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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[CARACTERIZACIÓN ESTRUCTURAL DE LA MATERIA ORGÁNICA DE TRES SUELOS PROVENIENTES DEL MUNICIPIO DE AQUITANIA-BOYACÁ, COLOMBIA]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[STRUCTURAL CHARACTERIZATION OF ORGANIC MATTER OF THREE SOILS FROM AQUITANIA-BOYACÁ, COLOMBIA]]></article-title>
<article-title xml:lang="pt"><![CDATA[CARACTERIZAÇÃO ESTRUTURAL DA MATÉRIA ORGÂNICA DE TRÊS SOLOS PROVENIENTES DO MUNICIPIO DE AQUITANIA-BOYACÁ, COLOMBIA]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Generally, soil organic matters may differ in structure, composition and conformation according to their origin and age. In the present work structural composition of three soil organic matters, as determined by IR and solid-state CPMAS 13C-NMR spectroscopy of two Inceptisol soils (I01 and I02) and one Histosol soil (H03) from the Aquitania-Boyacâ town in Colombia are presented (in these soils farmers have grown large onion crops). Measurements were performed at two different depths 0 - 10 and 40 - 50 cm, respectively. According to the IR spectra the presence of OH-groups (from phenols, carboxylic acids and alcohols), aromatic and aliphatic groups were identified. The 13C NMR spectra revealed a decreasing amount of organic matter with increasing depth in the following relative order: H03-0 = 100 and H03-40 = 88, I02-0 = 23 and I02-40 = 0, and finally I01-0 = 17 and I01-40 = 12. The carbon peaks resonating in the ô = 108-50 ppm region of the spectra (N- and O-alkyls and acetals) dominated in almost all the extracted soils, with aromatic carbon peaks (&delta; = 168-108 ppm) showing the second most intense peaks for the samples I01-0 and H03-40. The aliphatic carbon (&delta; = 0-50 ppm) revealed the second most intense peaks in samples I01-40, I02-0 and H03-0. Finally, carbonyl carbon (&delta; = 220-162 ppm) contributed the smallest signal intensity in all the three soil samples.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="pt"><p><![CDATA[A matéria orgânica do solo pode variar consideravelmente em sua estrutura, composição e conformação. Na presente pesquisa procedeu-se à caracterização mediante o emprego da espectroscopia de infravermelho e ressonância magnética nuclear no estado solido dos solos inseptisoles (101 e 102) e um histosol (H03) destinados ao cultivo de cebola no município de Aquitania -Boyacá, Colômbia a duas profundidades diferentes 0 - 10 e 40 - 50 cm, respectivamente. Encontrou-se de acordo aos espectros de infravermelho a presença de grupos OH (devido possivelmente a fenóis, ácidos carboxílicos o álcool), grupos aromáticos e alifáticos. Os espectros de 13C-RMN em estado solido com CPMAS evidenciarão o seguinte ordem de acordo à quantidade de carbonos que conformam a matéria orgânica do solo: H03-0 = 100 e H03-40 = 88, I02-0 = 23 e I02-40 = 0, e finalmente I01-0 = 17 e I01-40 = 12, sugerindo que a quantidade total de carbonos na matéria orgânica decresce a través do perfil do solo e além de mais, estabeleceu-se que o carbono ressonante na região &delta; = 108-50 ppm dos espectros (N- y O-alquilos e acetales) dominó em tudo a MOS extraída, seguiu-se o carbono aromático (&delta; = 168-108 ppm) para os solos I01-0 e H03-40; e o carbono alifático (&delta; = 0-50 ppm) para os solos I01-40, I02-0 e H03-0, finalmente o carbono carbonilo (&delta; = 220-162 ppm) foi o menos dominante na matéria orgânica do solo em todos os três solos caracterizados.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p align="center"><font size="4"><b>CARACTERIZACI&Oacute;N ESTRUCTURAL DE LA MATERIA ORG&Aacute;NICA DE TRES SUELOS PROVENIENTES DEL MUNICIPIO DE AQUITANIA-BOYAC&Aacute;, COLOMBIA</b></font></p>     <p align="center"><b><font size="3">STRUCTURAL CHARACTERIZATION OF ORGANIC MATTER OF THREE SOILS FROM AQUITANIA-BOYAC&Aacute;, COLOMBIA</font></b></p>     <p align="center"><font size="3"><b>CARACTERIZA&Ccedil;&Atilde;O ESTRUTURAL DA MAT&Eacute;RIA ORG&Acirc;NICA DE TR&Ecirc;S SOLOS PROVENIENTES DO MUNICIPIO DE AQUITANIA-BOYAC&Aacute;, COLOMBIA</b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><i>Carmen S. Mosquera<sup>1</sup>, Mar&iacute;a J. Mart&iacute;nez<sup>1</sup>, Jairo A. Guerrero<sup>1</sup> y Eddy W. Hansen<sup>2</sup></i></p>     <p>1 Departamento de Qu&iacute;mica, Universidad Nacional de Colombia. Bogot&aacute;. <a href="mailto:csmosquerav@unal.edu.co">csmosquerav@unal.edu.co</a></p>     <p>2 Departamento de Matem&aacute;ticas y Ciencias Naturales, Universidad de Oslo, Noruega.