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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Desarrollo y optimizacion de una metodologia multiresiduo por metodo Simplex para el analisis de plaguicidas en miel de abejas]]></article-title>
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<article-title xml:lang="pt"><![CDATA[Desenvlovimiento e otimização de uma metodologia de resíduos múltiplos para o método Simplex para a análise de pesticidas em abelhas]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Pesticide application near to beekeeping areas can affect the survival of the bees and the quality of the products derived of the hive, therefore it is of great importance to assess the residual of these agrochemicals in honey and other bee products. So many methods have been developed for determining pesticide residues in honey samples. Thus, a multi-residue method to determine 30 pesticides in honey bee (organochlorine, organophosphorus, and pyrethroids) has been developed and optimized. The method is based on a liquid-liquid extraction followed by a clean-up step on a silica gel/florisil solidphase column. Pesticides were determined by gas chromatography with micro-electron capture (&#956;-ECD) and nitrogen phosphorus detection (NPD). The optimization process was performed using the modified Simplex method, to make this 14 variables were chosen and the optimization was conducted in 21 experiments. The results indicated that the method show recoveries between 78.8 and 114.5% and coefficients of variation below 20%.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="pt"><p><![CDATA[A aplicação de pesticidas em áreas de cultivo próximos a apicultura pode afetar a sobrevivência das abelhas e a qualidade dos produtos da colmeia, por isso é muito importante estudar o efeito residual destes produtos químicos no mel e outros produtos apícolas. Para isso é essencial para o desenvolvimento de metodologias para a análise de contaminantes em produtos de abelha. Este documento mostra os resultados para o desenvolvimento e optimização de um método de resíduos múltiplos para a análise de 30 pesticidas, incluindo pesticidas organoclorados, organofosforados e piretróides mel. O método consistiu em uma extracção líquido-líquido, seguido por uma etapa de limpeza, usando uma coluna de fase sólida, cheia de gel de sílica/florisil. Análise de pesticidas foi realizada por cromatografia gasosa com detector de nitrogênio e fósforo (NPD) e microcaptura eletrônico (&#956;-ECD). A optimização das variáveis experimentais presentes nas etapas de pré-tratamento, de extracção e limpeza foi efectuada por utilização do método simplex modificado. Para o efeito, foram escolhidas 14 variáveis que foram optimizadas em 21 experiências. Os resultados mostraram que as recuperações obtidas para a maioria dos pesticidas estão entre 78,8% e 114,5%, com coeficientes de variação inferiores a 20%.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[   <font size="2" face="Verdana">      <p align="center"><font size="4" face="Verdana"><b>Desarrollo y optimizacion de una metodologia multiresiduo por metodo Simplex para el analisis de plaguicidas en miel de abejas </b></font></p>     <p align="center"><font size="3" face="Verdana"><b> Development and optimization of a multiresidue method for pesticide analysis in honey bee using Simplex method</b></font></p>     <p align="center"><font size="3" face="Verdana"><b> Desenvlovimiento e otimiza&ccedil;&atilde;o de uma metodologia de res&iacute;duos  m&uacute;ltiplos para o m&eacute;todo Simplex para a an&aacute;lise de  pesticidas em abelhas</b></font></p>      <p><b>Danny Rodriguez</b><b><sup>1</sup></b><b>, Amanda C. Diaz</b><b><sup>2</sup></b><b>,  Diego A. Ahumada<sup>1</sup>, Jairo A. Guerrero</b><b><sup>1</sup>*</b></p>     <p><sup>1</sup> Laboratorio de Analisis de Residuos de Plaguicidas, Departamento de Quimica,  Facultad de Ciencias, Universidad  Nacional de Colombia, sede Bogota, Crr. 30 No. 45-03, Bogota D.C., Colombia.      <br> <sup>2</sup> Instituto de Ciencia y Tecnologia de Alimentos-ICTA. Universidad  Nacional de Colombia, Bogota D.C., Colombia.     <br>* Autor  para correspondencia: <a href="mailto:jaguerreod@unal.edu.co">jaguerreod@unal.edu.co</a></p>     <p>Recibido: 15 de enero de 2013 &bull; Aceptado: 15 de abril de 2013</p> <hr>     <p><b>Resumen</b>  </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La aplicacion de  plaguicidas en cultivos cercanos a las zonas de  produccion apicola puede afectar la  supervivencia de las abejas y la calidad de los  productos derivados de la colmena; por tanto, es de  gran importancia realizar estudios de residualidad de estos agroquimicos en mieles y  otros productos apicolas. Para esto es  indispensable desarrollar metodologias que permitan  detectar y cuantificar la presencia de  estos contaminantes en los productos apicolas.  