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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Producción de ácido láctico a partir del lactosuero utilizando Lactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus y Streptococcus thermophilus]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Production of lactic acid from whey using Lactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus and Streptococcus thermophilus]]></article-title>
<article-title xml:lang="pt"><![CDATA[Produção de ácido láctico de soro de leite coalhado usando Lactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus e Streptococcus thermophilus]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="pt"><p><![CDATA[O principal objetivo desta pesquisa foi determinar as condições adequadas de crescimento do Lactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus e Streptococcus thermophilus para a produção de ácido láctico utilizando como substrato soro de leite obtido do Departamento do Cesar, Colômbia. O ácido láctico é um produto da extração e purificação de caldos de fermentação, no qual são usadas como bactérias fermentativas Lactobacillus delbrueckiisubsp. bulgaricus e Streptococcus thermophilus, normalmente usadas para a produção de iogurte. O substrato é suplementado com extrato de levedura, fosfato de amonio como fonte de nitrogênio e de carbonato de cálcio como um neutralizador, para optimizar o consumo, pelas bactérias, do principal hidrato de carbono presente no soro (lactose). Durante a fermentação os seguintes fatores foram controlados: concentração do inóculo e temperatura, e atingiu num máximo de 72 h. A purificação foi efetuada por esterificação, filtração dos sólidos formados com a reação e remoção de água por evaporação e varrimento com nitrogênio. Finalmente o ácido láctico foi obtido com 78,0% de pureza (36,7 g/L), e foi caracterizado por espectroscopia de infravermelho.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The main objective of this research was to determine the proper growth conditions of Lactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus and Streptococcus thermophilus for the production of lactic acid using serum as substract. This serum was obtain from the department of Cesar, Colombia. Lactic acid is the result of the extraction and purification of fermentation broths in which bacteria Lactobacillus delbrueckii subsp bulgaricus and Streptococcus thermophilus are used, which are usually used for the production of yogurt. The substrate was supplemented with yeast extract, ammonium phosphate as a nitrogen source, and calcium carbonate as a neutralizer, in order to optimize the consumption, by the bacteria, of the main carbohydrate present in serum (lactose). During the fermentation (up to 72 h) the inoculums concentration, and temperature were controlled. Purification consisted in esterification, filtration of solids formed during the reaction, and removing of water by evaporation and nitrogen influx. Finally, lactic acid was obtained with 78,0% purity (36.7 g/L), which was characterized by infrared spectroscopy.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="Verdana" size="2">     <p>DOI: <a href="http://dx.doi.org/10.15446/rev.colomb.quim.v44n3.55604" target="_blank">http://dx.doi.org/10.15446/rev.colomb.quim.v44n3.55604</a></p>      <p align="center"><font size="4"><b>Producci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico a partir del lactosuero utilizando <I>Lactobacillus delbrueckii </I>subsp.<I> bulgaricus </I>y<I> Streptococcus thermophilus</I></b></font></p>      <p align="center"><font size="3"><b>Production of lactic acid from whey using <I>Lactobacillus delbrueckii </I>subsp.<I> bulgaricus </I>and<I> Streptococcus thermophilus</I></b></font></p>      <p align="center"><font size="3"><b>Produ&ccedil;&atilde;o de &aacute;cido l&aacute;ctico de soro de leite coalhado usando <I>Lactobacillus delbrueckii </I>subsp.<I> bulgaricus </I>e<I> Streptococcus thermophilus</I></b></font></p>      <p align="center"><b>Adriana M. Rojas</b><Sup>1</Sup>, <b>Liceth P. Monta&ntilde;o</b><Sup>1</Sup>, <b>Marlon J. Bastidas</b><Sup>2,*</Sup></p>      <p><Sup>1</Sup> Grupo Energ&iacute;as Alternativas y Biomasa (GEAB), Universidad Popular del Cesar, Sede Hurtado, Colombia    <br> <Sup>2</Sup> Grupo Desarrollo de Estudios y Tecnolog&iacute;as Ambientales del Carbono, Universidad de La Guajira, km 5 v&iacute;a a Maicao.    <br> <sup>*</sup> <B>Autor para correspondencia</B>: <a href="mailto:marlonjoseb@uniguajira.edu.co">marlonjoseb@uniguajira.edu.co</a>. Tel +57 (5) 7282729 ext. 221</p>      <p><b>Article citation:</b>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>  Rojas, A.M.; Monta&ntilde;o, L.P.; Bastidas, M.J. Producci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico a partir del lactosuero utilizando <I>Lactobacillus delbrueckii</I> subsp. <I>bulgaricus</I> y <I>Streptococcus thermophilus</I>. <I>Rev. Colomb. Quim.</I> <B>2015</B>, <I>44 </I>(3), 5-10. DOI: <a href="http://dx.doi.org/10.15446/rev.colomb.quim.v44n3.55604" target="_blank">http://dx.doi.org/10.15446/rev.colomb.quim.v44n3.55604</a></p>      <p>Recibido: 30 de septiembre de 2015. Aceptado: 17 de noviembre de 2015.