de los esquejes sometidos a inoculaci&oacute;n. Se prepararon de igual modo   los respectivos controles, los cuales se sumergieron en agua est&eacute;ril y se   sembraron en un sustrato con soluci&oacute;n nutritiva. Los esquejes inoculados y los   controles se mantuvieron en las mismas condiciones ambientales. El muestro se   realiz&oacute; a 0, 8, 24, 48 y 72 h pos-inoculaci&oacute;n por triplicado para cada uno de   los tratamientos y con duplicado en cada uno de los ensayos de cuantificaci&oacute;n de   la actividad.</p>     <p><b>Determinaci&oacute;n del contenido de lignina</b></p>     <p>En los esquejes provenientes del ensayo <i>in vivo </i>se determin&oacute; el   contenido de lignina aplicando el m&eacute;todo del &aacute;cido tioglic&oacute;lico (14), con   algunas modificaciones. Los precipitados obtenidos luego de la extracci&oacute;n de la   peroxidasa fueron resuspendidos en etanol (1:2) y centrifugados a 5000<i>xg. </i>Los precipitados se secaron a 60 &deg;C durante 24 h. Se pesaron aproximadamente   10 mg de material vegetal seco y se resuspendi&oacute; en 1mL de HCl 2N y 100 ,&micro;L de   &aacute;cido tioglic&oacute;lico. La mezcla fue calentada durante 4 h a 92 &deg;C con agitaci&oacute;n   constante. Una vez enfriada la mezcla, se centrifug&oacute; a 16000<i>xg </i>por 15   minutos. Los precipitados se lavaron con agua desionizada, se les adicion&oacute; 1 mL   de NaOH 0,5N y se dejaron en agitaci&oacute;n durante toda la noche a temperatura   ambiente. El residuo insoluble fue removido por centrifugaci&oacute;n y el tioglicolato   de lignina se precipit&oacute; por la adici&oacute;n de 1 mL de HCl concentrado (3 h, 4 &deg;C).   Despu&eacute;s de centrifugaci&oacute;n a 16000<i>xg </i>por 20 min, el residuo fue   resuspendido en 1,5 mL de NaOH 0,5N. Se hizo la lectura a 280 nm y el contenido   de lignina fue expresado en unidades de absorbancia por mg de material vegetal   seco. La determinaci&oacute;n en cada uno de los tiempos de muestreo se lleva a cabo   realizando triplicado en la extracci&oacute;n y duplicado de cuantificaci&oacute;n.</p>     <p><b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</b></p>     <p>Para este estudio se opt&oacute; por un dise&ntilde;o experimental completamente   aleatorizado, realizando en cada uno de los muestreos triplicado de tratamiento   y duplicado de cuantificaci&oacute;n. El an&aacute;lisis estad&iacute;stico se realiz&oacute; mediante   an&aacute;lisis de varianza sencillo ANOVA (p = 0,05) y se asignaron grupos   estad&iacute;sticamente diferentes mediante la prueba de Tuckey.</p>     <p><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></p>     <p><b>Establecimiento del sistema de extracci&oacute;n para la enzima POD</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La literatura reporta diferentes sistemas de extracci&oacute;n para peroxidasa   vegetal que van desde la utilizaci&oacute;n de soluciones reguladoras de tris-HCl,   fosfato o citrato hasta el uso de estas mismas soluciones con aditivos como   PVPP, trit&oacute;n o EDTA. La variedad de soluciones extractantes concuerda con la   composici&oacute;n variable de las diferentes partes que constituyen la planta, y es la   raz&oacute;n que motiva a encontrar la mejor soluci&oacute;n para extraer la enzima de acuerdo   con el sistema que se va estudiar (9, 15). En este trabajo se utilizaron 4   soluciones extractantes con las que se evalu&oacute; tanto el efecto del pH como del   uso de PVPP. De acuerdo con los resultados obtenidos (<a href="#f1">Figura   1</a>), el mejor nivel de actividad se obtuvo con el sistema E4, constituido por   buffer citrato 100 mM pH 5,0 y 3% de PVPP. Teniendo en cuenta que los compuestos   fen&oacute;licos pueden reaccionar con las enzimas, inactivarlas o disminuir su   actividad (15), es necesario el uso de aditivo PVPP, ya que en cualquiera de los   sistemas evaluados mejora los niveles de actividad, dada su capacidad para   retener dichos compuestos reactivos, potenciales interferentes en la   determinaci&oacute;n de actividad enzim&aacute;tica debido a su reactividad qu&iacute;mica y a su   abundancia en esta especie vegetal (13).