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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[A nanocomposite material was synthesized by silver nanoparticles (NPs) in situ deposition on Fique fibers. The influence of experimental conditions such as precursor concentration, reducing agent concentration and immersion times of fibers in precursor and reducing agent solutions was evaluated in terms of nanomaterial coating, size and dispersion on the fibers surface. The nanocomposites were characterized by UV-Vis diffuse reflectance spectroscopy (DR), electron microscopy (FESEM) and X-ray diffraction (XRD). By carefully controlling experimental conditions we were able to produce a material with uniforme and complete coating of NPs on the surface of the fiber, and average sizes of 40 nm.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="pt"><p><![CDATA[Nanocompósito foi sintetizado através de deposição in situ de nanopartículas (NPs) de prata sobre as fibras de Fique. A influência dos parâmetrosexperimentais, tais como a concentração do sal metálico, a concentração do agente de redução e os tempos de imersão das fibras na solução do sal metálico e o agente de redução, foram avaliadas em termos do revestimento, tamanho e a dispersãona superfície do nanomaterial. Os nanocompósitosforam caracterizados por espectroscopia de refletância difusa no UV-Vis (RD), microscopia eletrônica (FESEM) e difração de raios X (XRD). O controle dos parâmetrosexperimentais mecionados originaram um material que exibe um revestimento uniforme e completo das NPs sobre a superfície das fibras e tamanhos médios de 40 nm.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font size="2" face="Verdana">      <p align="center"><font size="4" face="Verdana"><b>S&iacute;ntesis <i>in situ</i> de nanopart&iacute;culas de plata sobre fibras de fique</b></font></p>     <p align="center"><font size="3" face="Verdana"><b><i>In situ</i> synthesis of silver nanoparticles on fique fibers</b></font></p>    <p align="center"><font size="3" face="Verdana"><b>S&iacute;ntese <i>in situ</i> de nanopart&iacute;culas de prata em fibras de fique</b></font></p>       <p><b>Sergio   A. Ovalle<sup>1</sup>,   Cristian Blanco-Tirado<sup>1</sup>, Marianny Y.   Combariza<sup>1,2</sup></b></p>   <sup>1</sup> Universidad Industrial de Santander, Facultad de Ciencias, Escuela de Qu&iacute;mica, A.A. 678, Carrera 27 calle 9, Bucaramanga (Santander), Colombia.     <br><sup>2 </sup>Autor para correspondencia: <a href="mailto:marianny@uis.edu.co">marianny@uis.edu.co</a>     <p>Recibido: 21 de enero de 2013 &bull; Aceptado: 22 de abril de 2013</p>   <hr>     <p><b>Resumen</b></p>     <p>Se   realiz&oacute; la s&iacute;ntesis de un material nanocompuesto mediante la deposici&oacute;n<i>in</i><i> situ</i> de nanopart&iacute;culas (NPs) de plata sobre fibras de Fique. La influencia   de par&aacute;metros experimentales, como concentraci&oacute;n del precursor,   concentraci&oacute;n del agente reductor y tiempos de inmersi&oacute;n de las fibras en la   soluci&oacute;n del precursor y del agente reductor, se evalu&oacute; en t&eacute;rminos de   recubrimiento, tama&ntilde;o y dispersi&oacute;n del nanomaterial sobre la superficie. Los nanocompositos fueron   caracterizados mediante espectroscopia de reflectancia difusa UV-Vis (RD), microscop&iacute;a electr&oacute;nica (FESEM) y difracci&oacute;n de   rayos X (DRX). El control de los par&aacute;metros experimentales mencionados   permiti&oacute; obtener un material que exhibe recubrimiento uniforme y completo de NPs sobre la superficie y tama&ntilde;os promedio de NPs de 40 nm. </p>     <p><b>Palabras Clave: </b>nanopart&iacute;culas de plata, fibras de fique, s&iacute;ntesis <i>in   situ</i>, bionanocomposito.</p> <hr>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Abstract</b></p>     <p>A nanocomposite material was   synthesized by silver nanoparticles (NPs) <i>in   situ</i> deposition on Fique fibers. The influence of   experimental conditions such as precursor concentration, reducing agent   concentration and immersion times of fibers in precursor and reducing agent   solutions was evaluated in terms of nanomaterial coating, size and dispersion   on the fibers surface. The nanocomposites were   characterized by UV-Vis diffuse reflectance spectroscopy (DR), electron microscopy   (FESEM) and X-ray diffraction (XRD). By carefully controlling experimental   conditions we were able to produce a material with uniforme and complete coating of NPs on the surface of the fiber, and average sizes of   40 nm.</p>      <p><b>Keywords: </b>Silver   nanoparticles, fique fibers, <i>in situ</i> synthesis, bionanocomposite.</p> <hr>     <p><b>Resumo</b></p>     <p>Nanocomp&oacute;sito foi sintetizado atrav&eacute;s de deposi&ccedil;&atilde;o in situ de nanopart&iacute;culas (NPs) de prata sobre as   fibras de Fique. A influ&ecirc;ncia dos par&acirc;metrosexperimentais, tais como a concentra&ccedil;&atilde;o do sal met&aacute;lico, a concentra&ccedil;&atilde;o do agente de redu&ccedil;&atilde;o e os tempos de imers&atilde;o das fibras na solu&ccedil;&atilde;o do sal met&aacute;lico e o agente de redu&ccedil;&atilde;o, foram avaliadas em termos do revestimento, tamanho e a dispers&atilde;ona superf&iacute;cie do nanomaterial.   Os nanocomp&oacute;sitosforam caracterizados por espectroscopia de reflet&acirc;ncia difusa no UV-Vis (RD), microscopia eletr&ocirc;nica (FESEM) e difra&ccedil;&atilde;o de raios X (XRD). O controle dos par&acirc;metrosexperimentais mecionados originaram um material que exibe um revestimento uniforme e completo das NPs sobre a superf&iacute;cie das fibras e tamanhos m&eacute;dios de 40 nm.</p>     <p><b>Palavras-chave: </b>nanopart&iacute;culas de prata, fibras de fique, s&iacute;ntese <i>in situ</i>, bionanocomposito.