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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[CONSTITUYENTES QUÍMICOS, ACTIVIDAD INSECTICIDA Y ANTIFÚNGICA DE LOS ACEITES ESENCIALES DE HOJAS DE DOS ESPECIES COLOMBIANAS DEL GÉNERO Ocotea (LAURACEAE)]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[CHEMICAL CONSTITUENTS, INSECTICIDE AND ANTIFUNGAL ACTIVITIES OF THE ESSENTIAL OILS OF LEAVES OF TWO COLOMBIAN SPECIES OF Ocotea GENUS (LAURACEAE)]]></article-title>
<article-title xml:lang="pt"><![CDATA[CONSTITUENTS QUÍMICOS, ATMDADE ANTIFÚNGICA E INSETICIDA DE ÓLEOS ESSENCIAIS DE FOLHAS DE DUAS ESPECIES COLOMBIANO DO GÉNERO Ocotea (LAURACEAE)]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[This study determined the chemical composition of the essential oils isolated from leaves of Ocotea longifolia and O. macrophylla by steam distillation and the antifungal and insecticide activities of essential oils as potential pesticides were tested. The yield of essential oil of O. longifolia was more than 0.2%, while the essential oil yield of O. macrophylla was less than 0.1%. GC/MS analysis allowed the identification of &alpha;-terpinolene (80.91%) and &alpha;-phellandrene (4.74%) as the main constituents of O. longifolia oil, and spathulenol (15.91%), &gamma;-muurolene (15.4%) and bicyclogermacrene (14.58%) as the major constituents of O. macrophylla. The essential oil of O. longifolia showed significant fumigant activity against Sitophilus zeamais (LC50 280.5 µL/L air), and could become an alternative to synthetic pesticides for controlling this pest. The antifungal activity of the essential oils also was evaluated. The essential oils showed low inhibitory effect on the growth of the phytopathogen fungi Fusarium oxysporum f. sp. dianthi and Botrytis cinerea.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="pt"><p><![CDATA[Neste estudo nós determinamos a composicào química dos óleos essenciais das folhas de Ocotea longifolia e O. macrophylla obtidas por destilacáo a vapor e avaliaram a atividade antifúngica e inseticida de óleos essenciais para estimar a sua possível utilizacào como pesticidas. O rendimento do óleo essencial de O. longifolia foi superior a 0,2%, enquanto o rendimento doóleo essencial de O. acrophylla foi inferior a 0,1%. A análise dos óleos por CG/EM permitiu a identificacáo de &alpha;-terpinolene (80,91%) e &alpha;-felandreno (4,74%) como os principais componentes do óleo de O. longifolia, e espatulenol (15,91%), &gamma;-muuroleno (15,4%) e biciclogermacreno (14,58%) como os principais componentes do óleo de O. macrophylla. O óleo essencial de O. longifolia mostraram atividade significativa contra Sitophilus zeamais (CL50 280,5 µL/L ar), e pode se tornar uma alternativa aos inseticidas sintéticos para o controle desta praga. A atividade antifúngica de óleos essenciais também foi avaliada. Os óleos essenciais de O. longifolia e O. macrophylla apresentaram baixo efeito inibitório sobre o crescimento dos fungos Fusarium oxysporum f. sp. dianthi e Botrytis cinerea.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p align="center"><font size="4"><b>CONSTITUYENTES QU&Iacute;MICOS, ACTIVIDAD INSECTICIDA Y ANTIF&Uacute;NGICA    DE LOS ACEITES ESENCIALES DE HOJAS DE DOS ESPECIES COLOMBIANAS DEL G&Eacute;NERO <i>Ocotea </i>(LAURACEAE)</b></font></p>     <p align="center"><b><font size="3">CHEMICAL CONSTITUENTS, INSECTICIDE AND ANTIFUNGAL    ACTIVITIES OF THE ESSENTIAL OILS OF LEAVES OF TWO COLOMBIAN SPECIES OF <i>Ocotea </i>GENUS (LAURACEAE)</font></b></p>     <p align="center"><font size="3"><b>CONSTITUENTS QU&Iacute;MICOS, ATMDADE ANTIF&Uacute;NGICA    E INSETICIDA DE &Oacute;LEOS ESSENCIAIS DE FOLHAS DE DUAS ESPECIES COLOMBIANO DO G&Eacute;NERO <i>Ocotea </i>(LAURACEAE)</b></font></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p><i>Juliet A. Prieto<sup>1</sup>, Ludy C. Pab&oacute;n<sup>1</sup>, Oscar J. Patino<sup>1</sup>,    Wilman A. Delgado<sup>1</sup>, Luis E. Cuca<sup>1,2</sup></i></p>     <p>1 Departamento de Qu&iacute;mica, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional    de Colombia, Bogot&aacute;, Carrera 30 No. 45-03, Colombia. A.A. 14490.