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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Evaluación del movimiento de plaguicidas hacia la cuenca del lago de tota, Colombia]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The Tota lake catchment is a major onion-producing area in Colombia. Conventional agricultural practices use pesticides to control diseases that attack the crop, and in onion- production in this area fungicides are most commonly used due to the Paramo weather conditions and its location, 3015 meters above sea level (masl). These factors are conducive to the proliferation of fungi in the soil and in crops. In order to evaluate the movement of pesticides to Lake Tota, water samples and suspended sediments were taken for seven months in several channels that traverse the area and flow into the lake. In surface waters, malathion, tebuconazole, difenoconazole and chlorothalonil were detected and even quantified in some samples. In suspended sediments, malathion was detected at concentrations between 1.90 mg/kg and 4.38 mg/kg, and chlorothalonil ranged from 0.27 mg/kg to 1.29 mg/kg. To determine concentrations of fungicides in surface water closer to the source water samples from a runoff plot located in the study area were monitored for tebuconazole and difenoconazole. In dissolved form, tebuconazole was found at aconcentration of 4800 ng/L and difenoconazole at a concentration of 330ng/L. ThePesticide Impact Rating Index (PIRI) was used to assess the risk of surface water contamination by pesticides commonly used in onion production. Index values indicating high to very high risk of surface water contamination were found for tebuconazole, malathion and chlorothalonil. These results agree with the experimental evaluations.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="pt"><p><![CDATA[A bacia do Lake Tota éumacebolamaiores áreas produtoras na Colômbia. Práticas agrícolas convencionais que utilizam pesticidas para controlar as doenç as que atacam a cultura, sendo os fungicidas mais utilizados, porque as condiç õ es climáticas da saúde (3015 metros acima do nível do mar) sã opropícias para a proliferaç ã o de fungos no solo e nas culturas. A fim de avaliar o movimento de pesticidas no lago de Tota, as amostras de água e de sólidos sedimentáveis de sete meses emalgunscanais que atravessam a área e correm para o lago. Naágua de superfíciefoi encontrada malatiã o, tebuconazol, difenoconazol e clorotalonil e atémesmoemalgumasamostras, as concentraç õ esexcederam o limite de quantificaç ã o, enquanto que nasamostras de sólidos sedimentáveissã o encontrado apresenç a de malatiã o e clorotalonilemconcentraç õ es entre 1,90 mg/kg - 4,38 mg/kg e 0,27 mg/kg - 1,29 mg/kg, respectivamente. Para complementar esseestudo, avaliamos o movimento da superfície de fungicidas tebuconazole e difenoconazoleemuma trama escoamento localizado na área de estudo. Tebuconazole e difenoconazole encontrado na forma dissolvida, emconcentraç õ es de 4800ng/L e 330ng/L,respectivamente. Usado o "PesticideImpact Rating Index (PIRI) para avaliar o riscopotencial de encontrar amobilidade de pesticidas entre risco alto e muito alto de mobilidade en águas de superficie, estes resultados foram consistentes com as avaliaç õ esexperimentais.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p align="center"><font size="4"><b>Evaluaci&oacute;n del movimiento de plaguicidas hacia la cuenca del lago de tota, Colombia</b></font></p>     <P align="center"><font size="3"><B>Evaluation of pesticide movement towards tota lake catchment, Colombia</B></font></p>     <P align="center"><font size="3"><B>Avalia&ccedil;&atilde;o de pesticida movimento em dire&ccedil;&atilde;o tota bacia do lago, Colombia</B></font></p>     <P><B>Andrea Mojica.</B><SUP>1</SUP>, <B>Jairo A. Guerrero.</B><sup>1,2</sup></P>     <p><sup>1</sup> Laboratorio de An&aacute;lisis de Residuos de Plaguicidas. Departamento de Qu&iacute;mica. Universidad Nacional de Colombia. Bogot&aacute;  D.C., Colombia.    <br> <sup>2</sup> Autor de correspondencia: <A href="mailto:jaguerreod@unal.edu.co">jaguerreod@unal.edu.co</A>, tel&eacute;fono: (57) 1 3165000 Ext.14412. </p>     <p>Recibido: mayo 06 de 2013	Aceptado: julio 29 de 2013</p>  <hr>     <p><b>Resumen</b></p>     <p>La cuenca del Lago de Tota es una de las principales zonas productoras de cebolla en Colombia. Las pr&aacute;cticas agr&iacute;colas convencionales utilizan plaguicidas para combatir las enfermedades que atacan al cultivo, siendo los fungicidas los m&aacute;s usados pues las condiciones clim&aacute;ticas de p&aacute;ramo (3.015 msnm),favorecen la proliferaci&oacute;n de hongos tanto en el suelo como en los cultivos. Con el objetivo de evaluar el movimiento de los plaguicidas al lago de Tota, se tomaron muestras de agua y s&oacute;lidos sedimentables durante 7 meses en algunos canales que recorren la zona y desembocan en el lago. En aguas superficiales se determin&oacute;la presencia de malati&oacute;n, tebuconazol, difenoconazol y clorotalonilo, donde algunas muestras superaron el l&iacute;mite de cuantificaci&oacute;n de la metodolog&iacute;a. Por su parte, en las muestras de s&oacute;lidos sedimentables se encontr&oacute;malati&oacute;n y clorotalonilo en concentraciones de 1,90 mg/kg a 4,38 mg/kg y de 0,27 mg/kg a 1,29 mg/kg respectivamente. Como complemento a este estudio, se evalu&oacute;el movimiento superficial de los fungicidas tebuconazol y difenoconazol en una parcela de escorrent&iacute;a ubicada en la zona de estudio, encontrando tebuconazol y difenoconazol en forma disuelta a concentraciones de 4800ng/L y 330ng/L respectivamente. Finalmente se utiliz&oacute;el "PesticideImpact Rating Index" (PIRI) para evaluar el riesgo potencial de movilidad de los plaguicidas encontrando un riesgo entre alto y muy alto de movilidad hacia aguas superficiales;  estos resultados concordaron con las evaluaciones experimentales. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><B>Palabras clave: </B>escorrent&iacute;a, plaguicidas, aguas superficiales, Lago de Tota, cuenca. </p> <hr>     <p><b>Abstract</b></p>     <p>The Tota lake catchment is a major onion-producing area in Colombia. Conventional agricultural practices use pesticides to control diseases that attack the crop, and in onion- production in this area fungicides are most commonly used due to the Paramo weather conditions and its location, 3015 meters above sea level (masl). These factors are conducive to the proliferation of fungi in the soil and in crops. In order to evaluate the movement of pesticides to Lake Tota, water samples and suspended sediments were taken for seven months in several channels that traverse the area and flow into the lake. In surface waters, malathion, tebuconazole, difenoconazole and chlorothalonil were detected and even quantified in some samples. In suspended sediments, malathion was detected at concentrations between 1.90 mg/kg and 4.38 mg/kg, and chlorothalonil ranged from 0.27 mg/kg to 1.29 mg/kg. To determine concentrations of fungicides in surface water closer to the source water samples from a runoff plot located in the study area were monitored for tebuconazole and difenoconazole. In dissolved form, tebuconazole was found at aconcentration of 4800 ng/L and difenoconazole at a concentration of 330ng/L. ThePesticide Impact Rating Index (PIRI) was used to assess the risk of surface water contamination by pesticides commonly used in onion production. Index values indicating high to very high risk of surface water contamination were found for tebuconazole, malathion and chlorothalonil. These results agree with the experimental evaluations. </p>     <p><B>Key words:</B> Runoff, pesticides, surface water, sediments, Lake Tota, catchment.</p> <hr>     <p><B>Resumo </b></p>     <p>A bacia do Lake Tota &eacute;umacebolamaiores &aacute;reas produtoras na Col&ocirc;mbia. Pr&aacute;ticas agr&iacute;colas convencionais que utilizam pesticidas para controlar as doen&ccedil; as que atacam a cultura, sendo os fungicidas mais utilizados, porque as condi&ccedil; &otilde; es clim&aacute;ticas da sa&uacute;de (3015 metros acima do n&iacute;vel do mar) s&atilde; oprop&iacute;cias para a prolifera&ccedil; &atilde; o de fungos no solo e nas culturas. A fim de avaliar o movimento de pesticidas no lago de Tota, as amostras de &aacute;gua e de s&oacute;lidos sediment&aacute;veis de sete meses emalgunscanais que atravessam a &aacute;rea e correm para o lago. Na&aacute;gua de superf&iacute;ciefoi encontrada malati&atilde; o, tebuconazol, difenoconazol e clorotalonil e at&eacute;mesmoemalgumasamostras, as concentra&ccedil; &otilde; esexcederam o limite de quantifica&ccedil; &atilde; o, enquanto que nasamostras de s&oacute;lidos sediment&aacute;veiss&atilde; o encontrado apresen&ccedil; a de malati&atilde; o e clorotalonilemconcentra&ccedil; &otilde; es entre 1,90 mg/kg - 4,38 mg/kg e 0,27 mg/kg - 1,29 mg/kg, respectivamente. Para complementar esseestudo, avaliamos o movimento da superf&iacute;cie de fungicidas tebuconazole e difenoconazoleemuma trama escoamento localizado na &aacute;rea de estudo. Tebuconazole e difenoconazole encontrado na forma dissolvida, emconcentra&ccedil; &otilde; es de 4800ng/L e 330ng/L,respectivamente. Usado o "PesticideImpact Rating Index (PIRI) para avaliar o riscopotencial de encontrar amobilidade de pesticidas entre risco alto e muito alto de mobilidade en &aacute;guas de superficie, estes resultados foram consistentes com as avalia&ccedil; &otilde; esexperimentais. </p>     <p><B>Palavras-chave: </B>escoamento, pesticidas, &aacute;gua de superficie, sedimento, bacia, Tota lago.</p> <hr>     <p><font size="3"><b>1. Introducci&oacute;n</b></font></p>     <p>Debido a las diferentes altitudes y caracter&iacute;sticas topogr&aacute;ficas presentes en Colombia, se encuentran diversos climas a lo largo de todo el territorio que favorecen el desarrollo de diferentes tipos de cultivos.Aunque Colombia es conocido por ser un exportador de algunos productos agr&iacute;colas como el caf&eacute;, en las &uacute;ltimas d&eacute;cadas y con la apertura de los tratados de libre comercio, se ha diversificado la exportaci&oacute;n de productos a agr&iacute;colas hacia Europa y Estados Unidos(1).Durante los &uacute;ltimos a&ntilde; os, en Colombiay en el mundo ha sido posible  satisfacer la demanda de productos agr&iacute;colas y minimizar las p&eacute;rdidas en la producci&oacute;n gracias al uso de plaguicidas, sin embargo su uso se ha incrementado en tal magnitud que entre los a&ntilde; os 2004 y 2010 hubo un aumento del 16% en el consumo de agroqu&iacute;micos, lo cual se traduce en131&acute; 418.209 kg y 206&acute; 557.182 L de formulaciones de plaguicidas vendidas. (2) </p>     <p>El Lago de Tota es uno de los principales sistemas hidrol&oacute;gicos del pa&iacute;s ya que es el cuerpo de agua natural con mayor extensi&oacute;n y sus aguas son aprovechadas para el cultivo de trucha arco&iacute;ris, actividades de recreaci&oacute;n, as&iacute;como fuente para el abastecimiento de agua potable de diferentes municipios de la zona (3). Debido a su riqueza hidrol&oacute;gica, la cuenca del Lago de Tota se ha convertido en una de las principales zonas agr&iacute;colas del pa&iacute;s, lo cual se reflejaen una producci&oacute;n de 131.451 toneladas de cebolla por a&ntilde; oy un rendimiento de 34,53 toneladas por hect&aacute;rea (4). </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En los cultivos de cebolla larga ubicados a lo largo de la cuenca del lago, es com&uacute;n el usode plaguicidas para el control de las plagas que atacan este cultivo, dentro de las que se encuentran el mildeo velloso, mancha purp&uacute;ra, pudrici&oacute;n blanca, entre otros (5). Diferentes autores han reportado que las pr&aacute;cticas agr&iacute;colas convencionales, ocasionan la liberaci&oacute;n de plaguicidas al medio ambiente, los cuales pueden tener una serie de procesos de transformaci&oacute;n y transporte. Dichos procesos dependentanto de lascondiciones de la regi&oacute;n (pluviosidad, topograf&iacute;a del terreno, cobertura vegetal ytipo de suelos),como de las propiedades fisicoqu&iacute;micas inherentes del compuesto contaminante;  tales comola presi&oacute;n de vapor, solubilidad en agua, tiempo de vida media, coeficiente de adsorci&oacute;n de carbono org&aacute;nico (Koc), coeficiente de partici&oacute;n octanol-agua (Kow) (6). </p>     <p>Otros estudios han reportado que la presencia de plaguicidas en suelos, se relaciona directamente con el  contenido de materia org&aacute;nica pues a mayor contenido, aumenta la adsorci&oacute;n de los plaguicidasy disminuye su movilidad a trav&eacute;s del perfil de este cuerpo natural. En este sentido, cuando existe una fuerte