Este trabajo muestra los resultados del  desarrollo y optimizacion de una metodologia  multiresiduo para el analisis de 30 plaguicidas en miel de abejas (organoclorados,  organofosforados y piretroides). El metodo  consistio en una   extraccion liquido-liquido,  seguida de un paso de limpieza en fase solida  usando una columna cargada con silica gel/florisil. El analisis de los plaguicidas fue realizado  por cromatografia de gases con detectores de  nitrogeno fosforo (NPD) y microcaptura  electronica (&mu;-ECD). La optimizacion de las  variables experimentales presentes en los pasos de pre-tratamiento, extraccion y limpieza se  realizo mediante el empleo del metodo Simplex  modificado. Con este fin, se escogieron 14  variables las cuales se optimizaron en 21  experimentos. Los resultados mostraron que los  porcentajes de recuperacion obtenidos para la mayoria  de los plaguicidas se encuentran entre 78.8% y  114.5%, con coeficientes de variacion  inferiores al 20%.</p> <b>Palabras clave: </b>miel,  contaminacion, plaguicidas,  Simplex.<hr> <b>Abstract</b></p>     <p>Pesticide application near to beekeeping areas can affect the survival of the bees and the quality of the products derived of the hive, therefore it is of great importance to assess the residual of these agrochemicals in honey and other bee products. So many methods have been developed for determining pesticide residues in honey samples. Thus, a multi-residue method to determine 30 pesticides in honey bee (organochlorine, organophosphorus, and pyrethroids) has been developed and optimized. The method is based on a liquid&#150;liquid extraction followed by a clean-up step on a silica gel/florisil solidphase column. Pesticides were determined by gas chromatography with micro-electron capture (&mu;-ECD) and nitrogen phosphorus detection (NPD). The optimization process was performed using the modified Simplex method, to make this 14 variables were chosen and the optimization was conducted in 21 experiments. The results indicated that the method show recoveries between 78.8 and 114.5% and coefficients of  variation below 20%.</p>     <p><b>Keywords: </b>Honey,  pollution, pesticides, Simplex.</p> <hr>     <p><b>Resumo </b></p>     <p>A aplica&ccedil;&atilde;o de pesticidas em &aacute;reas de   cultivo pr&oacute;ximos a apicultura pode afetar   a sobreviv&ecirc;ncia das abelhas e a qualidade   dos produtos da colmeia, por isso &eacute; muito   importante estudar o efeito residual   destes produtos qu&iacute;micos no mel e outros   produtos ap&iacute;colas. Para isso &eacute; essencial para   o desenvolvimento de metodologias para a   an&aacute;lise de contaminantes em produtos de   abelha. Este documento mostra os resultados   para o desenvolvimento e optimiza&ccedil;&atilde;o de   um m&eacute;todo de res&iacute;duos m&uacute;ltiplos para a   an&aacute;lise de 30 pesticidas, incluindo pesticidas   organoclorados, organofosforados e   piretr&oacute;ides mel. O m&eacute;todo consistiu em uma   extrac&ccedil;&atilde;o l&iacute;quido-l&iacute;quido, seguido por uma   etapa de limpeza, usando uma coluna de fase   s&oacute;lida, cheia de gel de s&iacute;lica/florisil. An&aacute;lise   de pesticidas foi realizada por cromatografia   gasosa com detector de nitrog&ecirc;nio e f&oacute;sforo   (NPD) e microcaptura eletr&ocirc;nico (&mu;-ECD).   A optimiza&ccedil;&atilde;o das vari&aacute;veis experimentais   presentes nas etapas de pr&eacute;-tratamento,   de extrac&ccedil;&atilde;o e limpeza foi efectuada por   utiliza&ccedil;&atilde;o do m&eacute;todo simplex modificado.   Para o efeito, foram escolhidas 14 vari&aacute;veis   que foram optimizadas em 21 experi&ecirc;ncias.   Os resultados mostraram que as recupera&ccedil;&otilde;es   obtidas para a maioria dos pesticidas est&atilde;o   entre 78,8% e 114,5%, com coeficientes de varia&ccedil;&atilde;o inferiores a 20%.</p>     <p><b>Palavras-chave: </b>Mel, polui&ccedil;&atilde;o, agrot&oacute;xicos,  Simplex.</p> <hr>      <p><font size="3" face="Verdana"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>     <p> En la actualidad, la  contaminacion ambiental es una de las areas de mayor investigacion por parte de  la comunidad cientifica, asi como uno de los principales temas de  discusion en las diferentes organizaciones y/o entidades gubernamentales  que, dia a dia, emiten nuevas legislaciones en pro de la conservacion  de los recursos naturales y la proteccion de la flora y fauna.  Adicionalmente, el creciente interes por el consumo de productos inocuos ha  inducido a que muchos grupos de investigacion centren sus esfuerzos en  evaluar la presencia de contaminantes en los alimentos de origen  agropecuario, a traves de una amplia variedad de herramientas analiticas  desarrolladas para identificar y cuantificar la presencia de estas  moleculas en dichas matrices. </p>     <p>Los alimentos de origen  natural, como los productos apicolas, ademas de hacer parte de la dieta  humana, se utilizan como bioindicadores ambientales debido a que  diversos estudios demuestran que las abejas, en el proceso de  recoleccion de nectar, transportan una amplia variedad de contaminantes presentes  en la zona que son almacenados y concentrados en la colmena (1). En  consecuencia, los productos derivados de la colmena, como la miel,  se contaminan con residuos de diversos plaguicidas (2). Adicionalmente, el uso  de productos quimicos para el control de enfermedades en la colmena  es otra fuente importante de contaminantes en los productos apicolas  (1, 3). A fin de impedir que mieles contaminadas afecten a los  consumidores, algunas organizaciones han   establecido limites maximos  de residuos para un extenso numero de plaguicidas en este  alimento (4).