</p>     <p>Recibido: 06/10/09 - Aceptado: 06/04/10</p> <hr>     <p><b>RESUMEN</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La materia org&aacute;nica del suelo puede variar considerablemente en su estructura, composici&oacute;n y conformaci&oacute;n, de acuerdo con el origen y la edad de los materiales que la constituyen. En la presente investigaci&oacute;n se procedi&oacute; a caracterizar, mediante el empleo de la espectroscopia infrarroja y la resonancia magn&eacute;tica nuclear en estado s&oacute;lido, dos suelos inceptisoles (I01 y I02) y un histosol (H03) destinados al cultivo de cebolla larga, en el municipio de Aquitania-Boyac&aacute;, Colombia, a dos profundidades: 0 - 10 y 40 - 50 cm. Seg&uacute;n los espectros infrarrojos, se detect&oacute; la presencia de grupos OH (debida posiblemente a fenoles, &aacute;cidos carbox&iacute;licos o alcoholes), grupos arom&aacute;ticos y alif&aacute;ticos. Los espectros de <sup>13</sup>C-RMN en estado s&oacute;lido con CPMAS evidenciaron el siguiente orden respecto a la cantidad de carbonos que conforman la materia org&aacute;nica del suelo: H03-0 =100 y H03 -40 = 88, I02-0 = 23 y I02-40 = 0, y finalmente I01-0 = 17 y I01-40 = 12, confirm&aacute;ndose la disminuci&oacute;n de carbonos en la materia org&aacute;nica a trav&eacute;s del perfil del suelo, y adem&aacute;s se estableci&oacute; que el carb&oacute;n resonante en la regi&oacute;n &delta; = 108-50 ppm de los espectros (N - y O-alquilos y acetales) domin&oacute; en toda la MOS obtenida; le sigui&oacute; el carb&oacute;n arom&aacute;tico (la cantidad de carbonos que conforman la materia org&aacute;nica del suelo: H03-0 =100 y H03 -40 = 88, I02-0 = 23 y I02-40 = 0, y finalmente I01-0 = 17 y I01-40 = 12, confirm&aacute;ndose la disminuci&oacute;n de carbonos en la materia org&aacute;nica a trav&eacute;s del perfil del suelo, y adem&aacute;s se estableci&oacute; que el carb&oacute;n resonante en la regi&oacute;n &delta; = 108-50 ppm de los espectros (N - y O-alquilos y acetales) domin&oacute; en toda la MOS obtenida; le sigui&oacute; el carb&oacute;n arom&aacute;tico (&oacute; = 168-108 ppm) para los suelos I01-0 y H03-40, y el carb&oacute;n alif&aacute;tico (&delta; = 0-50 ppm) para los suelos I01-40, I02-0 y H03-0. Finalmente, el carb&oacute;n C = O (&delta; = 220-162 ppm) fue el menos dominante en la materia org&aacute;nica del suelo en todos los tres suelos caracterizados.</p>     <p><b>Palabras clave: </b>materia org&aacute;nica del suelo, espectroscopia infrarroja, resonancia magn&eacute;tica nuclear, inceptisol e histosol.</p> <hr>     <p><b>ABSTRACT</b></p>     <p>Generally, soil organic matters may differ in structure, composition and conformation according to their origin and age. In the present work structural composition of three soil organic matters, as determined by IR and solid-state CPMAS <sup>13</sup>C-NMR spectroscopy of two Inceptisol soils (I01 and I02) and one Histosol soil (H03) from the Aquitania-Boyac&acirc; town in Colombia are presented (in these soils farmers have grown large onion crops). Measurements were performed at two different depths 0 - 10 and 40 - 50 cm, respectively. According to the IR spectra the presence of OH-groups (from phenols, carboxylic acids and alcohols), aromatic and aliphatic groups were identified. The <sup>13</sup>C NMR spectra revealed a decreasing amount of organic matter with increasing depth in the following relative order: H03-0 = 100 and H03-40 = 88, I02-0 = 23 and I02-40 = 0, and finally I01-0 = 17 and I01-40 = 12. The carbon peaks resonating in the &ocirc; = 108-50 ppm region of the spectra (N- and O-alkyls and acetals) dominated in almost all the extracted soils, with aromatic carbon peaks (&delta; = 168-108 ppm) showing the second most intense peaks for the samples I01-0 and H03-40. The aliphatic carbon (&delta; = 0-50 ppm) revealed the second most intense peaks in samples I01-40, I02-0 and H03-0. Finally, carbonyl carbon (&delta; = 220-162 ppm) contributed the smallest signal intensity in all the three soil samples.</p>     <p><b>Key words: </b>soil organic matter, infrared spectroscopy, nuclear magnetic resonance, inceptisol and histosol.</p> <hr>     <p><b>RESUMO</b></p>     <p>A mat&eacute;ria org&acirc;nica do solo pode variar consideravelmente em sua estrutura, composi&ccedil;&atilde;o e conforma&ccedil;&atilde;o. Na presente pesquisa procedeu-se &agrave; caracteriza&ccedil;&atilde;o mediante o emprego da espectroscopia de infravermelho e resson&acirc;ncia magn&eacute;tica nuclear no estado solido dos solos inseptisoles (101 e 102) e um histosol (H03) destinados ao cultivo de cebola no munic&iacute;pio de Aquitania -Boyac&aacute;, Col&ocirc;mbia a duas profundidades diferentes 0 - 10 e 40 - 50 cm, respectivamente. Encontrou-se de acordo aos espectros de infravermelho a presen&ccedil;a de grupos OH (devido possivelmente a fen&oacute;is, &aacute;cidos carbox&iacute;licos o &aacute;lcool), grupos arom&aacute;ticos e alif&aacute;ticos. Os espectros de <sup>13</sup>C-RMN em estado solido com CPMAS evidenciar&atilde;o o seguinte ordem de acordo &agrave; quantidade de carbonos que conformam a mat&eacute;ria org&acirc;nica do solo: H03-0 = 100 e H03-40 = 88, I02-0 = 23 e I02-40 = 0, e finalmente I01-0 = 17 e I01-40 = 12, sugerindo que a quantidade total de carbonos na mat&eacute;ria org&acirc;nica decresce a trav&eacute;s do perfil do solo e al&eacute;m de mais, estabeleceu-se que o carbono ressonante na regi&atilde;o &delta; = 108-50 ppm dos espectros (N- y O-alquilos e acetales) domin&oacute; em tudo a MOS extra&iacute;da, seguiu-se o carbono arom&aacute;tico (&delta; = 168-108 ppm) para os solos I01-0 e H03-40; e o carbono alif&aacute;tico (&delta; = 0-50 ppm) para os solos I01-40, I02-0 e H03-0, finalmente o carbono carbonilo (&delta; = 220-162 ppm) foi o menos dominante na mat&eacute;ria org&acirc;nica do solo em todos os tr&ecirc;s solos caracterizados.