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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[FLAVONOIDES CON ACTIVIDAD ANTIFÚNGICA AISLADOS DE Piper septuplinervium (Miq.) C. DC. (Piperaceae)]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Guided fractionation of ethanolic extract of aerial part of Piper septuplinervium (Piperaceae) yielded two flavonoid-type active substances against two strains of phytopathogenic fungi (Fusarium oxysporum f. sp. dianthi and Botrytis cinerea). The structures of isolated compounds were determined by spectroscopic analysis (single-and two-dimensional NMR, HRMS). The antifungal activity was determined by disk test, followed by direct bioautography against the two strains of fungi tested.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="pt"><p><![CDATA[O fracionamento bio-guiado do extrato etanólico da parte aérea de Piper septuplinervium (Piperaceae) permitiuobter duas substâncias flavonóidesativas contra duas linhagens de fungos patogênicos (Fusarium oxysporum f. sp. Dianthi e Botrytis cinerea). Mediante a análise espectroscópica (RMN mono e bidimensional, RMS) determinaram-se as estruturas desses compostos. A atividade antifúngica foi determinada pelo teste de disco, seguido por bio-autografia direta sobre duas inhagens fúngicas testadas.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p align="center"><font size="4"><b>FLAVONOIDES CON ACTIVIDAD ANTIF&Uacute;NGICA AISLADOS DE <i>Piper septuplinervium </i>(Miq.) C. DC. (Piperaceae)</b></font></p>     <p align="center"><font size="3"><b>ANTIFUNGAL FLAVONOIDS ISOLATED FROM <i>Piper septuplinervium </i>(Miq.) C. DC (Piperaceae)</b></font></p>     <p align="center"><font size="3"><b>FLAVON&Oacute;IDES COM ATIVIDADE ANTIF&Uacute;NGICA ISOLADOS DE <i>Piper septuplinervium </i>(Miq.) C. DC (Piperaceae)</b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><i>M&oacute;nica C. &Aacute;vila<sup>1,2</sup>, &Oacute;scar J. Patino<sup>1</sup>, Juliet A. Prieto<sup>1</sup>, Wilman A. Delgado<sup>1</sup>, Luis E. Cuca<sup>1</sup></i></p>     <p>1 Departamento de Qu&iacute;mica, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional de Colombia, Sede Bogot&aacute;. Bogot&aacute;, Colombia.</p>     <p>2 <a href="mailto:mcavilam@unal.edu.co">mcavilam@unal.edu.co</a></p>     <p>Recibido: 29/03/11 - Aceptado: 29/04/11</p> <hr>     <p><b>RESUMEN</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El fraccionamiento bioguiado del extracto etan&oacute;lico de la parte a&eacute;rea de <i>Piper septuplinervium </i>(Piperaceae) permiti&oacute; la obtenci&oacute;n de dos substancias de tipo flavonoide, activas contra dos cepas de hongos fitopat&oacute;genos <i>(Fusarium oxysporum </i>f. sp. dianthiy<i>Botrytis cinerea). </i>Las estructuras de los compuestos aislados fueron determinadas de acuerdo con el an&aacute;lisis espectrosc&oacute;pico (RMN uni y bidimensional, EMAR). La actividad anti-f&uacute;ngica fue determinada por ensayo en disco, seguido por bioautograf&iacute;a directa sobre las dos cepas de hongos en prueba.</p>     <p><b>Palabras clave: </b><i>Piper septuplinervium, </i>Piperaceae, flavonoides, actividad antif&uacute;ngica.</p> <hr>     <p><b>ABSTRACT</b></p>     <p>Guided fractionation of ethanolic extract of aerial part of <i>Piper septuplinervium </i>(Piperaceae) yielded two flavonoid-type active substances against two strains of phytopathogenic fungi <i>(Fusarium oxysporum </i>f. sp. dianthi and <i>Botrytis cinerea). </i>The structures of isolated compounds were determined by spectroscopic analysis (single-and two-dimensional NMR, HRMS). The antifungal activity was determined by disk test, followed by direct bioautography against the two strains of fungi tested.</p>     <p><b>KeyWords: </b><i>Piper septuplinervium,Pi</i>peraceae, flavonoids, antifungal activity.