</p>     <p>Este panorama ha promovido  el desarrollo de metodos multiresiduo que permiten la  determinacion simultanea de mas de un residuo en una extraccion simple,  reduciendo el tiempo de analisis y el consumo de solventes (3, 5). Para  obtener el mejor desempeno de una metodologia multiresiduo es  indispensable realizar la optimizacion de las variables experimentales  involucradas. Para este fin, se pueden emplear metodos de optimizacion  auto-dirigidos, como el metodo Simplex, que permite estudiar y mejorar un  proceso de extraccion multiresiduo que involucra mas de una variable experimental, teniendo en cuenta las posibles interacciones entre las  mismas y con un numero de ensayos razonable, respecto a otros metodos de  optimizacion (6). </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El metodo Simplex ha sido  utilizado ampliamente para la optimizacion inequivoca de diferentes  procedimientos analiticos; particularmente en aquellos casos en los  que existe interdependencia entre las variables que se desean  optimizar. En comparacion con otros metodos de optimizacion, que se  basan en disenos experimentales o superficies de respuestas, el metodo  Simplex generalmente permite llegar al punto optimo de forma mas simple  y rapida. Por estos motivos este metodo se ha empleado exitosamente en  la optimizacion de diversos sistemas: condiciones de operacion de instrumentacion analitica (7), metodos de separacion cromatografica (8), cristalizacion de proteinas (9), extraccion de contaminantes en suelos  mediante fluidos supercriticos (10), entre otros usos. </p>     <p>De esta manera, el presente  trabajo describe los resultados obtenidos en el desarrollo de una  metodologia multiresiduo para el analisis de plaguicidas en miel de  abejas y su posterior optimizacion mediante el metodo Simplex. La  metodologia se basa en una extraccion con metanol/acetato de etilo, limpieza  con florisil/silica y analisis cromatografico mediante GC/&mu;-ECD/NPD.</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>Materiales y m&eacute;todos</b></font> </p>     <p><b>Materiales de referencia, reactivos y soluciones</b></p>     <p>Se trabajo con estandares  de plaguicidas de pureza mayor al 95%, proveniente de las casas comerciales  Dr. Ehrenstorfer y Chemservice. Las soluciones madre fueron preparadas en  concentraciones cercanas a 1000 &mu;g/mL  en acetato de etilo y almacenadas en frascos ambar a &#150;20&deg;C.  La mezcla de plaguicidas se  preparo tomando diferentes volumenes de cada una de las soluciones madre  hasta obtener las concentraciones que se presentan en la <a href="#(tab1)">Tabla 1</a>.  Esta solucion se almaceno en un frasco ambar a &#150;20&deg;C.  Los solventes empleados en este estudio fueron J.T. Baker grado HPLC y grado residuos.El  florisil y la silica empleados corresponden a grado residuos (60-100  mesh), activados previamente con calentamiento a 150&deg;C  por 4 horas. El sulfato de sodio anhidro (12-60 mesh) igualmente fue secado a 150&deg;C  por 4 horas.</p>      <p align="center"><a name="(tab1)"><img src="img/revistas/rcq/v42n1/v42n1a02tab1.jpg"></a></p>     <p><b>Instrumentos y equipos</b></p>     <p>La extraccion se realizo en  un agitador de rotacion universal marca Heidolph modelo Reax-2<sup>&reg;</sup>. La  determinacion y cuantificacion de los plaguicidas se realizo en  un cromatografo de gases HP6890<sup>&reg;</sup>plus, equipado con un inyector automatico 7683 Agilent Technologies (Palo Alto, CA, EE.UU.) con  control electronico de presion y un inyector <i>spli </i>/<i>splitless</i>, el  cual se conecto a traves de una columna capilar sin fase estacionaria (1 m;  0.32 mm d.i.) a un divisor de flujo de cuarzo en forma de &#39;Y&#39;, unido a una columna capilar HP-5  (30 m; 0.32 mm d.i.; 0.25 &mu;m) acoplada a un detector de micro-captura electronica <sup>63</sup>Ni (&mu;-ECD)  y a una columna capilar HP-50 (30 m; 0.32 mm d.i.; 0.25 &mu;m) acoplada a un detector de  nitrogeno-fosforo (NPD) en paralelo. Las condiciones de operacion  fueron: gas de transporte nitrogeno, volumen de inyeccion 2 &mu;L, temperatura del inyector de 256 &deg;C,  inyeccion en modo <i>splitless </i>pulsado con presion de pulso de 152 kPa durante 0.8 min, tiempo de purga de 0.6  min y flujo de purga de 40 mL/min. La temperatura del detector &mu;-ECD fue de 310&deg;C con flujo de gas auxiliar (nitrogeno) de 10 mL/min.  El detector NPD se trabajo a 330&deg;C con flujos constantes de gas  auxiliar (nitrogeno), hidrogeno y aire de 3,10 y 60 mL/min,  respectivamente. El programa de temperatura del horno inicio a 52&deg;C (0  min), incrementandose la temperatura a una velocidad de 4&deg;C/min  hasta alcanzar 100&deg;C,  consecutivamente se aumento la temperatura hasta 110&deg;C a 2&deg;C/min, a continuacion se  incremento. hasta 130&deg;C a una velocidad de 20&deg;C/min, luego se llevo hasta 195&deg;C a 4&deg;C/min y finalmente se llego  a una temperatura de 280&deg;C  a una velocidad de 5&deg;C/min.