</p>     <p><b>Palavras-chave: </b>mat&eacute;ria org&acirc;nica do solo, espectroscopia de infravermelho, resson&acirc;ncia magn&eacute;tica nuclear, inceptisol e histosol.</p> <hr>     <p><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></p>     <p>La materia org&aacute;nica en suelos agr&iacute;colas est&aacute; constituida principalmente por residuos provenientes de los biopol&iacute;meros de las plantas (por ejemplo, polisac&aacute;ridos, lignina, prote&iacute;nas y materiales cuticulares), materiales generados durante los procesos de descomposici&oacute;n, c&eacute;lulas de los microorganismos y sustancias h&uacute;micas (1, 2).Elconocimientodelacomposici&oacute;n estructural de la materia org&aacute;nica es una herramienta &uacute;til para el entendimiento de las interacciones entre los contaminantes org&aacute;nicos e inorg&aacute;nicos con el suelo y la formaci&oacute;n de compuestos organominerales que afectan su estructura; sin embargo el entendimiento de las interacciones o relaciones de los contaminantes y otros componentes del suelo con la materia org&aacute;nica no ha sido bien desarrollados por las dificultades que existen en su caracterizaci&oacute;n estructural. La espectroscopia de resonancia magn&eacute;tica nuclear <sup>13</sup>C con CPMAS puede ser usada cuantitativamente en la evaluaci&oacute;n del ambiente de cada &aacute;tomo de carbono que constituye la materia org&aacute;nica del suelo MOS, lo que no se traduce en una informaci&oacute;n directa sobre la estructura molecular de esta &uacute;ltima (3). Sin embargo, con la informaci&oacute;n as&iacute; obtenida se puede establecer el tipo de carb&oacute;n que afecta notablemente la interacci&oacute;n de los contaminantes, por ejemplo, con los diferentes componentes de la materia org&aacute;nica del suelo.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Tambi&eacute;n la espectroscopia infrarroja ha sido ampliamente usada para la caracterizaci&oacute;n general de los componentes que constituyen la materia org&aacute;nica de los suelos porque provee informaci&oacute;n valiosa sobre la estructura y los grupos funcionales presentes en ella (4-7), complementando de esta manera la informaci&oacute;n obtenida a partir de los espectros de <sup>13</sup>C-RMN en estado s&oacute;lido y de este modo caracterizar estructuralmente la MOS.</p>     <p>En la presente investigaci&oacute;n se procedi&oacute; a caracterizar mediante el uso de la espectroscopia infrarroja con transformada de Fourier y resonancia magn&eacute;tica nuclear <sup>13</sup>C en estado s&oacute;lido la materia org&aacute;nica de tres suelos provenientes del municipio de Aquitania-Boyac&aacute;, Colombia, destinados al cultivo de cebolla larga, a dos profundidades (0 - 10 y 40 - 50 cm), con el fin de generar informaci&oacute;n cient&iacute;fica respecto a la composici&oacute;n estructural de la materia org&aacute;nica de dichos suelos.</p>     <p><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></p>     <p><b>Descripci&oacute;n de la zona de estudio</b></p>     <p>El municipio de Aquitania est&aacute; ubicado en la regi&oacute;n del lago de Tota, con una altura de 2.890 metros sobre el nivel del mar, una precipitaci&oacute;n anual de 1.716,9 mm y una temperatura promedio de 12 &deg;C. El origen lacustre de los altiplanos, la estratificaci&oacute;n en capas arcillosas, arenosas y turbosas, y la caracter&iacute;stica de cuenca cerrada, convierten a la regi&oacute;n en un reservorio de aguas subterr&aacute;neas y superficiales, de las que hoy subsisten actividades como la agricultura, siendo el cultivo de cebolla larga el de mayor producci&oacute;n (8, 9).</p>     <p><b>Muestras de suelos</b></p>     <p>Las tres muestras de suelo se recolectaron en dos unidades de muestreo trazadas en dos fincas del municipio de Aquitania, departamento de Boyac&aacute;, a 3.044 y 3.054 metros sobre el nivel del mar, a una profundidad de 0 - 10 (0) y 40 - 50 (40) cm. Las muestras se obtuvieron de manera aleatoria y siguiendo un recorrido en zig-zag en cada unidad de muestreo. En la finca 1 (N 5&deg;34 min 45,3 s y W 72&deg;53 min 49,8 s) se tomaron dos de las muestras de suelos correspondientes a inceptisoles dedicados al cultivo de cebolla, denominados como: I01-0, I01-40, I02-0 y I02-40, y en la finca 2 (N 5&deg;30 min 27,4 s y W 72&deg;54 min 4,6 s) se tom&oacute; una muestra de suelo correspondiente a un histosol dedicado igualmente al cultivo de cebolla, denominado como H03-0 y H03-40. La clasificaci&oacute;n taxon&oacute;mica general de los suelos muestreados se obtuvo del &quot;Mapa del estudio general de suelos de los municipios de Aquitania, Sogamoso, Cuitiva, Firavitoba, Topaga, Tota, Tibasosa, Iza, Nobsay Mongui&quot; realizado por el IGAC (10). Las muestras de suelo se secaron a temperatura ambiente y se tamizaron a trav&eacute;s de un tamiz malla N&deg; 8 de 2,38 mm de apertura (U.S. Standar Sieve Series), para determinarles las propiedades f&iacute;sicas y qu&iacute;micas reportadas en la <a href="#T1">Tabla 1</a>, y posteriormente obtener la materia org&aacute;nica total.