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<journal-title><![CDATA[Revista Colombiana de Química]]></journal-title>
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<publisher-name><![CDATA[Departamento de Química,  Universidad Nacional de Colombia.]]></publisher-name>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[ANÁLISIS DE RESIDUOS DE PLAGUICIDAS EN TOMATE MEDIANTE EL USO DE QuEChERS Y CROMATOGRAFÍA LÍQUIDA ULTRARRÁPIDA ACOPLADA A ESPECTROMETRÍA DE MASAS]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[ANALYSIS OF PESTICIDE RESIDUES IN TOMATO USING QuEChERS SAMPLE PREPARATION AND ULTRA FAST LIQUID CHROMATOGRAPHY COUPLED TO MASS SPECTROMETRY]]></article-title>
<article-title xml:lang="pt"><![CDATA[ANÁLISE DE RESÍDUOS DE PESTICIDAS EM TOMATE USANDO QuEChERS E CROMATOGRAFIA LÍQUIDA ULTRA RÁPIDA ASSOCIADA Á ESPECTROMETRIA DE MASSAS]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[We developed a multiresidue method for determining 24 pesticides of different physicochemical characteristics presents on tomato. The extraction process is based on the QuEChERS method, and the determination of the compounds was performed using ultra performance liquid chromatography coupled to mass spectrometry. The validation results indicated that the method presents recoveries between 71.3 and 114%, coefficients of variation below 20%, detection limits from 0.002 to 0.225 mg/kg, quantification limits between 0.009 and 0.750 mg/kg. In linearity studies, the results were adequate in the ranges evaluated for all the parameters in this study. Finally, to test methodology, some samples from the Department of Boyacá were analyzed. Indoxacarb was present in amounts below the maximum residues limit.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="pt"><p><![CDATA[Desenvolvemos um método multiresíduo para determinar 24 pesticidas de diferentes características físico-químicas em tomate. O processo de extração é baseado no método QuEChERS. Na determinação dos compostos utilizou-se cromatografia líquida de ultra-desempenho acoplada a espectrometria de massa. Os resultados da validação indicaram que o método apresentou recuperações entre 71,3 e 114%, os coeficientes de variação estiveram abaixo de 20%, os limites de detecção entre 0,002 e 0,225 mg/kg, os limites de quantificação entre 0,009 e 0,750 mg/kg. Em estudos de linearidade, se descobriu que, para todos os parâmetros, os resultados foram adequados. Para testar a metodologia desenvolvida, testaram amostras do departamento de Boyacá e constatou a presença de indoxacarbe em quantidades inferiores ao limite máximo de resíduos.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p align="center"><font size="4"><b>AN&Aacute;LISIS DE RESIDUOS DE PLAGUICIDAS EN   TOMATE MEDIANTE EL USO DE QuEChERS Y CROMATOGRAF&Iacute;A L&Iacute;QUIDA ULTRARR&Aacute;PIDA   ACOPLADA A ESPECTROMETR&Iacute;A DE MASAS</b></font></p>     <p align="center"><font size="3"><b>ANALYSIS OF PESTICIDE RESIDUES IN TOMATO   USING QuEChERS SAMPLE PREPARATION AND ULTRA FAST LIQUID CHROMATOGRAPHY COUPLED   TO MASS SPECTROMETRY</b></font></p>     <p align="center"><font size="3"><b>AN&Aacute;LISE DE   RES&Iacute;DUOS DE PESTICIDAS EM TOMATE USANDO QuEChERS E CROMATOGRAFIA L&Iacute;QUIDA ULTRA R&Aacute;PIDA ASSOCIADA &Aacute; ESPECTROMETRIA DE MASSAS</b></font></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p>Diego A. Ahumada<sup>1,2</sup>, Adriana M.   Zamudio<sup>1</sup></p>     <p>1 Laboratorio de Inocuidad Qu&iacute;mica. Centro de Biosistemas. Facultad de Ciencias Naturales e Ingenier&iacute;a. Universidad Jorge Tadeo Lozano. Bogot&aacute; D.C., Colombia.</p>     <p>2 <a href="mailto:diego.ahumadaf@utadeo.edu.co">diego.ahumadaf@utadeo.edu.co</a></p>     <p>Recibido: 23/07/11- Aceptado: 09/09/11</p> <hr>      <p><b>RESUMEN</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Se desarroll&oacute; un m&eacute;todo   multirresiduo para la determinaci&oacute;n  de   24 plaguicidas de diferentes caracter&iacute;sticas fisicoqu&iacute;micas en tomate. El   proceso de extracci&oacute;n se bas&oacute; en el m&eacute;todo QuEChERS y la determinaci&oacute;n de los   compuestos se realiz&oacute; mediante cromatograf&iacute;a l&iacute;quida ultrarr&aacute;pida acoplada a   espectrometr&iacute;a de masas. Los resultados de la validaci&oacute;n indicaron que el m&eacute;todo   presenta porcentajes de recuperaci&oacute;n de entre el 71,3 y el 114%, coeficientes   de variaci&oacute;n inferiores al 20%, l&iacute;mites de detecci&oacute;n entre 0,002 y 0,225 mg/kg,   l&iacute;mites de cuantificaci&oacute;n entre 0,009 y 0,750 mg/kg. En los estudios de   linealidad, para todos los par&aacute;metros evaluados, se obtuvieron resultados   adecuados en los rangos de trabajo. Para probar la metodolog&iacute;a desarrollada, se   evaluaron muestras de frutos de tomate provenientes del departamento de Boyac&aacute;   y se hall&oacute; indoxacarb en cantidades inferiores al l&iacute;mite m&aacute;ximo de residuos.</p>     <p><b>Palabras   clave</b>: plaguicidas, espectrometr&iacute;a de masas, cromatograf&iacute;a l&iacute;quida.