</p>  <hr>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>        <p>El fique pertenece, junto con el sisal y el henequ&eacute;n, al grupo de fibras    resistentes o &#39;duras&#39;. Las fibras de fique se extraen de hojas de plantas de    la especie Frucraea spp (<a href="#(fig1)">Figura 1a</a>). Este grupo de plantas tiene su origen    en Am&eacute;rica Tropical, en especial en la regi&oacute;n andina de Colombia y    Venezuela, de donde se extendieron hacia la costa Oriental del Brasil y  a las Antillas. Las fibras de fique se consideran como las fibras naturales colombianas por excelencia, ya que se han utilizado tradicionalmente  para elaborar sogas, textiles y empaques. Los departamentos con mayor  producci&oacute;n en el pa&iacute;s son Cauca, Nari&ntilde;o, Santander, Antioquia y Boyac&aacute;;  en estas regiones se cultivan varias especies, conocidas como tunosa  com&uacute;n, u&ntilde;a de &aacute;guila y bord&oacute;n de oro (1).</p>       <p align="center"><a name="(fig1)"><img src="img/revistas/rcq/v42n1/v42n1a04fig1.jpg"></a></p>      <p>En Colombia, el empleo de fibras de fique disminuye constantemente    a favor del uso de fibras sint&eacute;ticas que son m&aacute;s econ&oacute;micas; sin    embargo, en la actualidad nuevas pol&iacute;ticas ambientales a nivel mundial  promueven el uso de materiales biodegradables que reduzcan la utilizaci&oacute;n de subproductos del petr&oacute;leo como los pol&iacute;meros sint&eacute;ticos. En  consecuencia, las fibras naturales son tema de actualidad y gran inter&eacute;s  a todo nivel; industrialmente son atractivas debido a su bajo impacto  ambiental, su biodegradabilidad y bajo costo, y sus interesantes propiedades  aislantes (t&eacute;rmicas y ac&uacute;sticas) y mec&aacute;nicas (flexibilidad y resistencia  a la tensi&oacute;n) (2).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Los <i>compositos</i> son materiales hechos de dos o m&aacute;s elementos, en    los que uno est&aacute; en mayor proporci&oacute;n que los dem&aacute;s. En la b&uacute;squeda    de soluciones para los problemas ambientales y de sostenibilidad, se    han realizado grandes avances en el campo de la llamada &#39;tecnolog&iacute;a    verde&#39; que han resultado en el desarrollo de materiales h&iacute;bridos de alto    rendimiento hechos a partir de fuentes naturales; un ejemplo son los    biocompositos. En &eacute;stos, una de las fases constituyentes es un pol&iacute;mero    natural, por lo que el uso de fibras naturales en estos materiales se ha    incrementado debido a su relativo bajo costo, su habilidad para ser reciclados    y el hecho de que pueden competir muy bien, en t&eacute;rminos de    funcionalidad, con las fibras sint&eacute;ticas. Dentro del grupo de los biocompositos    se destacan los <i>nanocompositos</i>, en los que una de las fases tiene    dimensiones en el rango nanom&eacute;trico. Estos materiales se destacan por    sus excelentes propiedades t&eacute;rmicas, mec&aacute;nicas y aislantes, a&uacute;n con un    contenido muy bajo de la fase nano. La uni&oacute;n de nano y biocompositos    lleva el desarrollo de un nuevo material llamado <i>bionanocomposito</i>, que    se caracteriza por ser amigable con el medio ambiente y poseer &oacute;ptimas  propiedades t&eacute;rmicas, mec&aacute;nicas y aislantes (3-5).</p>      <p>Las nanopart&iacute;culas (NPs), que corresponden a la fase de rango    nanom&eacute;trico de los bionanocompositos, se definen como clusters de    &aacute;tomos en un rango de tama&ntilde;o entre 1 y 100 nm. Estos materiales son    de gran inter&eacute;s debido a sus propiedades &uacute;nicas, cuando se comparan    con el bulk de coloraci&oacute;n, reactividad qu&iacute;mica, absorci&oacute;n de radiaci&oacute;n,    elevada relaci&oacute;n &aacute;rea/volumen y en algunas &#150;como las nanopart&iacute;culas    de plata (Ag NPs)&#150;, comprobada actividad antimicrobial. La mayor&iacute;a    de reportes en la literatura referencian la s&iacute;ntesis de nanopart&iacute;culas en    fase acuosa, que requiere emplear agentes estabilizantes y encapsulantes  para prevenir la agregaci&oacute;n (6-9).</p>      <p>Las fibras naturales de celulosa son atractivas como matrices para    la s&iacute;ntesis <i>in situ</i> de nanopart&iacute;culas por dos razones: 1) la superficie de    las fibras posee una porosidad innata que facilita la adherencia o deposici&oacute;n    de las nanopart&iacute;culas, y 2) su estructura nanoporosa, con alta    densidad de ox&iacute;geno, funciona como un nanoreactor para su formaci&oacute;n    y estabilizaci&oacute;n. La s&iacute;ntesis <i>in situ</i> permite obtener una fibra con recubrimiento    uniforme en la que las nanopart&iacute;culas se encuentran ancladas    y estabilizadas firmemente con la matriz celul&oacute;sica sin necesidad de recurrir  a &#39;monocapas&#39; que eviten la agregaci&oacute;n del nanomaterial (10-13).</p>      <p>La utilizaci&oacute;n de las fibras duras para la s&iacute;ntesis de bionanocompositos    tiene obvias ventajas que dependen del uso final que se quiera dar al    material. La s&iacute;ntesis de nuevos materiales funcionales que combinen las    ventajas de una matriz celul&oacute;sica polim&eacute;rica biodegradable, econ&oacute;mica    y con alta resistencia mec&aacute;nica, con la actividad de las Ag NPs es un &aacute;rea    de investigaci&oacute;n muy activa en la actualidad. Aunque la s&iacute;ntesis in situ    de Ag NPs sobre fibras naturales blandas como el algod&oacute;n, la seda y la    lana es un proceso relativamente sencillo, previamente reportado en la    literatura (14-16), existen muy pocos reportes sobre esta s&iacute;ntesis utilizando    como matriz fibras celul&oacute;sicas duras como el fique. Los bionanocompositos    a base de fibras duras pueden perfectamente ser usados bajo  condiciones extremas de temperatura, humedad y presi&oacute;n, sin que se afecte su funcionalidad, a diferencia de los bionanocompositos hechos  de fibras blandas, cuyos usos se limitan a la industria textil debido a su  resistencia mec&aacute;nica y qu&iacute;mica inferior (12, 13).