</p> <hr>      <p><b>Resumen</b></p>      <p>El objetivo principal de esta investigaci&oacute;n fue determinar las condiciones adecuadas de crecimiento del <I>Lactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus </I>y<I> Streptococcus thermophilus </I>para la producci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico, utilizando como sustrato lactosuero proveniente del departamento del Cesar, Colombia. El &aacute;cido l&aacute;ctico es producto de la extracci&oacute;n y purificaci&oacute;n de caldos de fermentaci&oacute;n donde se usa como bacterias fermentativas el co-cultivo <I>Lactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus </I>y<I> Streptococcus thermophilus</I>, usualmente usadas para la producci&oacute;n de yogurt. El sustrato es suplementado con extracto de levadura, fosfato de amonio como fuente de nitr&oacute;geno y carbonato de calcio como neutralizante. Esto con el fin de optimizar el consumo, por parte de las bacterias, del carbohidrato principal presente en el suero (lactosa). Durante la fermentaci&oacute;n se control&oacute; la concentraci&oacute;n del in&oacute;culo y temperatura, el tiempo m&aacute;ximo fue 72 h. La purificaci&oacute;n se llev&oacute; a cabo mediante esterificaci&oacute;n, filtraci&oacute;n de s&oacute;lidos formados con la reacci&oacute;n y extracci&oacute;n de agua por evaporaci&oacute;n y posterior arrastre con nitr&oacute;geno. Finalmente se obtuvo &aacute;cido l&aacute;ctico con un 78,0% de pureza (36,7 g/L), el cual se caracteriz&oacute; a trav&eacute;s de espectroscop&iacute;a infrarroja.</p>      <p><B>Palabras clave:</B> &aacute;cido l&aacute;ctico, lactosuero, bacterias acido l&aacute;cticas, <I>Lactobacillus delbrueckii</I>,<I> Streptococcus thermophilus.</I></p>  <hr>      <p><B>Resumo</b></p>      <p>O principal objetivo desta pesquisa foi determinar as condi&ccedil;&otilde;es adequadas de crescimento do <I>Lactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus </I>e<I> Streptococcus thermophilus </I>para a produ&ccedil;&atilde;o de &aacute;cido l&aacute;ctico utilizando como substrato soro de leite obtido do Departamento do Cesar, Col&ocirc;mbia. O &aacute;cido l&aacute;ctico &eacute; um produto da extra&ccedil;&atilde;o e purifica&ccedil;&atilde;o de caldos de fermenta&ccedil;&atilde;o, no qual s&atilde;o usadas como bact&eacute;rias fermentativas<I> Lactobacillus delbrueckiisubsp. bulgaricus</I> e <I>Streptococcus thermophilus</I>, normalmente usadas para a produ&ccedil;&atilde;o de iogurte. O substrato &eacute; suplementado com extrato de levedura, fosfato de amonio como fonte de nitrog&ecirc;nio e de carbonato de c&aacute;lcio como um neutralizador, para optimizar o consumo, pelas bact&eacute;rias, do principal hidrato de carbono presente no soro (lactose). Durante a fermenta&ccedil;&atilde;o os seguintes fatores foram controlados: concentra&ccedil;&atilde;o do in&oacute;culo e temperatura, e atingiu num m&aacute;ximo de 72 h. A purifica&ccedil;&atilde;o foi efetuada por esterifica&ccedil;&atilde;o, filtra&ccedil;&atilde;o dos s&oacute;lidos formados com a rea&ccedil;&atilde;o e remo&ccedil;&atilde;o de &aacute;gua por evapora&ccedil;&atilde;o e varrimento com nitrog&ecirc;nio. Finalmente o &aacute;cido l&aacute;ctico foi obtido com 78,0% de pureza (36,7 g/L), e foi caracterizado por espectroscopia de infravermelho.</p>      <p><B>Palavras-Chave:&nbsp;</B>&aacute;cido l&aacute;ctico, soro de leite coalhado, bact&eacute;rias de &aacute;cido l&aacute;ctico, <I>Lactobacillus delbrueckii, Streptococcus thermophilus.</I></p>  <hr>      <p><B>Abstract</b></p>      <p>The main objective of this research was to determine the proper growth conditions of <I>Lactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus </I>and<I> Streptococcus thermophilus</I> for the production of lactic acid using serum as substract. This serum was obtain from the department of Cesar, Colombia. Lactic acid is the result of the extraction and purification of fermentation broths in which bacteria <I>Lactobacillus delbrueckii subsp bulgaricus </I>and<I> Streptococcus thermophilus</I> are used, which are usually used for the production of yogurt. The substrate was supplemented with yeast extract, ammonium phosphate as a nitrogen source, and calcium carbonate as a neutralizer, in order to optimize the consumption, by the bacteria, of the main carbohydrate present in serum (lactose). During the fermentation (up to 72 h) the inoculums concentration, and temperature were controlled. Purification consisted in esterification, filtration of solids formed during the reaction, and removing of water by evaporation and nitrogen influx. Finally, lactic acid was obtained with 78,0% purity (36.7 g/L), which was characterized by infrared spectroscopy.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><B>Keywords: </B>lactic acid, whey, lactic acid bacteria, <I>Lactobacillus delbrueckii, Streptococcus thermophilus.