</p>     <p>2 <a href="mailto:lecucas@unal.edu.co">lecucas@unal.edu.co</a></p>     <p>Recibido: 31/05/10 - Aceptado: 30/08/10</p> <hr>     <p><b>RESUMEN</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En este estudio se determin&oacute; la composici&oacute;n qu&iacute;mica de los aceites esenciales    de hojas de <i>Ocotea longifolia </i>y <i>O. macrophylla </i>obtenidos mediante    destilaci&oacute;n por arrastre convapor, yse evalu&oacute; la actividad antif&uacute;ngica e insecticida    de los aceites esenciales para estimar su uso como posibles plaguicidas. El    rendimiento del aceite esencial de <i>O. longifolia </i>fue superior al 0,2%,    mientras que el rendimiento del aceite esencial de <i>O. macrophylla </i>fue    inferior al 0,1%. El an&aacute;lisis de los aceites por CG/EM permiti&oacute; la identificaci&oacute;n    de &alpha;-terpinoleno (80,91%) y &alpha;-felandreno (4,74%) como componentes    principales del aceite <i>O. longifolia, </i>y espatulenol (15,91%), &gamma;-muuroleno    (15,4%) y biciclogermacreno (14,58%) como los principales componentes de <i>O.      macrophylla. </i>El aceite esencial de <i>O. longifolia </i>mostr&oacute; actividad    fumigante significativa contra <i>Sitophilus zeamais </i>(CL<sub>50</sub> 280,5    &micro;<i>L/L </i>aire). Adicionalmente se evalu&oacute; la actividad antif&uacute;ngica de    los aceites esenciales, encontr&aacute;ndose un bajo efecto inhibidor en el crecimiento    de los hongos fitopat&oacute;genos <i>Fusarium oxysporum </i>f. sp. <i>dianthi </i>y <i>Botrytis cinerea.</i></p>     <p><b>Palabras clave: </b><i>Ocotea longifolia, O. macrophylla, Sitophilus zeamais,    Fusarium oxysporum </i>f. sp. <i>dianthi, Botrytis cinerea, </i>biocontrolador.</p> <hr>     <p><b>ABSTRACT</b></p>     <p>This study determined the chemical composition of the essential oils isolated    from leaves of <i>Ocotea longifolia </i>and <i>O. macrophylla </i>by steam distillation    and the antifungal and insecticide activities of essential oils as potential    pesticides were tested. The yield of essential oil of <i>O. longifolia </i>was    more than 0.2%, while the essential oil yield of <i>O. macrophylla </i>was less    than 0.1%. GC/MS analysis allowed the identification of &alpha;-terpinolene (80.91%)    and &alpha;-phellandrene (4.74%) as the main constituents of <i>O. longifolia </i>oil, and spathulenol (15.91%), &gamma;-muurolene (15.4%) and bicyclogermacrene    (14.58%) as the major constituents of <i>O. macrophylla. </i>The essential oil    of <i>O. longifolia </i>showed significant fumigant activity against <i>Sitophilus      zeamais </i>(LC<sub>50</sub> 280.5 &micro;<i>L/L </i>air), and could become an    alternative to synthetic pesticides for controlling this pest. The antifungal    activity of the essential oils also was evaluated. The essential oils showed    low inhibitory effect on the growth of the phytopathogen fungi <i>Fusarium oxysporum </i>f. sp. <i>dianthi </i>and <i>Botrytis cinerea.</i></p>     <p><b>Key words: </b><i>Ocotea longifolia, O. macrophylla, Sitophilus zeamais,    Fusarium oxysporum </i>f. sp. <i>dianthi, Botrytis cinerea, </i>biocontroller.</p> <hr>     <p><b>RESUMO</b></p>     <p>Neste estudo n&oacute;s determinamos a composic&agrave;o qu&iacute;mica dos &oacute;leos essenciais das    folhas de <i>Ocotea longifolia </i>e <i>O. macrophylla </i>obtidas por destilac&aacute;o    a vapor e avaliaram a atividade antif&uacute;ngica e inseticida de &oacute;leos essenciais    para estimar a sua poss&iacute;vel utilizac&agrave;o como pesticidas. O rendimento do &oacute;leo    essencial de <i>O. longifolia </i>foi superior a 0,2%, enquanto o rendimento    do&oacute;leo essencial de <i>O. acrophylla </i>foi inferior a 0,1%. A an&aacute;lise dos    &oacute;leos por CG/EM permitiu a identificac&aacute;o de &alpha;-terpinolene (80,91%) e &alpha;-felandreno    (4,74%) como os principais componentes do &oacute;leo de <i>O. longifo</i>lia, e espatulenol    (15,91%), &gamma;-muuroleno (15,4%) e biciclogermacreno (14,58%) como os principais    componentes do &oacute;leo de <i>O. macrophylla. </i>O &oacute;leo essencial de <i>O. longifolia </i>mostraram atividade significativa contra <i>Sitophilus zeamais </i>(CL<sub>50 </sub>280,5 &micro;L/L ar), e pode se tornar uma alternativa aos inseticidas    sint&eacute;ticos para o controle desta praga. A atividade antif&uacute;ngica de &oacute;leos essenciais    tamb&eacute;m foi avaliada. Os &oacute;leos essenciais de <i>O. longifolia </i>e <i>O. macrophylla </i>apresentaram baixo efeito inibit&oacute;rio sobre o crescimento dos fungo<i>s Fusarium      oxysporum </i>f. sp. <i>dianthi </i>e <i>Botrytis cinerea.</i></p>     <p><b>Palavras-chave: </b><i>Ocotea longif&oacute;lia, O. macrophylla, Sitophilus zeamais,    Fusarium oxysporum </i>f. sp. <i>dianthi, Botrytis cin&eacute;rea, </i>biocontrole.