</p>      <p><b>Materiales y m&eacute;todos</b></p>      <p><b>Reactivos</b></p>      <p>El nitrato de plata (AgNO<sub>3</sub>) con grado anal&iacute;tico se adquiri&oacute; de Carlo    Erba<sup>&reg;</sup> (Milan, Italia); el borohidruro de sodio (NaBH<sub>4</sub>) con grado    anal&iacute;tico provino de Merck<sup>&reg;</sup> (Darmstad, Alemania). Los reactivos se usaron    sin ning&uacute;n tratamiento, tal y como fueron recibidos del proveedor.    Para la preparaci&oacute;n de las soluciones siempre se us&oacute; agua desionizada  con una resistividad el&eacute;ctrica&lt;18.2 M&#8486;.</p>      <p><b>Pretratamiento</b><b> de las fibras de fique</b></p>      <p>Las fibras de fique fueron suministradas por la Asociaci&oacute;n de Fiqueros    de Santander (Asedefique). Las fibras crudas, tal y como se recibieron    del proveedor, se limpiaron y cepillaron con un cepillo met&aacute;lico para    eliminar restos de material vegetal y otras impurezas. A continuaci&oacute;n,    se sometieron a limpieza asistida por ultrasonido utilizando un ba&ntilde;o    ultras&oacute;nico Bransonics<sup>&reg;</sup> (40 kHz, 130 W) dentro del cual se sumergieron    en agua durante 120 minutos a 40 &deg;C. Finalmente se secaron en un  horno a 60 &deg;C durante la noche.</p>      <p><b>S&iacute;ntesis de nanopart&iacute;culas de plata</b></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El procedimiento de s&iacute;ntesis consisti&oacute; en disponer las fibras de fique    limpias en soluciones de la sal precursora (AgNO<sub>3</sub>) durante tiempos    variables y bajo la influencia de ondas de ultrasonido. A continuaci&oacute;n,    las fibras se lavaron abundantemente con agua desionizada y se dispusieron    en una soluci&oacute;n acuosa de borohidruro de sodio (NaBH<sub>4</sub>) bajo    concentraci&oacute;n y tiempo variables y en condiciones ultras&oacute;nicas. Finalmente  se secaron a 60 &deg;C durante la noche.</p>      <p>Las variaciones de los par&aacute;metros experimentales durante la s&iacute;ntesis    se resumen en la <a href="#(tab1)">Tabla 1</a>. Se inici&oacute; con la variaci&oacute;n de los tiempos de inmersi&oacute;n    en las soluciones precursora y reductora, por lo que las condiciones    &oacute;ptimas obtenidas de estos procedimientos fueron las usadas en    los dem&aacute;s experimentos. Al final, se presentan los resultados obtenidos    al realizar la s&iacute;ntesis de las NPs de Ag usando las condiciones m&aacute;s favorables  obtenidas en cada paso.</p>       <p align="center"><a name="(tab1)"><img src="img/revistas/rcq/v42n1/v42n1a04tab1.jpg"></a></p>      <p><b>Caracterizaci&oacute;n del bionanocomposito sintetizado</b></p>      <p><b>Espectroscopia de Reflectancia Difusa - ultravioleta-visible</b></p>      <p>Los bionanocompositos de fibras de fique y Ag NPs se caracterizaron    mediante espectroscopia de reflectancia difusa - ultravioleta-visible (RD  UV-Vis) utilizando un espectrofot&oacute;metro UV-Vis Shimadzu<sup>&reg;</sup> 2401 PC, equipado con l&aacute;mpara de deuterio y hal&oacute;geno. Los espectros de reflectancia  (%R) se adquirieron realizando un barrido espectral desde 200 a 800  nm con una velocidad de escaneo media y <i>slit</i> de 5.0 nm. Para todas las  mediciones se utilizaron fibras de fique limpias como blanco. El software  Origin<sup>&reg;</sup> (Northampton, MA, EUA) se utiliz&oacute; para establecer los par&aacute;metros  caracter&iacute;sticos de las bandas de reflectancia en el espectro UV-Vis:  porcentaje de reflectancia (%R), longitud de onda de m&iacute;nima de reflectancia,  ancho de la banda a la altura media y corrimiento del m&iacute;nimo.</p>      <p><b>Microscop&iacute;a electr&oacute;nica de barrido de emisi&oacute;n de campo</b></p>      <p>El an&aacute;lisis de las fibras limpias se realiz&oacute; con un microscopio electr&oacute;nico   de barrido de emisi&oacute;n de campo (FESEM) marca Quanta<sup>&reg;</sup> FEG 650 FEI    a 10 kV dotado con un detector de campo amplio (Large Field Detector,    LFD). El an&aacute;lisis elemental, a 10 kV, se realiz&oacute; con un aditamento    de espectroscopia de rayos X por energ&iacute;a dispersiva (EDX). El an&aacute;lisis    de los bionanocompositos se hizo en un equipo LEO 1550 Fesem a 5 kV,    con un detector de lente. El an&aacute;lisis elemental, a 20 kV, se realiz&oacute; con un  aditamento de espectroscopia de rayos X por energ&iacute;a dispersiva (EDX).</p>       <p><b>Difracci&oacute;n   de Rayos X</b></p>     <p>El analisis de las muestras se realizo en un difractometro de rayos-X    marca BRUKER<sup>&reg;</sup> modelo D8 Discover con Geometria DaVinci usando    radiacion Cu-K&alpha; (&lambda; = 1.5406 &Aring;) a 40 kV y 30 mA. Las muestras fueron    cortadas y montadas en un portamuestra de polimetilmetacrilato  (PMMA) mediante la tecnica de llenado frontal.