</p>   <hr>        <p><b>ABSTRACT</b></p>     <p>We developed a multiresidue method for determining 24   pesticides of different physicochemical characteristics presents on tomato. The extraction process is based on   the QuEChERS method, and the determination of the compounds was performed using   ultra performance liquid chromatography coupled to mass spectrometry. The   validation results indicated that the method presents recoveries between 71.3   and 114%, coefficients of variation below 20%, detection limits from 0.002 to   0.225 mg/kg, quantification limits between 0.009 and 0.750 mg/kg. In linearity   studies, the results were adequate in the ranges evaluated for all the   parameters in this study. Finally, to test methodology, some samples from the   Department of Boyac&aacute; were analyzed. Indoxacarb was present in amounts below the   maximum residues limit.</p>     <p><b>Key words</b>:<b> </b>Pesticides, mass spectrometry, liquid chromatography.</p> <hr>      <p><b>RESUMO</b></p>     <p>Desenvolvemos   um m&eacute;todo multires&iacute;duo para determinar 24 pesticidas de diferentes caracter&iacute;sticas   f&iacute;sico-qu&iacute;micas em tomate. O processo de extra&ccedil;&atilde;o &eacute; baseado no m&eacute;todo QuEChERS.   Na determina&ccedil;&atilde;o dos compostos utilizou-se cromatografia l&iacute;quida de ultra-desempenho   acoplada a espectrometria de massa. Os resultados da valida&ccedil;&atilde;o indicaram que o   m&eacute;todo apresentou recupera&ccedil;&otilde;es entre 71,3 e 114%, os coeficientes de varia&ccedil;&atilde;o   estiveram abaixo de 20%, os limites de detec&ccedil;&atilde;o entre 0,002 e 0,225 mg/kg, os   limites de quantifica&ccedil;&atilde;o entre 0,009 e 0,750 mg/kg. Em estudos de linearidade,   se descobriu que, para todos os parâmetros, os resultados foram adequados. Para   testar a metodologia desenvolvida, testaram amostras do departamento de Boyac&aacute;   e constatou a presen&ccedil;a de indoxacarbe em quantidades inferiores ao limite m&aacute;ximo   de res&iacute;duos.</p>     <p><b>Palavras-chave</b>:<b> </b>pesticidas,   espectrometria de massas. </p>   <hr>        <p><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></p>     <p>En   los &uacute;ltimos a&ntilde;os, el an&aacute;lisis de residuos de plaguicidas es un campo de la qu&iacute;mica   anal&iacute;tica que ha despertado un gran inter&eacute;s en diferentes centros de   investigaci&oacute;n, universidades y organizaciones gubernamentales, consecuencia del   gran n&uacute;mero de nuevos compuestos que se introducen en el mercado, las nuevas   regulaciones establecidas -pues estas resultan ser cada d&iacute;a m&aacute;s restrictivas en   cuanto al l&iacute;mite m&aacute;ximo de residuos (LMR)- y el inter&eacute;s social, econ&oacute;mico y   acad&eacute;mico por mejorar la calidad en el consumo de los alimentos, lo cual tiene   un gran impacto en el mercado mundial (1).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Como consecuencia de las caracter&iacute;sticas   particulares de los plaguicidas y la necesidad de contar con m&eacute;todos cada vez m&aacute;s   precisos, espec&iacute;ficos, exactos, r&aacute;pidos y robustos, las t&eacute;cnicas cromatogr&aacute;ficas   resultan ser la opci&oacute;n m&aacute;s adecuada para este tipo de determinaciones   cualitativas y/o cuantitativas (2). La cromatograf&iacute;a es probablemente la t&eacute;cnica   anal&iacute;tica m&aacute;s empleada en laboratorios debido a numerosas razones: i) los   sensibles m&eacute;todos de detecci&oacute;n existentes, ii) la capacidad de separar,   identificar y analizar de manera cualitativa y cuantitativa, y iii) la alta rapidez   de los an&aacute;lisis cromatogr&aacute;ficos, los cuales van desde varios minutos hasta   algunos segundos en ciertas circunstancias (3). </p>     <p>A principios de la &uacute;ltima d&eacute;cada, la   cromatograf&iacute;a de alta eficiencia acoplada a espectrometr&iacute;a de masas se ha   convertido en la t&eacute;cnica por excelencia para la determinaci&oacute;n de residuos de contaminantes   (4-6). Esta preferencia se debe a la enorme diversidad de propiedades fisicoqu&iacute;micas   que presentan estos compuestos, sumada a la gran versatilidad y a la mayor   cantidad de grupos qu&iacute;micos que pueden analizarse, comparada con la cromatograf&iacute;a   de gases (7).</p>     <p>Los desarrollos tecnol&oacute;gicos actuales   referentes a cuadrupolos, trampas i&oacute;nicas y otros filtros de masas proveen a   los sistemas de espectrometr&iacute;a de masas de una alta especificidad y selectividad   en un amplio rango de masas, lo cual ha conducido a la eliminaci&oacute;n casi   completa de interferentes en el registro de la se&ntilde;al de los analitos,   manteniendo a su vez una adecuada sensibilidad. Estos desarrollos han marcado   una tendencia a la evoluci&oacute;n de t&eacute;cnicas anal&iacute;ticas que requieran poca   preparaci&oacute;n de muestra y presenten una m&iacute;nima retenci&oacute;n cromatogr&aacute;fica (8, 9).</p>     <p>En 2003 buscando superar todos los   inconvenientes pr&aacute;cticos de los m&eacute;todos multirresiduo existentes de la &eacute;poca y   aprovechando la selectividad de los espectr&oacute;metros de masas, se introdujo una   nueva metodolog&iacute;a de an&aacute;lisis de residuos de plaguicidas en material vegetal,   denominada QuEChERS (acr&oacute;nimo en ingl&eacute;s de Quick, Easy, Cheap, Effective,   Rugged, y Safe) (10). Este m&eacute;todo implica dos etapas fundamentales: en la   primera, los plaguicidas se extraen con acetonitrilo en presencia de sulfato de   magnesio y acetato de sodio. La segunda etapa corresponde a una limpieza del   extracto con base en la aplicaci&oacute;n de extracci&oacute;n en fase s&oacute;lida por dispersi&oacute;n   con una amina primaria secundaria (PSA). En la actualidad se