</p> <hr>     <p><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></p>     <p>Las p&eacute;rdidas de cosechas causadas por el ataque de insectos y enfermedades    es un problema que atenta contra la seguridad alimentaria, adem&aacute;s de causar    grandes p&eacute;rdidas econ&oacute;micas a nivel mundial (1, 2). Los insectos plaga causan    a menudo considerables p&eacute;rdidas de productos almacenados en ambientes tropicales    y semitropicales. Las especies del g&eacute;nero <i>Sitophilus </i>constituyen la plaga    que m&aacute;s afecta granos y cereales almacenados debido a su distribuci&oacute;n cosmopolita    y al gran n&uacute;mero de producos que ataca (arroz, trigo, ma&iacute;z, lentejas, entre    otros) (3, 4). <i>S. zeamais </i>(gorgojo del ma&iacute;z), <i>S. oryzae </i>(gorgojo    del arroz) y <i>S. granarius </i>son los principales representantes de este    g&eacute;nero. Estos insectos se alimentan directamente del grano almacenado, causando    efectos desfavorables en la calidad, seguridad y conservaci&oacute;n de los alimentos    (5, 6).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Las p&eacute;rdidas de cultivos debidas a las enfermedades causadas por hongos pueden    ascender a un 12% en pa&iacute;ses en v&iacute;as de desarrollo. Pat&oacute;genos como <i>Fusarium      oxysporum </i>y <i>Botrytis cinerea </i>generan graves da&ntilde;os a nivel agr&iacute;cola    en las etapas pre y poscosecha (7). <i>F. oxysporum </i>es un hongo cosmopolita    que existe en muchas formas patog&eacute;nicas, parasitando m&aacute;s de cien especies de    plantas Gimnospermas y Angiospermas, gracias a los diversos mecanismos que tiene    para vencer las defensas de muchas plantas. Este microorganismo causa marchitamiento    vascular en las plantas hospedantes, adem&aacute;s de producir toxinas que contribuyen    al marchitamiento por afecci&oacute;n en la permeabilidad de las membranas celulares,    alterando as&iacute; el metabolismo celular (8, 9). <i>B. cinerea </i>es el agente    causal de la &quot;pudrici&oacute;n gris&quot;, que infecta a m&aacute;s de 200 especies vegetales,    entre las que se incluyen frutales, plantas ornamentales y una serie de hortalizas.    Este pat&oacute;geno puede atacar a los cultivos en cualquier estado de su desarrollo,    e infectar cualquier parte de la planta, al colonizar hojas, tallos, flores,    tub&eacute;rculos y frutos (10).</p>     <p>Los pesticidas sint&eacute;ticos han sido ampliamente utilizados para el control de    plagas y enfermedades de las plantas, pero su aplicaci&oacute;n indiscriminada ha ocasionado    diversos problemas, como la acumulaci&oacute;n de residuos t&oacute;xicos en los productos    tratados, la contaminaci&oacute;n ambiental y la resistencia desarrollada por las plagas    ante estos plaguicidas, entre otros (1,7, 11). Debido a los inconvenientes generados    por el uso continuo de agroqu&iacute;micos convencionales, se ha incrementado la necesidad    de desarrollar nuevos biocontroladores que permitan tratar las plagas que afectan    a muchas plantas fuentes de alimento o de uso industrial.</p>     <p>Los aceites esenciales son fuentes bot&aacute;nicas potenciales para encontrar o desarrollar    nuevos agroqu&iacute;micos, pues se caracterizan por presentar baja toxicidad para    animales de sangre caliente, alta volatilidad y toxicidad para plagas de granos    almacenados y microorganismos que afectan las plantas (12, 13). Las plantas    del g&eacute;nero <i>Ocotea </i>son apetecidas por sus aceites esenciales, los cuales    son muy utilizados en las industrias de saborizantes y perfumer&iacute;a por sus propiedades    antioxidantes y antimicrobianas. Por ejemplo, los aceites esenciales de <i>O.      cymbarum, O. caudata </i>(palorosa peruano), <i>O. pretiosa </i>(sasafras brasile&ntilde;o)    y <i>O. usambarensis </i>(alcanforero africano) son productos de importancia    econ&oacute;mica en la industria perfumera (14, 15).</p>     <p>En el presente art&iacute;culo, se reporta la composici&oacute;n qu&iacute;mica, la actividad insecticida    sobre <i>S. zeamais </i>y la actividad antif&uacute;ngica sobre <i>F. oxysporum </i>f.    sp. <i>dianthi </i>de los aceites esenciales obtenidos de las hojas de dos plantas    colombianas de la familia Lauraceae, <i>O. longifolia </i>y <i>O. macrophylla.</i></p>     <p><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS Material vegetal</b></p>     <p>La especie <i>Ocotea longifolia </i>se recolect&oacute; en enero de 2008, en el municipio    de Icononzo (Tolima); la especie <i>Ocotea macrophylla, </i>en junio de 2006,    en el municipio de Nocaima, vereda San Juanito, al lado de la carretera Nocaima-Vergara    (Cundinamarca). Las dos muestras vegetales fueron colectadas por el qu&iacute;mico    M.Sc. Wilman Delgado. Las muestras vegetales fueron determinados en el Herbario    Nacional Colombiano del Instituto de Ciencias Naturales de la Universidad Nacional    de Colombia, Bogot&aacute;, Colombia. Un esp&eacute;cimen de <i>O. longifolia </i>y uno de <i>O. macrophylla </i>reposan en el mismo herbario, con los n&uacute;meros de colecci&oacute;n    COL-522892yCOL-517191,respectiva-mente.