</I></p> <hr>      <p><font size="3"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>      <p>En las &uacute;ltimas d&eacute;cadas ha aumentado la preocupaci&oacute;n por la conservaci&oacute;n del ambiente tanto en las industrias como en las actividades urbanas debido a los crecientes efectos que ha causado la emisi&oacute;n de contaminantes al aire, agua y suelo. El agua potable, a pesar de ser una de las matrices m&aacute;s importantes para la preservaci&oacute;n de la humanidad, se contamina indiscriminadamente por las actividades antr&oacute;picas, llevando a los investigadores a buscar metodolog&iacute;as eficientes para su recuperaci&oacute;n (<I>1</I>).</p>      <p>El sector industrial l&aacute;cteo es uno de los mayores contaminantes del agua, especialmente en la elaboraci&oacute;n de quesos, debido al componente residual denominado lactosuero; teniendo en cuenta que por&nbsp;cada kilogramo de queso elaborado se generan 9 L de suero,&nbsp;alcanzando una producci&oacute;n anual de 110 millones de toneladas en el mundo de este residuo. Los altos niveles de producci&oacute;n de lactosuero derivan en un problema serio para los acu&iacute;feros ya que por cada 1000 L de lacto-suero se generan aproximadamente 35 kg de demanda bioqu&iacute;mica de ox&iacute;geno (DBO) y cerca de 68 kg de demanda qu&iacute;mica de ox&iacute;geno (DQO) (<I>2,3</I>). Por otro lado, el significativo contenido de lactosa del lactosuero lo transforman en una materia prima de alto inter&eacute;s para la producci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico (<I>4</I>), utilizado a su vez especialmente en productos alimenticios, qu&iacute;micos, cosm&eacute;ticos y farmac&eacute;uticos (<I>5</I>).</p>      <p>Actualmente hay un aumento en la demanda de &aacute;cido l&aacute;ctico como materia prima para la producci&oacute;n del biopol&iacute;mero denominado &aacute;cido poli l&aacute;ctico (PLA), que es una alternativa biodegradable, biocompatible, amigable con el ambiente y prometedora en la sustituci&oacute;n de los pl&aacute;sticos derivados de petroqu&iacute;micos (<I>6</I>).</p>      <p>El &aacute;cido l&aacute;ctico se puede obtener por s&iacute;ntesis qu&iacute;mica o por fermentaci&oacute;n de hidratos de carbono, mediante un proceso econ&oacute;mico y f&aacute;cilmente disponible. El primer proceso da como resultado una mezcla rac&eacute;mica de los &aacute;cidos l&aacute;cticos, mientras que el segundo conduce a un estereois&oacute;mero de &aacute;cido l&aacute;ctico D(-) o L (+). El 90,0 % de la producci&oacute;n mundial de &aacute;cido l&aacute;ctico se consigue por fermentaci&oacute;n, lo que muestra la preferencia por este m&eacute;todo frente a la s&iacute;ntesis qu&iacute;mica (<I>7,8</I>). Uno de los principales intereses cient&iacute;ficos es la reducci&oacute;n de costos de materias primas y el mejoramiento de los niveles de producci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico por medio de la fermentaci&oacute;n (<I>5</I>). As&iacute;, se han planteado alternativas m&aacute;s econ&oacute;micas para obtener &aacute;cido l&aacute;ctico: en vez de partir de la fermentaci&oacute;n de az&uacute;cares refinados, se ha propuesto partir de productos o residuos alimenticios agroindustriales entre los que se identifican los almidones y el lactosuero, entre otros (<I>9,10</I>). Por otra parte, se han realizado numerosas investigaciones sobre el desarrollo de procesos biotecnol&oacute;gicos para la producci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico, con el objetivo de optimizar el proceso desde el punto de vista t&eacute;cnico y econ&oacute;mico, involucrando bacterias l&aacute;cticas (LAB), algunos hongos filamentosos como fuentes microbianas principales de &aacute;cido l&aacute;ctico (<I>9,11</I>) y diferentes cepas (<I>4,12-14</I>).</p>      <p>La finalidad de este trabajo es plantear una alternativa adecuada para el manejo residual del lactosuero del sector l&aacute;cteo del departamento del Cesar, con el fin de evitar el derrame de estos residuos a las aguas residuales sin tratamiento previo, y as&iacute; reducir la contaminaci&oacute;n por DBO y DQO. Se realiz&oacute; una fermentaci&oacute;n del lactosuero para obtenci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico, empleando bacterias combinadas <I>Lactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus </I>y<I> Streptococcus thermophilus</I>, ampliamente utilizadas por la industria l&aacute;ctea del Cesar en la producci&oacute;n de yogur. De esta manera, los residuos de la producci&oacute;n de queso pasan a tener un valor agregado con la implantaci&oacute;n de un proceso econ&oacute;mico y pr&aacute;ctico que contribuye a la minimizaci&oacute;n del impacto ambiental.</p>      <p><b><font size="3">Materiales y m&eacute;todos</font></b></p>      <p><b>Microorganismos</b></p>      <p>La cepa utilizada fue el co-cultivo liofilizado <I>Lactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus </I>y<I> Streptococcus thermophillus,</I> adquirido en la empresa Colombiana Interenzimas S.A.S, bajo el nombre DRISET YOGUR 432- 50LU. Las bacterias fueron escogidas teniendo presente su capacidad homofermentativa de producci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico, la disponibilidad en el mercado, su uso frecuente en la industria local para otras aplicaciones y finalmente varios reportes bibliogr&aacute;ficos de producci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico a partir de lactosuero con diferentes microorganismos (<I>15</I>). Las bacterias se activaron en una soluci&oacute;n de agua pectonada al 1,0%, con adici&oacute;n de lactosuero y glucosa en porcentajes de 2,5 y 1,0% respectivamente, por 12 h a 40 &deg;C. Este cultivo fue usado como in&oacute;culo para las fermentaciones.