</p>     <p align="center"><a name="f1"><img src="img/revistas/rcq/v38n3/v38n3a04-2.jpg"></a></p>     <p><b>Establecimiento de las condiciones para la medida de actividad   enzim&aacute;tica</b></p>     <p>Se determin&oacute; que existe variaci&oacute;n de la actividad espec&iacute;fica en los   diferentes pH evaluados y que el pH con el que se presentan los mayores niveles   de actividad es de 5,5 (<a href="#f2">Figura 2</a>). Este coincide con el   utilizado en la mejor soluci&oacute;n extractora, indicando que en dichas condiciones   de pH, la enzima, adem&aacute;s de presentar una alta solubilidad, tiene un ambiente   qu&iacute;mico conveniente para que en su sitio activo se transforme el sustrato. A   condiciones de pH extremo se observa una disminuci&oacute;n en la actividad de la   enzima, lo cual demuestra el conocido efecto que puede llegar a tener la   concentraci&oacute;n de iones hidronios sobre la estructura de las prote&iacute;nas,   alter&aacute;ndolas y, en algunos casos, inactiv&aacute;ndolas. Este resultado es similar al   encontrado para una peroxidasa aislada de hojas de palma real con un pH 5,2   (16). Los valores de pH reportados para la m&aacute;xima actividad de POD se encuentran   entre 5 y 7 (17-22) aunque se reportan valores de pH m&aacute;s &aacute;cidos (23).</p>     <p align="center"><a name="f2"><img src="img/revistas/rcq/v38n3/v38n3a04-3.jpg"></a></p>     <p>Se encontr&oacute; que entre las temperaturas evaluadas, la de 45 &deg;C presenta la   mayor actividad de la enzima POD. (<a href="#f3">Figura 3</a>). Algunas enzimas   incluso peroxidasas aisladas de otras fuentes vegetales (24) a estas   condiciones, pueden estar inactivas porque se han desnaturalizado; sin embargo,   es conocido que, en general, las POD son bastante estables al calor y no es raro   encontrar buena actividad de ellas aun a altas temperaturas (25, 26). Peroxidasa   aislada de uvas malvasia present&oacute; un pH y una temperatura &oacute;ptima de 5,5 y 40 &deg;C,   respectivamente, valores similares a los encontrados en tallos de clavel   (27).</p>     <p align="center"><a name="f3"><img src="img/revistas/rcq/v38n3/v38n3a04-4.jpg"></a></p>     <p>La <a href="#f4">Figura 4</a> se realiz&oacute; manteniendo constante la   concentraci&oacute;n de H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> aniveles de saturaci&oacute;n; la <a href="#f5">Figura 5</a>, manteniendo constante la concentraci&oacute;n de <i>o</i>-dianisidina a niveles de saturaci&oacute;n. En las dos gr&aacute;ficas se observa   claramente el comportamiento t&iacute;pico de una enzima que sigue la cin&eacute;tica de   Michaelis-Menten, resultado que concuerda con el reportado para 6 isoperoxidasas   purificadas de ra&iacute;ces de r&aacute;bano originarias de Corea, las cuales tambi&eacute;n siguen   esta cin&eacute;tica en ensayos realizados usando como sustrato <i>o</i>-dianisidina o   guaiacol (22). Los valores de Km aparente obtenidos para cada uno de los   sustratos utilizados en el presente ensayo, <i>o</i>-dianisidina y   H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> a las condiciones descritas, fueron 1,49 mM y 0,56   mM, respectivamente.</p>     <p align="center"><a name="f4"><img src="img/revistas/rcq/v38n3/v38n3a04-5.jpg"></a></p>     <p align="center"><a name="f5"><img src="img/revistas/rcq/v38n3/v38n3a04-6.jpg"></a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Determinaci&oacute;n de la actividad POD en el ensayo </b><b><i>in   vivo</i></b></p>     <p>La peroxidasa es una enzima involucrada en diferentes procesos fisiol&oacute;gicos   de las plantas, algunos de ellos propios del desarrollo, otros inducidos por   estr&eacute;s bi&oacute;tico o abi&oacute;tico. Entre los procesos que involucran la enzima est&aacute;n:   regulaci&oacute;n hormonal, mecanismos de defensa, control de elongaci&oacute;n celular,   polimerizaci&oacute;n de extensina, entrecruzamiento de los polisac&aacute;ridos de la pared   celular, bios&iacute;ntesis de lignina y procesos de suberizaci&oacute;n (28). Estudios   previos realizados por investigadores holandeses concluyen que esta enzima se   induce en clavel de manera no diferencial en interacciones compatibles e   incompatibles (29). Sin embargo, dichos estudios se llevaron a cabo usando razas   del pat&oacute;geno