</p>     <p><b>Desarrollo de la  metodolog&iacute;a</b></p>     <p>Se utilizo una muestra blanco compuesta por mieles provenientes de cuatro regiones de Colombia. Estas muestras de miel fueron  cosechadas en regiones donde las aplicaciones de plaguicidas son muy bajas o  nulas. Fueron analizadas por cromatografia de gases y se confirmo que no  presentaban presencia de ninguno de los plaguicidas en estudio. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Para la fortificacion de las muestras, se pesaron 1000 g de miel  blanco en un tubo de fondo conico de 50 mL, se adicionaron 32 &mu;L de la mezcla de plaguicidas que se presenta en la <a href="#(tab1)">Tabla 1</a> y,  posteriormente, se dejaron las muestras en reposo por un tiempo de 20 min con el  proposito de permitir la evaporacion del solvente.</p>     <p><b>Pre-tratamiento. </b>Esta etapa consistia en disolver la miel con el proposito de reducir su viscosidad y mejorar la extraccion de los  plaguicidas. Para esto, se ensayo la adicion de diferentes cantidades de  metanol, 1 mL de agua, 1mL de buffer de citratos (pH 5.5 y concentracion de  0,15 g/mL) y/o 1 mL de buffer de citratos (pH 5.5 y concentracion de 0.15  g/ mL) con cloruro de sodio (0.5 g/mL).</p>     <p><b>Extraccion. </b>Se realizaron diferentes ensayos en los que se evaluaron variasfases extractantes, tales como acetato de etilo, metanol, hexano o mezclas acetato de etilo:n-hexano (3:2, 4:1) y acetato de  etilo:metanol (4:1, 1:1 y 1:4); en esta evaluacion se encontro que la fase  extractante que mejores resultados ofrecia corresponde al acetato de etilo;  as&iacute; mismo, en estos ensayos se encontro que al realizar una doble extraccion se  obtiene el mayor numero de compuestos con porcentajes de recuperacion superiores al 70% (11). De esta manera, la extraccion se realizo  como se detalla a continuacion: la primera extraccion se realizo con 10  mL de acetato de etilo y agitacion mecanica por 15 min. Posterior a ello, se centrifugo la mezcla de extraccion y se recolecto la fase organica  en un balon pera. Para la segunda etapa de extraccion se adicionaron 5  mL de acetato de etilo y se dejo nuevamente en agitacion. Se  centrifugo la mezcla de extraccion y se recolecto la fase organica para ser  combinada con el extracto de la primera extraccion. Se concentro la mezcla  en un rota-evaporador hasta obtener aproximadamente 1mL de extracto y se adicionaron 2 g de sulfato de sodio anhidro. </p>     <p><b>Limpieza. </b>La limpieza de los extractos se realizo mediante el empleo de dos tecnicas, la primera correspondio a cromatografia de  permeacion en gel (CPG), cuyas condiciones se encuentran reportadas en otros  estudios (12). La segunda tecnica que se empleo correspondio a  cromatografia clasica en columna (CCC), para lo cual se evaluaron distintas fases moviles y diferentes fases adsorbentes. El procedimiento  general para esta tecnica se detalla a continuacion: al interior de una  columna de vidrio con llave para el control del flujo y un tapon de  algodon ubicado en la parte inferior, se adicionaron 10 mL de n-hexano. A  continuacion se agregaron en la columna 2 g de sulfato de sodio anhidro, 2 g de fase estacionaria (silica gel desactivada y/o florisil) y 3 g  de sulfato de sodio anhidro, de tal forma que no quedaran burbujas de aire.  El nhexano en exceso se expulso de la columna sin permitir que la fase solida se secara. Se cargo la columna con el extracto organico y se eluyo  con la fase movil a evaluar. El extracto se concentro en el  rota evaporador hasta alcanzar un volumen aproximado de 0.2 mL y luego se llevo a  un volumen  de 1.0 mL</p>     <p> <b>Optimizaci&oacute;n de la metodolog&iacute;a</b></p>     <p>La construccion del Simplex  de partida se realizo con base en los resultados experimentales obtenidos a  partir de los ensayos llevados a cabo en el desarrollo de la  metodologia, siguiendo el metodo descrito en la literatura (7, 13). La  <a href="#(tab2)">Tabla 2</a> muestra las variables experimentales seleccionadas (k = 14), el tamano de paso  y las condiciones de referencia utilizadas para la  construccion del Simplex de partida.</p>      <p align="center"><a name="(tab2)"><img src="img/revistas/rcq/v42n1/v42n1a02tab2.jpg"></a></p>      <p><b>Resultados y discusi&oacute;n</b></p>     <p><b>Desarrollo de la metodolog&iacute;a: pre-tratamiento y extracci&oacute;n</b> </p>     <p>En el caso de la miel de  abejas, algunos reportes de literatura concuerdan en que, durante el proceso  de extraccion liquido-liquido (ELL), es posible aumentar el  porcentaje de recuperacion de un amplio numero de plaguicidas (14). Una de las principales opciones consiste en la disolucion previa de la miel de abejas  en agua o en metanol. En este sentido, se decidio ensayar la  adicion de metanol en el paso de pre-tratamiento con el proposito de mejorar  la recuperacion de algunos compuestos, respecto a los resultados  obtenidos de la ELL directa con diversos solventes (11). La <a href="#(fig1)">Figura 1</a> presenta  un resumen de los resultados obtenidos en el pre-tratamiento con  metanol previo a la extraccion para los 30 plaguicidas bajo estudio en  miel. </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="(fig1)"><img src="img/revistas/rcq/v42n1/v42n1a02fig1.jpg"></a></p>      <p>La <a href="#(fig1)">Figura 1</a> muestra que la  adicion de metanol durante la fase de pre-tratamiento de la miel,  aumenta el numero de plaguicidas extraidos con porcentajes de recuperacion  entre 70% y 120%. Esto se debe a la reduccion de la viscosidad  de la miel cuando es disuelta en metanol, lo cual facilita el contacto  entre la matriz y el solvente de extraccion; adicionalmente, la presencia de metanol  durante el proceso de extraccion aumenta la polaridad de la  fase extractante, lo que permite recuperar un mayor numero de  plaguicidas polares y medianamente polares. La <a href="#(fig1)">Figura 1</a> muestra, asi  mismo, que los mejores desempenos se alcanzaron al usar 3 mL de metanol,  siendo mas eficiente la adicion de 1,5 mL de metanol antes de la primera  extraccion y 1,5 mL de metanol antes de la segunda extraccion. Por  ultimo, se observa que adiciones superiores a 3 mL de metanol generan  un descenso en el numero de plaguicidas recuperados, lo cual se atribuye  a la co-extraccion de compuestos de la matriz que interfieren  en la deteccion mediante <b>&mu;</b>-ECD  que impiden identificar y cuantificar  algunos plaguicidas como 4,4&#39;-DDT, heptenofos, diclorvos, cimoxanil, &alpha;-HCH, &beta;-HCH, dimetoato,  clorotalonil, metilparation y profenofos. </p>     <p>Estos ensayos presentan un  bajo desempeno en la extraccion de los plaguicidas organoclorados,  razon por la cual se decidio realizar una modificacion en la  constante dielectrica del medio en la etapa de pretratamiento. Esta modificacion se  realizo mediante la adicion de 1 mL de agua, 1 mL de buffer de  citratos (pH 5.5 y concentracion de 0.15 g/ mL) y 1mL de buffer de  citratos (pH 5.5 y concentracion de 0.15 g/mL) con cloruro de sodio (0.5  g/mL); estos resultados tambien se presentan en la <a href="#(fig1)">Figura 1</a>. </p>     <p>Adicionalmente, la <a href="#(fig1)">Figura 1</a>  permite observar que los pre-tratamientos con agua y con buffer  citratos/NaCl mostraron un buen desempeno; sin embargo, la extraccion  con buffer citrato ofrecio el mayor numero de plaguicidas con porcentajes  de recuperacion entre 70% y 120%. Esto se explica porque la adicion  del buffer regula el pH y evita perdidas por hidrolisis de algunos plaguicidas, los  cuales, por lo general son estables bajo condiciones similares en un  rango de pH entre 5 y 7; adicionalmente, esta fase reduce la viscosidad  de la miel lo que facilita el proceso de transporte de los plaguicidas desde la  matriz hasta la fase extractante. </p>     <p>De esta manera, la  metodologia de pre-tratamiento y la extraccion incluyen la adicion de 1.5  mL de metanol previo a la adicion del acetato de etilo (en cada una de  las etapas), la adicion de 1 mL de buffer de citratos (pH = 5.5 y  concentracion = 0.15 g/mL), adicion de 10 mL de acetato de etilo en la  primera extraccion, agitacion durante 15 min, centrifugacion, una segunda  extraccion con 5 mL de acetato de etilo, agitacion por 15 min y  centrifugacion. Finalmente, se reunen los dos extractos de acetato de  etilo, se concentran hasta aproximadamente 1 mL en un evaporador  rotatorio y se someten al proceso de limpieza.</p>     <p> Bajo las condiciones  citadas previamente se presentaron algunos inconvenientes tales como  la perdida de los plaguicidas polares heptenofos, diclorvos, metamidofos,  acefato, cimoxanil y monocrotofos; ademas, se dificult<b>o </b>la identificacion y  cuantificacion de los compuestos organoclorados &alpha;-HCH, &beta;-HCH,  endosulfan &alpha; y endosulfan &beta; por  la elucion de interferentes. Por lo tanto, se decidio implementar un  proceso de limpieza con el proposito de reducir algunas de estas  limitaciones.</p>     <p><b>Desarrollo de la  metodolog&iacute;a: limpieza</b></p>     <p>En analisis de residuos de plaguicidas, la limpieza de los  extractos previa al analisis instrumental es uno de los pasos determinantes en el  desarrollo de una metodologia analitica. Las tecnicas mas empleadas para esta etapa corresponden a la extraccion liquido-liquido (ELL),  extraccion en fase solida (EFS), cromatografia en columna clasica (CCC) y cromatografia de permeacion en geles (CPG). Debido a la constante dielectrica del acetato de etilo y la diversidad de propiedades fisicoquimicas  de los analitos, se decidio no emplear la ELL como metodo de limpieza,  pues es  una de las tecnicas que presentan menor eficiencia (15). Por otro lado, la  EFS con cartuchos se descarto por los costos que implica, pues no se pueden  emplear fases estacionarias convencionales, sino que, de acuerdo a  algunas publicaciones, se emplean fases estacionarias modificadas (15-17).  