adsorci&oacute;n de los plaguicidas en el suelo, el mecanismo m&aacute;s probable de transporte hacia cuerpos de agua es a trav&eacute;s de fen&oacute;menos deerosi&oacute;n o escorrent&iacute;a superficial (7). De igual manera, se ha reportado que si el plaguicida presenta una alta solubilidad en agua y una baja constante de adsorci&oacute;nlos mec&aacute;nismos de movilidad hacia aguas se dan a trav&eacute;s de escorrent&iacute;a y/o lixiviaci&oacute;n (8). </p>     <p>En la actualidad, el plan de ordenamiento de la cuenca del lago de Tota, se ha convertido en el estudio m&aacute;s relevante relacionado con la zona;  en este estudio se determin&oacute;la calidad fisicoqu&iacute;mica y microbiol&oacute;gica de las principales corrientes de agua. Aunque es un estudio que re&uacute;ne bastante informaci&oacute;n acerca de la regi&oacute;n, no incluye la evaluaci&oacute;n de residuos de plaguicidas en matrices ambientales (3). </p>     <p>En este contexto, el presente estudio tiene como objetivo realizar una evaluaci&oacute;n de la movilidad de plaguicidas hacia el lago de Tota, para lo cual serealizaron  encuestas con el fin de identificar  los plaguicidas y las pr&aacute;cticas agr&iacute;colas que se emplean en la zona;  posterior a ellose realiz&oacute;un monitoreo sobre fuentes de agua que atraviesan los cultivos y paralelamente se evaluaron muestras desedimentos. Finalmente, se aplic&oacute;el PesticideImpact Rating Index(PIRI)como herramienta para predecir el riesgo potencial de transporte de los plaguicidas hacia acu&iacute;feros en la zona de estudio (9). </p>     <p><B><font size="3">2. Materiales y m&eacute;todos</font></b></p>     <p><b>2.1 &Aacute; rea de estudio</b></p>     <p>El &aacute;rea de estudio se localiz&oacute;en la vereda Hato Laguna (Municipio de Aquitania, Boyac&aacute;, Colombia), ubicada en la cuenca del Lago de Tota.La regi&oacute;nde estudio se caracteriza por tener cultivos intensivos de cebolla larga (Alliumfistulosum). El monitoreo de plaguicidas en agua y sedimentos serealiz&oacute;en la corriente "Las Cintas", la cual recorre parte de la vereda Hato Laguna y desemboca en el Lago de Tota(5aliz&oacute;en  72aliz&oacute;eO). </p>     <p>El lago de Tota tiene un &aacute;rea de 55,1 km2, con 11,8 km de largo por 6,2 km de ancho y una profundidad media de 60 metros. Se encuentra situado a 3.015 msnm. La temperatura en la cuenca dellago de Tota presenta fuertes fluctuaciones que pueden variar entre 0&ordm; C y 22&ordm; C. (10). </p>     <p>El lago cuenta con dos reg&iacute;menes de lluvia: interandino efecto bimodal en la cuenca occidental (730 mm/a&ntilde; o) y el efecto monomodal en la regi&oacute;n noreste (945 mm/a&ntilde; o), produciendoun periodo de lluvias en los meses de abril a noviembre y una temporada seca de diciembre a marzo (11,12). </p>     <p><B>2.2 Uso de Plaguicidas </b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La informaci&oacute;n del uso de plaguicidas en los cultivos de cebolla larga se recolect&oacute;por medio de entrevistas personales con 30 agricultores de la regi&oacute;n;  a partir de esta informaci&oacute;n se estableci&oacute;que la aplicaci&oacute;n de plaguicidas en los cultivos de cebolla larga se realiza por medio de aspersiones,con bombas manualesdemezclas de los diferentes principios activos. La frecuencia de fumigaci&oacute;n es de cada ocho d&iacute;as en &eacute;poca de lluvia y cada quince d&iacute;as en &eacute;poca seca. Las principales enfermedades que atacan a los cultivos de cebolla son causadas por hongos, por lo que la mayor&iacute;a de plaguicidas que se aplican son fungicidas. En la <a href="#t1">tabla 1</a> se presentan los plaguicidas usados en los cultivos de cebolla, as&iacute;como las cantidades aplicadas y la cantidad de veces que se aplica cada plaguicida al a&ntilde; o, expresada en porcentaje (% Uso).Esta informaci&oacute;n permite identificar los plaguicidas que se emplean en mayor dosificaci&oacute;n y los plaguicidas que se emplean m&aacute;s frecuentemente en los cultivos de cebolla de laregi&oacute;n de estudio. </p>     <p align="center"><a name="t1"></a><img src="img/revistas/rcq/v42n2/v42n2a04t1.jpg"></p>     <p><B>2.3 Muestreo de agua y sedimentos </b></p>     <p><b>2.3.1 Aguas superficiales</b></p>     <p>La <a href="#t2">tabla 2</a> muestra las fechas de muestreo de aguas superficiales y de sedimentos suspendidos, estos muestreos se dividieron en siete campa&ntilde; as en el periodo comprendido entre Febrero y Agosto de 2009a lo largo de la corriente "Las Cintas". Esta corriente fue seleccionada pues su caudal recorre zonas densamente cultivadas y sus aguas desembocan directamente al Lago de Tota. El muestreo realizado fue completamente al azar, recolectando una muestra de agua en cada estaci&oacute;n de muestreo por cada campa&ntilde; a. </p>     <p align="center"><a name="t2"></a><img src="img/revistas/rcq/v42n2/v42n2a04t2.jpg"></p>     <p>A lo largo de esta corriente, se establecieron cinco estaciones de muestreo una de ellas ubicada en una zona no intervenidacon cultivos en la cual se encontraba vegetaci&oacute;n nativa de la regi&oacute;n, &eacute;sta se consider&oacute;como muestra de referencia (zona de control). Tres estaciones seubicaron en zonas densamente cultivadas (estaciones 2,3 y 4) y unaestaci&oacute;n se ubic&oacute;en la desembocadura de la corriente "Las Cintas" al Lago de Tota (estaci&oacute;n 5). Adicionalmente, se ubic&oacute;otra estaci&oacute;n enun canal que recorrepredios cultivados y desemboca directamente en el lago de Tota (estaci&oacute;n 6). La <a href="#f1">figura 1</a> muestra la localizaci&oacute;n de cada estaci&oacute;n. </p>     <p align="center"><a name="f1"></a><img src="img/revistas/rcq/v42n2/v42n2a04f1.jpg"></p>     <p>Las muestras de agua superficialfueron recolectadas en botellas devidrio &aacute;mbarcon capacidad de 4 L,las botellas fueron previamente lavadas con jab&oacute;n neutro ypurgadascon acetona y agua destilada. Las muestras de agua fueron recolectadas en cada sitio de muestreo por inmersi&oacute;n directade las botellas en contra del flujo de la corriente. Se transportaron inmediatamente al laboratorio donde fueron refrigeradas a 4oC hasta su an&aacute;lisis. El an&aacute;lisis de las muestras se realiz&oacute;por duplicado. </p>     <p><B>2.3.2 Parcela de escorrent&iacute;a. </b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Para