con alta prevalencia en Holanda y en condiciones de inoculaci&oacute;n muy   diferentes a las usadas por el pat&oacute;geno para entrar en la planta en las   condiciones de cultivo. Por otro lado, la actividad de esta enzima no se   relaciona con otras respuestas bioqu&iacute;micas asociadas, punto central en la   b&uacute;squeda de probables mecanismos de regulaci&oacute;n de la respuesta de defensa   vegetal. El ensayo <i>in vivo </i>del presente estudio, adem&aacute;s de realizarse   usando condiciones de inoculaci&oacute;n semejantes a las usadas por el pat&oacute;geno en los   cultivos de clavel, permite relacionar la actividad de la enzima con un proceso   bioqu&iacute;mico reportado como determinante en la respuesta de defensa del clavel.   Los resultados obtenidos del ensayo <i>in vivo </i>se muestran en la <a href="#f6">Figura 6</a>, y en esta se puede observar que a las 8 y 48 h   pos-inoculaci&oacute;n se present&oacute; una inducci&oacute;n significativa de la enzima POD en la   variedad tolerante (B&aacute;rbara). En la variedad susceptible (Delphi), hacia el   &uacute;ltimo d&iacute;a de muestreo, se observaron diferencias que, aunque significativas <i>(p </i>= 0,5) con respecto al control, son mucho menores que los valores   inducidos presentados por la variedad tolerante. Es interesante observar que, en   general, los niveles de actividad de la enzima son mayores en la variedad   tolerante a lo largo de todo el ensayo y, en adici&oacute;n a la inducci&oacute;n pronunciada   observada a las 48 h pos-inoculaci&oacute;n, estos resultados son un indicio de la   relaci&oacute;n de la actividad POD con la respuesta de defensa de la planta y con la   resistencia a la enfermedad. Resultados similares, de inducci&oacute;n temprana (72 h),   se encontraron en estudios del modelo Lupine amarillo <i>(Lupinus luteus   L.)-Fusarium oxysporum, </i>que indican la posible participaci&oacute;n de la enzima   POD en mecanismos de de fensa por parte de la planta debido al evidente aumento   de la actividad de la enzima junto con niveles altos de sacarosa end&oacute;gena que   limitan la infecci&oacute;n y el desarrollo del pat&oacute;geno (9). Yamunarani y cols., 2004   (30), reportan aumento de actividad peroxidasa en tomate, un d&iacute;a despu&eacute;s de   inducir resistencia en la planta, con extracto de agallas de <i>Quercus   infectoria. </i>En otro modelo planta-pat&oacute;geno, algunas isoenzimas de POD se   indujeron en ra&iacute;ces y hojas de pimienta luego de inoculaci&oacute;n con esporas de <i>Paenibacillus illinoisensis </i>(31). Por otro lado, Luhov&aacute;y cols., 2006   (32), realizaron un an&aacute;lisis de actividades enzim&aacute;ticas, entre ellas la de   peroxidasa, en ra&iacute;ces de 2 genotipos de <i>Pisum sativum </i>con diferente   susceptibilidad a <i>Fusarium oxysporum </i>y <i>Fusarium solani, </i>y   encontraron un aumento de actividad para esta enzima en ra&iacute;ces infectadas a   partir del d&iacute;a 2 y hasta el 28 pos-inoculaci&oacute;n. Seg&uacute;n dichas consideraciones,   los resultados obtenidos en el presente estudio coinciden con los encontrados en   otros modelos planta-pat&oacute;geno y permiten proponer que la enzima POD est&aacute;   relacionada con los mecanismos de defensa del clavel y por ende con resistencia   al marchitamiento vascular.</p>     <p align="center"><a name="f6"><img src="img/revistas/rcq/v38n3/v38n3a04-7.jpg"></a></p>     <p><b>Determinaci&oacute;n del contenido de lignina en muestras obtenidas a partir del   ensayo </b><b><i>in vivo </i></b><b>y relaci&oacute;n con la actividad   peroxidasa</b></p>     <p>Se ha postulado que la actividad peroxidasa podr&iacute;a ser importante en   resistencia a la penetraci&oacute;n de pat&oacute;genos en plantas por estar involucrada en el   dep&oacute;sito de extensina en la pared celular, mediar en el entrecruzamiento de &eacute;sta   en presencia de H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> (33) y participar en la   polimerizaci&oacute;n oxidativa de alcohol hidroxicinam&iacute;lico para formar lignina (34),   procesos que conducen a dar rigidez a la pared celular y colocar barreras a la   infecci&oacute;n del pat&oacute;geno (35). Teniendo en cuenta la importancia que tienen las   peroxidasas en la bios&iacute;ntesis de lignina, es de esperar que la inducci&oacute;n de POD   est&eacute; relacionada con un aumento en el contenido de lignina. Esta correlaci&oacute;n se   observa en el modelo Lupine amarillo <i>(Lupinus luteus </i>L<i>.)