</p>     <p align="center"><a name="t1"><img src="img/revistas/rcq/v39n1/v39n1a04i1.jpg"></a></p>     <p><b>Obtenci&oacute;n de la materia org&aacute;nica del suelo</b></p>     <p>Se pesaron 3,00000 g &plusmn; 0,00001 g de cada uno de los suelos muestreados a las dos profundidades en tubos de centr&iacute;fuga de 50 mL. A cada tubo se le agregaron 50 mL de una soluci&oacute;n de HF al 2% en agua desionizada Milli-Q y se agitaron por un tiempo de 1 h en un agitador orbital. Posteriormente se centrifugaron a 2000 rpm por 20 min y se retir&oacute; el sobrenadante; dicho procedimiento se repiti&oacute; cinco veces; luego se agitaron tres veces m&aacute;s por un tiempo de 16 h y finalmente se agitaron durante 64 h con la soluci&oacute;n de HF al 2%, centrifugando despu&eacute;s de cada tiempo de agitaci&oacute;n. Despu&eacute;s del &uacute;ltimo tratamiento con HF al 2%, las muestras de suelo se lavaron cinco veces con 50 mL de agua desionizada Milli-Q hasta que el pH estuviera entre 6-7. Finalmente las muestras se liofilizaron para tomarles los espectros de resonancia magn&eacute;tica nuclear <sup>13</sup>C en estado s&oacute;lido (11) e infrarrojos, y evitar las interferencias del agua.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Caracterizaci&oacute;n de la materia org&aacute;nica de los suelos</b></p>     <p>Los espectros infrarrojo se tomaron en un equipo FT-IR Perkin Elmer Paragon 500 con un rango de 4.000-400 cm<sup>-1</sup>,empleando pastillas de KBr al 1% con 1 mg de muestra.</p>     <p>Los espectros de <sup>13</sup>C-RMN en estado s&oacute;lido se obtuvieron con un espectr&oacute;metro Bruker DMX 200 con CPMAS, una rampa de polarizaci&oacute;n durante el tiempo de contacto y un desacople prot&oacute;nico durante la adquisici&oacute;n. El n&uacute;mero de escanes fue de 32 K, y el equipo se oper&oacute; a una frecuencia de 50 MHz con un RT = 3,0 s; un LB = 5,0 Hz; un SW = 15 kHz; y un tiempo CP = 2 ms. Cada espectro se dividi&oacute; en once regiones para la integraci&oacute;n de las bandas de resonancia (12), las cuales se consignan en la <a href="#T2">Tabla 2</a>.</p>     <p align="center"><a name="t2"><img src="img/revistas/rcq/v39n1/v39n1a04i2.jpg"></a></p>     <p><b>RESULTADOS Y AN&Aacute;LISIS</b></p>     <p><b>Caracterizaci&oacute;n de la materia org&aacute;nica de los suelos</b></p>     <p>La composici&oacute;n, estructura y conformaci&oacute;n de la materia org&aacute;nica del suelo puede variar considerablemente dependiendo del origen y la edad de los materiales que la conforman (13). Se ha encontrado que los &aacute;cidos h&uacute;micos como componentes de la materia org&aacute;nica del suelo poseen diferentes composiciones y estructuras qu&iacute;micas cuando son obtenidos a partir de diferentes suelos (14), por lo que posiblemente pueden generar ciertas variaciones en su comportamiento f&iacute;sico y qu&iacute;mico respecto a la adsorci&oacute;n de contaminantes presentes en el suelo.</p>     <p>En las <a href="#t3">Tablas 3</a>, <a href="#t4">4</a> y <a href="#t5">5</a> se consignan: el n&uacute;mero de onda, las intensidades de las bandas de absorci&oacute;n y las agrupaciones at&oacute;micas, y en la <a href="#f1">Figura 1</a> los espectros infrarrojos para los tres suelos a las dos profundidades empleadas en la caracterizaci&oacute;n estructural de la materia org&aacute;nica del suelo.</p>     <p align="center"><a name="t3"><img src="img/revistas/rcq/v39n1/v39n1a04i3.jpg"></a></p>     <p align="center"><a name="t4"><img src="img/revistas/rcq/v39n1/v39n1a04i4.jpg"></a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="t5"><img src="img/revistas/rcq/v39n1/v39n1a04i6.jpg"></a></p>     <p align="center"><a name="f1"><img src="img/revistas/rcq/v39n1/v39n1a04i5.jpg"></a></p>     <p>De acuerdo con la intensidad observada de la banda cercana entre 1.654-1.630 cm<sup>-1</sup>, se pudo establecer posiblemente que todos los suelos empleados en la caracterizaci&oacute;n de la MOS presentan en su estructura molecular anillos arom&aacute;ticos, los cuales pueden estar presentes en mol&eacute;culas con diferentes grados de condensaci&oacute;n, encontr&aacute;ndose una disminuci&oacute;n de la intensidad de la banda seg&uacute;n el siguiente orden: H03-0 = H03-40 &gt; I02-0 &gt; I01-0 &gt; I01-40 = I02-40, la cual puede estar relacionada con la cantidad y complejidad de la fracci&oacute;n arom&aacute;tica.</p>     <p>Todos los suelos cuentan con una fracci&oacute;n alif&aacute;tica y la presencia de grupos OH debida posiblemente a fenoles, &aacute;cidos carbox&iacute;licos o alcoholes (<a href="#t3">Tablas 3</a>, <a href="#t4">4</a> y <a href="#t5">5</a>). Un aspecto importante es la ausencia de la banda de intensidad fuerte entre 1.900-1.650 cm<sup>-1</sup> en los suelos H03-0 y H03-40, debida a la tensi&oacute;n del C=O de aldeh&iacute;dos, &aacute;cidos, cetonas, amidas, &eacute;steres y anh&iacute;dros, la cual se observ&oacute; en los dem&aacute;s espectros pero con una intensidad muy d&eacute;bil.</p>     <p>La aparici&oacute;n de las bandas cercanas a 1.382 y 1.243 cm<sup>-1</sup> en los suelos H03-0 y H03-40 se deben posiblemente a la deformaci&oacute;n de C-H del CH<sub>2</sub> yCH<sub>3</sub> y a la vibraci&oacute;n de tensi&oacute;n C-O de &eacute;steres, &eacute;teres y fenoles, respectivamente (4, 15).