este experimento se emple&oacute;el montaje reportado por Mart&iacute;nez (13), para ello se aisl&oacute;un &aacute;rea de 1 m2, sobre un terreno cultivado con cebolla larga (pendiente 30 grados);  por medio de l&aacute;minas met&aacute;licas de dimensionesde 100 cm de largo por 30 cm de alto.Las l&aacute;minas met&aacute;licas que forman las paredes se introdujeron en el suelo a una profundidad de 10 cm sobresaliendo 20 cm por encima del terreno, esto con el fin de aislar el terreno hidrol&oacute;gicamente. </p>     <p>Durante un periodo de 6 meses se recolectaronmuestras de agua y sedimentos provenientes de la escorrent&iacute;a producida por eventos de lluvia;  la cantidad de precipitaci&oacute;n total durante el per&iacute;odo de muestreo fue de 561,2 L/m2 y la cantidad de muestra recolectada fue de 25 L/m2, la cual se recogi&oacute;por medio de un dispositivo que contaba  con un tanque cerrado. </p>      <p>Los principios activos aplicados en los cultivos de cebolla donde se encontraba instalada la parcela fueron tebuconazol y difenoconazol y las cantidades totales aplicadas durante el per&iacute;odo de muestreo fueron de 6 kg/ha y0,3 kg/ha respectivamente. </p>     <p><B>2.3.3 S&oacute;lidos sedimentables </b></p>     <p>Enla estaci&oacute;n de muestreo 4 se instal&oacute;en el fondo de la corriente, un dispositivo para recolecci&oacute;n de s&oacute;lidos sedimentables. El dispositivo utilizado fue reportado por Liess et al (14) y Jergentz (15). El dispositivo consist&iacute;a en un contenedor de 4 litros que estaba equipado con una entrada y una salida de la corriente de agua, permitiendo que los sedimentos se depositaran en el interior del contenedor. La recolecci&oacute;n de estas muestras se realiz&oacute;en cuatro per&iacute;odos de 20 d&iacute;as cada uno como se muestra en la <a href="#t2">tabla 2</a>. </p>     <p><b>2.3.4 Informaci&oacute;n pluviom&eacute;trica</b></p>     <p>Los datos pluviom&eacute;tricos durante el periodo del estudio fueron suministrados por el Instituto de Hidrolog&iacute;a, Meteorolog&iacute;a y Estudios Ambientales de Colombia (IDEAM),  a trav&eacute;s de la estaci&oacute;n Corriente Las Cintas (No. 3519001). La <a href="#f2">Figura 2</a> muestra que las primeras campa&ntilde; as de muestreo se realizaron en un periodo de bajas precipitaciones  mientras que las otras campa&ntilde; as se llevaron a cabo en &eacute;poca de alta precipitaci&oacute;n. </p>     <p align="center"><a name="f2"></a><img src="img/revistas/rcq/v42n2/v42n2a04f2.jpg"></p>      <p><b>2.4 Est&aacute;ndares, Reactivos y Soluciones.</b></p>     <p>Los est&aacute;ndares de plaguicidas empleados en este trabajo fueron obtenidos del Dr. Ehrenstorfer y de Chemservice, cada uno de estos con una pureza superior al 95%. Las soluciones madre fueron preparadas a concentraciones cercanas a 500 &micro; g/mL en acetato de etilo y fueron almacenadas en frascos &aacute;mbar a -20&ordm; C. La mezcla de plaguicidas se prepar&oacute;en acetato de etilo tomando diferentes vol&uacute;menes de cada una de las soluciones madre hasta obtenerun rango de concentraciones entre 1,5 &micro; g/mL y 44 &micro; g/mL. Esta se almacen&oacute;en frascos &aacute;mbar a -20 &ordm; C.Todos los solventes empleados en este estudio fueron J.T. Baker grado residuos. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>2.5 Metodolog&iacute;as de extracci&oacute;n</b></p>     <p><b>2.5.1. Extracci&oacute;n de plaguicidas en aguas</b></p>     <p>Se realiz&oacute;por medio de una extracci&oacute;n l&iacute;quido-l&iacute;quido empleando n-hexano como solvente de extracci&oacute;n. Se tomaron 1000 mL de muestra (previamente filtrada a trav&eacute;s de papel de filtro cuantitativo) en una botella de vidrio &aacute;mbar de fondo plano, con capacidad de un litro, se adicionaron 10 g de cloruro de sodio y 60 mL de n- hexano. La botella tapada se coloc&oacute;en agitaci&oacute;n magn&eacute;tica durante 30 minutos, luego se realiz&oacute;la recolecci&oacute;nde la fase org&aacute;nica (16). </p>     <p>La fase org&aacute;nica se pas&oacute;sobresulfato de sodio y se concentr&oacute;a trav&eacute;s de unrotaevaporador a una temperatura de 35 &ordm; C y los plaguicidas fuerontransferidos cuantitativamente con acetato de etilo a un bal&oacute;n aforado de 1 mL. </p>     <p>Muestras de agua potable fueron fortificadas para los experimentos de recuperaci&oacute;n en un rango de concentraciones de 0,05&mu; g/mL a 2,30 &mu; g/mL. Los porcentajes de recuperaci&oacute;n(%R) se encontraron entre el 76%-106% y los coeficientes de variaci&oacute;n (%CV)  entre el 3%-13% respectivamente. Estos datos cumplen con lo establecidopor USEPA (%R: 70-130% y CV&lt; 30%) (17). </p>     <p><b>2.5.2 Extracci&oacute;n de plaguicidas en sedimentos</b></p>     <p>Se emple&oacute;una extracci&oacute;n fraccionada con acetato de etilo y metanol asistida con ultrasonido (18). La exactitud de la metodolog&iacute;a fue evaluada por medio de muestras fortificadas. (%R entre el 70% y 120% y %CV&lt;  20%). </p>     <p>La extracci&oacute;n de las muestras se realiz&oacute;pesando 5 g de sedimento los cuales fueron agitados con 30 mL de acetato de etilo durante 30 minutos en un ba&ntilde; o ultrasonido, luego fueron centrifugados y filtrados a trav&eacute;s de sulfato de sodio anhidro, tomando 15 mL de la fracci&oacute;n org&aacute;nica. Posterior a esto, se realiz&oacute;una segunda extracci&oacute;n con 30 mL de metanol. Se combinaron los extractos de acetato de etilo y metanol y fueron concentrados en un evaporador rotatorio a 35&deg; C hasta 1mL. El extracto fue secado en corriente de nitr&oacute;geno y el residuo se disolvi&oacute;en 2 mL de acetato de etilo para inyectarlo en el cromat&oacute;grafo de gases. </p>     <p>Los l&iacute;mites de detecci&oacute;n y de cuantificaci&oacute;n se establecieron de acuerdo al m&eacute;todo propuesto por la US EPA (19). La calibraci&oacute;n se realiz&oacute;en extractos blanco de agua potable. La <a href="#t3">Tabla 3</a> muestra los porcentajes de recuperaci&oacute;n, los l&iacute;mites de detecci&oacute;n (LD) y los l&iacute;mites de cuantificaci&oacute;n (LC) determinados para los plaguicidas estudiados en agua y en sedimentos. </p>     <p align="center"><a name="t3"></a><img src="img/revistas/rcq/v42n2/v42n2a04t3.jpg"></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Se utiliz&oacute;PCB 104(2,2',4,6,6' -pentaclorobifenil) y TPP (trifenil fosfato) como compuestos subrrogados para controlar el desempe&ntilde; o de las metodolog&iacute;as anal&iacute;ticas, evaluando los porcentajes de recuperaci&oacute;n de dichos compuestos en cada una de las muestras. </p>     <p><B>2.5.3 An&aacute;lisis instrumental y confirmaci&oacute;n</B></p>     <p>La identificaci&oacute;n y cuantificaci&oacute;nde los plaguicidas se realiz&oacute;por cromatograf&iacute;a de gases en un equipo HP6890 plus con inyector autom&aacute;tico 7683 Agilent Technologies&reg;  (Palo Alto, CA, EUA). Se utilizaron dos detectores en paralelo uno demicrocaptura electr&oacute;nica (&micro; ECD) y el otro un detector de nitr&oacute;geno-f&oacute;sforo (NPD).  