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="3" face="Verdana"><b>Resultados y discusi&oacute;n</b></font></p>      <p><b>Pretratamiento</b><b> de las fibras de fique</b></p>     <p>En t&eacute;rminos generales el proceso de beneficio de la planta de fique   (<a href="#(fig1)">Figura 1a</a>) est&aacute; conformado por las siguientes actividades: corte, desespinado   y desfibrado de las hojas, seguido por el lavado, secado, peinado   y empacado de las fibras. El material resultante de este proceso se   considera como fibra cruda con alto contenido de impurezas, como pigmentos   vegetales y residuos s&oacute;lidos org&aacute;nicos e inorg&aacute;nicos que posteriormente   deben eliminarse mediante procesos de refinaci&oacute;n de la fibra,   dependiendo de su uso final. En nuestro caso, las fibras crudas (<a href="#(fig1)">Figura 1b</a>) se sometieron inicialmente a un cepillado manual para eliminar   impurezas, seguido por una limpieza asistida por radiaci&oacute;n ultras&oacute;nica   para eliminar el carbonato de calcio y la lignina. Este proceso permite   obtener una fibra limpia con una coloraci&oacute;n un poco m&aacute;s clara que la   de las fibras crudas (<a href="#(fig1)">Figura 1c</a>). En la <a href="#(fig1)">Figura 1d</a> se observa, adem&aacute;s,   una micrograf&iacute;a SEM, en la que se aprecia la morfolog&iacute;a superficial de   la fibra de fique. Las fibras de fique son estructuras complejas compuestas por microfibras paralelas unidas por lignina y hemicelulosa (17,18). Adicionalmente dentro de su estructura presentan microfibras helicoidales, dispuestas a lo largo de la fibra principal, responsables de las excelentes propiedades mec&aacute;nicas de la fibra.</p>     <p>La eliminaci&oacute;n del carbonato de calcio, luego de la limpieza mediante   irradiaci&oacute;n ultras&oacute;nica, pudo comprobarse en los espectros de   EDX mostrados en las <a href="#(fig1)">Figuras 1e y 1f</a>, que corresponden a las fibras   antes y despu&eacute;s de la limpieza, respectivamente. En el espectro de la   <a href="#(fig1)">Figura 1e</a> se observa la presencia de se&ntilde;ales relativas a la presencia de   carbono y ox&iacute;geno en la celulosa, junto con la se&ntilde;al del calcio. Luego de   la limpieza (<a href="#(fig1)">Figura 1f</a>), se elimina la se&ntilde;al del calcio. Adicionalmente   aparece una se&ntilde;al con muy baja intensidad de aluminio, posiblemente debida a la superficie sobre la que se secaron las fibras.</p>     <p><b>S&iacute;ntesis de nanopart&iacute;culas de plata</b></p>     <p>La luz interact&uacute;a con las nanopart&iacute;culas de metales nobles causando   que los electrones de la banda de conducci&oacute;n oscilen a frecuencias espec&iacute;ficas,   como respuesta al campo magn&eacute;tico alternante, lo cual resulta   en colores brillantes y llamativos. Esta propiedad, conocida como LSPR   (<i>Localized Surface Plasmon Resonance</i>), depende significativamente   de la forma, tama&ntilde;o, composici&oacute;n, entorno y espacio entre part&iacute;culas.   Aunque se pueden obtener espectros UV-Vis para todos los metales,   s&oacute;lo los metales nobles (plata, oro, platino, paladio, cobre) presentan   resonancia plasm&oacute;nica superficial localizada en la regi&oacute;n visible, lo que   les confiere colores intensos caracter&iacute;sticos. Cuando las NPs no son esf&eacute;ricas   (cilindros, prismas, discos, etc.) existen dos bandas de resonancia   plasm&oacute;nica, que se relacionan con los ejes transversal y longitudinal   de las mismas y generan diferentes coloraciones como verde, azul o rojo   (19). Cuando se realiza s&iacute;ntesis en soluci&oacute;n de NPs es relativamente   sencillo modificar su geometr&iacute;a, por lo que pueden conseguirse gran   variedad de colores en fase acuosa. Sin embargo, esto no ocurre al depositar   las NPs sobre soportes s&oacute;lidos, como en el caso de la s&iacute;ntesis <i>in   situ</i> usando como matriz fibras de fique. Consecuentemente, en todos   nuestros experimentos la s&iacute;ntesis de NPs de plata sobre las fibras de   fique siempre estuvo caracterizada por la aparici&oacute;n de una coloraci&oacute;n   dorada en la fibra, t&iacute;pica de las presencia de Ag NPs esf&eacute;ricas (10), tal como se observa en la <a href="#(fig2)">Figura 2a</a>.</p>     <p align="center"><a name="(fig2)"><img src="img/revistas/rcq/v42n1/v42n1a04fig2.jpg"></a></p>     <p>Existen ventajas inherentes a la estructura de la celulosa y sus   propiedades fisicoqu&iacute;micas que la hacen una matriz adecuada para la   deposici&oacute;n in situ de nanomateriales. La celulosa posee una carga parcial   negativa debido a su alta densidad de ox&iacute;geno que facilita la interacci&oacute;n   electrost&aacute;tica con iones de metales de transici&oacute;n electropositivos   como la plata. Esta interacci&oacute;n ocurre en la etapa de inmersi&oacute;n de las   fibras en la soluci&oacute;n del precursor durante el proceso de s&iacute;ntesis in situ.   Una vez depositados los iones Ag<sup>+</sup> sobre la superficie de la fibra se procede   a realizar su reducci&oacute;n con NaBH<sub>4</sub>, momento en el que inicia la formaci&oacute;n de las Ag NPs</p>     <p>La formaci&oacute;n de NPs tiene lugar en tres pasos fundamentales:   nucleaci&oacute;n, crecimiento y estabilizaci&oacute;n. La nucleaci&oacute;n inicia una vez   se agrega el NaBH<sub>4</sub> que act&uacute;a como agente reductor para convertir los   iones de plata, unidos electrost&aacute;ticamente a la superficie de las fibras   de fique, en plata met&aacute;lica. Los &aacute;tomos de plata neutros comienzan a   agregarse y la nanoestructura crece sobre la superficie donde inicialmente   se formaron los n&uacute;cleos hasta alcanzar un volumen estable que   depende de las condiciones de s&iacute;ntesis. Finalmente, la estructura porosa   de la celulosa estabiliza las NPs de plata mediante un efecto similar al   denominado &#39;efecto &eacute;ter corona&#39;, gracias a la alta densidad de &aacute;tomos de   ox&iacute;geno que rodean la nanopart&iacute;cula. La reacci&oacute;n general se observa en   la <a href="#(fig2)">Figura 2b</a> (11, 20-22). Esta estabilizaci&oacute;n ha sido observada y reportada   previamente por nuestro grupo, en biocompositos de nanopart&iacute;culas de &oacute;xidos de metales de transici&oacute;n y fibras de fique (13).