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><B>Sustrato</b></p>      <p>El suero l&aacute;cteo utilizado fue suministrado por la empresa L&aacute;cteos La Granja ubicada en Valledupar, Cesar, Colombia. Este suero se someti&oacute; a desproteinizaci&oacute;n por tratamiento t&eacute;rmico a temperatura de 90 &deg;C durante 20 min, posteriormente se enfri&oacute; a 20 &deg;C para que finalmente fuera pre filtrado, centrifugado y filtrado a vac&iacute;o con papel Whatman n&uacute;mero 42 (<I>12</I>). El suero fue caracterizado antes y despu&eacute;s de la desproteinizaci&oacute;n midiendo el &iacute;ndice de acidez, contenido de lactosa, prote&iacute;na, humedad y cenizas. El suero desproteinizado se esteriliz&oacute; en autoclave a una presi&oacute;n de 0,1 MPa, temperatura de 120 &deg;C y un tiempo de 15 min. Las pruebas finales se hicieron en suero Fresco (F) y suero Desproteinizado (D).</p>      <p><B>Fermentaci&oacute;n</b></p>      <p>Con el fin de establecer las mejores condiciones para la producci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico por las bacterias, se analizaron los efectos por la temperatura y concentraci&oacute;n del in&oacute;culo de las bacterias, bajo las condiciones se&ntilde;aladas en la <a href="#t1">Tabla 1</a>, el tratamiento 1 est&aacute; compuesto por 2 millones de UFC/mL a 42 &deg;C, mientras que el tratamiento 3 est&aacute; compuesto por la misma cantidad de UFC/mL a 40 &deg;C. Los tratamientos 2 y 4, cuentan con 4 millones de UFC/mL, pero a 42 y 40 &deg;C respectivamente. Cabe resaltar que los niveles de concentraci&oacute;n del in&oacute;culo fueron escogidos mediante pre ensayos, para lo cual se parti&oacute; de la concentraci&oacute;n dada en la ficha t&eacute;cnica del co-cultivo, y la cantidad de bacterias usadas por experiencia en la elaboraci&oacute;n del yogur (1,0-3,0%). La adici&oacute;n de bacterias se realiz&oacute; de dos maneras: i) activando las bacterias al inicio del proceso, para el caso denominado estado de bacterias sin activar (SA) y ii) activando las bacterias 24 h antes del inicio del proceso, para el caso denominado estado de bacterias activadas (A).</p>     <p align="center"><a name="t1"></a><img src="img/revistas/rcq/v44n3/v44n3a01t1.jpg"></p>      <p>Posterior al dise&ntilde;o se realizaron ensayos de fermentaci&oacute;n con el lactosuero previamente suplementado con el objeto de aumentar el rendimiento de producci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico. Inicialmente se enriqueci&oacute; con sulfato de amonio en cantidades de 1,25; 1,50 y 1,80% p/v, en b&uacute;squeda de un mayor aprovechamiento de la lactosa presente en el desecho l&aacute;cteo. Se realiz&oacute; un nuevo ensayo donde se enriqueci&oacute; el lactosuero con fosfato de amonio y extracto de levadura, a la vez que se valor&oacute; la influencia del estado de las bacterias en la producci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico, as&iacute; se efectuaron 4 nuevos ensayos a los que se les denomin&oacute;: prueba 1, 2, 3 y 4, tal como se muestra en la <a href="#t2">Tabla 2</a>.</p>     <p align="center"><a name="t2"></a><img src="img/revistas/rcq/v44n3/v44n3a01t2.jpg"></p>      <p>Todas las pruebas fueron realizadas por triplicado, con adici&oacute;n de carbonato de calcio al 10,0% como neutralizante y con agitaci&oacute;n constante a 150 rpm. La fermentaci&oacute;n se llev&oacute; a cabo en un biofermentador modelo BF-2000, marca New Brunswick Scientific, con capacidad para 2 L.</p>      <p><B>Extracci&oacute;n y purificaci&oacute;n del &aacute;cido l&aacute;ctico</b></p>      <p>El &aacute;cido l&aacute;ctico producido se extrajo de los caldos en forma de lactato de calcio. El medio se calent&oacute; para solubilizar el lactato de calcio y coagular las prote&iacute;nas presentes. Posteriormente se filtr&oacute; para eliminar sustancias insolubles como la biomasa. El &aacute;cido libre se obtuvo por adici&oacute;n de &aacute;cido sulf&uacute;rico seguido de filtraci&oacute;n para eliminar el sulfato de calcio formado. El &aacute;cido l&aacute;ctico fue entonces concentrado por evaporaci&oacute;n, evacuando la humedad por arrastre con nitr&oacute;geno (<I>16</I>).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><B>M&eacute;todos de an&aacute;lisis</b></p>      <p>Prote&iacute;nas: Se determin&oacute; mediante el contenido de Nitr&oacute;geno (m&eacute;todo Micro-Kjeldahl, Norma T&eacute;cnica Colombiana 4657) <I>(17)</I>.</p>      <p>Lactosa: Por el m&eacute;todo colorim&eacute;trico del Fenol-&Aacute;cido Sulf&uacute;rico para micro determinaci&oacute;n de carbohidratos totales propuesto por Dubois <I>et al.(18)</I>, en un espectrofot&oacute;metro marca Spectronic modelo Genesys 20.