-Fusarium   oxysporum, </i>en el que la s&iacute;ntesis de lignina aumenta a tiempos tempranos de   infecci&oacute;n (24 h) (9). Se han reportado isoenzimas espec&iacute;ficas de peroxidasas de   pared celular que se creen son responsables de la etapa final de la   lignificaci&oacute;n (36-38) la cual est&aacute; asociada a mecanismos de defensa.</p>     <p>La <a href="#f7">Figura 7</a> presenta los resultados del contenido de   lignina obtenido de los tallos de clavel del ensayo <i>in vivo. </i>Se observa   que para la variedad tolerante, hay un aumento de lignina a partir de las 48 h   posinoculaci&oacute;n que se mantiene hasta las 72 h. La inducci&oacute;n de la enzima POD   concuerda con el aumento en el contenido de lignina a 48 h, lo cual confirma el   papel que esta enzima desempe&ntilde;a en la defensa del clavel al pat&oacute;geno causal del   marchitamiento vascular. Es importante tener en cuenta que no es solamente esta   enzima la que est&aacute; involucrada en la bios&iacute;ntesis de lignina, ya que enzimas como   las polifenoloxidasas cumplen tambi&eacute;n este papel, que en este modelo   planta-pat&oacute;geno tambi&eacute;n han sido correlacionadas con defensa a nivel del tallo   (4).</p>     <p align="center"><a name="f7"><img src="img/revistas/rcq/v38n3/v38n3a04-8.jpg"></a></p>     <p>Estudios realizados por Dalisay y Kuc (39), reportan aumento de actividad   peroxidasa y del proceso de lignificaci&oacute;n, lo mismo que la depositaci&oacute;n de   extensina, procesos que se asocian con resistencia sist&eacute;mica inducida en la   interacci&oacute;n cohombro<i>-Colletotrichum lagenarium. </i>La acumulaci&oacute;n de lignina   y compuestos fen&oacute;licos se ha correlacionado con resistencia a la enfermedad en   varias interacciones planta pat&oacute;geno como son los modelos <i>Arroz-Xanthomonas   oryzae </i>y Co-hombro<i>-Trichoderma harzianum </i>(40). Los resultados   obtenidos en el presente trabajo permiten proponer que una inducci&oacute;n diferencial   de la enzima peroxidasa en la variedad tolerante de clavel con respecto a la   susceptible en tiempos tempranos pos-inoculaci&oacute;n, est&aacute; relacionada con la   acumulaci&oacute;n de lignina durante la activaci&oacute;n de los mecanismos de defensa   asociados con la resistencia del clavel al pat&oacute;geno causal del marchitamiento   vascular.</p>     <p><b>AGRADECIMIENTOS</b></p>     <p>A la Universidad Nacional de Colombia, dependencia DIB, y a Colciencias, por   la financiaci&oacute;n.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS</b></p>     <!-- ref --><p>1. Pizano, M. Clavel <i>(Dianthus caryophyllus </i>L.). 2000. Bogot&aacute;, D.C.,   Ediciones Hortitecnia Ltda.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000064&pid=S0120-2804200900030000400001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2. Niemann, G. J. A. Carnation's defence against fungal invation: A combined   effort. <i>Med. Fac. Landbouww. Rijksuniv. Gent. </i>1990. <b>54 </b>(2a):   435-438.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S0120-2804200900030000400002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3. Baayen, R. P; Ouellette, G. B.; Rioux, D. Compartimentalization of Decay   in Carnations Resistant to <i>Fusarium oxysporum </i>f. sp. <i>dianthi.   Phytopathology. </i>1996. <b>86: </b>1018-1031.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000066&pid=S0120-2804200900030000400003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4.&nbsp;Cer&oacute;n, L. E. Evaluaci&oacute;n de algunas respuestas bioqu&iacute;micas en la   interacci&oacute;n plantas de &ntilde;ame <i>(dioscorea spp) </i>resistentes y susceptibles al   ataque de <i>colletotrichum gloeosporioides </i>f. <i>alatae. </i>2005. Tesis de   Magister en Qu&iacute;mica. Universidad Nacional de Colombia. Bogot&aacute;.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0120-2804200900030000400004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5. Baayen, R. P.; Elgersma, D. M.; Demmink. J. F.; Spaarnaaij, L. D.   