</p>     <p>La espectroscopia de reflectancia difusa UV-Vis se utiliz&oacute; para   determinar las condiciones &oacute;ptimas de s&iacute;ntesis. Las Ag NPs son de   forma esf&eacute;rica, tanto en soluci&oacute;n como soportadas, y presentan bandas   de absorci&oacute;n caracter&iacute;sticas en la regi&oacute;n entre 400 y 480 nm. Estas   se&ntilde;ales se deben a fen&oacute;menos de resonancia plasm&oacute;nica superficial   que tienen su origen en la excitaci&oacute;n colectiva de electrones libres en   las NPs. Durante la s&iacute;ntesis de NPs sobre la superficie de las fibras   de fique para la formaci&oacute;n de bionanocompositos, se busca que las   NPs sean del menor tama&ntilde;o posible, que la distribuci&oacute;n de tama&ntilde;os   sea uniforme y que las NPs se encuentren bien distribuidas sobre la   superficie de las fibras sin formar agregados. Los tama&ntilde;os peque&ntilde;os   son deseables debido a que en las NPs de menor tama&ntilde;o hay mayor   cantidad de &aacute;tomos en su superficie, lo que aumenta la reactividad del   material. Por otra parte, la mayor cantidad de NPs sobre la superficie   de las fibras incrementa tambi&eacute;n el &aacute;rea superficial disponible para reacciones   o para interacciones de quimisorci&oacute;n espec&iacute;ficas. A partir de   los an&aacute;lisis de reflectancia difusa (RD) es posible obtener informaci&oacute;n   cualitativa sobre el tama&ntilde;o, distribuci&oacute;n y cantidad del nanomaterial   sobre la superficie de la fibra. Por ejemplo, es posible correlacionar   el tama&ntilde;o de las NPs con la longitud de onda de m&iacute;nima reflectancia   (m&aacute;xima absorci&oacute;n) en el espectro de RD, pues a menor tama&ntilde;o de   NPs hay un corrimiento del m&iacute;nimo de reflectancia a menores longitudes   de onda (23). Por otro lado, el porcentaje de reflectancia difusa   se relaciona con la cantidad de NPs presentes en la superficie de la   fibra, ya que un menor porcentaje de reflectancia indica una mayor cantidad de NPs sobre la superficie de las fibras. Adicionalmente, se puede inferir una idea aproximada de la distribuci&oacute;n de tama&ntilde;os del nanomaterial a partir del ancho de la banda de reflectancia: a menor ancho del pico a la altura media, se esperan tama&ntilde;os uniformes en las NPs depositadas (24-26).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En la <a href="#(tab2)">Tabla 2</a> se presentan los resultados obtenidos para determinar   el tiempo &oacute;ptimo de permanencia de las fibras de fique en la soluci&oacute;n   met&aacute;lica y en la soluci&oacute;n reductora bajo condiciones ultras&oacute;nicas. Debido   a que no hubo variaciones significativas en la longitud de onda de   m&aacute;xima absorci&oacute;n (&lambda;<sub>max</sub>), se tom&oacute; en cuenta &uacute;nicamente el porcentaje   de reflectancia (%R). As&iacute;, puede notarse que el menor porcentaje de   reflectancia en todos los casos se observa al mantener las fibras en la   soluci&oacute;n met&aacute;lica durante 30 minutos (17.00, 16.16 y 16.78%). Al tomar   en cuenta la variaci&oacute;n del tiempo de inmersi&oacute;n en la soluci&oacute;n reductora   en la <a href="#(tab2)">Tabla 2</a>, se observa que el menor porcentaje de reflectancia   se dio al disponer las fibras en la soluci&oacute;n reductora durante 10 minutos   (18.37, 18.01 y 16.16%), con lo que se concluy&oacute; que estos eran los   tiempos adecuados de s&iacute;ntesis. En cuanto al ancho del pico a la altura   media (FWHM), se observa que al dejar las fibras durante 10 minutos   en la soluci&oacute;n reductora, la distribuci&oacute;n de tama&ntilde;os del nanomaterial   es menor comparada a los dem&aacute;s tiempos de acuerdo con los valores de   FWHM registrados para estas condiciones (143.00, 146.74, 153.43 nm),   lo que apoya la conclusi&oacute;n de que 10 minutos es el mejor tiempo para realizar la reducci&oacute;n.</p>     <p align="center"><a name="(tab2)"><img src="img/revistas/rcq/v42n1/v42n1a04tab2.jpg"></a></p>     <p>Una   vez seleccionados los tiempos de inmersi&oacute;n en la soluci&oacute;n precursora y de   reducci&oacute;n en la soluci&oacute;n de NaBH<sub>4</sub>, se determin&oacute; el efecto de la   concentraci&oacute;n del precursor sobre las caracter&iacute;sticas del recubrimiento   de Ag NPs sobre la superficie de las fibras de   fique.  La <a href="#(fig3)">Figura 3a</a>, muestra que al variar   la concentraci&oacute;n de la soluci&oacute;n de nitrato de plata se presentaun cambio en la coloraci&oacute;n de las fibras de fique modificadas: a mayor   concentraci&oacute;n de precursor se observa una coloraci&oacute;n m&aacute;s oscura en la   fibra. En este procedimiento la concentraci&oacute;n de NaBH<sub>4</sub> se mantuvo en   5 mM y se usaron los tiempos de impregnaci&oacute;n determinados   en la secci&oacute;n inicial, 30 minutos en la soluci&oacute;n de nitrato de plata y 10   minutos en la soluci&oacute;n reductora, todo bajo condiciones ultras&oacute;nicas.El an&aacute;lisis RD (<a href="#(fig3)">Figura 3b</a>) permite observar que cuando la s&iacute;ntesis <i>in situ</i> se realiza utilizando una  concentraci&oacute;n del precursor de 3 mM, se registra un porcentaje de reflectancia bajo, un menor ancho de banda y menor longitud de onda de m&aacute;xima   absorci&oacute;n. Estas caracer&iacute;sticas del espectro   de reflectancia indican la formaci&oacute;n de gran cantidad   de NPs muy peque&ntilde;as, bien dispersas y de   tama&ntilde;os uniformes. Se observa un comportamiento similar en las curvas de reflectancia en las concentraciones de 1 a 10 mM, pero a partir de 15 mM la   curva empieza a comportarse diferente, indicando que el material depositado est&aacute;   en forma de agregados o cristales microm&eacute;tricos. </p>     <p align="center"><a name="(fig3)"><img src="img/revistas/rcq/v42n1/v42n1a04fig3.jpg"></a></p>     <p>La   tendencia general es que a mayor concentraci&oacute;n del precursor, menor porcentaje   de reflectancia (mayor cantidad de NPs), pero, al tomar en cuenta las longitudes de onda de   m&aacute;xima absorci&oacute;n, se observ&oacute; que eran 438.5, 437, 437.5 y 441.5 nm para las concentraciones de 1, 3, 5 y 10 mM respectivamente. As&iacute;, puede observarse que al   utilizar la concentraci&oacute;n de 3 mM no s&oacute;lo se   est&aacute; formando una cantidad similar de NPs a la   obtenida con las concentraciones de 5 y 10 mM, sino   que adem&aacute;s se est&aacute;n formando nanopart&iacute;culas de menor tama&ntilde;o.