</p>      <p>&Aacute;cido l&aacute;ctico: La producci&oacute;n se monitore&oacute; durante la fermentaci&oacute;n de manera indirecta a trav&eacute;s del consumo de lactosa, la concentraci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico se determin&oacute; mediante acidez titulable bajo la NTC 4978 de 2001 <I>(19)</I> y se caracteriz&oacute; por espectroscop&iacute;a infrarroja. Para los an&aacute;lisis de&nbsp;espectroscop&iacute;a infrarroja por transformada de Fourier - reflectancia total atenuada (FTIR-ATR) se utiliz&oacute; un espectr&oacute;metro IRPrestige-21 /FTIR-8400S, con accesorio de reflectancia total atenuada. Los espectros fueron obtenidos en el rango de 4000-500 cm<Sup>-1</Sup>.</p>      <p><b><font size="3">Resultados y discusi&oacute;n</font></b></p>      <p><b>Composici&oacute;n del lactosuero</b></p>      <p>Se tiene en cuenta el pH medido en el lactosuero desproteinizado y fresco, el cual est&aacute; en 6,26 y 6,30, respectivamente (ver <a href="#t3">Tabla 3</a>). Lo anterior permite mostrar que para ambos casos se trata de un suero dulce. El procedimiento de desproteinizaci&oacute;n permiti&oacute; reducir en un 48,0% la cantidad de prote&iacute;na pasando de un 0,85% en el lactosuero fresco a un 0,44% al lactosuero desproteinizado. Este valor de reducci&oacute;n porcentual de prote&iacute;nas es similar a otras investigaciones como la de Urribarr&iacute; <I>etal</I>.(20) que report&oacute; un 43,0% y la de S&aacute;nchez <I>etal</I>. (<I>4</I>) que report&oacute; a su vez un 42,0%. As&iacute; mismo, se obtienen valores de lactosa para el suero fresco y desproteinizado de 46 y 47 g/L, respectivamente, similares a los reportados por Jakymec <I>etal</I>. (<I>12</I>).</p>     <p align="center"><a name="t3"></a><img src="img/revistas/rcq/v44n3/v44n3a01t3.jpg"></p>      <p><B>Definici&oacute;n de las pruebas</b></p>      <p>La <a href="#f1">Figura 1</a> muestra que el mayor consumo de lactosa se dio en el tratamiento 1, seguido del tratamiento 2 con 64,5 y 59,2% de lactosa consumida respectivamente, mientras que para los tratamientos 3 y 4 el consumo de lactosa fue menor con 58,6 y 49,9% respectivamente. Se observa que a 42 &deg;C se tiene mayor consumo de lactosa y, por ende, mayor producci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico. Sin embargo, se puede apreciar que hay un mayor rendimiento para niveles menores de UFC/mL.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="f1"></a><img src="img/revistas/rcq/v44n3/v44n3a01f1.jpg"></p>      <p>Con la finalidad de aumentar el rendimiento de producci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico se procedi&oacute; a enriquecer el lactosuero previo a la fermentaci&oacute;n. Para esto se tomaron las condiciones aplicadas al tratamiento 4, debido a que tiene los mayores rendimientos de producci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico de todos los tratamientos, para las mismas condiciones de suplemento. Cabe resaltar que, en principio, la suplementaci&oacute;n no hab&iacute;a tenido lugar en el proceso de fermentaci&oacute;n a fin de tener un escenario de bajo costo. Gran cantidad de suplementaci&oacute;n contribuye a un incremento en la concentraci&oacute;n de impurezas y a su vez un aumento del costo de separaci&oacute;n y bajos rendimientos en la recuperaci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico (<I>9</I>).</p>      <p>La primera suplementaci&oacute;n se realiz&oacute; con sulfato de amonio en concentraciones de 1,25; 1,50 y 1,80% con resultados poco favorables, tal como se muestra en la <a href="#f2">Figura 2</a>. Para este caso el porcentaje de lactosa sin consumir segu&iacute;a siendo alto, llegando a quedar, en el mejor de los casos, aproximadamente un 49,9% de lactosa en el caldo, pasadas 72 h de proceso.</p>     <p align="center"><a name="f2"></a><img src="img/revistas/rcq/v44n3/v44n3a01f2.jpg"></p>      <p>Caso contrario a la suplementaci&oacute;n con sulfato de amonio ocurre con fosfato de amonio y extracto de levadura. Para este caso, se obtuvieron valores porcentuales de consumo de lactosa de 87,8%. La <a href="#f3">Figura 3</a>, muestra c&oacute;mo el estado de las bacterias es un factor influyente en el resultado de la fermentaci&oacute;n, pero no tan relevante como la suplementaci&oacute;n en este proceso. Tambi&eacute;n se puede observar la comparaci&oacute;n de resultados entre los fermentos con diferentes suplementos, permitiendo establecer que al suplementar el lactosuero con fosfato de amonio y extracto de levadura se obtienen mejores resultados (con rendimientos del 92,8 y 94,6%, respectivamente).</p>     <p align="center"><a name="f3"></a><img src="img/revistas/rcq/v44n3/v44n3a01f3.jpg"></p>      <p>El ensayo con bacterias en estado SA, enriquecido con fosfato de amonio y extracto de levadura arroj&oacute; mejores resultados con un 92,8% de consumo de lactosa frente a un 91,4% alcanzado por el ensayo con bacterias en estado A y enriquecido s&oacute;lo con fosfato de amonio. De los ensayos suplementados con fosfato de amonio y extracto de levadura, se alcanzaron rendimientos porcentuales de consumo de lactosa para las cuatro pruebas, cuyos resultados en su orden son: 92,8%; 87,8%; 91,4% y 94,6%.