Differences in pathogenesis observed among susceptible interaction of carnation   with four races of <i>Fusarium oxysporum </i>f.sp. <i>dianthi. Neth. J. Plant   Pathol. </i>1988. <b>94: </b>81-94.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0120-2804200900030000400005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6. Trillas, M. I.; Cotxarrera, L.; Casanova, E.; Cortadellas, N.   Ultrastructural changes and localization of chitin and callose in compatible and   incompatibles interactions between carnation callus and <i>Fusarium oxysporum.   Physiol Mol. Plant P. </i>2000. <b>56: </b>107-116.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0120-2804200900030000400006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7. Esteban-Carrasco, A.; L&oacute;pez-Serrano, M.; Zapata, J. M.; Sabater, B.;   Martin, M. Oxidation of phenolic compounds from <i>Aloe barbadensis </i>by   peroxidase activity: Possible involvement in defence reactions. <i>Plant   Physiol. Bioch. </i>2001. <b>39:</b> 21-527.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0120-2804200900030000400007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8. Ray, H.; Douches, D. S.; Hammerschmidt, R. Transformation of potato with   cucumber peroxidase: expression and disease response. <i>Physiol. Mol. Plant P. </i>1998. <b>53:</b> 93-103.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0120-2804200900030000400008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9. Morkunas, I.; Gmerek, J. The possible involvement of peroxidase in defense   of yellow lupine embryo axes against <i>Fusarium oxysporum. J. Plant Physiol. </i>2007. <b>164 </b>(2): 185-194.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0120-2804200900030000400009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10. Loren-Kukula, K.; Wrobel-Kwiat-kowska, M.; Starzycki, M.; Szopa, J.   Engineering flax with increased flavonoid content and thus <i>Fusarium </i>resistance. <i>Physiol. Mol. Plant P. </i>2007. <b>70: </b>38-48.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0120-2804200900030000400010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11. Ardila, H. D.; Higuera, B. L. Inducci&oacute;n diferencial de Polifenol oxidasa   y ß-1,3-glucanasa en clavel <i>(Dianthus caryophyllus </i>L.) durante la   infecci&oacute;n por <i>Fusarium oxysporum </i>f. sp. <i>dianthi </i>raza 2. <i>Acta   Biol. Col. </i>2005. <b>10: </b>65-78.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0120-2804200900030000400011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12. Zor, T.; Selinger, Z.; Linearization of the Bradford protein assay   increases its sensivity: Theorical and experimental studies. <i>Anal. Biochem. </i>1996. <b>236: </b>302-308.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0120-2804200900030000400012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13. Higuera B. L.; Montes de G. V. Contribution of HPLC to the study of the   defence mechanisms acting in carnation <i>(Dianthus caryophyllus </i>L.) roots   on infection with <i>Fusarium oxysporum </i>f. sp. <i>dianthi. J. High   Res.Chromatog. </i>1996.<b>19: </b>706-708.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0120-2804200900030000400013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14. Bruce, R. J.; West, C. A. Elicitation of lignin biosynthesis and   isoperoxidase activity by pectic fragments in suspension cultures of castor   bean. <i>Plant Physiol. </i>1989. <b>91: </b>889-897.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0120-2804200900030000400014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15. Deutscher, M. P. Guide to protein purification, Methods in enzimology.   San Diego, California, Academic Press, Inc. 1990.<b>182: </b>153, 161, 267,   296-298.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0120-2804200900030000400015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>16.&nbsp;Sakharov,I. Yu.; Vesga, M. K.; Galaev, I. Yu.; Sakharov, I. V.;   Pletjushkina, O. Yu. Peroxidase from leaves of royal palm tree <i>Roystonea   regia: </i>purification and some properties. <i>Plant Sci. </i>2001. <b>161: </b>853-860.