</p> <hr>     <p><b>RESUMO</b></p>     <p>O fracionamento bio-guiado do extrato etan&oacute;lico da parte a&eacute;rea de <i>Piper septuplinervium (Piperaceae) </i>permitiuobter duas subst&acirc;ncias flavon&oacute;idesativas contra duas linhagens de fungos patog&ecirc;nicos <i>(Fusarium oxysporum </i>f. sp. Dianthi e Botrytis cinerea). Mediante a an&aacute;lise espectrosc&oacute;pica (RMN mono e bidimensional, RMS) determinaram-se as estruturas desses compostos. A atividade antif&uacute;ngica foi determinada pelo teste de disco, seguido por bio-autografia direta sobre duas inhagens f&uacute;ngicas testadas.</p>     <p><b>Palavras-chave: </b>Piper septuplinervium, Piperaceae, flavon&oacute;ides, atividade antif&uacute;ngica.</p> <hr>     <p><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></p>     <p>La agricultura en Colombia representa un rengl&oacute;n importante en la econom&iacute;a del pa&iacute;s, teniendo en cuenta que esta contribuye con un 20% al producto interno bruto (1). Seg&uacute;n el Ministerio de Comercio, Industria y Turismo del pa&iacute;s, de los 20 productos m&aacute;s exportados por Colombia, 13 son productos agr&iacute;colas, entre los que se destacan el caf&eacute;, diversos tipos de frutas y las flores (2).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Varios problemas fitosanitarios afectan los cultivos, como el ataque de pat&oacute;genos que disminuyen notablemente tanto la calidad como la cantidad de la producci&oacute;n. Las p&eacute;rdidas en las cosechas debidas a enfermedades f&uacute;ngicas pueden estar cercanas al 12% en el mejor de los casos; los pa&iacute;ses en desarrollo pueden superar este valor (3).</p>     <p>Para el control de los hongos fitopat&oacute;genos se emplean fungicidas sint&eacute;ticos, muchos de los cuales son altamente t&oacute;xicos tanto para los agricultores como para los consumidores y el ambiente. Por tal motivo, se est&aacute;n buscando alternativas para disminuir al m&aacute;ximo el uso de estas sustancias t&oacute;xicas, mediante el desarrollo de nuevos productos fitosanitarios de bajo impacto ambiental y de acci&oacute;n espec&iacute;fica (4). Las plantas pueden ser una fuente para encontrar sustancias &uacute;tiles en el sector agr&iacute;cola, pues producen diversos metabolitos secundarios como defensa qu&iacute;mica y han sido usadas emp&iacute;ricamente por el hombre como agentes de protecci&oacute;n de cultivos desde hace muchos a&ntilde;os (5). Ejemplo de esto son las especies vegetales pertenecientes a la familia Piperaceae, ampliamente utilizadas de manera tradicional en la protecci&oacute;n de cultivos y como fuente de fitomedicamentos (6). El g&eacute;nero <i>Piper, </i>perteneciente a la familia Piperaceae, es el m&aacute;s abundante con un total de 1000 especies; a pesar de su origen asi&aacute;tico, en el pa&iacute;s existe cerca del 20% del total de especies del g&eacute;nero <i>Piper </i>reportadas en el mundo (7), muchas de las cuales son especies end&eacute;micas colombianas, como la especie <i>Piper septuplinervium, </i>objeto del presente estudio.</p>     <p>Adem&aacute;s de la importancia que revisten las especies del g&eacute;nero Piper por sus usos tradicionales, son relevantes los estudios fitoqu&iacute;micos los cuales han mostrado la presencia de metabolitos secundarios como amidas, flavonoides, derivados de &aacute;cido benzoico y fenil propanoides principalmente (8), los que en su mayor&iacute;a poseen actividades insecticidas y antif&uacute;ngicas comprobadas (9-12). En este trabajo se presenta el aislamiento bioguiado de dos metabolitos tipo flavonoide con actividad antif&uacute;ngica contra dos cepas de hongos fitopat&oacute;genos: <i>Fusarium oxysporum </i>f sp. dianthi, responsable del marchitamiento vascular del clavel, y <i>Botrytis cinerea </i>responsable de la enfermedad conocida como moho gris caracter&iacute;stica de hortalizas y frutas que com&uacute;nmente se manifiesta como tizones en las inflorescencias, pudrici&oacute;n de los frutos, as&iacute; como cancrosis o pudriciones de los tallos (13). Las cepas escogidas para este estudio poseen una importancia econ&oacute;mica teniendo en cuenta que los productos agr&iacute;colas que se ven afectados por estos hongos son de importancia econ&oacute;mica para nuestro pa&iacute;s ya que tanto el clavel como las frutas y hortalizas son actualmente productos de exportaci&oacute;n y generan importantes dividendos econ&oacute;micos.