</p>     <p><b>Obtenci&oacute;n de aceites esenciales</b></p>     <p>Las hojas frescas (2 kg aprox.) de cada especie se sometieron a destilaci&oacute;n    por arrastre con vapor por 2 horas. Los aceites esenciales obtenidos se secaron    sobre sulfato de sodio anhidro y fueron almacenados entre 0-5 &deg;C, para su    posterior an&aacute;lisis.</p>     <p><b>An&aacute;lisis por CG/FID</b></p>     <p>El an&aacute;lisis de los compuestos vol&aacute;tiles se realiz&oacute; en el equipo Hewlett Packard    5890 GC system con una columna capilar (50 m x 0,25 mm x 0,25 micras, HP-5MS,    Crossbond 5% difenil 95% dimetilpolisiloxano, Sigma-Aldrich) directamente acoplado    a un detector de ionizaci&oacute;n de llama (FID) a 280 &deg;C. Las condiciones de    an&aacute;lisis fueron: temperatura del inyector 250 &deg;C; columna: 45 &deg;C (2    min) @ 150 &deg;C 2 &deg;C/min (5 min) @ 280 &deg;C 8 &deg;C/min (5 min); split    30:1 durante 1,50 minutos. Se emple&oacute; helio como gas portador con flujo constante    de 1 mL/min. 20 &micro;L de la muestra se diluyeron en 1 mL de diclorometano    y se inyect&oacute; 1 &micro;L de esta soluci&oacute;n.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>An&aacute;lisis por CG/EM</b></p>     <p>El an&aacute;lisis por CG/EM se llev&oacute; a cabo en el modo IE en el equipo Hewlett Pac-kard-5890    GC system con columna capilar (50 m x 0,25 mm x 0,25 &micro;m, HP-5MS, Crossbond    5% difenil 95% dimetilpolisiloxano) acoplado a un detector selectivo de masas    Hewlett Packard 5973. Las condiciones de la inyecci&oacute;n fueron las mismas que    las descritas anteriormente. El espectr&oacute;metro de masas se oper&oacute; a 70 eV en modo    full scan.</p>     <p><b>Determinaci&oacute;n de los componentes de los aceites esenciales</b></p>     <p>La determinaci&oacute;n de los constituyentes qu&iacute;micos se bas&oacute; en la comparaci&oacute;n de    los espectros de masas y los &iacute;ndices de retenci&oacute;n con los obtenidos de las bibliotecas    Wiley 138.L, 75K.L NBS y SDB y los publicados por Adams. Los &iacute;ndices de retenci&oacute;n    (IR) se calcularon de acuerdo con lo reportado en la literatura (16).</p>     <p><b>Insectos</b></p>     <p>Los gorgojos del ma&iacute;z se obtuvieron de una colonia mantenida en el Laboratorio    de Entomolog&iacute;a, en el Departamento de Agronom&iacute;a de la Universidad Nacional de    Colombia, sede Bogot&aacute;. Los gorgojos se mantuvieron en los granos de ma&iacute;z. Los    insectos adultos, entre 1-10 d&iacute;as de edad, se utilizaron para los ensayos de    toxicidad fumigante. El pie de cr&iacute;a se mantuvo en la oscuridad a 25 &plusmn;    1 &deg;C y humedad relativa 70 &plusmn; 5%.</p>     <p><b>Cepas f&uacute;ngicas</b></p>     <p><i>Fusarium oxysporum </i>f. sp. <i>dianthi </i>se obtuvo de la cepa mantenida    en el Laboratorio de Hospedero Pat&oacute;geno, Departamento de Qu&iacute;mica de la Universidad    Nacional de Colombia. La cepa f&uacute;ngica es mantenida en medio de agar-papa-dextrosa    (PDA) en incubadora a 25 &plusmn; 1 &deg;C.</p>     <p><i>Botrytis cinerea </i>se obtuvo de la cepa mantenida en el Laboratorio de    Qu&iacute;mica, Jard&iacute;n Bot&aacute;nico Jos&eacute; Celestino Mutis. La cepa f&uacute;ngica es mantenida    en medio de agar-papa-dextrosa (PDA) en una incubadora a 25 &plusmn; 1 &deg;C.</p>     <p><b>Ensayo de actividad insecticida</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Para determinar la toxicidad vol&aacute;til de los aceites esenciales, se aplicaron    dosis de aceite entre 1-11 &micro;<i>L </i>(50-500 &micro;<i>L/L </i>aire) sobre    discos de papel filtro (Whatman No. 1) de 2 cm de di&aacute;metro colocados dentro    de un vial de vidrio de 1,5 mL de volumen, el cual fue colocado en el interior    de otro vial de mayor tama&ntilde;o (22 mL) que conten&iacute;a 10 insectos adultos (1-6 d&iacute;as    de emergidos); el vial grande se tap&oacute; con tapa rosca. Como controles positivos    se emplearon Fosfamin con fosfina como ingrediente activo (100 &micro;g/L aire) y    Nuvan 50, que contiene clorvox como ingrediente activo (50 &micro;L/L aire). El control    negativo se realiz&oacute; de la misma manera, pero sin la aplicaci&oacute;n de ninguna sustancia.    Los viales se mantuvieron en condiciones controladas de temperatura y humedad    (25 &plusmn; 1 &deg;C y 70 &plusmn; 5% r.h.). Cada ensayo se realiz&oacute; por triplicado.    La mortalidad de los insectos fue determinada a las 24 h (17). El porcentaje    de mortalidad de los insectos (%M) se calcul&oacute; empleando la f&oacute;rmula de correcci&oacute;n    de Abbott (18). El an&aacute;lisis probit se us&oacute; para determinar los valores de CL50,    as&iacute; como el correspondiente intervalo de confianza del 95% (19).