Por lo anterior, se decidio evaluar la CPG y la CCC como tecnicas de limpieza. </p>     <p>Los  resultados mostraron que mediante CPG se obtenian porcentajes de  recuperacion aceptables para la mayoria de los plaguicidas evaluados; sin  embargo, en el detector de &mu;-ECD se presentaba una gran cantidad  de interferentes que imposibilitan el analisis de algunos compuestos como:  heptenofos, diclorvos, cimoxanil, &alpha;-HCH, &beta;-HCH dimetoato, clorotalonil,  clorpirifos, metilparation y fenitrotion; por lo cual el empleo  de CPG fue descartado. </p>     <p>La  evaluacion de CCC se realizo para diferentes combinaciones de fase  estacionaria y fase movil, las cuales se escogieron de acuerdo a reportes de  literatura (3, 14, 18). Algunas de las fases moviles ensayadas corresponden  a: acetonitrilo, n-hexano, acetato de etilo, mezclas de acetato  de etilo/n-hexano y acetato de etilo/metanol. El mejor desempeno durante  la evaluacion de la limpieza por CCC se obtuvo al realizar la elucion  con 15 mL de acetato de etilo/n-hexano (1:1). </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La  <a href="#(fig2)">Figura 2</a> resume los resultados de los diferentes ensayos de limpieza. Esta  figura muestra que: i) las tres fases estacionarias permiten obtener  porcentajes de recuperacion en el rango de aceptacion de la Union  Europea; no obstante, la fase estacionaria conformada por Silica/ Florisil  (1:1) presenta un mayor numero de compuestos con porcentajes de recuperacion dentro de este rango, en comparacion con las demas fases; ii)  el numero de compuestos con porcentajes de recuperacion entre 70%  y 120% obtenidos con CPG es el mas bajo debido al gran numero de  interferencias presentes durante la evaluacion cromatografica; iii) el desempeno  de la silica durante la limpieza es ligeramente inferior al del Florisil,  lo cual se debe a que esta ultima fase estacionaria es capaz de retener  un mayor contenido de moleculas polares, entre estos los azucares. </p>      <p align="center"><a name="(fig2)"><img src="img/revistas/rcq/v42n1/v42n1a02fig2.jpg"></a></p>      <p>De  acuerdo a los resultados mostrados en la <a href="#(fig2)">Figura 2</a>, el mayor numero de  compuestos con mejores porcentajes de recuperacion se obtienen al  emplear 2 g de Florisil/silica (1:1) como fase estacionaria y 15 mL de  n-hexano-acetato de etilo (1:1)como solvente de elucion. </p>     <p>Finalmente,  como resultado de los experimentos llevados a cabo en el  desarrollo de la metodologia, las tres fases que la componen son: i) <i>pre-tratamiento </i>de  la miel, la cual consiste en la disolucion de la miel en  buffer citratos y en metanol; ii) <i>extraccion </i>1 y 2, realizadas con acetato de  etilo y asistidas con agitacion mecanica; y, iii) <i>limpieza </i>mediante CCC,  empleando Florisil y silica gel desactivada como fase estacionaria y n hexano:  acetato de etilo como fase movil para la elucion.</p>     <p><b>Optimizaci&oacute;n de la metodolog&iacute;a</b></p>     <p>Como se menciono  anteriormente, mediante los ensayos realizados en la etapa de desarrollo del  metodo se logro establecer las variables de mayor impacto en el  desempeno de la metodologia, al igual que las condiciones iniciales para construir el  Simplex de partida.</p>     <p>Asi, la <a href="#(tab2)">Tabla 2</a> muestra las  14 variables incluidas en la optimizacion de los tres pasos  analiticos. En esta tabla es posible observar que los tamanos de paso empleados para las  diferentes variables fueron establecidos de tal manera que el desplazamiento en el sistema fuera moderado, debido a que los ensayos  preliminares realizados durante el desarrollo de la metodologia  multiresiduo indicaron que se estaba trabajando a condiciones  cercanas al punto optimo, pues se estaban recuperando la mayoria  de los plaguicidas; sin embargo, el metodo presentaba coeficientes de  variacion altos y un gran numero de interferentes en la deteccion por  &mu;-ECD. </p>     <p>En  la <a href="#(tab3)">Tabla 3</a> se muestran los 15 experimentos que conforman el Simplex  de partida (S<sub>1</sub> a  S<sub>15</sub>),  al igual que las proyecciones resultantes realizadas  durante el proceso de optimizacion de la metodologia. </p>      <p align="center"><a name="(tab3)"><img src="img/revistas/rcq/v42n1/v42n1a02tab3.jpg"></a></p>      <p>Para  la optimizacion mediante el metodo Simplex, es fundamental definir  una respuesta que permita evaluar los diferentes ensayos y asi, continuar  con las proyecciones correspondientes (6). Por tanto, la expresion 1 corresponde a la respuesta empleada para evaluar cada uno delos  vertices del Simplex.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><img src="img/revistas/rcq/v42n1/v42n1a02ecua1.jpg"></a></p>       <p>En  la Ecuacion 1, <i>N </i>es  el numero de plaguicidas extraidos con porcentaje de  recuperacion entre 70% y 120%, el cual es el criterio de aceptacion del  documento Sanco de la Union Europea para el analisis de residuos  de plaguicidas en alimentos (19); <i>P</i><i>r </i>es el valor promedio del porcentaje  de recuperacion de los plaguicidas extraidos y <i>R </i>es el ruido normalizado obtenido al dividir el ruido cromatografico de los blancos de  miel en el ruido cromatografico del acetato de etilo, en los rangos de tiempo  que eluyen los plaguicidas. Como se observa en la Ecuacion 1, la respuesta  del Simplex es adimensional.