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0120-2804200900030000400016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17. Esteban-Carrasco, A.; Zapata, J. M.; L&oacute;pez-Serrano, M.; Sabater, B.;   Martin, M. Purification of two peroxidases isoenzymes of<i>Aloebarbadensis </i>which oxidize p-coumaric acid. <i>Plant Physiol. Biochem. </i>2002. <b>40: </b>127-132. "&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0120-2804200900030000400017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18. Castillo Le&oacute;n, J.; Alpeeva, I. S.; Chubar, T. A.; Galaev, I. Yu.;   Csoregi, E.; Sakharov, I. Yu. Purification and substrate specificity   ofperoxidase from sweet potato tubers. <i>Plant Sci. </i>2002. <b>163: </b>1011-1019.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0120-2804200900030000400018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19. Deepa, S. S.; Arumughan, C. Purification and characterization of soluble   peroxidase from oil palm <i>(Elaeis guineensis </i>Jacq.) leaf. <i>Phytochemistry. </i>2002. <b>61: </b>503-511.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0120-2804200900030000400019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>20. Onsa, G. H.; Saari, N. B.; Selamat, J.; Bakar, J. Purification and   characterization of membrane-bound peroxidases from <i>Metroxylon sagu. Food   Chem. </i>2004. <b>85: </b>365-376.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0120-2804200900030000400020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>21. Mdluli, K. M. Partial purification and characterization of polyphenol   oxidase and peroxidase from marula fruit <i>(Sclerocarya birrea </i>subsp.   Caffra). <i>Food Chem. </i>2005. <b>92:</b>311-323.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0120-2804200900030000400021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>22. Soung, S. K.; Dong, L. Purification and characterization of a cationic   peroxidase Cs in <i>Raphanus sativus. J. Plant Physiol. </i>2005. <b>162: </b>609-617.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0120-2804200900030000400022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>23. Dogan, S.; Turan, P.; Dogan, M.; Aislan, O.; Alkan, M. Variations of   peroxidase activity among <i>Salvia </i>species. <i>J. Food Eng. </i>2007. <b>79: </b>375-382.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0120-2804200900030000400023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>24. Suzuki, T.; Honda, Y.; Mukasa, Y.; Kim, S. J. Characterization of   peroxidase in buckwheat seed. <i>Phytochemistry. </i>2006. <b>67: </b>219-224.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0120-2804200900030000400024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>25. Duarte-V&auml;squez, M. A.; Garcia-Almend&auml;rez, B.; Regalado, C.; Whitaker, J.   R. Purification and partial characterization of three turpin <i>(Brassica napus </i>L. var. esculenta D.C.) peroxidases. <i>J. Agric. Food Chem. </i>2000. <b>48: </b>1574-1579.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0120-2804200900030000400025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>26. Dogan, S.; Turan, P.; Dogan, M.; Aislan, O.; Alkan, M. Variations of   peroxidase activity among <i>Salvia </i>species. <i>J. Food Eng. </i>2007. <b>79:</b> 375-382.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0120-2804200900030000400026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>27. Sciancalepore, V.; Longone, V.; Alvitti, F. S. Partial purification and   some properties of peroxidase from malvasia grapes. <i>Am. J. Enol. Vitic. </i>1985. <b>342: </b>105-110.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0120-2804200900030000400027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>28. Ayyappan, R.; Showalter, N.; Showalter, A. Purification and   characterization of wound-inducible cell wall cationic peroxidase from carrot   roots. <i>Biochem. Bioph. Res. Co. </i>1996. <b>226: </b>254-260.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0120-2804200900030000400028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>29. Van Pelt-Heerschap, H.; Smit-Bakker, O. Analysis of defence-related   proteins in stem tissue of carnation inoculated with a virulent and avirulent   race of <i>Fusarium oxysporum </i>f. sp. <i>dianthi. Eur. J. Plant Pathol. </i>1999. <b>105: </b>681-691.