</p>     <p><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS General</b></p>     <p>En la cromatograf&iacute;a de columna flash se us&oacute; s&iacute;lica gel 60 de 0,040 mm a 0,063 mm Merck&reg;, para la cromatograf&iacute;a en capa delgada se emplearon cromatoplacas Merck&reg; de s&iacute;lica gel HF<sub>254</sub> de 0,3 mm de espesor usando como reveladores luz UV de 254 nm, 365 nm, vapores de I<sub>2</sub> y vainillina-acido fosf&oacute;rico 50%. Los espectros RMN 'H, RMN <sup>13</sup>C, COSY, DEPT, HMQC, HMBC, fueron registrados en un equipo Brucker Avance 400 utilizando TMS como est&aacute;ndar interno. Los puntos de fusi&oacute;n fueron tomados en un equipo Mel-temp II Laboratory Devices. Los espectros de masas EMAR fueron tomados en el equipo LCMS-IT-TOF Shimadzu DGU-20AS.</p>     <p><b>Material vegetai</b></p>     <p>La muestra utilizada para este estudio corresponde a la parte a&eacute;rea de la especie <i>Piper septuplinervium </i>(Piperaceae), recolectada en la vereda San Jos&eacute; Bajo del municipio de Granada (Cundinamarca) y determinada por el bi&oacute;logo Adolfo Jara Mu&ntilde;oz. Un esp&eacute;cimen reposa en el Herbario Nacional Colombiano del Instituto de Ciencias Naturales con el n&uacute;mero COL-517695.</p>     <p><b>Material biol&ograve;gico</b></p>     <p>Las cepas f&uacute;ngicas empleadas en el ensayo corresponden a <i>F. oxysporum </i>f. sp. dianthi y <i>B. cinerea. </i>Todas las cepas fueron mantenidas en incubadora a 27 &plusmn; 1 &deg;C en medio de papa-dextrosa-agar (PDA).</p>     <p><b>Ensayo de actividad antif&uacute;ngica</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La determinaci&oacute;n de la actividad antif&uacute;ngica del extracto se realiz&oacute; por el m&eacute;todo de difusi&oacute;n en disco (14). El medio de cultivo (PDA) fue inoculado con 100 &micro;L de una suspensi&oacute;n de esporas de 10<sup>5</sup> UFC en una caja de Petri de 9 mm de di&aacute;metro. Se prepararon soluciones en metanol de cada extracto en diferentes concentraciones (50,40,25 y 10&micro;<i>g/</i>&micro;<i>L) </i>y se aplicaron 10 &micro;L de cada soluci&oacute;n sobre discos de papel filtro, colocados sobre el medio inoculado, correspondiendo a 500, 400, 250 y 100 &micro;g de cada extracto aplicado. Las cajas de Petri fueron selladas con parafilm e incubadas por tres d&iacute;as a 28 &deg;C. Posteriormente, se midi&oacute; el halo de inhibici&oacute;n alrededor de los discos de papel en mm y se determin&oacute; la CMI de cada extracto, definida como la m&iacute;nima cantidad de extracto que causa inhibici&oacute;n en el crecimiento del hongo. Cada ensayo se realiz&oacute; por triplicado y se usaron Benomil e Iprodiona como controles positivos para las cepas de <i>F. oxysporum </i>yde<i>B. cinerea, </i>respectivamente, en cantidad m&iacute;nima de 10 &micro;g en ambos casos.</p>     <p>La determinaci&oacute;n de la actividad antif&uacute;ngica de las fracciones y los compuestos puros se realiz&oacute; por el m&eacute;todo de bioautograf&iacute;a directa (15). Diez microlitros de las soluciones de las fracciones y los compuestos puros se prepararon, en diferentes concentraciones correspondientes a 100, 50, 25, 10, 5, 2 y 1 ugde compuestospuros, y300ugdefracciones aplicados. Las muestras se aplicaron a las placas de TLC y se eluyeron en los sistemas cloroformo-metanol (95:5) y n-hexano-AcOEt (8:2). Despu&eacute;s de dejar secar los cromatogramas para eliminar totalmente el solvente, se procedi&oacute; a asperjarlos con una suspensi&oacute;n de esporas de hongos en soluci&oacute;n de caldo nutritivo de KH<sub>2</sub>PO<sub>4</sub> 0,7%, Na<sub>2</sub>HPO<sub>4</sub>. 