</p> El siguiente par&aacute;metro optimizado fue la concentraci&oacute;n del agente reductor bajo condiciones ultras&oacute;nicas, manteniendo la concentraci&oacute;n del AgNO<sub>3</sub> en 5 mM y los tiempos de inmersi&oacute;n en las soluciones precursora y de NaBH<sub>4</sub> en 30 y 10 minutos, respectivamente. En este caso, la coloraci&oacute;n de las fibras no cambi&oacute; significativamente. Es posible concluir, a partir de los an&aacute;lisis de RD (<a href="#(fig3)">Figura 3c</a>), que la concentracion &oacute;ptima del agente reductor es 20 mM. Si bien al aumentar la concentraci&oacute;n del agente reductor disminuye el porcentaje de reflectancia, tambi&eacute;n es evidente el corrimiento en el m&aacute;ximo de absorbancia (437.5, 439.5, 436 y 443.5 nm para las concentraciones de 5, 10, 20 y 50 mM respectivamente), lo que indica que a la concentraci&oacute;n de 20 mM de NaBH<sub>4</sub> se estaban generando las NPs m&aacute;s peque&ntilde;as. El ancho del pico a la altura media no fue un factor muy influyente en este caso pues, como se observa, todas las curvas presentaron un valor muy similar.     <p>Teniendo   en cuenta las condiciones de s&iacute;ntesis descritas anteriormente   (concentraci&oacute;n de AgNO<sub>3</sub> de 3 mM,   concentraci&oacute;n de NaBH<sub>4</sub> de 20 mM, 30   minutos de inmersi&oacute;n en AgNO<sub>3</sub> y 10 minutos de inmersi&oacute;n en NaBH<sub>4</sub>,   todo bajo condiciones ultras&oacute;nicas), se realiz&oacute; la s&iacute;ntesis del bionanocomposito y se procedi&oacute; a su caracterizaci&oacute;n por RD,   FESEM, y DRX. Para la muestra sintetizada bajo condiciones &oacute;ptimas se determin&oacute;,   en el espectro de RD (no mostrado aqu&iacute;), una longitud de onda de   m&aacute;xima absorci&oacute;n de 436.5 nm, con R% de 13.35   y FWHM de 151 nm.  </p>      <p>Por su parte, la distribuci&oacute;n y caracter&iacute;sticas morfol&oacute;gicas del recubrimiento    de Ag NPs sobre fibras de fique, en condiciones &oacute;ptimas de    s&iacute;ntesis, fueron estudiadas mediante microscop&iacute;a Fesem y an&aacute;lisis EDX,    como se observa en la <a href="#(fig4)">Figura 4</a>. El an&aacute;lisis Fesem permite establecer    que, bajo las condiciones de s&iacute;ntesis seleccionadas, es posible obtener    una distribuci&oacute;n uniforme de Ag NPs sobre la superficie de la fibra de    fique sin el desarrollo de aglomerados (<a href="#(fig4)">Figura 4a</a>). Adicionalmente, las    NPs depositadas sobre la fibra tienen geometr&iacute;a esf&eacute;rica con di&aacute;metros    alrededor de 40 nm. En la <a href="#(fig4)">Figura 4b</a> se reporta el espectro EDX del    biocomposito en el cual se observan las se&ntilde;ales de carbono y &oacute;xigeno,    propias de la matriz celul&oacute;sica de las fibras de fique, junto con se&ntilde;ales    de plata debidas a la presencia del nanometerial depositado sobre la superficie    de las fibras.</p>                <p align="center"><a name="(fig4)"><img src="img/revistas/rcq/v42n1/v42n1a04fig4.jpg"></a></p>      <p>Finalmente, los an&aacute;lisis DRX de las fibras limpias y las fibras modificadas   con nanopart&iacute;culas de plata usando condiciones &oacute;ptimas se   muestran en la <a href="#(fig5)">Figura 5</a>. En el difractograma de las fibras limpias se   observan se&ntilde;ales caracter&iacute;sticas de la estructura cristalina de la celulosa   tipo I, t&iacute;pica de las fibras celul&oacute;sicas vegetales, en 2&theta; = 22.26 (2 0 0) y   34.39 (0 0 4). Por otra parte, en el difractograma del bionanocomposito   se observan se&ntilde;ales correspondientes a la plata en una estructura cristalina   c&uacute;bica centrada en las caras (27-29) en 2&theta; = 38.08 (1 1 1) y 47.30   (2 0 0). Adicionalmente, tambi&eacute;n se observan las se&ntilde;ales de la celulosa   tipo I, indicando que la modificaci&oacute;n superficial con Ag NPs no alter&oacute;   la estructura de la matriz celul&oacute;sica.</p>            <p align="center"><a name="(fig5)"><img src="img/revistas/rcq/v42n1/v42n1a04fig5.jpg"></a></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="3" face="Verdana"><b>Conclusiones</b></font></p>      <p>Las fibras de fique funcionan como una matriz efectiva para la s&iacute;ntesis   in situ de nanopart&iacute;culas de plata debido a la alta densidad electr&oacute;nica   de la celulosa; esta cualidad permite la adsorci&oacute;n de cationes de plata y   su estabilizaci&oacute;n en la superficie de la fibra una vez ocurre el proceso   de reducci&oacute;n. Aunque el aumento en la concentraci&oacute;n de la sal precursora   afecta directamente la cantidad de material depositado sobre las   fibras, tambi&eacute;n influye positivamente en su tama&ntilde;o y distribuci&oacute;n. El   incremento en la concentraci&oacute;n del agente reductor durante la s&iacute;ntesis   in situ de Ag NPs resulta en un aumento de la absorci&oacute;n de radiaci&oacute;nelectromagn&eacute;tica (mayor cantidad de material depositado sobre las fibras)   con un corrimiento a mayores longitudes de onda (NPs de mayor   tama&ntilde;o). Los an&aacute;lisis efectuados mediante Fesem y DRX permitieron   corroborar la presencia de nanopart&iacute;culas de plata sobre la superficie   de las fibras de fique.