</p>     <p><b>Ensayo de actividad antif&uacute;ngica</b></p>     <p><b><i>in vitro</i></b></p>     <p>Para el ensayo de actividad antif&uacute;ngica <i>in vitro, </i>se emple&oacute; PDA como    medio de cultivo, preparado en cajas de Petri de vidrio (90 mm x 15 mm). Discos    de 5 mm de agar cubierto con la cepa f&uacute;ngica activa se colocaron en el centro    de las cajas de Petri, y discos de papel esterilizados se ubicaron a 2 cm    de la mitad de las cajas de Petri. Una al&iacute;cuota de 15&micro;<i>L </i>de cada    aceite esencial se a&ntilde;adi&oacute; en los discos de papel en cada una de las cajas con    PDA (colocando m&aacute;ximo 5 &micro;L por disco). Las cajas se sellaron con Parafilm    inmediatamente despu&eacute;s de agregar cada aceite esencial y se incubaron por 3 d&iacute;as    a 25 &deg;C. El di&aacute;metro del micelio del hongo se midi&oacute; y se compar&oacute; con el    del control no tratado para determinar el porcentaje de inhibici&oacute;n del crecimiento    causado por cada aceite. Los ensayos se realizaron por triplicado. Como control    positivo se emple&oacute; Benomyl (benzimidazol - 200 ppm) (20).</p>     <p><b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</b></p>     <p>Los datos se presentan como media &plusmn; 1DE. La significancia estad&iacute;stica    fue determinada por las pruebas de Duncan y Tukey; el an&aacute;lisis de varianza ANOVA    se utiliz&oacute; para determinar si existe una diferencia estad&iacute;sticamente significativa    entre los resultados obtenidos en ensayos de actividad antif&uacute;ngica e insecticida.    La significancia estad&iacute;stica fue aceptada a P &lt; 0,05.</p>     <p><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></p>     <p><b>Composici&oacute;n qu&iacute;mica de los aceites esenciales</b></p>     <p>Los resultados de la composici&oacute;n de los aceites esenciales de <i>O. longifolia </i>y <i>O. macrophylla </i>se presentan en la <a href="#t1">Tabla 1</a>,    donde se observa que los aceites contienen principalmente monoterpenos y sesquiterpenos.    Los componentes vol&aacute;tiles determinados constituyen entre 72-98% de la composici&oacute;n    de los aceites esenciales de las dos especies del g&eacute;nero <i>Ocotea. </i>Los    monoterpenos son los componentes m&aacute;s abundantes en el aceite de <i>O. longifo</i>lia,    representando m&aacute;s del 90%, mientras que para el aceite de <i>O. macrophylla </i>los monoterpenos solo constituyen un 6,20%, siendo los componentes minoritarios.    Los sesquiterpenos representan el 70,62% de la composici&oacute;n del aceite esencial    de <i>O. macrophylla.</i></p>     <p align="center"><a name="t1"></a><img src="img/revistas/rcq/v39n2/v39n2a04i1.jpg"></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Los componentes mayoritarios encontrados en el aceite esencial de hojas de <i>O. longifolia </i>fueron &alpha;-terpinoleno (80,91 %) y &alpha;-felandreno    (4,74%). La composici&oacute;n de este aceite esencial fue caracterizada en 97,87%.    Los componentes que no fueron determinados corresponden principalmente a sesquiterpenos.    Es importante resaltar que el rendimiento del aceite esencial de hojas de <i>O.      longifolia </i>fue de 0,23%. El aceite esencial de hojas de <i>O. macrophylla </i>contiene principalmente espatulenol (15,91%), &gamma;-muuroleno (15,40%)    y biciclogermacreno (14,58%). Aproximadamente el 71,90% de la composici&oacute;n del    aceite esencial de <i>O. macrophylla </i>fue caracterizado. Los componentes    que no pudieron determinarse corresponden asesquiterpenoides principalmente.    La composici&oacute;n qu&iacute;mica detallada de los aceites esenciales de hojas de <i>O.      longifolia </i>y <i>O. macrophylla </i>se reporta por primera vez en este estudio.</p>     <p>Los compuestos &alpha;-pineno, &beta;-pineno, &delta;-elemeno, &alpha;-copaeno,    &beta;-cariofileno, &alpha;-humuleno, biciclogermacreno, &delta;-cadineno y &alpha;-cadinol,    est&aacute;n presentes en los dos aceites esenciales en proporciones inferiores al    3%. La abundancia de monoterpenos y sesquiterpenos en los aceites esenciales    estudiados est&aacute; de acuerdo con los reportes hechos para algunos aceites esenciales    de diferentes &oacute;rganos vegetales de especies del g&eacute;nero <i>Ocotea </i>(21).</p>     <p><b>Activ&iacute;dad insecticida de los aceites esenciales</b></p>     <p>La toxicidad de los aceites esenciales evaluada sobre <i>S. zeamais </i>empleando    diferentes dosis de cada aceite se muestra en la <a href="#f1">Figura 1</a>.    