</p>     <p>Respecto a los espectros de <sup>13</sup>C-RMN en estado s&oacute;lido con CPMAS empleados como herramienta anal&iacute;tica cuantitativa, no destructiva, para determinar el tipo de carb&oacute;n presente en la o las estructuras moleculares que conforman la materia org&aacute;nica del suelo, se encontr&oacute; que las bandas o picos presentaron caracter&iacute;sticas muy similares en las once regiones, excepto para el suelo I02-40, la cual no mostr&oacute; bandas de resonancia debido posiblemente al bajo contenido de materia org&aacute;nica o a la presencia de algo de Fe<sup>2+</sup>/Fe<sup>3+</sup>(<a href="#f2">Figura 2</a>).</p>     <p align="center"><a name="f2"><img src="img/revistas/rcq/v39n1/v39n1a04i7.jpg"></a></p>     <p>De la integraci&oacute;n de cada una de las bandas observadas en los espectros se obtuvo la distribuci&oacute;n aparente de los grupos funcionales seg&uacute;n el tipo de carb&oacute;n, las cuales son consignadas en la <a href="#t6">Tabla 6</a>. La intensidad de la se&ntilde;al de la banda de resonancia en la regi&oacute;n 10 de la muestra H03-0 se seleccion&oacute; arbitrariamente d&aacute;ndole un valor de 100, para calcular las otras intensidades de las se&ntilde;ales y as&iacute; obtener los valores de cada fracci&oacute;n.</p>     <p align="center"><a name="t6"><img src="img/revistas/rcq/v39n1/v39n1a04i8.jpg"></a></p>     <p>Se debe tener presente por la naturaleza de la t&eacute;cnica <sup>13</sup>C-RMN en estado s&oacute;lido que la eficiencia CP para las diferentes bandas de resonancia puede variar significativamente, en donde la intensidad total del carbono de cada muestra no representa necesariamente la &quot;verdadera&quot; intensidad de la se&ntilde;al. Asumiendo una eficiencia igual en CP se puede obtener el siguiente n&uacute;mero de carbonos de la materia org&aacute;nica con cada muestra: H03-0 = 100 y H03-40 = 88, I02-0 = 23 y I02-40 = 0, y finalmente I01-0 = 17 y I01-40 = 12, confirm&aacute;ndose que el n&uacute;mero total de carbonos en la materia org&aacute;nica decrece a trav&eacute;s de la profundidad del suelo, lo cual corresponde con el contenido de carb&oacute;n org&aacute;nico determinado para cada uno de los suelos (<a href="#t1">Tabla 1</a>).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Lo que se puede cuantificar y comparar es la relaci&oacute;n entre la intensidad de la se&ntilde;al y la resonancia de una misma banda en dos diferentes espectros, porque en esas bandas se asume una misma eficiencia CP, encontr&aacute;ndose, seg&uacute;n la Tabla 6 y la <a href="#f3">Figura 3</a>, que la materia org&aacute;nica del suelo H03-0 present&oacute; las mayores intensidades en las se&ntilde;ales a &delta;<i> </i>= 190-220 ppm (C de cetona, quinona, aldeh&iacute;dos: C=O, HC=O); &delta;<i> </i>= 162-190 ppm (C del carboxilo, &eacute;ster, quinona: COO, COOH); &delta;<i> </i>= 120-145 ppm (C arom&aacute;tico: CH, C); &delta;<i> </i>= 60-96 ppm (C del alcohol, &eacute;ter, sac&aacute;ridos: CHOH, CH2OH, CH<sub>2</sub>-O-); &delta;<i> </i>= 25-35 ppm (C del CH<sub>2</sub> en alif&aacute;ticos simples) y &delta;<i> </i>= 0-25 ppm (C del CH<sub>3</sub>), y el suelo H03-40 present&oacute; una mayor intensidad en las se&ntilde;ales a &delta; = 145-162 ppm (C del fenol: C-O-, C-OH); &delta; = 108-120 ppm (C arom&aacute;tico: CH); &delta; = 96-108 ppm (C arom&aacute;tico cerca de los carbones fen&oacute;lico y el anom&eacute;rico: O-CH-O, CH) y una se&ntilde;al muy similar respecto a la muestra H03-0 a &delta;= 50-60 ppm (C del metoxi, metino y cuaternario: CH<sub>3</sub>O-, CH-NH, CH, C) y &delta; = 35-50 ppm (C del complejo alif&aacute;tico).</p>     <p align="center"><a name="f3"><img src="img/revistas/rcq/v39n1/v39n1a04i9.jpg"></a></p>     <p>Respecto a las otras muestras de materia org&aacute;nica, estas presentaron bandas de resonancia en las mismas regiones que las muestras H03-0 y H03-40, pero las intensidades de las se&ntilde;ales fueron menores, encontr&aacute;ndose al dividir las once regiones en cuatro grupos m&aacute;s generales (11) el siguiente orden respecto a la fracci&oacute;n alif&aacute;tica, la fracci&oacute;n C=O y quinonas, y a la fracci&oacute;n O-alquil: H03-0 &gt; H03-40 &gt; I02-0 &gt; I01-0 &gt; I01-40; para la fracci&oacute;n arom&aacute;tica (O-aril y C-aril) se encontr&oacute; el siguiente orden: H03-40 &gt; H03-0 &gt; I02-0 &gt; I01-0 &gt; I01-40. La &uacute;ltima sucesi&oacute;n est&aacute; muy acorde con el orden establecido, de acuerdo con las intensidades de las bandas en los espectros infrarrojo, en la regi&oacute;n de vibraci&oacute;n de tensi&oacute;n del C=C de las olefinas y compuestos arom&aacute;ticos.