realizan   diferentes modificaciones al m&eacute;todo, de manera que continuamente se logran   adaptaciones a nuevas matrices o compuestos de diferentes caracter&iacute;sticas   (11-13). As&iacute;, junto con la cromatograf&iacute;a l&iacute;quida acoplada a espectrometr&iacute;a de   masas, este m&eacute;todo facilita el an&aacute;lisis de un n&uacute;mero elevado de compuestos en   un tiempo muy corto. </p>     <p>En este art&iacute;culo aparecen los   resultados de la validaci&oacute;n de la metodolog&iacute;a anal&iacute;tica desarrollada (14),   basada en el m&eacute;todo QuECHERS, para la determinaci&oacute;n de residuos de plaguicidas   en tomate (<i>Solanum lycopersicum</i>), mediante cromatograf&iacute;a l&iacute;quida ultrarr&aacute;pida acoplada a espectrometr&iacute;a   de masas (UFLC-MS, de sus siglas en ingl&eacute;s). Asimismo, se muestran los   resultados en la evaluaci&oacute;n de muestras provenientes de un cultivo de tomate   ubicado en el departamento de Boyac&aacute; (Colombia).</p>     <p><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></p>     <p><b>Materiales de   referencia, reactivos   y soluciones</b></p>     <p>Se trabaj&oacute; con est&aacute;ndares de   plaguicidas de pureza mayor al 95%, proveniente de las casas comerciales Dr   Ehrenstorfer y Chemservice. Las soluciones madre fueron preparadas en   concentraciones cercanas a 500 &micro;g/mL en acetonitrilo o metanol y almacenadas en   frascos &aacute;mbar a -20 &deg;C. La mezcla de plaguicidas se prepar&oacute; en metanol, tomando   diferentes vol&uacute;menes de cada una de las soluciones madre hasta obtener un rango   de concentraciones entre 0,64 y 9,95 &micro;g/mL. Esta soluci&oacute;n se almacen&oacute; en frasco   &aacute;mbar a -20 &deg;C. Los solventes empleados en este estudio fueron J.T. Baker grado   HPLC. Para los ensayos de extracci&oacute;n se utilizaron sales de QuEChERS Restek   Q-Sep TM y para la limpieza de los extractos se emplearon los adsorbentes   Restek dSPE Q-Sep TM. Se emple&oacute; como est&aacute;ndar subrrogado trifenilfosfato (TPP)   y como est&aacute;ndar interno (E.I.) fosfato de tris-(1,3-dicloroisopropil).</p>     <p><b>Instrumentos y equipos</b></p>     <p>El   an&aacute;lisis cromatogr&aacute;fico se llev&oacute; a cabo en un cromat&oacute;grafo l&iacute;quido ultrarr&aacute;pido   Shimadzu Prominence (Maryland, CA, EUA), acoplado a un detector selectivo de   masas LCMS-2020. Se emple&oacute; un generador de nitr&oacute;geno ABN2ZE Peak Scientific   (Billerica, USA). El cromat&oacute;grafo cuenta con un inyector autom&aacute;tico SIL20A UFLC   7673 Shimadzu (Maryland, CA, EUA), una bomba binaria de alta presi&oacute;n, un   sistema de desgasificaci&oacute;n en l&iacute;nea y un horno para el control de la   temperatura de la columna. El control del sistema cromatogr&aacute;fico y la adquisici&oacute;n   y el procesamiento de datos se realizaron con el software Lab Solutions versi&oacute;n   3.5. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Condiciones cromatogr&aacute;ficas</b></p>     <p>Los an&aacute;lisis se realizaron en   una columna Shim Pack (6 cm x 2 mm d.i., tama&ntilde;o de part&iacute;cula de 2,1 &Mu;m y   fase estacionaria C18), en modo de gradiente lineal con &aacute;cido f&oacute;rmico al 0,1%   (P/V) y acetato de amonio 5 mM en agua Milli-Q (A). La fase org&aacute;nica empleada   fue acetonitrilo (B). El programa de eluci&oacute;n utilizado, expresado como   porcentaje de B, inicia a 0% (0 min) aumenta a 20% en 0,01 min, se mantiene por   0,3 min, posteriormente llega hasta 55% en 8,5 min y luego aumenta hasta el   100% en los siguientes 1,5 min. Finalmente, se mantiene por 1,5 min. Para restituir   la fase m&oacute;vil a la condici&oacute;n inicial del an&aacute;lisis se pasa de 100% a 0% de B en   2 min, donde se mantiene por 5 min para equilibrar la columna. El tiempo total   de an&aacute;lisis fue 12 min. El volumen de inyecci&oacute;n fue 5 &micro;L, la temperatura de columna   45 &deg;C y el flujo de fase m&oacute;vil 0,3 mL/min.</p>     <p><b>Condiciones de la interfaz    y espectr&oacute;metro de masas</b></p>     <p>El equipo cuenta con una   interfaz tipo DUIS (ESI, APCI) que se oper&oacute; en modo ESI, con un flujo de gas de   secado de 15 L/min y un flujo de gas nebulizador de 1,5 L/min. Las temperaturas   del bloque de calentamiento y de la l&iacute;nea de eliminaci&oacute;n del solvente   correspondieron a 200 y 250 &deg;C, respectivamente.</p>     <p>Los an&aacute;lisis   fueron llevados de manera simult&aacute;nea en modo positivo y negativo, el voltaje   aplicado en el capilar correspondi&oacute; a 4500 y -4500 V, respectivamente. Todos   los an&aacute;lisis fueron realizados en modo SIM. La <a href="#tabla1">Tabla 1</a> muestra los iones   seleccionados y el modo de ionizaci&oacute;n para cada uno de los compuestos.</p>       <p align="center"><a name="tabla1"><img src="img/revistas/rcq/v40n2/v40n2a7t1.jpg"></a></p>     <p><b>M&eacute;todo de extracci&oacute;n</b></p>     <p>Para el desarrollo y validaci&oacute;n   de la metodolog&iacute;a, se utilizaron muestras de tomate (<i>Solanum     lycopersicum</i>) certificadas como productos org&aacute;nicos,   obtenidas en supermercados de cadena. Se lavaron con abundante agua y se retir&oacute;   todo material ajeno a la fruta que pudiera encontrarse en su superficie. Para   asegurar que las muestras se encontraran libres de plaguicidas se evaluaron mediante   UFLC-MS.