2H2O 0,3%, KNO<sub>3</sub> 0,4%, MgSO<sub>4</sub>.7H2O 0,1%, NaCl 0,1% y glucosa 30%; posteriormente, las placas se incubaron durante 72 horas en la oscuridad en una c&aacute;mara h&uacute;meda a 25 &deg;C. Finalmente, las placas de TLC se expusieron a la luz UV (254 nm) y a los vapores de yodo para detectar las zonas de inhibici&oacute;n, lo que indica la actividad inhibitoria contra el crecimiento del hongo. Se utiliz&oacute; Benomil e Iprodiona como control positivo a una cantidad de 1 &micro;g enambos casos; los disolventes utilizados para las muestras se emplearon como controles negativos.</p>     <p><b>Extracci&oacute;n y aislamiento</b></p>     <p>La parte a&eacute;rea de <i>Piper septuplinervium </i>seca y molida (980 g) fue sometida a extracci&oacute;n por percolaci&oacute;n con etanol al 96%, obteni&eacute;ndose 70 gramos de extracto, fraccionado por cromatograf&iacute;a en columna flash con la mezcla tolueno-acetato de isopropilo en gradiente desde 9:1 hasta 1:9 y posterior lavado con metanol, obteniendo 18 fracciones totales marcadas como F1 a F18. Las fracciones activas, de acuerdo con la bioautograf&iacute;a en cromatograf&iacute;a en capa delgada sobre s&iacute;lica gel, fueron purificadas por medio de cromatograf&iacute;a en columna flash sucesiva con las mezclas hexano-acetona y diclorometa-no-acetona en diferentes proporciones, obteniendo los compuestos <b>1 </b>(512 mg), <b>2 </b>(150 mg).</p>     <p><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></p>     <p>El compuesto <b>1 </b>es un s&oacute;lido blanco que cristaliza en forma de agujas, pf: 189-190 &deg;C, no posee absorci&oacute;n en el UV &lambda;<sub>365</sub> <sub>nm</sub>, presenta coloraci&oacute;n amarilla con vainillina-&aacute;cido fosf&oacute;rico, y coloraci&oacute;n negra con vapores de I<sub>2</sub>, da prueba positiva al reactivo de FeCl3 indicando la presencia de OH fen&oacute;lico. El espectro RMN <sup>1</sup>H (400 MHz, Me<sub>2</sub>CO-d<sub>6</sub>) muestra la presencia de las se&ntilde;ales en &delta;7,27 (d, J=7,3 Hz, 4H) y &delta;7,17 (m, 1H), caracter&iacute;sticas de los hidr&oacute;genos de un anillo arom&aacute;tico monosustituido. Las se&ntilde;ales de los protonesen &delta;6,03 (d, J = 2,1Hz, 1H) y &delta;5,97 (d, J=2,1, 1H) son caracter&iacute;sticas de un anillo arom&aacute;tico tetrasustituido cuyos hidr&oacute;genos se encuentran en posici&oacute;n meta. La presencia de los dos anillos arom&aacute;ticos se confirma por las se&ntilde;ales del espectro de RMN <sup>13</sup>C (100 MHz, Me<sub>2</sub>COd) en  &delta;92,9,   &delta;97,9,   &delta;106,8,   &delta;127,6, &delta;130,1, &delta;130,2, &delta;143,7, &delta;165,5, &delta;166,6, &delta;169,5, las cuales corresponden a desplazamientos t&iacute;picos de carbonos sp<sup>2</sup>, en especial carbonos arom&aacute;ticos que, seg&uacute;n el experimento DEPT 135 y en comparaci&oacute;n con el espectro RMN <sup>13</sup>C, corresponden a 7 metinos y 5 carbonos cuaternarios, los tres &uacute;ltimos carbonos cuyo desplazamiento qu&iacute;mico se debe a la presencia de sustituyentes oxigenados. Es importante anotar que dos de las se&ntilde;ales demetinos en &delta;130,1 y &delta;130,2poseen el doble de la intensidad de las dem&aacute;s, con lo cual se concluye que cada una corresponde a dos carbonos que deben ser equivalentes (16). Las se&ntilde;ales en &delta;32,4 y &delta;47,4, las cuales seg&uacute;n el espectro HMQC se correlacionan con las se&ntilde;ales en &delta;2,95 (t, J = 7,7, 2H) y &delta;3,3 (t, J = 7,7, 2H), respectivamente, junto con la se&ntilde;al en &delta;206 correspondiente a un carbono carbon&iacute;lico cet&oacute;nico, son caracter&iacute;sticas de un sistema de carbonilo; los protones &alpha;<i> </i>y &beta; de una estructura tipo dihidrochalcona (17a).