</p>     <p>El carb&oacute;n resonante en la regi&oacute;n &delta; = 108-50 ppm de los espectros (N - y O-alquilos y acetales) domin&oacute; en toda la MOS obtenida; le sigui&oacute; el carb&oacute;n arom&aacute;tico (&delta; = 162-108 ppm) para los suelos I01-0 y H03-40, y el carb&oacute;n alif&aacute;tico (&delta; = 0-50 ppm) para los suelos I01-40, I02-0 y H03-0. Finalmente el carb&oacute;n C=O (&delta; = 220-162 ppm) fue el menos dominante en la MOS en todos los suelos caracterizados. Resultados similares se han reportado para la caracterizaci&oacute;n de la MOS de 25 suelos con diferentes vegetaciones provenientes de varias zonas ecol&oacute;gicas de Australia y Pakist&aacute;n, en donde el carb&oacute;n resonante a &delta; = 45-110 ppm domin&oacute; en la mayor&iacute;a de los suelos estudiados, sigui&eacute;ndole el carb&oacute;n de la regi&oacute;n &delta; = -10-45 ppm, y finalmente el carb&oacute;n de la regi&oacute;n &delta; = 110-165 ppm; generalmente el carb&oacute;n de la regi&oacute;n &delta; = 165-220 ppm (carbonilos) contribuy&oacute; con la porci&oacute;n m&aacute;s peque&ntilde;a en la MOS (3, 11). Randall <i>et al. </i>encontraron que el carb&oacute;n arom&aacute;tico fue el segundo tipo de carb&oacute;n m&aacute;s importante en suelos provenientes de Rot-hamsted (UK) y Askov, siendo los grupos funcionales en la regi&oacute;n de &delta; = 45-110 ppm los dominantes en los espectros de <sup>13</sup>C RMN para muchos de los suelos caracterizados (16). Mahieu <i>et al., </i>sobre la base de datos de RMN provenientes de la literatura de alrededor de 300 suelos, reportaron que los O-alquil constituyeron el grupo m&aacute;s abundante seguido por los alquilos y los arom&aacute;ticos; los carbonilos fueron el grupo menos abundante (17). Respecto a la abundancia del carb&oacute;n alif&aacute;tico y arom&aacute;tico entre los suelos I01-40, I02-0 y H03-0, y los suelos I01-0 y H03-40, se ha reportado que la materia org&aacute;nica de los suelos con altos contenidos de arenas contiene m&aacute;s unidades alif&aacute;ticas que los suelos con altos contenidos de arcillas (18), siendo los suelos I01-40 y I02-0 los de mayor contenido de arenas, y los suelos I01-0 y H03-40 los que presentan un contenido mayor de arcillas.</p>     <p>La distribuci&oacute;n de intensidades (%) para el espectro de <sup>13</sup>C-RMN de una muestra de &aacute;cidos h&uacute;micos, como componente de la MOS, obtenidos de un suelo andisol del departamento del Cauca, mostr&oacute; que el carb&oacute;n proveniente de los grupos arom&aacute;ticos (&delta; = 150-90 ppm) fue el dominante, seguido por los grupos alif&aacute;ticos (&delta;= 0-45 ppm), el O-alquil (&delta; = 45-90 ppm) y finalmente el carb&oacute;n proveniente de los grupos carbonilos (&delta; = 200-150 ppm) (19). Estudios en donde se han combinado an&aacute;lisis qu&iacute;micos, espectros infrarrojos y de resonancia magn&eacute;tica nuclear, demostraron que las sustancias h&uacute;micas contienen una gran cantidad de carb&oacute;n alif&aacute;tico (20, 21). Las diferencias en la composici&oacute;n qu&iacute;mica de la MOS proveniente de suelos de distintas regiones se deben, posiblemente, a varios factores como el grado de descomposici&oacute;n de la MOS, el origen, los materiales parentales y factores ambientales (3).</p>     <p>Para el caso espec&iacute;fico de la MOS de los tres suelos a las dos profundidades provenientes del municipio de Aquitania, Boyac&aacute;, el r&eacute;gimen h&iacute;drico de la zona y la textura de los suelos probablemente pueden afectar la composici&oacute;n qu&iacute;mica de la MOS, teniendo presente que los minerales, la materia org&aacute;nica y los microorganismos est&aacute;n &iacute;ntimamente asociados en el suelo e interact&uacute;an estrechamente en varios procesos (22), como por ejemplo, la humificaci&oacute;n. La humificaci&oacute;n ha sido extensamente estudiada en los suelos, en cada uno de los perfiles que lo conforman y en los diferentes tama&ntilde;os de part&iacute;culas de este (23-25); concluy&eacute;ndose que durante el proceso de humificaci&oacute;n la cantidad de carbonos arom&aacute;ticos y alif&aacute;ticos incrementa, mientras que la cantidad de carbonos O-alquil disminuye (1). Posiblemente el suelo I01-0 present&oacute; una menor cantidad de grupos arom&aacute;ticos (<a href="#t6">Tabla 6</a>), relacionados con la condensaci&oacute;n de la MOS (humificaci&oacute;n), porque, adem&aacute;s de contener una menor cantidad de carb&oacute;n org&aacute;nico respecto a los suelos H03-0, H03-40 y I02-0, present&oacute; el menor contenido de arenas, el mayor contenido de limos y un contenido de arcillas un poco mayor al de los otros suelos (excepto para el H03-40), afectando de este modo la aireaci&oacute;n del suelo y, por ende, la actividad microbiana del sistema. En contraste, el suelo I02-0 present&oacute; el mayor contenido de arenas, al igual que un contenido mayor de carb&oacute;n org&aacute;nico respecto al suelo I01-0.</p>     <p><b>CONCLUSIONES</b></p>     <p>Los resultados de los espectros infrarrojo yde<sup>13</sup>C-RMN en estado s&oacute;lido con CPMAS permiten considerar que la materia org&aacute;nica de los suelos caracterizada est&aacute; conformada por anillos arom&aacute;ticos, quinonas, grupos fen&oacute;licos, grupos alcoh&oacute;licos, sac&aacute;ridos y cadenas alif&aacute;ticas. La no presencia de la banda de intensidad fuerte entre 1.900-1.650 cm<sup>-1</sup> en el IR de los suelos H03-0 y H03-40, debida a la tensi&oacute;n del C=O de aldeh&iacute;dos, &aacute;cidos, cetonas, amidas, &eacute;steres y anh&iacute;dros, evidencia, posiblemente, que en sus estructuras moleculares exista una gran presencia de quinonas respecto a los otros suelos.