Las condiciones de operaci&oacute;n fueron previamente reportadas por Ahumada, et al. (20). </p>     <p>Las muestras en las que se encontraron plaguicidas se confirmaron por cromatograf&iacute;a de gases acoplada a espectrometr&iacute;a de masas (CG/EM), utilizando un cromat&oacute;grafo de gases 7890 A de Agilent Technologies &reg;  (Palo Alto, CA, EUA) y  un detector selectivo de masas 5975 C, cuyas condiciones fueron reportadas previamente (21). </p>     <p>Este cromat&oacute;grafo contaba con un inyector de temperatura programada, lo que permiti&oacute;inyectar vol&uacute;menes superiores a los convencionales y alcanzar menores l&iacute;mites de detecci&oacute;n que los alcanzados con el equipo que se realiz&oacute;la identificaci&oacute;n inicial  de los plaguicidas. La confirmaci&oacute;n se realiz&oacute;empleando los par&aacute;metros de calidad propuestos por la uni&oacute;n Europea, para lo cual se monitorearon m&iacute;nimo 3 iones por compuesto en modo SIM (22). </p>     <p><B>2.6 Potencial de movilidadde los plaguicidas hacia aguas superficiales</B></p>     <p>El potencial demovilidad de los plaguicidas en estudio hacia aguas superficiales, se estableci&oacute;por medio del "PesticideImpact Rating Index (PIRI)". Para esta evaluaci&oacute;n, el &iacute;ndice considera las diferentes caracter&iacute;sticas ambientales de la regi&oacute;n de estudio tales como el tipo de suelo, contenido de materia org&aacute;nica del suelo, pendiente del terreno, temperatura de la zona e informaci&oacute;n pluviom&eacute;trica. A diferencia de otros &iacute;ndices ambientales el &iacute;ndice tambi&eacute;n considera lasdiferentes zonas dentro del perfil del suelo, los cambios en el contenido de carbono org&aacute;nico, densidad de la poblaci&oacute;n microbiana y decrecimiento de la actividad microbiol&oacute;gica con respecto al perfil del suelo (23). </p>     <p>La evaluaci&oacute;n de movilidad de los plaguicidas se realiz&oacute;en dos parcelas cultivadas con cebolla larga que presentaban caracter&iacute;sticas geogr&aacute;ficas diferentes. Uno de ellas se encontraba ubicada en un terreno con pendiente deaproximadamente30&deg;, adyacente a la corriente "Las Cintas", y la otraestaba ubicada en un terreno planoa orillas del Lago de Tota. La <A href="#t4">tabla 4</A> muestra los par&aacute;metros caracter&iacute;sticos de cada parcela. </p>     <p align="center"><a name="t4"></a><img src="img/revistas/rcq/v42n2/v42n2a04t4.jpg"></p>     <p><B><font size="3">3. Resultados y discusi&oacute;n</font></b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>3.1 Plaguicidas en aguas superficiales</b></p>     <p>La <a href="#t5">Tabla 5</a> muestra los resultados encontrados en las muestras de aguas superficiales,  la mayor&iacute;a de las muestras presentaron concentraciones por debajo del l&iacute;mite de cuantificaci&oacute;n. Los resultados reportados como&lt; LC indican la presencia del plaguicida en las muestras, las cuales fueron confirmadas por CG/EM. En s&oacute;lo dos muestras las concentraciones encontradas estuvieron por encima del l&iacute;mite de cuantificaci&oacute;n de la metodolog&iacute;a, estas corresponden a las muestras 4 y 5 de la campa&ntilde; a de muestreo 7. El plaguicida malati&oacute;n se encontr&oacute;en el 16,7%, difenoconazol en 14,2%, tebuconazol en 4,8% y clorotalonilo en 4,8% de las muestras analizadas. </p>     <p align="center"><a name="t5"></a><img src="img/revistas/rcq/v42n2/v42n2a04t5.jpg"></p>     <p> La frecuencia de detecci&oacute;n de malati&oacute;n en las muestras puede deberse a las propiedades fisicoqu&iacute;micas del agua de la corriente las cintas, ya que se encontr&oacute;un pH entre 6,2 y 6,8,lo cual favorece la estabilidad de este plaguicida, pues  se ha reportado que la cin&eacute;tica de hidr&oacute;lisis de malati&oacute;n es mayor en medio alcalino.  Adicionalmente, al observar la <a href="#t1">Tabla 1</a>, se encuentra que esta mol&eacute;cula es de los plaguicidas que m&aacute;s se usan en la regi&oacute;n, lo cual aumenta su probabilidad de detecci&oacute;n. </p>     <p>Estos resultados correlacionan satisfactoriamente con lo reportado en estudios similares, en los cuales se ha encontrado en repetidas ocasiones la presencia de este compuesto en aguas superficiales (24-27). De acuerdo a la USEPA, concentraciones de malati&oacute;n por debajo de 0,1 g/L, no presentan toxicidad para la vida acu&aacute;tica de la regi&oacute;n (28). </p>     <p>Respecto a la detecci&oacute;n declorotalonilo, se encuentra que al igual que el malati&oacute;n las condiciones ambientales favorecen la estabilidad del compuesto, pues para este plaguicidase ha reportado un tiempo de vida media por hidr&oacute;lisis de 31 d&iacute;as a un pH 9, as&iacute;como una  descomposici&oacute;n por fot&oacute;lisis de 65 d&iacute;as (29). Por otro lado, la movilidad de &eacute;ste plaguicida hacia el agua puede deberse a fen&oacute;menos de escorrent&iacute;a, pues su constante de adsorci&oacute;n es relativamente alta (300-7000 mL/g) (30). De igual manera que lo reportado para el malati&oacute;n, la presencia de clorotalonilo en aguas superficiales se ha encontrado frecuentemente (31). </p>     <p>Como se observa en la <a href="#t5">Tabla 5</a>, la detecci&oacute;n de compuestos de la familia de los azoles ( difenoconazol y tebuconazol) fue la m&aacute;s alta respecto a las dem&aacute;s familias de plaguicidas;  la presencia de estos compuestos en agua puede obedecer a diferentes mecanismos de transporte, aunque debido a sus altas capacidades de adsorci&oacute;n en el suelo (Koc992 L/kgy 3760 L/kg, respectivamente)(29) se cree que la erosi&oacute;n