</p>     <p>Para la extracci&oacute;n de los plaguicidas   se emple&oacute; el m&eacute;todo QuEChERS con algunas modificaciones (14). Para realizar   este proceso, en un tubo de centrifuga se pesaron 10 g de muestra   homogeneizada, se adicion&oacute; TPP, se dej&oacute; en reposo por 10 min y, transcurrido   ese tiempo, se adicionaron 10 mL de acetonitrilo acidificado con &aacute;cido ac&eacute;tico   al 1% (V/V), 4 g de MgSO<sub>4</sub> anhidro y 1 g de AcONa, agitado manualmente   por 1 min. Posteriormente, se llev&oacute; al ba&ntilde;o de ultrasonido por 10 min, se   centrifug&oacute; a 4500 rpm por 5 min y, con ayuda de una pipeta, se tomaron 10 mL   del sobrenadante (Soluci&oacute;n A), los cuales se transfirieron a un tubo de   centrifuga de 15 mL.</p>     <p>Para el proceso de limpieza, por cada   mililitro de extracto (soluci&oacute;n A) se adicionaron 25 mg de PSA (amina   primaria/secundaria) y 150 mg de MgSO<sub>4</sub> anhidro, se agit&oacute; manualmente   por 30 s y se centrifug&oacute; por 2 min a 4500 rpm. Finalmente, el sobrenadante se   filtr&oacute; a trav&eacute;s de una membrana de 0,22 &Mu;m de PTFE (Soluci&oacute;n B), se   transfiri&oacute; a un vial de cromatograf&iacute;a donde se adicion&oacute; el est&aacute;ndar interno   (E.I.).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Validaci&oacute;n de la metodolog&iacute;a</b></p>     <p>Se   evalu&oacute; la especificidad de la metodolog&iacute;a mediante la comparaci&oacute;n de blancos de   matriz y blancos de matriz fortificados; adem&aacute;s, para evaluar la exactitud y la   precisi&oacute;n se fortificaron muestras de tomate a tres diferentes concentraciones   equivalentes a los niveles 1, 3 y 5 de la curva de calibraci&oacute;n (<a href="#tabla2">Tabla 2</a>). Para   evaluar la precisi&oacute;n intermedia se analizaron muestras fortificadas a los   niveles 1,3 y 5 en diferentes periodos de tiempo.</p>       <p align="center"><a name="tabla2"><img src="img/revistas/rcq/v40n2/v40n2a7t2.jpg"></a></p>     <p>La evaluaci&oacute;n de la linealidad se realiz&oacute; preparando curvas de   calibraci&oacute;n en blancos de matriz; cada curva est&aacute; compuesta de cinco puntos o   niveles de concentraci&oacute;n. La evaluaci&oacute;n de los l&iacute;mites de detecci&oacute;n y   cuantificaci&oacute;n se realiz&oacute; siguiendo m&eacute;todo de la IUPAC (15). Se inyectaron   blancos de tomate y se evalu&oacute; el ruido en la zona donde se encontraba cada uno   de los plaguicidas; posteriormente, se fortificaron muestras a los l&iacute;mites de   cuantificaci&oacute;n y se realiz&oacute; la extracci&oacute;n para determinar la precisi&oacute;n y la   exactitud del m&eacute;todo. Finalmente, para evaluar la robustez del m&eacute;todo se emple&oacute;   el modelo de Youden Steiner (16). Todos los ensayos se realizaron por   quintuplicado y los resultados obtenidos fueron analizados de acuerdo con el   par&aacute;metro evaluado, mediante el paquete estad&iacute;stico PASW STATISTICS 18 del   entorno IBM<sup>® </sup>SPSS<sup>®</sup></p>     <p><b>Evaluaci&oacute;n de muestras reales</b></p>     <p>El   m&eacute;todo se aplic&oacute; a muestras reales tomando muestras en una finca de producci&oacute;n   de tomate Bachu&eacute; ubicada en la vereda de Sopot&aacute;, municipio de Villa de Leyva   del departamento de Boyac&aacute; (N 5&deg; 37' 24,4” y O 73&deg; 33' 3,03”). Esta finca se   encuentra a una altura de 2094 msnm; la producci&oacute;n se realiza bajo invernadero. </p>     <p>Durante la &eacute;poca de cosecha, se   realizaron cuatro muestreos durante un mes. Semanalmente se seleccionaron al   azar frutos de tomate que se encontraran en el punto de maduraci&oacute;n establecido   por el productor. Cada muestra estuvo compuesta por 1 kg de tomates   aproximadamente. Las muestras fueron transportadas inmediatamente al   laboratorio y se procedi&oacute; a realizar su an&aacute;lisis por duplicado. De esta manera,   durante el periodo de evaluaci&oacute;n se analizaron 16 muestras.</p>     <p><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></p>     <p><b>Especificidad</b></p>     <p>La comparaci&oacute;n entre el blanco   de matriz obtenido y el blanco fortificado (concentraci&oacute;n m&aacute;s baja de la curva   de calibraci&oacute;n) mostr&oacute; que cumple con los par&aacute;metros que establece la gu&iacute;a de   validaci&oacute;n de m&eacute;todos anal&iacute;ticos de la Uni&oacute;n Europea (17), ya que ninguno de   los compuestos evaluados present&oacute; interferencias superiores al 30% de la   respuesta. Sin embargo, para algunos compuestos, como el caso de carbendazim y   difenoconazol, se encontraron algunas interferencias que dificultaron el   proceso de integraci&oacute;n; por tanto, se decidi&oacute; aumentar la concentraci&oacute;n de   estos compuestos para evitar este tipo de inconvenientes en la cuantificaci&oacute;n.