En la figura se observa que el aceite esencial de <i>O. longifolia </i>presenta    actividad insecticida sobre la plaga ensayada, mientras que el aceite esencial    de hojas de <i>O. macrophylla </i>no presenta dicha actividad. En la figura    tambi&eacute;n se puede observar que la actividad insecticida del aceite de <i>O. longifolia </i>aumenta proporcionalmente con la dosis de aceite aplicada, causando una    mortalidad superior al 90% a una dosis de 500&micro;<i>L/L </i>aire. La concentraci&oacute;n    letal 50 determinada para el aceite esencial de <i>O. longifolia </i>corresponde    a CL50 = 280,5 (255,6 -307,8) &micro;L/L aire.</p>     <p align="center"><a name="f1"></a><img src="img/revistas/rcq/v39n2/v39n2a04i2.jpg"></p>     <p>La actividad fumigante del aceite esencial de <i>O. longifolia </i>puede ser    atribuida a la presencia de &alpha;-terpinoleno, monoterpeno mayoritario en el    aceite esencial, y para el cual se ha reportado que causa una mortalidad superior    al 90% en especies del g&eacute;nero <i>Sitophilus </i>a bajas concentraciones (22,    23). La actividad insecticida del aceite esencial de <i>O. longifolia </i>tambi&eacute;n    puede deberse a la presencia de algunos compuestos que no est&aacute;n presentes en    el aceite esencial de hojas de <i>O. macrophylla.</i></p>     <p>Los fumigantes comerciales, Fosfamin (100 &micro;<i>g/L </i>aire) y Nuvan 50    (50&micro;<i>L/L </i>aire), mostraron 100% de mortalidad despu&eacute;s de 1 h de exposici&oacute;n    a los insectos.</p>     <p><b>Actividad antif&uacute;ngica de los aceites esenciales</b></p>     <p>Los aceites esenciales tambi&eacute;n se evaluaron como fumigantes sobre dos hongos, <i>F. oxysporum </i>f. sp <i>dianthi </i>y <i>B. cinerea. </i>Los aceites presentaron    baja actividad fumigante sobre los hongos fitopat&oacute;genos a la concentraci&oacute;n m&aacute;s    alta evaluada, actividad que no fue muy significativa al comparar la inhibici&oacute;n    causada por los aceites con la inhibici&oacute;n de crecimiento debida al Benomyl (superior    al 90% a la dosis evaluada), y por tanto no se determin&oacute; la actividad antif&uacute;ngica    de los aceites esenciales a menores concentraciones. El aceite esencial de hojas    de <i>O. longifolia </i>inhibi&oacute; el crecimiento de <i>F. oxysporum </i>f. sp. <i>dianthi </i>en 31,2 &plusmn; 0,45% y el de <i>B. cinerea </i>en 32,8 &plusmn;    0,21%, mientras que el aceite esencial obtenido de las hojas de <i>O. macrophylla </i>inhibi&oacute; en 17,9 &plusmn; 0,37% el crecimiento de <i>F. oxysporum </i>f.    sp. <i>dianthi </i>y en 13,2 &plusmn;0,32% el crecimiento de <i>B. cinerea. </i>La actividad antif&uacute;ngica exhibida por el aceite esencial de <i>O. longifolia </i>puede deberse a la presencia de &alpha;-terpinoleno, compuesto que ha exhibido    actividad antif&uacute;ngica sobre diferentes hongos fitopat&oacute;genos, incluidos <i>F.      oxysporum </i>y <i>B. cinerea </i>(24-26). La inhibici&oacute;n del crecimiento de    los hongos causada por el aceite esencial de hojas de <i>O. macrophylla </i>puede    deberse a la presencia de bajas cantidades de a-pineno, &beta;-pineno, &beta;-cariofileno    y &alpha;-cadinol, sustancias para las que se ha reportado actividad antif&uacute;ngica    sobre diversos hongos fitopat&oacute;genos (27-29).</p>     <p><b>CONCLUSI&Oacute;N</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Este documento constituye el primer reporte de la composici&oacute;n qu&iacute;mica y la    actividad insecticida y antif&uacute;ngica de los aceites esenciales de hojas de las    especies</p>     <p><i>O. longifolia </i>y <i>O. macrophylla. </i>Los monoterpenos son los    componentes m&aacute;s abundantes en el aceite de <i>O. longifolia, </i>mientras que    los sesquiterpenos son los componentes mayoritarios del aceite esencial de <i>O.      macrophylla. </i>El aceite esencial de hojas de la especie <i>O. longifolia </i>present&oacute; una significativa actividad fumigante sobre <i>S. zeamais, </i>por    lo que podr&iacute;a llegar a ser una alternativa potencial para el control de estos    insectos plaga, con la realizaci&oacute;n de estudios de actividad m&aacute;s espec&iacute;ficos    que permitan determinar su aplicabilidad y seguridad. Los aceites esenciales    evaluados causaron una baja inhibici&oacute;n en el crecimiento de los hongos <i>F.      oxysporum </i>f. sp. <i>dianthi </i>y <i>Botrytis cin&eacute;rea </i>(menores al 40%).</p>     <p><b>AGRADECIMIENTOS</b></p>     <p>Los autores agradecen a Colciencias y a la Universidad Nacional de Colombia    por el apoyo financiero. Tambi&eacute;n al Laboratorio de Cromatograf&iacute;a de la Universidad    Industrial de Santander por los an&aacute;lisis CG y CG/EM, y al Herbario Nacional    Colombiano de la Universidad Nacional de Colombia por la determinaci&oacute;n de las    muestras vegetales.</p>     <p><b>REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS</b></p>     <!