</p>     <p>La se&ntilde;al en &delta;14,9 (s, 1H) es caracter&iacute;stica de un hidr&oacute;geno quelatado con un grupo carbonilo, lo cual es com&uacute;n en sistemas flavonoides y confirma la presencia de OH fen&oacute;lico. Finalmente, los acoplamientos a larga distancia presentados en el experimento HMBC entre la se&ntilde;al en &delta;3,3 y &delta;2,95 a dos y tres enlaces con la se&ntilde;al en &delta;143, as&iacute; como entre la se&ntilde;al de &delta;3,3 y &delta;2,95 a dos y tres enlaces con la se&ntilde;al en &delta;206 permiten hacer la conexi&oacute;n entre los fragmentos e identificar el compuesto <b>1 </b>como 2', 4'- dihidroxi-6'-metoxi-dihidrochalcona, com&uacute;nmente conocida como uvangoletina, aislada de especies de las familias Anonacea (18), Ptaeroxylaceae (19), y Zingiberaceae (20) En la <a href="#f1">Figura 1</a> se presenta la estructura de la uvangoletina.</p>     <p align="center"><a name="f1"><img src="img/revistas/rcq/v40n1/v40n1a02-1.jpg"></a></p>     <p>A pesar de que este compuesto ha sido reportado anteriormente, los datos espectrosc&oacute;picos reportados corresponden a experimentos RMN <sup>13</sup>C de 15 MHz (21); por tanto, en la <a href="#t1">Tabla 1</a> se reportan los datos espectrosc&oacute;picos correspondientes a <sup>13</sup>C 100 MHz. Este es el primer reporte de la UV &lambda;<sub>3</sub>65 nm, coloraci&oacute;n naranja intensa al revelarse con vainillina-&aacute;cido fosf&oacute;rico, y coloraci&oacute;n amarilla con vapores de I<sub>2</sub>. Presenta prueba positiva con el reactivo de FeCl<sub>3</sub> indicando la presencia de OH fen&oacute;lico. La asignaci&oacute;n por resonancia magn&eacute;tica nuclear (<sup>1</sup>H, <sup>13</sup>C, DEPT, COSY, HMQC,HMBC),EMAR, y la comparaci&oacute;n con los datos reportados en la literatura (17b) permitieron identificar el compuesto <b>2 </b>como 5,7-dihidroxi-flavona, com&uacute;nmente conocida como chrysina, aislada anteriormente de especies de las familias Lamiaceae (22), Fabaceae (23), Chenopodiaceae (24), Orchidaceae (25).</p>     <p align="center"><a name="t1"><img src="img/revistas/rcq/v40n1/v40n1a02-2.jpg"></a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Uvangoletina y chrysina son objeto de investigaci&oacute;n continua por su importante y comprobada actividad citot&oacute;xica sobre varias l&iacute;neas celulares. Adem&aacute;s, se ha comprobado la actividad antif&uacute;ngica in vitro de la chrysina sobre cinco cepas de hongos, entre las cuales se encuentra la forma especial cepae del hongo <i>Fusarium oxysporum, </i>la cual ataca espec&iacute;ficamente cultivos de ajo y cebolla (25). En esta investigaci&oacute;n, mediante el aislamiento bioguiado del extracto etan&oacute;lico de la parte a&eacute;rea de <i>Piper septuplinervium, </i>se evidenci&oacute; la importante actividad antif&uacute;ngica contra <i>Fusarium oxysporum </i>f. sp. dianthi y <i>Botrytis cinerea </i>de los anteriores compuestos de tipo flavonoide, representada en los valores determinados en la cantidad m&iacute;nima inhibitoria, los cuales se presentan en las <a href="#t2">Tablas 2</a> y <a href="#t3">3</a>.</p>     <p align="center"><a name="t2"><img src="img/revistas/rcq/v40n1/v40n1a02-3.jpg"></a></p>     <p align="center"><a name="t3"><img src="img/revistas/rcq/v40n1/v40n1a02-4.jpg"></a></p>     <p>La <a href="#t2">Tabla 2</a> evidencia la cantidad m&iacute;nima inhibitoria del extracto de <i>Piper septuplinervium</i>, comparada con los controles utilizados para el ensayo, que corresponden a los principios activos de fungicidas comerciales com&uacute;nmente utilizados en el tratamiento en campo de las enfermedades causadas por las cepas de hongos objeto de esta investigaci&oacute;n. Si bien las cantidades m&iacute;nimas inhibitorias de los controles no son comparables con la obtenida para el extracto. Es importante tener en cuenta que los controles usados en el ensayo son compuestos puros y los extractos vegetales son mezclas muy complejas de cientos de compuestos en diversas cantidades; por eso se ensayan concentraciones relativamente altas de forma que es bastante posible que los metabolitos causantes de la actividad ejerzan su efecto en