</p>     <p>El bionanocomposito desarrollado a partir de fibras de fique y NPs   de plata hace posible su uso potencial en la elaboraci&oacute;n de material filtrante   con propiedades antibacteriales, como ya se ha comprobado en   estudios hechos en nuestro grupo de investigaci&oacute;n, que ser&aacute; tema de   una pr&oacute;xima publicaci&oacute;n.</p><hr>      <p><font size="3" face="Verdana"><b>Referencias</b></font></p>       <!-- ref --><p>1. Gu&iacute;a   ambiental del subsector fiquero. Ministerio de   Ambiente, Vivienda y Desarrollo Territorial. Ministerio de Agricultura y   Desarrollo Rural. Departamento Nacional de Planeaci&oacute;n. Segunda Edici&oacute;n,   Bogot&aacute; D.C.2006.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0120-2804201300010000400001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>2. Mohanty, A. K.; Misra, M.; Drzal, L. T.; Selke, S. E.;   Harte, B. R.; Hinrichsen, G. Natural Fibers,   Biopolymers and Biocomposites: An Introduction.   Natural Fibers, Biopolymers and Biocomposites. United   States of America, Taylor &amp; Francis Group, CRC Press. 2005.1-37.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0120-2804201300010000400002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>3. Oksman, K.; Mathew, A. P.; Bondeson, D.; Kvien, I. Manufacturing process of cellulose whiskers/polylactic acid nanocomposites. Composites   Science and Technology. 2006.<b>66</b>:   2776-2784.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0120-2804201300010000400003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>4. Faruk, O.; Bledzki, A. K.; Fink, H. P.; Sain, M. Biocomposites reinforced   with natural fibers: 2000-2010. Progress in Polymer Science.2012.<b>37</b>: 1552- 1596.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0120-2804201300010000400004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>5. John, M. J.; Thomas, S. Biofibres and biocomposites. Carbohydrate Polymers. 2008.<b>71</b>:   343-364.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0120-2804201300010000400005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>6. Mart&iacute;nez-Casta&ntilde;&oacute;n,   G. A.; Ni&ntilde;o-Mart&iacute;nez, N.; Mart&iacute;nez-Gutierrez,   F.; Mart&iacute;nez-Mendoza, J. R.;  Ruiz, Facundo. Synthesis   and antibacterial activity of silver nanoparticles with different sizes.   Journal of Nanoparticle Research. 2008.<b>10</b>:   1343-1348.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0120-2804201300010000400006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>7. Ruparelia, J. P.; Chatterjee, A. K.; Duttagupta, S. P.; Mukherji, S.   Strain specificity in antimicrobial activity of silver and copper   nanoparticles. Acta Biomaterialia.   2008.<b>4</b>: 707-716.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0120-2804201300010000400007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>8. Fern&aacute;ndez, A.; Picouet, P.; Lloret, E. Cellulose-silver nanoparticle hybrid materials   to control spoilage-related microflora in absorbent   pads located in trays of fresh-cut melon. International Journal of Food   Microbiology. 2010.<b>142</b>: 222-228.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0120-2804201300010000400008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>9. Vainio, U.; Pirkkalainen, K.; Kisko,   K.; Goerigk, G.; Kotelnikova,   N. E.; Serimaa, R. Copper and copper oxide   nanoparticles in a cellulose support studied using anomalous small-angle X-ray   scattering. The European Physical Journal D. 2007.<b>42</b>: 93-101.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0120-2804201300010000400009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>10.  Tan, Y.; Dai, X.; Li, Y.; Zhu, D. Preparation of gold,   platinum, palladium and silver nanoparticles by the reduction of their salts   with a weak reductant-potassium bitartrate.   Journal of Materials Chemistry. 2003.<b>13</b>:   1069-1075.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0120-2804201300010000400010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>11.  Patakfalvi, R.; Oszk&oacute;, A.; D&eacute;k&aacute;ny, I. Synthesis and characterization of silver   nanoparticle/kaolinite composites. Colloids and Surfaces A: Physicochemical and   Engineering Aspects. 2003.<b>220</b>:   45-54.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0120-2804201300010000400011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>12.  Castellanos, L. J.; Blanco, C.; Hinestroza,   J. P.; Combariza, M. Y. In-situ synthesis of gold   nanoparticles using fique natural fibers as template.   Cellulose. 2012.<b>19</b>: 1933-1943.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0120-2804201300010000400012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>13.  Chac&oacute;n, M. L.; Blanco, C. Combariza,   M. Y. Green biocomposite of nanostructured MnO<sub>2</sub> and Fique fibers for efficient dye degradation. Green   Chemistry, <i>In Press.Green</i> Chem., DOI:10.1039/C3GC40911B.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0120-2804201300010000400013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>14.  Chen, C. Y.; Chiang, C. L. Preparation of cotton   fibers with antibacterial silver nanoparticles. Materials Letters. 2008.<b>62</b>: 3607-3609.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0120-2804201300010000400014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>15.  Abbasi, A. R.; Morsali, A.   Formation of silver iodide nanoparticles on silk fiber by means of ultrasonic   irradiation. Ultrasonics Sonochemistry.   