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0120-2804200900030000400029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>30. Yamunarani, K.; Jaganathan, R.; Bhaskaran, R.; Govindaraju, P.;   Velazhahan, R. Induction of early blight resistance in tomato by <i>Quercus   infectoria </i>gall extract in association with accumulation of phenolics and   defense-related enzymes. <i>Acta Physiol. Plant. </i>2004. <b>26 </b>(3):   281-290.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0120-2804200900030000400030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>31. Jung, W.-J.; Jin, Y.-I.; Kim, Y.-CH.; Kim, K.-Y.; Park, R.-D.; Kim, T.-H.   Inoculation of <i>Paenibacillus illinoisensis </i>alleviates root mortality,   activates of lignification-related enzymes, and induction of the isozymes in   pepper plants infected by <i>Phytopthora capsici Biol. Control. </i>2004. <b>30: </b>645-652.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0120-2804200900030000400031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>32. Luhova, L.; Lebeda, A.; Kutrova, E.; Hedererova, D.; Pec, P. Peroxidase,   catalase, amine oxidase, and acid phospathase activities in <i>Pisum sativum </i>during infection with <i>Fusarium oxysporum </i>and <i>F. solani </i>. <i>Biol. Plantarum. </i>2006. <b>50 </b>(4): 675-682.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0120-2804200900030000400032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>33. Brownleader, M. D.; Ahmed, N.; Trevan, M.; Chaplin, M. F.; Dey, P. M.   Purification and partial characterizationoftomato extensionperoxidase. <i>Plant </i>Physiol.1995. <b>109:</b> 1115-1123.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0120-2804200900030000400033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>34. Conn, E. E. (ed.). 1981. The Biochemistry of Plants. Vol. 7. Secondary   plants products. New York, Academic Press.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0120-2804200900030000400034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>35. Vera-Estrella, R.; Higgins, V. J.; Blumwald, E. Plant Defense Response to   Fungal Pathogens. <i>Plant Physiol. </i>1994. <b>106: </b>97-102.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0120-2804200900030000400035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>36. Ketsa, S.; Atantee, S. Phenolics, lignin, peroxidase activity and   increased firmness of damaged pericarp of mangosteen fruti after impact. <i>Post-harvest Biol. Tech. </i>1998. <b>14:</b> 117-124.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0120-2804200900030000400036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>37. Davin, L. B.; Lewis, N. G. Lignin primary structures and dirigentsites. <i>Curr. Opin. Biotech. </i>2005. <b>16:</b> 407-415.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0120-2804200900030000400037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>38. Quiroga, M.; Guerrero, C.; Botella, M. A.; Barcel&oacute;, A.; Amaya, I.;   Medina, M.; Alonso, F. J.; Milrad, S.; Tigier, H.; Valpuesta, V. A tomato   peroxidase involved in the synthesis of lignin and suberin. <i>Plant Physiol. </i>2000. <b>122: </b>1119-1127.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0120-2804200900030000400038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>39. Dalisay, R. F.; Kuc, J. A. Persistence of induced resistance and enhanced   peroxidase and chitinase activities in cucumber plants. <i>Physiol. Mol. Plant   P. </i>1995. <b>47: </b>315-327.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0120-2804200900030000400039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>40. Yedidia, I.; Benhamou, N.; Kapulnink, Y.; Chet, I. Induction and   accumulation of PR proteins activity during early stages of rootm colonization   by the mycoparasite <i>Trichoderma harzianum </i>strain T-203. <i>Plant Physiol.   Bioch. </i>2000. <b>38:</b> 863-873.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0120-2804200900030000400040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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