cantidades muy peque&ntilde;as. Lo anterior se confirma con los resultados de la <a href="#t3">Tabla 3</a>, pues a diferencia de lo que sucede con el extracto, las cantidades m&iacute;nimas inhibitorias presentadas por uvangoletina <b>(1) </b>y chrysina <b>(2) </b>son comparables con los controles positivos usados en el ensayo. Es de destacar que los compuestos aislados tienen mayor efecto sobre la <i>Fusarium oxysporum </i>f. sp. dianthi, lo cual es un resultado bastante importante, considerando que las mayores p&eacute;rdidas de los productores de clavel se deben al marchitamiento vascular de los esquejes, causado por <i>Fusarium oxysporum </i>f. sp. dianthi. Esta situaci&oacute;n repercute enormemente en las divisas por exportaciones si se tiene en cuenta que Colombia es el segundo exportador mundial despu&eacute;s de Holanda. (26)</p>     <p><b>AGRADECIMIENTOS</b></p>     <p>Los autores agradecemos:</p>     <p>Al Laboratorio de investigaci&oacute;n hospedero-pat&oacute;geno del Departamento de Qu&iacute;mica de la Universidad Nacional de Colombia y al Laboratorio de Bromatolog&iacute;a y Fitoqu&iacute;mica del Jard&iacute;n Bot&aacute;nico Jos&eacute; Celestino Mutis de la ciudad de Bogot&aacute; por proporcionar el material biol&oacute;gico usado en esta investigaci&oacute;n.</p>     <p>Al Herbario Nacional Colombiano de la Universidad Nacional de Colombiapor la determinaci&oacute;n de las especies vegetales utilizadas en la presente investigaci&oacute;n.</p>     <p>A los laboratorios de Resonancia Magn&eacute;tica Nuclear y Cromatograf&iacute;a liquida-espectrometr&iacute;a de masas del Departamento de Qu&iacute;mica de la Universidad Nacional de Colombia por la toma de los espectros utilizados en la elucidaci&oacute;n estructural.</p>     <p><b>REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>1. Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural. Colombia. An&aacute;lisis Macroeconomico del Sector Agropecuario en Colombia, 2007. &#91;Consultado en abril de 2011&#93;.Disponible en: <a href="http://www.minagricultura.gov.co/documentos/macroeconomica_25sep07.ppt" target="_blank">http://www.minagricultura.gov.co/documentos/macroeconomica_25sep07.ppt</a>. &#91;Consulta, abril de 2011&#93;.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000053&pid=S0120-2804201100010000200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">2. Ministerio de Comercio, Industria y Turismo. Colombia. Comercio exterior de Colombia 2010. &#91;Consultado en abril de 2011&#93;. Disponible en: <a href="http://www.mincomercio.gov.co/econtent/documentos/estudioseconomicos/2010-expopresentacionjulio.pdf" target="_blank">http://www.mincomercio.gov.co/econtent/documentos/estudioseconomicos/2010-expopresentacionjulio.pdf</a>.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000054&pid=S0120-2804201100010000200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3. Bajpai, V.; Shukla, S.; Kang, S. Chemical composition and antifungal activity of essential oil and various extract of <i>Silene armeria </i>L. <i>Bioresource Technology. </i>2008. <b>99: </b>8903-8908.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000055&pid=S0120-2804201100010000200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4. Lizarazo, K.; Mendoza, C.; Carrero, R. Efecto de extractos vegetales de <i>Polygonum hydropiperoides, Solanum nigrum </i>y <i>Caliandra pittieri </i>sobre el gusano cogollero <i>(Spodoptera frugiperda). Agronom&iacute;a Colombiana. </i>2008. <b>26</b>(3): 427-434.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000056&pid=S0120-2804201100010000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5. Abad, M. J.; Ansuategui, M.; Bermejo P. Active antifungal substances from natural sources. <i>Arkivoc. </i>2007. <b>8: </b>116-145.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000057&pid=S0120-2804201100010000200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6. Regnault-Roger, C.; Philogene, B.; Vincent, C. Biopesticides d'origine vegetale. Tec&amp;Doc-Lavoisier. Paris. 