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Efecto matriz</b></p>     <p>En   el an&aacute;lisis de residuos de plaguicidas, el efecto matriz se define como la   variaci&oacute;n de la respuesta cromatogr&aacute;fica inducida por los compuestos de la   matriz (18). Para el caso espec&iacute;fico de la cromatograf&iacute;a l&iacute;quida acoplada a   espectrometr&iacute;a de masas, se ha encontrado que el proceso de ionizaci&oacute;n que   ocurre en la interfaz del instrumento se ve afectado por compuestos que coeluyen   con los analitos que se desea determinar (19). De esta manera, se evalu&oacute; el   efecto matriz mediante la comparaci&oacute;n de curvas de calibraci&oacute;n realizadas en solvente   y en blanco de matriz. Los resultados de estos ensayos se evaluaron mediante el   c&aacute;lculo del porcentaje de efecto matriz (relaci&oacute;n &aacute;reas matriz-solvente) y an&aacute;lisis   de covarianza (18). En la <a href="#tabla3">Tabla 3</a> se observan algunos de los resultados de esta   evaluaci&oacute;n: la mayor&iacute;a de los compuestos presentan porcentajes de efecto matriz   inferiores al 100%, lo cual indica que el efecto predominante de los   componentes de la matriz es el de la supresi&oacute;n de la ionizaci&oacute;n de los   plaguicidas analizados. Al realizar el an&aacute;lisis estad&iacute;stico (ANCOVA) se   concluye que en todos los compuestos se presenta efecto matriz (p &lt; 0,05), a   excepci&oacute;n de imidaclorprid en modo negativo, lo cual es objeto de otro estudio   (20).</p>       <p align="center"><a name="tabla3"><img src="img/revistas/rcq/v40n2/v40n2a7t3.jpg"></a></p>     <p><b>Linealidad</b></p>     <p>De acuerdo con los resultados   de efecto matriz obtenidos, la linealidad de la metodolog&iacute;a fue evaluada   mediante la preparaci&oacute;n de las curvas de calibraci&oacute;n en blanco de matriz   (21,22). La <a href="#tabla4">Tabla 4</a> muestra los rangos de concentraci&oacute;n evaluados y los par&aacute;metros   de regresi&oacute;n (pendiente, intercepto y coeficiente de correlaci&oacute;n).</p>       <p align="center"><a name="tabla4"><img src="img/revistas/rcq/v40n2/v40n2a7t4.jpg"></a></p>     <p>El primer   aspecto que se evalu&oacute; de la linealidad fue la significancia de la regresi&oacute;n   lineal. Mediante una an&aacute;lisis de varianza se estableci&oacute; la validez del modelo <i>y</i> = <i>mx </i>+ <i>b</i> con a = 0,05; por consiguiente, las curvas   de calibraci&oacute;n se ajustan efectivamente al modelo planteado. Una vez se   estableci&oacute; la significancia del modelo, se determin&oacute; si los par&aacute;metros <i>m</i> y <i>b</i> son estad&iacute;sticamente iguales a cero, mediante una   prueba <i>t.</i> Se encontr&oacute; que, para todos los compuestos, la   pendiente es estad&iacute;sticamente diferente de cero (a = 0,05); excepto, para espinosad (D)   e imidacloprid (-), en que el intercepto es estad&iacute;sticamente igual a cero (a =   0,05), lo cual implica que para los compuestos restantes es indispensable   emplear el intercepto en el momento de la cuantificaci&oacute;n. Otro aspecto evaluado   corresponde a la correlaci&oacute;n entre las variables <i>X</i> y <i>Y</i>,   (concentraci&oacute;n y respuesta cromatogr&aacute;fica, respectivamente). Para esta evaluaci&oacute;n   se aplic&oacute; una prueba <i>t,</i> la cual indic&oacute; que todos los   coeficientes de correlaci&oacute;n son estad&iacute;sticamente iguales a 1(a =   0,05). De igual manera, se realiz&oacute; una prueba de falta de ajuste o desv&iacute;o de   linealidad cuyo objetivo es evaluar los rangos de concentraci&oacute;n en los cuales   se elabor&oacute; la curva y determinar si se presentan desv&iacute;os a concentraciones   altas o bajas de la respuesta en funci&oacute;n de la concentraci&oacute;n. Esta prueba revel&oacute;   que ning&uacute;n compuesto present&oacute; desv&iacute;os de linealidad (a = 0,05). Finalmente, de acuerdo con   la gu&iacute;a de validaci&oacute;n de la Uni&oacute;n Europea, se determinaron los residuales y se   hall&oacute; que ninguno excede el 20% (17).</p>     <p><b>Precisi&oacute;n</b></p>     <p>La   precisi&oacute;n de la metodolog&iacute;a para cada uno de los compuestos se evalu&oacute; con   estudios de repetibilidad y de precisi&oacute;n intermedia (interd&iacute;as), aplicando la   determinaci&oacute;n del coeficiente de variaci&oacute;n (%CV). </p>     <p>La <a href="#tabla5">Tabla 5</a> presenta los %CV de cada uno de los compuestos evaluados. Para repetibilidad,   se obtuvieron %CV inferiores del 15%. Compuestos como carbofuran, carbendazim,   clorfenapird, hexaconazol, entre otros, presentan valores inferiores del 5% en   algunas ocasiones, lo cual indica que la dispersi&oacute;n es bastante baja. En cuanto   a los valores obtenidos para precisi&oacute;n intermedia, se observa un aumento   considerable de la dispersi&oacute;n; por ejemplo, en el caso de acefato en el nivel   5, se pasa de un %CV de 7,4 a 17,6%. Estas variaciones se pueden atribuir a fen&oacute;menos   de dispersi&oacute;n y perturbaciones en las respuestas cromatogr&aacute;ficas, teniendo en   cuenta que la metodolog&iacute;a anal&iacute;tica no implica mayores variaciones de acuerdo   con lo publicado en literatura (17).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="tabla5"><img src="img/revistas/rcq/v40n2/v40n2a7t5.jpg"></a></p>     <p>Sin   embargo, a pesar de estos aumentos en el tiempo, para todos los compuestos, a   excepci&oacute;n de profenofos y espinosad D, se presentan %CV inferiores del 20%, lo   cual indica que la metodolog&iacute;a es precisa, de acuerdo a las gu&iacute;as de validaci&oacute;n   de la Uni&oacute;n Europea (17),</p>     <p>Igualmente,   se aplic&oacute; una prueba de Levene para determinar si existe homogeneidad de varianzas.   Los resultados indicaron que, para todos los compuestos, no se presentan   diferencias estad&iacute;sticas entre las varianzas de cada uno de los niveles de   concentraci&oacute;n en los dos experimentos (repetibilidad y precisi&oacute;n intermedia).   