</p>     <p>La diferencia entre los suelos estudiados en relaci&oacute;n en el contenido de unidades alif&aacute;ticas se debe a la diferencia en el contenido de arenas y arcillas. La fracci&oacute;n arom&aacute;tica y alif&aacute;tica en un mismo suelo cambia con respecto a la profundidad, siendo la primera un poco mayor para los suelos I01-0 y H03-40 respecto a los suelos I01-40 y H03-0, debido no solo a la cantidad de carb&oacute;n org&aacute;nico en el suelo sino tambi&eacute;n a las diferencias en la textura.</p>     <p>El n&uacute;mero relativo de carbonos disminuye con el incremento de la profundidad en los tres suelos. Estos resultados est&aacute;n en concordancia con la disminuci&oacute;n en el contenido de carb&oacute;n org&aacute;nico a trav&eacute;s del perfil del suelo. La comparaci&oacute;n de las diferentes profundidades muestra que no solo el contenido de carb&oacute;n org&aacute;nico afecta la composici&oacute;n de la MOS, sino que tambi&eacute;n lo hacen los factores ambientales de la zona, tales como el r&eacute;gimen h&iacute;drico y la textura de los suelos, que controlan la aireaci&oacute;n del suelo y, por ende, la actividad microbiana del sistema en el proceso de humificaci&oacute;n de los componentes de la MOS.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>AGRADECIMIENTOS</b></p>     <p>A Per Olav Kverneberg y Sissel Jorgensen de la Universidad de Oslo, por su valiosa colaboraci&oacute;n en la toma de los espectros de resonancia magn&eacute;tica nuclear <sup>13</sup>C en estado s&oacute;lido.</p>     <p>A la Agencia Internacional de Energ&iacute;a At&oacute;mica (IAEA Viena, Austria), por la colaboraci&oacute;n y financiaci&oacute;n suministradas para la realizaci&oacute;n de este trabajo.</p>     <p><b>REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS</b></p>     <!-- ref --><p>1. Chefetz, B.; Tarchitzky, J.; Deshmukh, A. P.; Hatcher, P. G.; Chen, Y. Structural characterization of soil organic matter and humic acids in particle-size fractions of an agricultural soil. <i>Soil Science Society of America Journal. </i>2002 . <b>66: </b>129-141.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0120-2804201000010000400001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2. Stevenson, F. J. Humus Chemistry: Genesis, Composition, Reactions. New York, USA: A Willey-Interscience Publications. 1994.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0120-2804201000010000400002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3. Ahmad, R.; Nelson, P. N.; Kookana, R. S. The molecular composition of soil organic matter as determined by <sup>13</sup>C NMR and elemental analyses and correlation with pesticide sorption. <i>European Journal of Soil Science. </i>2006. <b>57: </b>883-893.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0120-2804201000010000400003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4. Kang, S.; Amarasiriwardena, D.; Veneman P.; Xing, B. Characterization of ten sequentially extractes humic acids and a humin from a soil in western Massachusetts. <i>Soil Science. </i>2003. <b>168: </b>880-886.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0120-2804201000010000400004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5. Baes, A. U.; Bloom, P. R. Diffuse reflectance and transmission Fourier transform infrarred (DRIFT) spectroscopy of humic and ful vic acids. <i>Soil Science Society of America Journal. </i>1989. <b>53: </b>695-700.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0120-2804201000010000400005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6. Niemeyer, J.; Chen, J.; Bollag, J. M. Characterization of humic acids, compost and peat by diffuse reflectance Fourier-transform infrared spectroscopy. <i>Soil Science Society of America    Journal. </i>1992. <b>56:</b> 135-140.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0120-2804201000010000400006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7. Ribeiro, J.; Sonay, S.; Garrigues, S.; Guardia, M. FITRTentativecharacterization of humic acids extracted from organic materials. <i>Spectroscopy Letters. </i>2001. <b>34: </b>179-190.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0120-2804201000010000400007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8. DANE. Primer Censo del cultivo de cebolla larga. Boyac&aacute; Regi&oacute;n de la Laguna de Tota. 2001: 5-18.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0120-2804201000010000400008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9. DANE. Encuesta Nacional Agropecuaria. M&oacute;dulo: &aacute;rea, producci&oacute;n y rendimiento. 2000.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0120-2804201000010000400009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10. IGAC. Estudio general de suelos de los municipios de Aquitania, Cuitiva, Firavitoba, Iza, Mongui, Nobsa, Sogamoso, Tibasosa, Topaga y Tota (departamento de Boyac&aacute;). Bogot&aacute;, D.C. 1980. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0120-2804201000010000400010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11. Ahmad, R.; Kookana, R. S.; Alston, A. M.; Skjemstad, J. O. The Nature of Soil Organic Matter Affects Sorption of Pesticide. 