</p>      <p>Teniendo en cuenta que los mayores rendimientos se dieron en la prueba 4 (mayor consumo de lactosa), donde se adicionaron cepas activadas, fosfato de amonio y extracto de levadura, se puede afirmar que estas son las mejores condiciones para la fermentaci&oacute;n.</p>      <p>Al valorar la velocidad de fermentaci&oacute;n de los ensayos suplementados se encuentra que la prueba 2 tiene mayor velocidad de consumo de lactosa, tal como se muestra en la <a href="#f4">Figura 4</a>. Esta condici&oacute;n es importante para obtener un producto continuo, por lo que una posible aplicaci&oacute;n del proceso requerir&aacute; mantener en el tiempo una concentraci&oacute;n de lactosa de 15000 ppm, para obtener un gasto de lactosa de 4000 ppm/h. En este sentido, un montaje adecuado empleando las materias primas seleccionadas en este trabajo debe tener en cuenta las condiciones de producci&oacute;n empleadas en la prueba 2 con el tratamiento 1. Sin embargo, en cualquier otro caso dentro de las cuatro pruebas reportadas la producci&oacute;n tendr&aacute; un retardo considerable.</p>     <p align="center"><a name="f4"></a><img src="img/revistas/rcq/v44n3/v44n3a01f4.jpg"></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Del mismo modo, aunque la prueba 2 present&oacute; la mayor velocidad de fermentaci&oacute;n, la eficiencia en el consumo de lactosa fueron menores (87,8%), comparado con el rendimiento de la prueba 4 (94,6%) con una velocidad m&aacute;s baja de fermentaci&oacute;n.</p>      <p><B>Caracterizaci&oacute;n del &aacute;cido l&aacute;ctico</b></p>      <p>El &aacute;cido l&aacute;ctico extra&iacute;do del caldo de fermentaci&oacute;n y purificado, de acuerdo a la metodolog&iacute;a, presenta una apariencia viscosa y color amarillo claro. La pureza del &aacute;cido l&aacute;ctico fue de 78,0% (p/v) similar a la de otras investigaciones (21). En la <a href="#t4">Tabla 4</a> se muestran las concentraciones de &aacute;cido l&aacute;ctico en procesos de obtenci&oacute;n similares. Se observa que los valores de &aacute;cido l&aacute;ctico de este estudio son aproximados a los obtenidos por Tashiro et al. (5) y Wang et al. (22). Aunque estos valores no son altos, permiten reducir los niveles de DQO de 35 g/L de lactosuero hasta 7,7 g/L. Se requiere un dispositivo para el control de DBO<Sub>5</Sub> menos costoso, de manera que se logren reducir hasta 1,54 g/L los niveles de DBO<Sub> </Sub>o emplear una cantidad de agua mucho menor para alcanzar la diluci&oacute;n hasta los niveles requeridos.</p>     <p align="center"><a name="t4"></a><img src="img/revistas/rcq/v44n3/v44n3a01t4.jpg"></p>      <p>En la <a href="#f5">Figura 5</a> se compara el espectro de un &aacute;cido L l&aacute;ctico comercial marca Carlo Erba con una concentraci&oacute;n entre 88,0-92,0% y el obtenido en la investigaci&oacute;n. La semejanza que presenta permite comprobar que es &aacute;cido l&aacute;ctico lo que se recuper&oacute; de los caldos de fermentaci&oacute;n ya que muestra las se&ntilde;ales caracter&iacute;sticas: estiramiento OH a 3238 cm<Sup>-1 </Sup>de los grupos alcohol y &aacute;cido, especialmente a 2995 cm<Sup>-1</Sup> y 2944 cm<Sup>-1</Sup>. Grupo COOH: tensi&oacute;n a 1716 cm<Sup>-1</Sup> indica la presencia del enlace C=O perteneciente al grupo &aacute;cido. Estiramientos a 1432 y 1376 cm<Sup>-1</Sup> flexiones sim&eacute;tricas de los grupos CH y CH<Sub>3</Sub> y los picos a 1232, 1122, 1075 y 1046 cm<Sup>-1</Sup>son estiramientos de C-O de los grupos &aacute;cido y alcohol.</p>     <p align="center"><a name="f5"></a><img src="img/revistas/rcq/v44n3/v44n3a01f5.jpg"></p>      <p><b><font size="3">Conclusiones</font></b></p>      <p>Se obtuvo &aacute;cido l&aacute;ctico con un 78,0% de pureza (36,7 g/L en el caldo de fermentaci&oacute;n), el cual se caracteriz&oacute; con espectroscop&iacute;a infrarroja, mediante un proceso de condiciones controladas de fermentaci&oacute;n de lactosuero para alcanzar niveles de consumo de lactosa de 94,6%. Para alcanzar dichos resultados, se aprovech&oacute; la actividad de las bacterias Lactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus y Streptococcus thermophilus y el enriquecimiento de subproducto l&aacute;cteo previo a la fermentaci&oacute;n con fosfato de amonio y extracto de lavadura a una temperatura de 40 &ordm;C.</p>      <p>La suplementaci&oacute;n del lactosuero es un factor limitante para alcanzar un buen rendimiento en la producci&oacute;n biotecnol&oacute;gica de &aacute;cido l&aacute;ctico con el co-cultivo estudiado en la presente investigaci&oacute;n. Es necesario suplementar el lactosuero con el fin de aportar a las bacterias los nutrientes del que carece el lactosuero y que son fundamentales para su crecimiento y desarrollo.</p>      <p><B>Agradecimientos</b></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Los autores agradecemos especialmente al profesor Einer Guti&eacute;rrez por los valiosos consejos en la preparaci&oacute;n de la investigaci&oacute;n; a la Universidad Popular del Cesar, al grupo de investigaci&oacute;n Procesos Qu&iacute;micos Industriales - PQI-, a su director Luis R&iacute;os, al Ingeniero qu&iacute;mico Andr&eacute;s Guzm&aacute;n por su colaboraci&oacute;n y ayuda y a COLCIENCIAS (Convocatoria 566 J&oacute;venes Investigadores e Innovadores) por el apoyo econ&oacute;mico aportado para la finalizaci&oacute;n exitosa del trabajo.