-- ref --><p>1. Kotan, R.; Kordali, S.; Cakir, A.; Kesdek, M.; Kaya, Y.; Kilic, H.    Antimicrobial and insecticidal activities of essential oil isolated fromTurkish <i>Salvia hydrangea </i>DC. ex Benth. <i>Biochem. System. Ecol. </i>2008. <b>36: </b>360-368.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0120-2804201000020000400001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2. Kordali, S.; Cakir, A.; Ozer, H.; Cakmakci, R.; Kesdek, M.; Mete, E.    Antifungal, phytotoxic and insecticidal properties of essential oil solated    from Turkish <i>Origanum acutidens </i>and its three components, carvacrol,    thymol and <i>p</i>-cymene. <i>Bioresour. Technol. </i>2008. <b>99: </b>8788-8795.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0120-2804201000020000400002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3. Isman, M. B. Plant essential oils for pest and disease management. <i>Crop Prot. </i>2000. <b>19: </b>603-608.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0120-2804201000020000400003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4. Liu, Z. L.; Ho, S. H. Bioactivity of the essential oil extracted from <i>Evodia rutaecarpa </i>Hook f. et Thomas against the grain storage insects, <i>Sitophilus zeamais </i>Motsch. and <i>Tribolium castaneum </i>(Herbst). <i>J.    Stored Prod. Res. </i>1999. <b>35: </b>317-328.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0120-2804201000020000400004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5. Kim, S.; Roh, J. Y.; Kim, D. H.; Lee, H. S.; Ahn, Y. J. Insecticidal    activities of aromatic plant extracts and essential oils against <i>Sitophilus      oryze </i>and <i>Callosobruchus chinensis. J. Stored Prod. Res. </i>2003. <b>39: </b>293-303.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0120-2804201000020000400005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6. Park, I. K.; Lee, S. G.; Choi, D. H.; Park, J. D.; Ahn, Y. J. Insecticidal    activities of constituents identified in the essential oil from leaves of <i>Chamaecyparis      obtusa </i>against <i>Calloso bruchus chinensis </i>(L.) and <i>Sitophilus oryzae </i>(L.). <i>J. Stored. Prod. Res. </i>2003. <b>39: </b>375-384.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0120-2804201000020000400006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7. Bajpai, V. K.; Shukla, S.; Kang, S. C. Chemical composition and antifungal    activity of essential oil and various extract of <i>Silene armeria </i>L. <i>Bioresour.      Technol. </i>2008. <b>99: </b>89038908.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0120-2804201000020000400007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8. Pawar, V. C.; Thaker, V. S. Evaluation of the anti- <i>Fusarium oxysporum </i>f. sp <i>cicer </i>and anti- <i>Alternaria porri </i>effects of some essential    oils. <i>World J. Microbiol. Biotechnol. </i>2007. <b>23: </b>1099-1106.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0120-2804201000020000400008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9. Garces de Granada, E.; Orozco de Amezquita, M.; Bautista, G. R.; Valencia,    H. <i>Fusarium oxysporum: </i>El hongo que nos falta conocer. <i>Acta Biol.      Colomb. </i>2001. <b>6: </b>7-21.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0120-2804201000020000400009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10. Yan, L.; Yang, Q.; Sundin, G. W.; Li, H.; Ma, Z. The mitogen'activated    protein kinase BOS5 is involved in regulating vegetative differentiation and    virulence in <i>Botrytis cine</i>rea. <i>Fungal Genet. Biol. </i>2010. <b>47: </b>753-760.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0120-2804201000020000400010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11. Isman, M. B. Botanical insecticides, deterrents, and repellents in    modern agriculture and an increasingly regulated world. <i>Annu. Rev. Entomol. </i>2006. <b>51: </b>45-66.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0120-2804201000020000400011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12. Abad, M. J.; Ansuategui, M.; Bermejo, P. Active antifungal substances    from natural sources. <i>ARKIVOC. </i>2007. <b>7: </b>116-145.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0120-2804201000020000400012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13. Lee, B. H.; Choi, W. S.; Lee, S. E.; Park, B. S. Fumigant toxicity    of essential oils and their constituennt compounds towards the rice weevil, <i>Sitophilus oryzae </i>(L.). Crop Prot. 2001. <b>20: </b>317-320.