</p>     <p>La  Ecuacion 1 muestra que cada uno de los terminos incluidos en esta  respuesta permite evaluar algun parametro de interes. Por ejemplo, como  se trata de una extraccion multiresiduo, se hace necesario tener una  medida del numero de compuestos que el metodo pueda extraer adecuadamente,  por lo cual se incluyo el termino <i>N</i>. Por otro lado, como el rango de 70% a 120% resulta muy amplio, se adiciono a la ecuacion el  promedio de los porcentajes de recuperacion obtenidos; asi, al tratarse de  una optimizacion, se tiene en cuenta el numero de plaguicidas recuperados  y la eficiencia del metodo para extraer dichos compuestos. Finalmente,  se decidio incluir el ruido presente en los perfiles cromatograficos debido  a que, por la baja especificidad y selectividad del detector  &mu;-ECD, los compuestos presentes en la miel que se coextraen generalmente  ocasionan interferencias en la deteccion. De tal forma, mediante  la inclusion de esta relacion de ruidos se asegura que se obtenga un  metodo mas especifico, lo que a su vez asegura unos mejores limites de  deteccion.</p>     <p>En  la <a href="#(fig3)">Figura 3</a> se muestra la respuesta obtenida para cada vertice efectuado,  despues de realizar la extraccion e inyeccion cromatografica del  Simplex de partida. La <a href="#(fig3)">Figura 3</a>, muestra que solamente los puntos S<sub>3</sub> y S<sub>15</sub>  exhiben una respuesta inferior a la  obtenida para el punto de partida  S<sub>1</sub>.  Esto indica que la adicion de un alto volumen de buffer en la extraccion  (ver <a href="#(tab3)">Tabla 3</a>, S<sub>3</sub>)  o un aumento considerable de la polaridad de  la fase de elucion durante la limpieza (ver <a href="#(tab3)">Tabla 3</a>, S<sub>15</sub>), reducen la eficiencia  de estas dos etapas experimentales. </p>      <p align="center"><a name="(fig3)"><img src="img/revistas/rcq/v42n1/v42n1a02fig3.jpg"></a></p>  De  igual manera, en la <a href="#(fig3)">Figura 3</a> se puede observar que la respuesta obtenida  para las reflexiones (S<sub>16</sub> a  S<sub>21</sub>)  supera en valor de cualquiera de los  vertices del Simplex de partida. Ademas, la reflexion S<sub>16</sub> aumento la respuesta  al doble, si se compara con el punto de partida S<sub>1</sub>. Esto implica que  los movimientos del Simplex generaron una mejora considerable del  sistema. A pesar de esto, los ultimos cinco experimentos no presentaron una  tendencia creciente, por lo cual se decidio detener el Simplex en  el vertice S<sub>21</sub> y  tomar las condiciones experimentales de S<sub>16</sub>  como las condiciones definitivas para el metodo multiresiduo.     <p><b>Evaluaci&oacute;n de la optimizaci&oacute;n</b></p>     <p>La evaluacion de la  optimizacion se realizo comparando los resultados obtenidos para las  condiciones experimentales de partida contra las condiciones determinadas en  el vertice S<sub>16</sub> (ver <a href="#(tab3)">Tabla 3</a>). De esta manera, el primer punto en comparacion correspondio a la especificidad de la metodologia; asi, la <a href="#(fig4)">Figura  4</a> muestra los cromatogramas obtenidos para la muestra blanco en las  dos condiciones mencionadas. </p>      <p align="center"><a name="(fig4)"><img src="img/revistas/rcq/v42n1/v42n1a02fig4.jpg"></a></p>      <p>La <a href="#(fig4)">Figura 4</a> muestra como en  el vertice S<sub>16</sub> se redujo considerablemente el numero de interferencias  presentes en el detector &mu;-ECD, siendo notable para los tiempos de retencion entre 10 minutos y 32 minutos. Este cambio indica que el  Simplex permitio obtener una mejora en la fase de limpieza del metodo  multiresiduo. Esta reduccion de coeluyentes en el analisis instrumental  tiene un impacto directo en los valores obtenidos para los limites  de deteccion y cuantificacion de la metodologia; asi mismo, reduce  considerablemente el deterioro del sistema cromatografico, pues la miel es una matriz con un alto contenido  de carbohidratos y otros compuestos que suelen acumularse en el  sistema de inyeccion (20). </p>     <p>Las <a href="#(fig5)">Figuras 5</a> y <a href="#(fig6)">6</a> muestran los porcentajes de recuperacion y los coeficientes de variacion de los plaguicidas obtenidos bajo las  condiciones experimentales de partida y las condiciones que generaron la mejor respuesta S<sub>16</sub>. En la <a href="#(fig5)">Figura 5</a> se observa que mediante el  metodo optimizado se logro obtener porcentajes de recuperacion dentro del rango de aceptacion del documento SANCO para los plaguicidas cimoxanil, &alpha;-HCH,  &beta;-HCH,endosulfan &alpha;, profenofos,  endosulfan &beta;, fenitrotion y difenoconazol. Asi mismo, se mejoro considerablemente la  recuperacion de los plaguicidas organoclorados 4,4&#39;-DDD  y 4,4&#39;-DDT en comparacion con el metodo inicial. Por otro lado, en la <a href="#(fig5)">Figura 5</a>, se encuentra que compuestos muy polares como acefato, diclorvos, heptenofos, monocrotofos y metamidofos presentaron recuperaciones bajas, lo  cual se atribuye a su alta polaridad; sin embargo, al comparar los  valores obtenidos se encuentra que en todos los casos mediante el metodo optimizado se obtienen mayores recuperaciones, respecto a las condiciones de partida. </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="(fig5)"><img src="img/revistas/rcq/v42n1/v42n1a02fig5.jpg"></a></p>      <p align="center"><a name="(fig6)"><img src="img/revistas/rcq/v42n1/v42n1a02fig6.jpg"></a></p>      <p>Finalmente, la <a href="#(fig6)">Figura 6</a> muestra que en la mayoria de los casos, a excepcion de dimetoato y profenofos, se presentan coeficientes de variacion mas bajos al utilizar el metodo optimizado. Asi mismo, se observa que para algunos compuestos como cimoxanil, metamidofos,  metilparation, entre otros, con la optimizacion se logra disminuir los  coeficientes de variacion a valores inferiores a 20%, criterio de aceptacion de  la Union Europea.