h&iacute;drica superficial puede arrastrar las part&iacute;culas de suelo en las que se encuentran adsorbidos estos plaguicidas y de esta manera estos compuestos puedenllegar hasta las corrientes de agua superficial (32).Cabe resaltar en la <a href="#t1">tabla 1</a> que las dosis utilizadas para tebuconazol son de las m&aacute;s altas respecto a los dem&aacute;s plaguicidas utilizados. </p>     <p>La <a href="#f2">Figura 2</a> muestra que durante el per&iacute;odo de muestreo se observaron precipitaciones intensas, las cuales pueden causarla erosi&oacute;n de los terrenos produciendo el arrastre de las part&iacute;culas del suelo hacia los canales de agua y por tanto aumentando la escorrent&iacute;a. Dado que los plaguicidas se encuentran adsorbidos a las part&iacute;culas del suelo estos se transportan hacia aguas superficiales presentando sedimentaci&oacute;n y posteriorresuspensi&oacute;n de las part&iacute;culas en el agua. Este hecho ha sido evidenciado por Schaffer  y Schriever quienes encontrarontebuconazolen aguas superficiales y en aguas de escorrent&iacute;a respectivamente (33,34). </p>     <p><b>3.2. Parcela de escorrent&iacute;a</b></p>     <p>Con el prop&oacute;sitode evaluar de una manera m&aacute;s adecuada el movimiento de los plaguicidas que se aplican en el cultivo de cebolla hacia el lago de Tota, se llev&oacute;a cabo un experimento que buscaba estimar la cantidad de plaguicida que es transportado por escorrent&iacute;a superficial (producida por eventos de lluvia), en un &aacute;rea y per&iacute;odo de tiempo establecidos, una vez los plaguicidas son aplicados. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Para realizar este estudio, se escogieron los plaguicidas tebuconazol y difenoconazol, los cuales como se observa en la Tabla 5 fueron frecuentemente detectados y que adem&aacute;s se ha reportado que su movilidad hacia cuerpos de agua se produce principalmente por este mecanismo de transporte (32). Los an&aacute;lisis de las muestras, sobre los s&oacute;lidos sedimentables y el agua recolectada indicaron que tebuconazol y difenoconazol se encontraban a una concentraci&oacute;n de 4800 ng/L y330 ng/L, respectivamente. En s&oacute;lidos suspendidos tebuconazol se encontr&oacute;a unaconcentraci&oacute;n de 6,3 mg/kg y difenoconazol a una concentraci&oacute;n de 7,3 mg/kg. </p>     <p>De otra parte, se calcul&oacute;la fracci&oacute;nde compuesto que se transport&oacute;a trav&eacute;s de fen&oacute;menos de escorrent&iacute;a o erosi&oacute;n (porcentaje p&eacute;rdida) para cada uno de los plaguicidas,  lo cual se realiz&oacute;a trav&eacute;s de los resultados obtenidos de los an&aacute;lisis de s&oacute;lidos suspendidos y del agua recolectada, as&iacute;como de la cantidad de plaguicida aplicada en la parcela que se dise&ntilde; &oacute;(ver secci&oacute;n 2.3.2 ). La <a href="#t6">Tabla 6</a>, muestra los resultados del c&aacute;lculo de esta p&eacute;rdida de plaguicidas por fen&oacute;menos de escorrent&iacute;a.Se puede observar que las p&eacute;rdidas son similares en agua y sedimentos para tebuconazol, mientras que para difenoconazol se presentanmayores p&eacute;rdidas ensedimentos. Este hecho se atribuye a la mayor solubilidad del tebuconazol en agua y al mayor valor de la constante de adsorci&oacute;n (Koc) del difenoconazol (3760 L/ kg) respecto a la del tebuconazol (992 L/ kg). </p>     <p align="center"><a name="t6"></a><img src="img/revistas/rcq/v42n2/v42n2a04t6.jpg"></p>     <p>A pesar de que la cantidad de tebuconazol aplicada (1kg/ha), a la parcela cultivada, esmayor que la cantidad de difenoconazol (0,05 kg/ha);  se presenta una mayor p&eacute;rdida por escorrent&iacute;a para este &uacute;ltimo, donde &eacute;stas p&eacute;rdidas se encuentran asociadas a sedimentos, por lo que es posible establecer que la erosi&oacute;n h&iacute;drica del terreno es un factor influyente para el transporte de difenoconazol hacia aguas superficiales. Algunos autores han reportado  un m&aacute;ximo de p&eacute;rdidas del 2% para plaguicidas debidas a  fen&oacute;menos de escorrent&iacute;a (13). </p>     <p><b>3.3. Plaguicidas encontrados en s&oacute;lidos sedimentables en la corriente las cintas</b> </p>     <p>La <a href="#t7">tabla 7</a> muestra los resultados de las muestras de s&oacute;lidos sedimentables tomadas en la corriente "las cintas";  en esta tabla se observa que se determin&oacute;la presencia de malati&oacute;n y clorotalonilo. </p>     <p align="center"><a name="t7"></a><img src="img/revistas/rcq/v42n2/v42n2a04t7.jpg"></p>     <p>La presencia de malati&oacute;n en sedimentos ha sido reportada por otros autores en sistemas h&iacute;dricos de caracter&iacute;sticas similares, en estos estudios se encontraron concentraciones entre  0,8 g/kg y 36 kg (35,36). Por otro lado, Varca et al. reportaron que en Laguna de Bay (Filipinas),elmalati&oacute;n se transporta desde el lugar de aplicaci&oacute;n a cuerpos de aguaa trav&eacute;s de sedimentos detama&ntilde; o de part&iacute;culas&lt; 1,2um (37). </p>     <p>De esta manera, al observar los resultados presentados en la <a href="#t7">Tabla 7</a>, se encuentra que las  concentracionesencontradas en el presente estudio, son superiores a lo reportado en literatura, por lo que es probable que el malati&oacute;n se adsorba a los s&oacute;lidos suspendidos del agua, a trav&eacute;s de interacciones lipof&iacute;licas con la materia org&aacute;nica. Por lo tanto,  el malati&oacute;n podr&iacute;a moverse hacia aguas superficiales por medio de la adsorci&oacute;n a los sedimentos. El potencial de los sedimentos para adsorber contaminantes org&aacute;nicos ha sidodemostrado por varios investigadores (38,39). La preferencia de los contaminantes por los sedimentos en suspensi&oacute;n se debe a la gran &aacute;rea superficial que estos presentan y al contenido de carbono org&aacute;nico. </p>     <p>Debido a su relativamente alta constante de adsorci&oacute;n (850 L/kg), la presencia de clorotalonilo en s&oacute;lidos sedimentables era de esperarse pues esta propiedad le  permite al plaguicida adsorberse al material particulado que proviene de la erosi&oacute;n del suelo yquellega a aguas superficiales para finalmente depositarse a manera de s&oacute;lidos suspendidos. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>3.4 Potencial de movilidad de los plaguicidas hacia aguas superficiales</b></p>     <p>Se determin&oacute;el potencial de movilidad de los plaguicidas encontrados en la corriente "Las Cintas" hacia aguas superficiales por medio del &iacute;ndice PIRI. </p>     <p>Se encontr&oacute;que tebuconazol, clorotalonilo ymalati&oacute;n presentan un muy alto riesgo de movilidad hacia aguas superficiales, mientras que el riesgopara difenoconazol es alto;  esto indica que dependiendo de las condiciones ambientales y lasaplicaciones de los principios activos que se realizan en la zona de estudio, se presenta una alta probabilidad de encontrarestos compuestos en aguas superficiales. Lo anterior coincidecon las determinaciones anal&iacute;ticas realizadas en las muestras de agua superficial de la corriente "Las Cintas".De esta manera, se evidencia la residualidad de estos compuestosenaguas superficiales de la cuenca del Lago de Tota. </p>     <p><B><font size="3">Conclusiones</font></b></p>     <p>Se encontr&oacute;la presencia de los plaguicidas malati&oacute;n, difenoconazol, tebuconazol y clorotalonilo en aguas superficiales de la cuenca del Lago de Tota, en la mayor&iacute;a de las muestras analizadas las concentraciones se encontraron por debajo del l&iacute;mite de cuantificaci&oacute;n. A pesar de las bajas concentracionesde los plaguicidas encontrados en aguas superficiales, el flujopermanente de la corriente hacia el lago puede arrastrar cantidades de plaguicidas que ser&iacute;an representativas en los sedimentos del lago. </p>     <p>El transporte de difenoconazol y tebuconazolhacia aguas superficiales se podr&iacute;a explicar por el arrastre depart&iacute;culas de sueloy porla erosi&oacute;n de los terrenos ya que estos plaguicidas se retienen en las part&iacute;culas del suelo debido al alto valor de la constante de adsorci&oacute;n (Koc) y a su baja solubilidad en agua. </p>     <p><b>Agradecimientos</b></p>     <p>Agradecemos al Laboratorio de Suelos del Departamento de Qu&iacute;mica de la Universidad Nacional de Colombia, Bogot&aacute;, por su asesor&iacute;a y al apoyo de la Agencia Internacional de Energ&iacute;a At&oacute;mica (OIEA). </p> <hr>     <p><B><font size="3">Referencias</font></B></p>     <!-- ref --><p>1. Departamento Administrativo Nacional de Estad&iacute;stica (DANE). Colombia. 2014. Disponible en: <A href="http://www.dane.gov.co/index.php/comercio-exterior/exportaciones" target="_blank">http://www.dane.gov.co/index.php/comercio-exterior/exportaciones</A>. &#91;Consultado en marzo de 2014&#93;    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0120-2804201300020000400001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>      <!-- ref --><p>2. Instituto Colombiano Agropecuario (ICA). Colombia. 2014. Disponible en:  <A href="http://www.ica.gov.co/getdoc/1908eb2c-254f-44de-8e21-c322cc2a7e91/Estadisticas.aspx" target="_blank">http://www.ica.gov.co/getdoc/1908eb2c-254f-44de-8e21-c322cc2a7e91/Estadisticas.aspx</A>. &#91;Consultado en abril de 2014&#93;    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0120-2804201300020000400002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p>3. Mart&iacute;nez, H. (2006). Plan de Ordenaci&oacute;n y Manejo de la Cuenca del Lago de Tota, Corpoboyac&aacute; -Pontificia Universidad Javeriana, Ed. JAVEGRAF, Bogot&aacute;. p. 126-150.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0120-2804201300020000400003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>4. Primer Censo del Cultivo de Cebolla Larga. Departamento Administrativo Nacional de Estad&iacute;stica (DANE), Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural. 2001. Disponible en: <A href="http://www.dane.gov.co/files/investigaciones/agropecuario/ena/Cebolla_Boyaca_Reg_Laguna_Tota.pdf" target="_blank">http://www.dane.gov.co/files/investigaciones/agropecuario/ena/Cebolla_Boyaca_Reg_Laguna_Tota.pdf</A>. &#91;Consultado marzo de 2014&#93;    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0120-2804201300020000400004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->.</p>     <!-- ref --><p>5. La cebolla de rama (Alliumfistulosum) y su cultivo. Corpoica y asohorfrucol. Colombia 2004. Disponible en: <A href="http://www.corpoica.org.co/SitioWeb/Archivos/Publicaciones/LacebolladeramaAlliumfistulosumysucultivo.pdf" target="_blank">http://www.corpoica.org.co/SitioWeb/Archivos/Publicaciones/LacebolladeramaAlliumfistulosumysucultivo.pdf</A>. &#91;Consultado marzo de 2014&#93;    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0120-2804201300020000400005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p>6. Manahan, S.E.; <I> Science Technology and Chemistry- Environmental Chemistry, </I>C.P. LLC: Boca Rat&oacute;n, 2000.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0120-2804201300020000400006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>7. Holvoet, K.M.;  Seuntjens, P.; Vanrolleghem, P.A. (2007). Monitoring and modeling pesticide fate in surface waters at the catchment scale. <I>Ecol.Model</I>. <B>209</B>: 53-64.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0120-2804201300020000400007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>8. Schlotz, T.F. (2006). Modelling of the long term fate of pesticides residues in agricultural soils and their surfaces exchange with the atmosphere<I>. Sci. total environ</I>. <B>368</B>:823-838.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S0120-2804201300020000400008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>9. Kookana, R.S.; Miller, R.B. (2005). Pesticide impact rating index- a pesticide risk indicator for water quality. <I>Water Air Soil Poll</I>.<B>5</B>:45-65.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S0120-2804201300020000400009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>10. Ca&ntilde;&oacute;n, J.E.;  Rodr&iacute;guez, C.O.Balance H&iacute;drico del Lago de Tota, XV Seminario nacional de agua e hidrolog&iacute;a. Universidad Nacional de Colombia- Sociedad Colombiana de Ingenieros, Bogot&aacute;, 2002.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000120&pid=S0120-2804201300020000400010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>11. Gonz&aacute;lez, A.D.;  Aranguren, N.J.;  Gaviria, S. (2008). Cambios en la estructura de la poblaci&oacute;n de <I>Boeckella gracilis</I> en el plancton del lago de Tota, Boyac&aacute;, Colombia<I>. Acta biol.Colomb</I>. <B>13:</B>61-71.