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0120-2804201000020000400013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14. Guerrini, A.; Sacchetti, G.; Muzzoli, M.; Moreno, G.; Medici, A.;    Besco, E.; Bruni, R. Composition of the Volatile Fraction of <i>Ocotea bofo </i>Kunth (Lauraceae) Calyces by GC-MS and NMR Fingerprinting and Its Antimicrobial    and Antioxidant Activity. <i>J. Agric. Food Chem. </i>2006. <b>54: </b>7778-7788.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0120-2804201000020000400014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15. Bruni, R.; Medici, A.; Andreotti, E.; Fantin, C.; Muzzoli M.; Dehesa,    M.; Romagnoli, C.; Sacchetti, G. Chemical composition and biological activities    of Ishpingo essential oil, a traditional Ecuadorian spice from <i>Ocotea quixos </i>(Lam.) Kosterm. (Lauraceae) flower calices. <i>Food. 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J. <i>Probit Analysis. </i>London, Cambridge University    Press. 1971. pp. 68-72.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0120-2804201000020000400019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>20. Lee, S. O.; Choi, G. J.; Jang, K. S.; Lim, H. K.; Cho, K. Y.; Kim,    J. C. Antifungal activity of five plant essential oils as fumigant against post-harvest    and soilborne plant pathogenic fungi. <i>Plant Pathol. J. </i>2007. <b>23: </b>97-102.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0120-2804201000020000400020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>21. Fernandes, P.; Fontinha, S.; Marbot, R.; Pino, J. Chemical Composition    of the Leaf Oil of <i>Ocoteafoetens </i>(Alt.) Benth. et Hook. from Madeira. <i>J. Essent. Oil. Res. </i>2004. <b>16: </b>124-126.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0120-2804201000020000400021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>22. Park, I. K.; Lee, S. G.; Choi, D. H. Park, J. D.; Ahn, Y. J. Insecticidal    activities of constituents identified in the essential oil from leaves of <i>Chamaecyparis      obtuse </i>against <i>Callosobruchus chinensis </i>(L.) and <i>Sitophilus oryzae </i>(L.). <i>J. Stored Prod. Res. </i>2003. <b>39: </b>375-384.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0120-2804201000020000400022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>23. Rajendran, S.; Sriranjini, V. Plant products as fumigants for stored-product    insect control. <i>J. Stored Prod. Res. </i>2008. <b>44: </b>126-135.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0120-2804201000020000400023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>24. Hashem, M.; Moharam, A. M.; Zaied, A. A.; Saleh, F. E. M. Efficacy    of essential oils in the control of cumin root rot disease caused by <i>Fusarium </i>spp. <i>Crop Prot. </i>2010. In press.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0120-2804201000020000400024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>25. Randrianarivelo, R.; Sarter, S.; Odoux, E.; Brat, P.; Lebrun, M.;    Romestand, B.; Menut, C.; Andrianoelisoa, H. S.; Raherimandimby, M.; Danthu,    P. Composition and antimicrobial activity of essential oils of <i>Cinnamosma      fragrans. Food Chem. </i>2009. <b>114: </b>680-684.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0120-2804201000020000400025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>26. Nissen, L.; Zatta, A.; Stefanini, I.; Grandi, S.; Sgorbati, B.; Biavat,    B.; Monti, A. Characterization and antimicrobial activity of essential oils    of industrial hemp varieties <i>(Cannabis sativa </i>L.). <i>Fitoterapia. </i>2010. <b>81: </b>413-419.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0120-2804201000020000400026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>27. Cakir, A.; Kordali, S.; Zengin, H.; Izumi, S.; Hirata, T. Composition    and antifungal activity of essential oils isolated from <i>Hypericum hyssopifolium </i>and <i>Hypericum heterophyllum. </i>Flavour Frag. J. 2004. <b>19: </b>62-68.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0120-2804201000020000400027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>28. Rodilla, J.; Tinoco, M.; Morais, J.; Gim&eacute;nez, C.; Cabrera, R.; Benito,    D.; Castillo, L.; Gonz&aacute;lez, A. <i>Laurus novocanariensis essential </i>oil:    Seasonal variation and valorization. <i>Biochem. Syst. Ecol. </i>2008. <b>36: </b>167-176.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0120-2804201000020000400028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>29. Chang, H.; Cheng, Y.; Wu, C.; Chang, S.; Chang, T.; Su, Y. Antifungalactivity    ofessential oilandits constituents from <i>Calocedrus macrolepis </i>var. <i>formosana </i>Florin leaf against plant pathogenic fungi. <i>Bioresource Technol. </i>2008. <b>99: </b>6266-6270.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0120-2804201000020000400029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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