2010.<b>17</b>: 704-710.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0120-2804201300010000400015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>16.  Ki, H. Y.; Kim, J. H.; Kwon, S. C.; Jeong, S. H. A study on multifunctional wool textiles   treated with nano-sized silver. Journal of Materials   Science. 2007.<b>42</b>: 8020-8024.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0120-2804201300010000400016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>17.  Lerouxel, O.; Cavalier, D. M.; Liepman,   A. H.; Keegstra, K. Biosynthesis of plant cell wall   polysaccharides &#151; a complex process. Current Opinion in Plant Biology. 2006.<b>9</b>:621-630.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0120-2804201300010000400017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>18.  Delmer, D. P.; Amor, Y. Cellulose Biosynthesis. The Plant   Cell. 1995.<b>7</b>: 987-1000,    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0120-2804201300010000400018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>19.  Tang, B.; Wang, J.; Xu, S.;   Afrin, T.; Xu, W.; Sunb,   L.; Wangb, X. Application of anisotropic silver   nanoparticles: Multifunctionalization of wool fabric.   Journal of Colloid and Interface Science. 2011.<b>356</b>: 513-518.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0120-2804201300010000400019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>20.  Bjorge, D.; Daels, N.; De Vrieze, S.; Dejans, P.; Van Camp,   T.; Audenaert, W.; Hogie,   J.; Westbroek, P.; De Clerck,   K.; Van Hulle, S. W. H. Performance assessment of electrospun nanofibers for filter   applications. Desalination.   2009.<b>249</b>: 942-948.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0120-2804201300010000400020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>21.  Travan,   A.; Pelillo, C.; Donati, I.; Marsich,   E.; Benincasa, M.; Scarpa,   T.; Semeraro, S.; Turco, G.; Gennaro,   R.; Paoletti, S. Non-cytotoxic Silver Nanoparticle-Polysaccharide Nanocomposites with Antimicrobial Activity. Biomacromolecules. 2009.<b>10</b>:   1429-1435.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0120-2804201300010000400021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>22.  Jin, R.; Cao, Y.; Mirkin, C.   A.; Kelly, K. L.; Schatz, G. C.; Zheng, J. G. Photoinduced Conversion of Silver Nanospheres to Nanoprisms. Science. 2001.<b>294</b>: 1901-1903.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0120-2804201300010000400022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>23.  Brittain, H. G. UV/VIS Reflectance Spectroscopy. En:   Spectroscopy of Pharmaceutical Solids. Brittain, H.   G., New Jersey: Taylor &amp; Francis Group. 2006. 121-149.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0120-2804201300010000400023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>24.  Sharma, V. K.; Yngard, R.   A.; Lin, Y. Silver nanoparticles: Green synthesis and their antimicrobial   activities. Advances in Colloid and Interface Science. 2009.<b>145</b>: 83-96.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0120-2804201300010000400024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>25.  Jain, P.; Pradeep, T.   Potential of Silver Nanoparticle-Coated Polyurethane Foam As an Antibacterial Water Filter. Biotechnology and Bioengineering. 2005.<b>90</b>: 59-63.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0120-2804201300010000400025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>26.  An, Jing; Wang, De-Song; Yuan, Xiao-Yan. Synthesis of   Stable Silver Nanoparticles with Antimicrobial Activities in Room-temperature   Ionic Liquids. Chemical Research in Chinese Universities. 2009.<b>25</b>: 421-425.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0120-2804201300010000400026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>27.  Bankar, A; Joshi, B.; Kumara, A. R.; Zinjarde,   S. Banana peel extract mediated novel route for the synthesis of silver   nanoparticles. Colloids and Surfaces A: Physicochem.   Eng. Aspects.2010.<b>368</b>: 58-63.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0120-2804201300010000400027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>28.  Shaligram, N. S.; Bule, M.; Bhambure, R.; Singhal, R. S.;   Singh, S. K.; Szakacs, G.; Pandey,   A. Biosynthesis of silver nanoparticles using aqueous extract from the compactin producing fungal strain. Process Biochemistry.2009.<b>44</b>: 939-943.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0120-2804201300010000400028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>29.  Kora, A. J.; Sashidharb, R. B.; Arunachalam, J. Gum kondagogu (Cochlospermum gossypium): A   template for the green synthesis and stabilization of silver nanoparticles with   antibacterial application. Carbohydrate Polymers.2010.<b>82</b>: 670-679.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0120-2804201300010000400029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>30.  Mandal, A.; Chakrabarty, D.   Isolation of nanocellulose from waste sugarcane   bagasse (SCB) and its characterization. Carbohydrate Polymers.2011.<b>86</b>: 1291- 1299.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S0120-2804201300010000400030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>31.  Se&#768;be, G.; Ham-Pichavant, F.; Ibarboure, E.; Chantal Koffi, A.   L.; Tingaut, P. Supramolecular Structure Characterization of Cellulose II Nanowhiskers Produced by Acid Hydrolysis of Cellulose I Substrates. Biomacromolecules.   2012.<b>13</b>: 570-578.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S0120-2804201300010000400031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p> </font>      ]]></body><back>
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