De esta manera, se concluye que la precisi&oacute;n de la metodolog&iacute;a no var&iacute;a en   funci&oacute;n de la concentraci&oacute;n (23).</p>     <p><b>Exactitud</b></p>     <p>Este   par&aacute;metro de validaci&oacute;n se evalu&oacute; determinando el porcentaje de recuperaci&oacute;n   mediante la fortificaci&oacute;n de muestras a tres diferentes concentraciones, alas   que se les aplic&oacute; el proceso de extracci&oacute;n. Debido a que se present&oacute;   homogeneidad de varianzas, es posible promediar los porcentajes de recuperaci&oacute;n   obtenidos para cada uno de los compuestos en los diferentes niveles de   concentraci&oacute;n. Las <a href="#fig1">Figura 1</a> y <a href="#fig2">Figura 2</a> muestran los porcentajes obtenidos.</p>       <p align="center"><a name="fig1"><img src="img/revistas/rcq/v40n2/v40n2a7f1.jpg"></a></p>       <p align="center"><a name="fig2"><img src="img/revistas/rcq/v40n2/v40n2a7f2.jpg"></a></p>     <p>En la   <a href="#fig1">Figura 1</a> se observan los compuestos que presentaron los menores porcentajes de   recuperaci&oacute;n. Se evidencia que ninguno de los compuestos presenta porcentajes   de recuperaci&oacute;n inferiores del 70%, l&iacute;mite establecido en la literatura (17).   La <a href="#fig2">Figura 2</a> exhibe los compuestos que presentaron mayores porcentajes de   recuperaci&oacute;n. Ninguno excede el 120%, con lo cual se concluye que el m&eacute;todo es   exacto para todos los compuestos (17).</p>     <p>El   tiociclam es un compuesto del que diferentes publicaciones y bases de datos   especializadas en el an&aacute;lisis de residuos de plaguicidas reportan bajos   porcentajes de recuperaci&oacute;n; sin embargo, las modificaciones realizadas en este   trabajo al m&eacute;todo QuEChERS (al asistir la extracci&oacute;n con ultrasonido y emplear   acetonitrilo con &aacute;cido ac&eacute;tico) permiten obtener porcentajes de recuperaci&oacute;n   superiores (14).</p>     <p><b>L&iacute;mites de detecci&oacute;n y cuantificaci&oacute;n</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La determinaci&oacute;n de los l&iacute;mites   de detecci&oacute;n y cuantificaci&oacute;n se realiz&oacute; mediante el m&eacute;todo propuesto por la   IUPAC (15). Se determin&oacute; el ruido de varios blancos en las zonas en las que   eluyen cada uno de los compuestos, se calcul&oacute; la desviaci&oacute;n est&aacute;ndar y se estim&oacute;   la concentraci&oacute;n de estos l&iacute;mites.</p>     <p>Al   tratarse de residuos de contaminantes en alimentos, la determinaci&oacute;n de estos l&iacute;mites   no solo requiere esta estimaci&oacute;n, sino que es necesario comprobar su veracidad.   Por consiguiente, para los l&iacute;mites de detecci&oacute;n se fortific&oacute; un blanco con las   concentraciones estimadas y se calcul&oacute; su relaci&oacute;n se&ntilde;al ruido (S/R); en el   caso en el que la relaci&oacute;n S/R tuvo un valor inferior a tres, se aument&oacute; la   concentraci&oacute;n hasta obtener relaciones adecuadas. La <a href="#tabla6">Tabla 6</a> muestra los   valores l&iacute;mites de detecci&oacute;n estimados, la relaci&oacute;n se&ntilde;al ruido y los l&iacute;mites   de detecci&oacute;n propuestos para los compuestos que presentaron se&ntilde;ales ruido   inferiores a tres.</p>       <p align="center"><a name="tabla6"><img src="img/revistas/rcq/v40n2/v40n2a7t6.jpg"></a></p>     <p>Al realizar la estimaci&oacute;n de los l&iacute;mites   de cuantificaci&oacute;n, muchos de estos coincid&iacute;an o presentaban valores muy   cercanos al punto m&aacute;s bajo de la curva de calibraci&oacute;n; por tanto, para estos   compuestos se decidi&oacute; adoptar el valor m&aacute;s bajo de la curva como el l&iacute;mite de   cuantificaci&oacute;n. Para los compuestos restantes, se fortificaron las muestras al   nivel estimado y se calcularon su precisi&oacute;n (como %CV) y su exactitud (como   porcentaje de recuperaci&oacute;n). La <a href="#tabla7">Tabla 7</a> muestra que para estos compuestos a   este nivel de concentraci&oacute;n, se encuentra que los porcentajes de recuperaci&oacute;n   est&aacute;n entre el 70 y el 120%, lo cual indica que a estas concentraciones la   metodolog&iacute;a es exacta. Sin embargo, el CV del acefato present&oacute; valores   superiores al 20%. En los compuestos restantes, la metodolog&iacute;a cumple con los   criterios establecidos en la literatura (17). </p>       <p align="center"><a name="tabla7"><img src="img/revistas/rcq/v40n2/v40n2a7t7.jpg"></a></p>     <p><b>Robustez</b></p>     <p>La robustez de la metodolog&iacute;a   se evalu&oacute; mediante un dise&ntilde;o de Younden-Steiner y se analiz&oacute; la influencia de   cada factor sobre el porcentaje de recuperaci&oacute;n de los plaguicidas. Los par&aacute;metros   escogidos y sus respectivas variaciones correspondieron a:</p>     <p>1.    Masa de sulfato de magnesio: 4 g a 5 g.</p>     <p>2.   Masa de   PSA: 25 mg por mililitro de extracto a 15 mg por mililitro.</p>     <p>3.   Flujo del   gas de secado: de 15 a 10 L/min.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>4.   Flujo del   gas nebulizador: 1,5 a 1,0 L/min.</p>     <p>5.   Temperatura   del bloque de calentamiento: 200 a 300 &deg;C.</p>     <p>6.   Temperatura   de la l&iacute;nea de desolvataci&oacute;n: 200 a 300 &deg;C.</p>     <p>7.   Voltaje   del capilar: 4,5 a 3,0 kV y de -4,5 a -3.0 kV.