</p>  <hr>     <p><b><font size="3">Referencias</font></b></p>      <!-- ref --><p>1. Khan, S.; Deere, D.; Leusch, F.; Humpage, A.; Jenkins, M.; Cunliffe, D. Extreme weather events: Should drinking water quality management systems adapt to changing risk pro&#64257;les?. <I>Water Res</I>. <B>2015</B>, <I>85</I>, 124 -136. DOI: <a href="http://dx.doi.org/10.1016/j.watres.2015.08.018" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1016/j.watres.2015.08.018</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2790662&pid=S0120-2804201500030000100001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>2. Inda, A. <I>Optimizaci&oacute;n de rendimiento y aseguramiento de inocuidad en la industria de la queser&iacute;a</I>. Organizaci&oacute;n de los Estados Americanos (OEA): 2000; p. 63.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2790664&pid=S0120-2804201500030000100002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>3. Pad&iacute;n, C.; Diaz, M. Fermentaci&oacute;n alcoh&oacute;lica del lactosuero por Kluyveromyces marxianus y solventes org&aacute;nicos como extractantes. <I>RSVM</I>., <B>2009</B>, <I>29</I>,110-116.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2790666&pid=S0120-2804201500030000100003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>4. S&aacute;nchez, R.; Ramirez D.; Zapata, A. Evaluaci&oacute;n de un sistema de fermentaci&oacute;n extractiva para la producci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico utilizando suero de leche como sustrato. <I>Vitae</I>. <B>2007</B>, <I>14</I>, 27-34.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2790668&pid=S0120-2804201500030000100004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>5. Abdel-Rahman, M., Tashiro, Y.; Sonomoto, K. Recent advances in lactic acid production by microbial fermentation processes. <I>Biotechnol. Adv</I>. <B>2013</B>, <I>31</I>(6), 877-902. DOI: <a href="http://dx.doi.org/10.1016/j.biotechadv.2013.04.002" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1016/j.biotechadv.2013.04.002</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2790670&pid=S0120-2804201500030000100005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>6. Abdel-Rahman, M., Tashiro, Y.; Sonomoto, K. Lactic acid production from lignocellulose-derived sugars using lactic acid bacteria: Overview and limits. <I>J. Biotechnol.</I><B>2011</B>,<I>156 </I>(4),286-301. DOI: <a href="http://dx.doi.org/10.1016/j.jbiotec.2011.06.017" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1016/j.jbiotec.2011.06.017</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2790672&pid=S0120-2804201500030000100006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>7. Boontawan, P., Kanchanathawee, S.; Boontawan, A. Extractive fermentation of l-(+)-lactic acid by Pediococcus pentosaceus using electrodeionization (EDI) technique. <I>Biochem. Eng. J</I>. <B>2011</B>, <I>54 </I>(3), 192-199. DOI: <a href="http://dx.doi.org/10.1016/j.bej.2011.02.021" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1016/j.bej.2011.02.021</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2790674&pid=S0120-2804201500030000100007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>8. Singh Yadav, J. S.; Yan, S.; Pilli, S.; Kumar, L.; Tyagi, R.D.; Surampalli, R.Y. Cheese whey: A potential resource to transform into bioprotein, functional/nutritional proteins and bioactive peptides. <I>Biotechnol. Adv</I>. <B>2015</B>, <I>33</I>, 756-774. DOI: <a href="http://dx.doi.org/10.1016/j.biotechadv.2015.07.002" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1016/j.biotechadv.2015.07.002</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2790676&pid=S0120-2804201500030000100008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>9. John, R. P.; Madhavan Nampoothiri, K.; Pandey, A. Fermentative production of lactic acid from biomass: an overview on process developments and future perspectives. <I>Appl. Microbiol. Biotechnol</I>. <B>2007</B>, <I>74 </I>(3), 524-534. DOI: <a href="http://dx.doi.org/10.1007/s00253-006-0779-6" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1007/s00253-006-0779-6</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2790678&pid=S0120-2804201500030000100009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>10. Madhavan Nampoothiri, K.; Rajendran Nair, N.; John, R. P. An overview of the recent developments in polylactide (PLA) research. Bioresour. Technol. <B>2010</B>, <I>101 </I>(22), 8493-8501. DOI: <a href="http://dx.doi.org/10.1016/j.biortech.2010.05.092" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1016/j.biortech.2010.05.092</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2790680&pid=S0120-2804201500030000100010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>11. Litchfield, J. H. Microbiological production of lactic acid. <I>Adv. Appl. Microbiol</I>. <B>1996</B>, <I>42</I>, 45-95.DOI: <a href="http://dx.doi.org/10.1016/S0065-2164(08)70372-1" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1016/S0065-2164(08)70372-1</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2790682&pid=S0120-2804201500030000100011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>12. Jakymec, M.; Moran, H.; Paez, G.; Ferrer, J. R.; M&aacute;rmol, Z.; Ramones, E. Cin&eacute;tica de la producci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico por fermentaci&oacute;n sumergida con lactosuero como sustrato. <I>Rev. Cient</I>. <B>2001</B>, <I>11 </I>(1), 53-59.