2003. p. 46.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000058&pid=S0120-2804201100010000200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7. Garcia Barriga, H. Flora medicinal de Colombia. Tercer Mundo Editores. Bogot&aacute;. 1992. p. 222.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000059&pid=S0120-2804201100010000200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8. Parmar, V.; Jain, S.; Bisht, K.; Jain R.; Taneja, P.; Jha, A.; Tyagi, O.; Prasad, A.; Wengel J.; Olsen C.; Boll P. Phytochemistry of genus Piper. <i>Phytochemistry</i>.    1997<b>.46:</b> 567-673.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000060&pid=S0120-2804201100010000200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9. Steenkamp, V.; Fernandes, A. C.; Van Rensburg, C. E. J.; Screening of Venda medicinal plants for antifungal activity against <i>Candida albicans. South African Journal of Botany. </i>2005. <b>73: </b>248-256.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000061&pid=S0120-2804201100010000200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10. Nyane, A.; Biyiti, L.; Bouchet, P.; Nkengfack, A.; Zollo, A. Antifungal activity of <i>Piper guineense </i>of Cameroon. <i>Fitoterapia. </i>2003. <b>74:</b> 464-468.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000062&pid=S0120-2804201100010000200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11. Lago, H.; Ramos, C.; Casanova, D.; Morandi, A.; Bergamo, D.; Cavalheiro, A.; Bolzani, V.; Furlan, M.; Guimaraez, E.; Young, M.; Kato, M. Benzoic acids derivates from Piper species and their fungitoxic activity against <i>Cladosporium cladosporoides </i>and <i>Cladosporium sphaerospermun. Journal ofNatural Products. </i>2004. <b>67: </b>1783-1788.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000063&pid=S0120-2804201100010000200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12. Danelutte, A.; Lago, J.; Young, M.; Kato, M. Antifungal flavones and prenylated hydroquinones from <i>Piper crassinervium </i>Kunth. <i>Phytochemistry. </i>2003. <b>64: </b>555-559.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000064&pid=S0120-2804201100010000200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13. Agrios, G. Plant pathology. Elsevier Academic Press. USA. 2005. Pp. 126-127.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S0120-2804201100010000200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14. Pab&oacute;n, L.; Cuca, L. Aporphine alkaloids from <i>Ocotea macrophylla </i>(Lauraceae). <i>Qu&iacute;mica Nova. </i>2010. <b>33</b>(4): 875-879.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000066&pid=S0120-2804201100010000200014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15. Patino, O.; Cuca, L. Chemicalconstituents of the wood from <i>Zanthoxylum quinduense </i>Tul <i>(Rutaceae). Qu&iacute;mica   Nova. </i>2010. <b>33 </b>(5): 1019-1021.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0120-2804201100010000200015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>16. Crews, P.; Rodr&iacute;guez, J.; Jaspars, M. Organic structures analysis. Oxford   University   Press.   New York. 2010. p. 74.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0120-2804201100010000200016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17a.Harborne; J. B. The flavonoids. Advances in research since 1986. Chapman and Hall. London. 1994. p. 401.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0120-2804201100010000200017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17b.Harborne; J. B. The flavonoids. Advances in research since 1986. Chapman and Hall. London. 1994. p. 261.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0120-2804201100010000200018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18. Ichimaru, M.; Nakatani, N.; Takahashi, T.; Nishiyama, Y.; Moriyasu, M.; Kato, A.; Mathenge, S.; Juma, F.; Nganga, J. Citotoxyc C-benzilated Dihydrochalcones from <i>Uvaria acuminata. Chemical and Pharmaceutical Bulletin. </i>2004. <b>52</b>(1): 138-141.