</p>     <p>Este ensayo se realiz&oacute; en el l&iacute;mite de   cuantificaci&oacute;n de la metodolog&iacute;a. Los resultados mostraron que en la mayor&iacute;a de   los casos, el m&eacute;todo es robusto a los cambios en la metodolog&iacute;a (primeras tres   variables); sin embargo, para los cambios instrumentales realizados (siguientes   cuatro variables) se encontr&oacute; que el m&eacute;todo no es robusto para la mayor&iacute;a de   los compuestos.</p>     <p>Las   variaciones realizadas a la metodolog&iacute;a, en las cuales el m&eacute;todo fue robusto,   concuerdan satisfactoriamente con los resultados reportados por otros autores   (24). Los resultados obtenidos para las variables restantes indican que es de   suma importancia su estricto control. La falta de robustez de la metodolog&iacute;a a   las variables instrumentales se atribuye al complejo proceso de ionizaci&oacute;n que   ocurre en la interfaz, pues estas cuatro variables est&aacute;n &iacute;ntimamente   relacionadas con este proceso. Las variaciones realizadas en estos experimentos   fueron bastante significativas, ya que en la mayor&iacute;a de los casos superaron el   30% del valor original. </p>     <p><b>Evaluaci&oacute;n de la metodolog&iacute;a   con muestras reales</b></p>     <p>En la evaluaci&oacute;n de las   muestras de tomate se encontr&oacute; un solo compuesto, lo cual se confirm&oacute; teniendo   en cuenta los par&aacute;metros establecidos en el documento gu&iacute;a de la Uni&oacute;n Europea   (17). Estos criterios corresponden a la relaci&oacute;n de los iones escogidos para la   identificaci&oacute;n del compuesto (<a href="#tabla1">Tabla 1</a>) y a la variaci&oacute;n del tiempo de retenci&oacute;n   del compuesto.</p>     <p>El compuesto identificado mediante la   metodolog&iacute;a desarrollada correspondi&oacute; a indoxacarb, el cual present&oacute; una   concentraci&oacute;n inferior al l&iacute;mite de cuantificaci&oacute;n y una relaci&oacute;n se&ntilde;al ruido   de 15,21 (n = 2). </p>     <p><b>CONCLUSIONES</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Los resultados de la validaci&oacute;n   realizada mostraron que la exactitud de la metodolog&iacute;a multirresiduo   desarrollada para el an&aacute;lisis de 24 plaguicidas era adecuada, expresada como   porcentaje de recuperaci&oacute;n entre el 71,3 y el 114%. En la evaluaci&oacute;n de la   precisi&oacute;n como repetibilidad, ninguno de los compuestos present&oacute; coeficientes   de variaci&oacute;n superiores al 15%. Los resultados obtenidos en los experimentos de   precisi&oacute;n intermedia indicaron que todos los coeficientes de variaci&oacute;n son   inferiores al 20%, a excepci&oacute;n de espinosad D y profenofos.</p>     <p>En la evaluaci&oacute;n del efecto matriz se   evidenci&oacute; la presencia de este en todos los compuestos estudiados, a excepci&oacute;n   de imidaclorprid en modo negativo; en la evaluaci&oacute;n de la linealidad se   determin&oacute; que fue adecuada para todos los compuestos en los rangos de concentraci&oacute;n   evaluados. El experimento de robustez revel&oacute; que el m&eacute;todo no es s&oacute;lido frente   a las variaciones instrumentales; por ejemplo, flujo del gas nebulizador,   voltaje del capilar y temperaturas de la l&iacute;nea de desolvataci&oacute;n y del gas de   secado.</p>     <p>En la   evaluaci&oacute;n de las muestras provenientes del municipio de Villa de Leyva en el   departamento de Boyac&aacute;, se encontr&oacute; indoxacarb en solo una de las 16 muestras   analizadas en el periodo evaluado. La cantidad de indoxacarb presente en la   muestra es inferior al l&iacute;mite de cuantificaci&oacute;n de la metodolog&iacute;a y, a su vez,   es inferior al l&iacute;mite m&aacute;ximo de residuos.</p>     <p><b>AGRADECIMIENTOS</b></p>     <p>Expresamos nuestro   agradecimiento al Centro de Biosistemas de la Universidad Jorge Tadeo Lozano de   Bogot&aacute; y a la Universidad Cat&oacute;lica de Lovaina (B&eacute;lgica) por su apoyo mediante   el proyecto Multidisciplinary assessment of efficiency and sustainability of   smallholder-based tomato production systems in Colombia, with a roadmap for   change” (C&oacute;digo: ZEIN2009PR364).</p>     <p><b>REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS</b></p>     <!-- ref --><p>1.  Tomlin,   C.D. The pesticide manual: A world compendium<i>.</i> Reino Unido, Tomlin C.D. 2009. p. 192.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0120-2804201100020000700001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2.  Alba,   A. Chromatographic-mass spectrometric food analysis for trace determination of   pesticide residues. Espa&ntilde;a, Comprehensive Analytical Chemistry, Elsevier. 2007.   p. 215. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0120-2804201100020000700002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3.  Snyder,   L.R.; Kirkland, J.J.; Dolan, J. Introduction to modern liquid chromatography.   Estados Unidos, Wiley. 2009. p. 21.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0120-2804201100020000700003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4.  Wang,   J.; Leung, D. Applications of ultra-performance liquid chromatography   electrospray ionization quadrupole time-of-flight mass spectrometry on analysis   of 138 pesticides in fruit- and vegetable-based infant foods<i>.</i> Journal of Agricultural and Food Chemistry. 2009. <b>57</b>(6): 2162-2173.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0120-2804201100020000700004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5.  