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2790684&pid=S0120-2804201500030000100012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>13. Sanchez Podlech, P. A.; Furia Luna, M.; Jerke, P. R.; Souza Neto, C.; Dos Passos, R.; Souza, O.; Borzani, W. Semicontinuous lactic fermentation of whey by <I>Lactobacillus bulgaricus</I> I. Experimental results. <I>Biotechnol. Lett</I>. <B>1990</B>, <I>12 </I>(7), 531-534.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2790686&pid=S0120-2804201500030000100013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>14. Roukas, T.; Kotzekidou, P. Lactic acid production from deproteinized whey by mixed cultures of free and coimmobilized <I>Lactobacillus casei</I> and Lactococcus lactis cells using fedbatch culture. <I>Enzyme Microb. Technol</I>. <B>1998</B>, <I>22 </I>(3), 199-204. DOI: <a href="http://dx.doi.org/10.1016/S0141-0229(97)00167-1" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1016/S0141-0229(97)00167-1</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2790688&pid=S0120-2804201500030000100014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>15. Yang, X.; Zhu, M.; Huang, X.; Sze Ki Lin, C.; Wang, J.; Li, S. Valorisation of mixed bakery waste in non-sterilized fermentation for L-lactic acid production by an evolved Thermoanaerobacterium sp. Strain. <I>Bioresour. Technol</I>. <B>2015</B>, <I>198</I>, 47-54. DOI: <a href="http://dx.doi.org/10.1016/j.biortech.2015.08.108" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1016/j.biortech.2015.08.108</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2790690&pid=S0120-2804201500030000100015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>16. Serna, L., Rodr&iacute;guez, A. Producci&oacute;n biotecnol&oacute;gica de &aacute;cido l&aacute;ctico. <I>Cienc. Tecnol. Aliment</I>. <B>2005</B>, <I>5 </I>(1), 54-65.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2790692&pid=S0120-2804201500030000100016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>17. Gil, L.M.; Manjarrez, K.; Pi&ntilde;eros, Y.; Rodriguez, E. Influencia de la adici&oacute;n de una fuente de nitr&oacute;geno en la producci&oacute;n de ligninasas. <I>Biotecnolog&iacute;a en el Sector Agropecuario y Agroindustrial</I>. <B>2012</B>. <I>10 </I>(1), 173-181.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2790694&pid=S0120-2804201500030000100017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>18. Dubois, M., Gilles, K., Hamilton, J., &amp; Rebers. Colorimetric method for determination of sugar and related substances. <I>Analytical Chemistry. </I><B>1956</B>. <I>28</I>, 350-354. DOI: <a href="http://dx.doi.org/10.1021/ac60111a017" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1021/ac60111a017</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2790696&pid=S0120-2804201500030000100018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>19. Agudelo, C.; Ortega, R.; Hoyos, J.L. Determinaci&oacute;n de par&aacute;metros cin&eacute;ticos de dos in&oacute;culos l&aacute;cticos: <I>Lactobacillus plantarum</I> A6 y bacterias &aacute;cido l&aacute;cticas de yogurt. <I>Facultad de Ciencias Agropecuarias</I>. <B>2010</B>. <I>8</I> (2), 8-16.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2790698&pid=S0120-2804201500030000100019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>20. Urribarr&iacute;, L.; Vielma, A.; Pa&eacute;z, G.; Ferrer, J.; M&aacute;rmol, Z.; Ramones, E. Producci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico a partir de suero de leche, utilizando <I>Lactobacillus helveticus</I> en cultivo continuo. <I>Rev. Cient&iacute;f. FCV-LUZ</I>. <B>2004</B>, <I>14 </I>(4), 297-302.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2790700&pid=S0120-2804201500030000100020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>21. Jimenez, P.; Sibaja, M.; Vega-Baudrit, J. S&iacute;ntesis y caracterizaci&oacute;n de poli(&aacute;cido l-l&aacute;ctico) por policondensaci&oacute;n directa, obtenido del fermento de desechos agroindustriales de banano (musa acuminata aaa variedad cavendish cultivar gran naine) en Costa Rica. <I>Rev.iberoam.polim</I>. <B>2012</B>, <I>13 </I>(2), 52-59.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2790702&pid=S0120-2804201500030000100021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>22. Wang, M., Xu, Z.J., Qiu, T.L., Sun, X.H., Han, M.L., Wang, X.M. Kinetics of lactic acid fermentation on food waste by Lactobacillus bulgaricus. Adv. Mat. Res. <B>2010</B>, <I>113</I>, 1235-1238.DOI: <a href="http://dx.doi.org/10.4028/www.scientific.net/AMR.113-116.1235" target="_blank">http://dx.doi.org/10.4028/www.scientific.net/AMR.113-116.1235</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2790704&pid=S0120-2804201500030000100022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>  </font>      ]]></body><back>
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