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0120-2804201100010000200019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19. Koorbanally, N.; Randrianarivelojosia, M.; Mulholland, D.; Ufford, L.; Van den Berg, A. Chalcones from the seed of <i>Cedrepolis grevei </i>(Ptaeroxylaceae). <i>Phytochemistry</i>. 2003. <b>62</b>(8): 1225-1229.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0120-2804201100010000200020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>20. Subhadhirasakul, S.; Karalai, C.; Ponglimanont, C.; Pracha, S. Anti-inflammatory effects of compounds from Kaempferia parviflora and Boesenbergia pandurata. <i>Food Chemistry. </i>20098. 115(2): 534-536.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0120-2804201100010000200021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>21. Hufford, H. Oguntimein, B. Dihydrochalcones from <i>Uvaria angolensis. Phytochemistry. </i>1980. <b>19</b>(9): 2036-2038.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0120-2804201100010000200022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>22. Tomimori, T.; Miyaiachi, Y.; Imoto, Y.; Kizu, H.; Namba, T. Studies on the Nepalese crude drugs. XI: On the flavonoid constituents of the aerial parts of <i>Scutellaria discolor. Chemical and Pharmaceutical Bulle</i>tin. 1988. <b>36 </b>(9): 3654-3658.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0120-2804201100010000200023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>23. Amer, M.E.; Abdel-Kader, M.S.; Mahmoud, Z.F.; Abdel, N.A.; Gang, S.; Mabry, T. <i>Revista Latinoamericana de Qu&iacute;mica. </i>1989. <b>20</b>:152-155.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0120-2804201100010000200024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>24. Mata, R.; Navarrete, A.; Alvarez, L.; Miranda, R.; Delgado, G.; De Vivar, A. R. Flavonoids and terpenoids of <i>Chenopodium graveolens. Phytochemistry. </i>1986. <b>26</b>(1): 191-193.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0120-2804201100010000200025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>25. Shimura, H.; Matsura, M.; Takada, N.; Koda, Y. An antifungal compound involved in symbiotic germination of <i>Cypripedium macranthus </i>var. rebunense (Orchidaceae). <i>Phytochemistry. </i>2007 . <b>68</b> (10):1442-1447&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0120-2804201100010000200026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>26. Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural. Colombia. 2011. &#91;Consultado en abril de 2011&#93;. Disponible en: <a href="http://www.minagricultura.gov.co/archivos/agenda_prospectiva_de_investigacion_y_desarrollo_tecnologico_para_la_cadena_productiva_de_flores_y_follajes_con_enfasis_en_clavel.pdf" target="_blank">http://www.minagricultura.gov.co/archivos/agenda_prospectiva_de_investigacion_y_desarrollo_tecnologico_para_la_cadena_productiva_de_flores_y_follajes_con_enfasis_en_clavel.pdf</a><i>.</i>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0120-2804201100010000200027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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<label>1</label><nlm-citation citation-type="">
<collab>Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural. Colombia</collab>
<source><![CDATA[Análisis Macroeconomico del Sector Agropecuario en Colombia]]></source>
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<label>3</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
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<surname><![CDATA[Bajpai]]></surname>
<given-names><![CDATA[V]]></given-names>
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<surname><![CDATA[Shukla]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
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<surname><![CDATA[Kang]]></surname>
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