</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>Conclusiones</b></font></p>     <p>Se desarrollo una metodologia multiresiduo para el analisis de  plaguicidas en la miel que se fundamenta en una doble extraccion con acetato de etilo y limpieza mediante cromatografia clasica de columna  (CCC),empleando como fase estacionaria una mezcla de silica-Florisil  (1:1). El analisis de los extractos se realizo mediante cromatografia de  gases con detectores NPD y &mu;-ECD en paralelo.</p>     <p>La optimizacion mediante el metodo Simplex permitio determinar las condiciones experimentales capaces de duplicar el desempeno  del metodo de extraccion en comparacion con las condiciones de  partida. Para este fin se requirieron 21 ensayos, dentro de los cuales seis  correspondieron a movimientos de proyeccion. El experimento S<sub>16</sub> mostro los mejores resultados respecto a especificidad, precision y  exactitud, puesto que se logro una reduccion de la cantidad de interferentes  en el analisis instrumental, aumentaron los porcentajes de recuperacion  para 9 de 30 plaguicidas y disminuyeron los coeficientes de variacion  para 25 de los 30 plaguicidas extraidos. Finalmente, despues de la optimizacion, el metodo multiresiduo permite el analisis adecuado de 27 de los  30 plaguicidas extraidos de la miel.</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>Agradecimientos</b></font></p>     <p>Expresamos nuestros agradecimientos al proyecto &quot;Seleccion  de Indicadores Fisicoquimicos Mediante Aplicacion de Nariz Electronica para la Catalogacion de Productos Apicolas&quot;  financiado por el Ministerio de Agricultura  y Desarrollo Rural.</p><hr>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>Referencias</b></font></p>     <!-- ref --><p>1. Bogdanov, S. <i>Contaminants of Bee Products</i>. Apidologie. 2006, <b>37</b>: p.1-18.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0120-2804201300010000200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>2. Balayiannis, G.,Balayiannis, P. <i>Bee Honey as an Environmental Bioindicator</i> <i>of Pesticides&#39; Occurrence in Six Agricultural Areas of  Greece</i>. Archives of Environmental Contamination and  Toxicology. 2008, <b>55</b>:  p.462-470.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0120-2804201300010000200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>3. Rial-Otero, R., Gaspar,  E. M.,Moura, I.Capelo, J. L. <i>Chromatographic- </i><i>based methods for pesticide determination in honey: An  overview</i>. Talanta. 2007, <b>71</b>:  p.503-514.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0120-2804201300010000200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>4. Union Europea.  Reglamento (CE) No 396/2005 del parlamento europeo y del consejo de 23 de  febrero de 2005 relativo a los limites maximos de residuos de  plaguicidas en alimentos y piensos de origen  vegetal y animal y que modifica la Directiva 91/414/CEE del Consejo y posteriores  modificaciones. 2005.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0120-2804201300010000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>5. Ahmed, F. E. <i>Analyses of  pesticides and their metabolites in foods and</i> <i>drinks</i>. TrAC Trends in Analytical  Chemistry. 2001, <b>20</b>: p.649-661.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0120-2804201300010000200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>6. Walters, F. H., Parker Jr, L. R.,  Morgan, S. L.Deming, S. N. <i>Sequential</i> <i>simplex optimization</i>. first ed.  Florida: CRC Press LLC, 1991&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0120-2804201300010000200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7.  Ahumada, D., Guerrero, J. A. <i>Optimizacion del  inyector de temperatura</i> <i>programada en el analisis de residuos de plaguicidas mediante el</i> <i>metodo simplex.</i>Revista  Colombiana de Quimica. 2010, <b>39</b>: p.221- 236.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0120-2804201300010000200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>8. Kuppithayanant, N.,Rayanakorn,  M.,Wongpornchain, S.,Prapamontol, T.Deming, R. <i>Enhanced sensitivity  and selectivity in the detection</i> <i>of polycyclic aromatic hydrocarbons using  sequential simplex</i> <i>optimization, the addition of an organic modifier and wavelength programming</i>. Talanta.  2003, <b>6</b>:  p.879-888.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0120-2804201300010000200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>9.  Prater, B. D.,Tuller, S. C.Wilson, L. J. <i>Simplex  optimization of protein</i> <i>crystallization conditions</i>.  Journal of crystal growth. 1999, <b>196</b>: p.674-684.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0120-2804201300010000200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>10.  Santos-Delgado, M. J.,Crespo-Corral, E.Polo-Diez, L. 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