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000122&pid=S0120-2804201300020000400011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>12. Cordero, R.D.;  Ruiz, J.E.;  Vargas E.F. (2005). Spatialtemporal determination of phosphorous concentration in lake of Tota.<I> Rev. Colomb.Quim. </I><B>34</B>: 211-218.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000124&pid=S0120-2804201300020000400012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>13. Mart&iacute;nez-Cord&oacute;n, M.J. Comportamiento de herbicidas en suelos de Olivar: Simazina y Terbutilazina. Ph. D. Tesis, Universidad de C&oacute;rdoba. Departamento de Qu&iacute;mica Agr&iacute;cola y Edafolog&iacute;a. C&oacute;rdoba, 2005.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000126&pid=S0120-2804201300020000400013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>14. Liess, M.;  Schulz, R.;  Liess, M.H.D.;  Brother, B.; Kreuzig, R. (1999). Determination of insecticide contamination in agricultural headwater streams<I>. Water Res</I>. <B>33</B>: 239-247.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000128&pid=S0120-2804201300020000400014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>15. Jergentz, S.;  Training workshop on environmental toxicology FAO/IAEA, in Field sampling. Vienna, 2007.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000130&pid=S0120-2804201300020000400015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>16. International Atomic Energy Agency (IAEA). Training workshop on methodologies for the extraction pesticides. Vienna, 2007.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000132&pid=S0120-2804201300020000400016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>17. Environmental Protective Agency. United Sates. 2013. Disponible en: <A href="http://www.epa.gov/ogwdw/methods/pdfs/methods/met527.pdf" target="_blank">http://www.epa.gov/ogwdw/methods/pdfs/methods/met527.pdf</A>. &#91;Consultado marzo de 2014&#93;    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000134&pid=S0120-2804201300020000400017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->. </p>     <!-- ref --><p>18. Mojica A., Guerrero J.A. <I>Extraction procedure for pesticide analysis in soil</I>. 2nd Latin American Pesticide Residue Workshop. Food and Environment. Santa Fe, Argentina. 2009.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000136&pid=S0120-2804201300020000400018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>19. Corley, J. In <I>Handbook of residue analytical methods for agrochemicals</I>; Lee, P., Ed.;  Wiley &amp;  Sons: England, 2003, p.352.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000138&pid=S0120-2804201300020000400019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>20. Ahumada D.;  Guerrero, J. (2010). Estudio del efecto matriz en el an&aacute;lisis de plaguicidas por cromatograf&iacute;a de gases. <I>Vitae</I>. <B>17</B>(1): 51-58.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000140&pid=S0120-2804201300020000400020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>21. Ahumada D.;  Guerrero, J. (2010). Optimizaci&oacute;n del inyector de temperatura programada en el an&aacute;lisis de residuos de plaguicidas mediante el m&eacute;todo simplex. Rev. Colomb. 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Disponible en: <A href="http://www.crl-pesticides.eu/library/docs/allcrl/AqcGuidance_Sanco_2009_10684.pdf" target="_blank">http://www.crl-pesticides.eu/library/docs/allcrl/AqcGuidance_Sanco_2009_10684.pdf</A> &#91;Consultado en Marzo de 2014&#93;    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000144&pid=S0120-2804201300020000400022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->. </p>     <!-- ref --><p>23. Kookana, R.S., Miller, R.B. (2005). Pesticide impact rating index- a pesticide risk indicator for water quality. <I>Water Air Soil Poll.</I><B>5</B>: 45-65.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000146&pid=S0120-2804201300020000400023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>24. Vryzas, Z.;  Vassiliou, G.; Alexoudis, C.; Papadopoulou-Mourkidou, E. (2009). Spatial and temporal distribution of pesticide residues in surface waters in northeastern Greece<I>. Water Res.</I><B>43</B>:1-10.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000148&pid=S0120-2804201300020000400024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>25. Sujatha, C. H.;  Nair, S. M. (1999). Determination and distribution of endosulfan and malathion in an Indian estuary. <I>Water Res.</I><B>33</B>:109-114.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000150&pid=S0120-2804201300020000400025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>26. Abdel-Halim, K. Y.;  Salama, A. K.;  El-khateeb, E. N.; Bakry, N. M. (2006). Organophosphorus pollutants (OPP) in aquatic environment at Damietta Governorate, Egypt: Implications for monitoring and biomarker response<I>. 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Disponible en: <A href="http://water.epa.gov/scitech/swguidance/standards/current/index.cfm#nonpriority" target="_blank"> http://water.epa.gov/scitech/swguidance/standards/current/index.cfm#nonpriority</A>. &#91;Consultado marzo de 2014&#93;    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000156&pid=S0120-2804201300020000400028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->. </p>     <!-- ref --><p>29. University of Hertfordshire. 2011. Disponible en: <A href="http://sitem.herts.ac.uk/aeru/ppdb/en/index.htm" target="_blank"> http://sitem.herts.ac.uk/aeru/ppdb/en/index.htm</A> &#91;Consultado marzo de 2014&#93;    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000158&pid=S0120-2804201300020000400029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->. </p>     <!-- ref --><p>30. Ministerio de Ambiente, Vivienda y Desarrollo Territorial. Colombia. 2013. <A href="http://www.minambiente.gov.co/documentos/res_0806_290410.pdf" target="_blank">http://www.minambiente.gov.co/documentos/res_0806_290410.pdf</A>. &#91;Consultado el 15 de febrero de 2013&#93;    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000160&pid=S0120-2804201300020000400030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->. </p>     <!-- ref --><p>31. Chaves, A.;  Shea, D.;  Cope, W. G. (2007). Environmentalfate of chlorothalonil in a Costa Rica banana plantation<I>. 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