1. Relationships with Carbon Chemistry as Determined by <sup>13</sup>C CPMAS NMR Spectroscopy. <i>Environmental Science and Technology. </i>2001. <b>35: </b>878-884.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0120-2804201000010000400011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12. Mao, J. D.; Hu, W. G.; Rohr, S.; Davies, G.; Grabour, E. A.; Xing, B. Quantitative characterization of humic substances by solid-state carbon-13 nuclear magnetic resonance. <i>Soil Science SocietyofAmericaJournal. </i>2000. <b>64: </b>873-884.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0120-2804201000010000400012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13. Leinwebwe, P.; Blumenstein, O.; Schulten, H. R. Organic matter composition in sewage farm soils: investigations by <sup>13</sup>C-NMR and pyrolisisfield ionization mass spectroscopy. <i>European Journal of Soil Science. </i>1996. <b>47: </b>71-80.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0120-2804201000010000400013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14. Chen, Z.; Pawluk, S. Structural variations of humic acids in two sola of Alberta Mollisols. <i>Geoderma. </i>1995. <b>65: </b>173-193.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0120-2804201000010000400014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15. Chien, S.-W. C.; Huang, C-C.; Wang, M. C. Analytical and spectroscopic characteristics of refuse compost-derived humic substances. <i>International Journal of Applied Science and Engineering. </i>2003. <b>1:</b> 62-71.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0120-2804201000010000400015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>16. Randall, E. W.; Mahieu, N.; Powlson, D. S.; Christensen, B. T. Fertilization effects on organic matter in physically fractionated soils as studied by <sup>13</sup>C NMR: Results from two long-term field experiments. <i>European Journal of Soil Science</i>. 1995. <b>46: </b>557-565.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0120-2804201000010000400016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17. Mahieu, N.; Powlson, D. S.; Randall, E. W. Statistical Analysis of Published Carbon-13 CPMAS NMR Spectra of Soil Organic Matter. <i>Soil Science Society ofAmerica Journal. </i>1999. <b>63: </b>307-319.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0120-2804201000010000400017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18. Capriel, P. Hydrophobicity of organic matter in arable soils: influence of management. <i>European Journal ofSoil Science. </i>1997. <b>48: </b>457-462.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0120-2804201000010000400018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19. Mosquera, C. S.; Bravo, I.; Hansen, E. W. Comportamiento estructural de los &aacute;cidos h&uacute;micos obtenidos de un suelo andisol del departamento del Cauca. <i>Revista. Colombiana de Qu&iacute;mica. </i>2007. <b>36: </b>31-41.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0120-2804201000010000400019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>20. Sciacovelli, O.; Senesi, N.; Solinas, V.; Testini, C. Spectroscopic studies on soil organic fractions i. IR and MNR spectra. <i>Soil Biology and Biochemistry. </i>1977. <b>9: </b>287-293.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0120-2804201000010000400020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>21. Hatcher, P. G.; Schnitzer, M.; Denis, L. W.; Maciel, G. E. Aromaticity of humic substances in soils. <i>Soil Science Society ofAmerica Journal. </i>1981. <b>45: </b>1089-1094.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0120-2804201000010000400021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>22. Bollag, J. M. Interactions of Soil Components and Microorganisms and their Effects on Soil Remediation. <i>Revista de la Ciencia del Suelo y Nutrici&oacute;n Vegetal. </i>2008.<b>8:</b>28-32.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0120-2804201000010000400022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>23. Chefetz, B.; Chen, Y.; Clapp, C.E.; Hatcher, P. G. J. A. Characterization of organic matter in soil by ther-mochemolysis using tetramethylammonium hydroxide (TMAH). <i>Soil Science Society ofAmerica Journal. </i>2000. <b>64: </b>583-589.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0120-2804201000010000400023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>24. Guggenberger, G.; Zech, G. W.; Thomas, R. J. Lignin and carbohydrate alteration in particle-size separetes of an oxisol under tropical pastures following native savanna. <i>Soil Biology and Biochemistry</i>. 1995. <b>27:</b> 1629-1638.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0120-2804201000010000400024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>25. Kogel-Knabner, L. <sup>13</sup>C and <sup>15</sup>N NMR spectroscopy as a tool in soil organic matter studies. <i>Geoderma. </i>1997. <b>80: </b>243-270.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0120-2804201000010000400025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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