Pizzutti,   I. R.; de Kok, A.; Hiemstra, M.; Wickert, C.; Prestes, O. D. Method validation   and comparison of acetonitrile and acetone extraction for the analysis of 169   pesticides in soya grain by liquid chromatography-tandem mass spectrometry.   Journal of Chromatography A. 2009. <b>1216 </b>(21): 4539-4552.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0120-2804201100020000700005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6.  Sato,   F.; Iwata, H.; Nomura, T.; Komatsu, K. Multiresidue analysis of pesticides in   foods using liquid chromatography/mass spectrometry. Estados Unidos, American   Chemical Society. 2005. p. 28-37.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0120-2804201100020000700006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7.  Soler,   C.; Pic&oacute;, Y. Recent trends in liquid chromatography-tandem mass spectrometry to   determine pesticides and their metabolites in food. TrAC Trends in Analytical   Chemistry. 2007. <b>26</b>(2): 103-115.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0120-2804201100020000700007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8.  D&iacute;az,   L., Llorca-P&oacute;rcel, J.; Valor, I. Ultra trace determination of 31 pesticides in   water samples by direct injection-rapid resolution liquid   chromatography-electrospray tandem mass spectrometry. Analytica Chimica Acta.   2008. <b>624</b>(1): 90-96.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0120-2804201100020000700008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9.  Niessen,   W.M.A. Progress in liquid chromatography-mass spectrometry instrumentation and   its impact on high-throughput screening. Journal of Chromatography A. 2003. <b>1000</b>(1-2): 413-436.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0120-2804201100020000700009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10. Anastassiades,   M.; Lehotay, S. J.; Štajnbaher, D.; Schenck, F. J. Fast and easy multiresidue   method employing acetonitrile extraction/partitioning and “dispersive   solid-phase extraction” for the determination of pesticide residues in produce.   Journal Of AOAC International. 2003. <b>86</b>(2): 412-431.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0120-2804201100020000700010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11. Furlani,   R.P.Z.; Marcilio, K.M.; Tfouni, S.A.V. Determination of pesticides in sugarcane   juice using the quick, easy, cheap, effective, rugged and safe (QuEChERS)   sample preparation. 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Lesueur,   C.; Knittl, P.; Gartner, M.; Mentler, A.; Fuerhacker, M. Analysis of 140   pesticides from conventional farming foodstuff samples after extraction with   the modified QuECheRS method. Food Control. 2008. <b>19</b>(9): 906-914.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0120-2804201100020000700013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14. Ahumada,   D.A.; Zamudio, A. M. Development of a method for determination of thiocyclam   and other pesticides by UFLC/MS. 3rd Latin American Pesticide Residue Workshop   Food and Environment. 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Method Validation and quality Control Procedures for pesticide residues   analysis in food and feed. 2009. &#91;citado: 2011 22 julio&#93;; Disponible en   <a href="http://ec.europa.eu/food/plant/protection/resources/qualcontrol_en.pdf" target="_blank">http://ec.europa.eu/food/plant/protection/resources/qualcontrol_en.pdf</a>.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0120-2804201100020000700017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18. Ahumada,   D.A.; Guerrero, J.A. Study of matrix effect in pesticide analysis by gas   chromatography. 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Studies on matrix effects in liquid chromatography-mass   spectrometry, 3rd Latin American Pesticide Residue Workshop Food and Environment.   Uruguay, Universidad de la Rep&uacute;blica. 2011. p. 227.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S0120-2804201100020000700020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>21. Hadi,   S.C. Regression Analysis by Example. 4th ed. New Jersey, John Wiley &amp; Sons.   2006. p. 129. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0120-2804201100020000700021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>22. Kleinbaum,   L.L.K. Applied regression analysis and multivariable methods. 2nd ed. Pacific   Grove, US, Brooks/Cole Publishers.1989. p. 227. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000120&pid=S0120-2804201100020000700022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>23. Soboleva,   N.R.; Mageto, &Aacute;.; Ambrus, A.; Fajgelj, A. Principles and practices of method   validation. Cambridge, UK, Royal Society Of Chemistry. 2000. p. 171.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0120-2804201100020000700023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>24. Wong,   J.; Hao, C.; Zhang, K.; Yang, P.; Banerjee, K.; Hayward, D.; Iftakhar, I.;   Schreiber, A.; Tech, K.; Sack, C.Development and Interlaboratory Validation of   a QuEChERS-Based Liquid Chromatography- Tandem Mass Spectrometry Method for   Multiresidue Pesticide Analysis. Journal of Agricultural and Food Chemistry. <b>58</b>(10): 5897-5903. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000122&pid=S0120-2804201100020000700024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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