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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Caracterización molecular del pato criollo colombiano en cuatro departamentos]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Universidad Nacional de Colombia Facultad de Ciencias Agropecuarias ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[53 individuals of Muscovy ducks from Caldas, Risaralda, Antioquia and Valle del Cauca departments with three primers RAMs were evaluated. 71 polymorphic loci (61,2%) were generated with 0.19 of heterocigozity. The primer with the highest heterocigozity was CGA (0.23) and CA had the highest polymorphic loci (76.1%). The RAMs technique allowed to discriminate Anas and Cairina genus with an index of similarity of 0.83. At a 0.894 of similarity index, the Muscovy ducks formed 5 groups. The best primer to discriminate species was CCA (Fst= 0.274). The genetic differentiation was moderate (Fst= 0.2045).]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p><b>    <center><font face="" size="4">Caracterizaci&oacute;n molecular del pato criollo colombiano en cuatro departamentos</font></center></b></p>     <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">Molecular characterization of the Colombian creole duck in four departments</font></center></b></p>     <p><b>    <center>Darwin Hern&aacute;ndez, Diana Muñoz, N&eacute;stor Valencia, Andr&eacute;s Posso, Jaime E. Muñoz</center></b></p>     <p>    <center>Facultad de Ciencias Agropecuarias, Universidad Nacional de Colombia, AA 237. Palmira, Valle del Cauca, Colombia. (Autor para correspondencia: <a href="mailto:nfvalencial@palmira.unal.edu.co">nfvalencial@palmira.unal.edu.co</a>;<a href="mailto:jemunozf@palmira.unal.edu.co">jemunozf@palmira.unal.edu.co</a>)</center></p>     <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center>REC.: MARZO 08/07. ACEPT.: JULIO 25/07</center></p> <hr size="1">     <p><b>RESUMEN</b></p>     <p><b>Se evaluaron 53 individuos de patos Muscovy de los departamentos de Caldas, Risaralda, Antioquia y Valle del Cauca con tres cebadores RAMs. Se generaron 71 loci polim&oacute;rficos (61.2%) con 0.19 de heterocigosidad. El cebador con mayor heterocigosidad fue CGA (0.23) y CA el de mayor loci polim&oacute;rfico (76.1%). La t&eacute;cnica RAMs permiti&oacute; diferenciar los g&eacute;neros <i>Anas</i> y <i>Cairina</i> a un &iacute;ndice de similitud de 0.83. Con un &iacute;ndice de similitud del 0.894, los patos Muscovy formaron cinco grupos. El mejor cebador para diferenciar especies fue CCA (Fst= 0.274). La diferenciaci&oacute;n gen&eacute;tica en la muestra poblacional fue moderada (Fst= 0.2045).</b></p>     <p><b>Palabras clave:</b> <i>Cairina moschata</i>; Pato Muscovy; RAMs.</p> <hr size="1">     <p><b>ABSTRACT</b></p>     <p><b>53 individuals of Muscovy ducks from Caldas, Risaralda, Antioquia and Valle del Cauca departments with three primers RAMs were evaluated. 71 polymorphic loci (61,2%) were generated with 0.19 of heterocigozity. The primer with the highest heterocigozity was CGA (0.23) and CA had the highest polymorphic loci (76.1%). The RAMs technique allowed to discriminate <i>Anas</i> and <i>Cairina</i> genus with an index of similarity of 0.83. At a 0.894 of similarity index, the Muscovy ducks formed 5 groups. The best primer to discriminate species was CCA (Fst= 0.274). The genetic differentiation was moderate (Fst= 0.2045).</b></p>     <p><b>Key-word:</b> <i>Cairina moschata</i>, Muscovy ducks, RAMs</p> <hr size="1">     <p>&nbsp;</p>     <p><b>    <center><font face="Verdana" size="3">INTRODUCCI&Oacute;N</font></center></b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El pato Muscovy (<i>Cairina moschata</i>) es una an&aacute;tida nativa del neotr&oacute;pico que vive en estado silvestre en Am&eacute;rica Central y Suram&eacute;rica; aproximadamente el 90% de la poblaci&oacute;n de patos se localiza en Asia y el Pac&iacute;fico; en China se encuentra el 60% (Johnsgard, 1980).</p>     <p>El pato Pek&iacute;n (<i>Anas platylirrhynchos</i>) es el utilizado para producci&oacute;n de carne pero en Francia entre 80- 90% es reemplazado por pato Muscovy y Mula (macho Muscovy por hembra Pek&iacute;n) por mayor productividad y exigencias del mercado (L&oacute;pez y Ospina, 2000).</p>     <p>La mayor&iacute;a de las investigaciones en el pa&iacute;s sobre patos se han realizado en linajes modernos, seleccionados comercialmente e importados, que han perdido habilidades naturales como la capacidad de reproducirse en condiciones naturales (cloquera) (Segura y Montes, 2001). Los n&uacute;cleos de patos comunes se encuentran dispersos en todo el pa&iacute;s, no se han caracterizado gen&eacute;ticamente y es posible que en alto porcentaje se encuentren cruzados o absorbidos por los linajes comerciales.</p>     <p>Los marcadores moleculares se han utilizado para la identificaci&oacute;n geneal&oacute;gica, para la caracterizaci&oacute;n de distancias gen&eacute;ticas entre razas y para ayudar a comprender caracter&iacute;sticas de producci&oacute;n como de adaptaci&oacute;n (Delgado <i>et al.</i>, 2001). En el Laboratorio de Biolog&iacute;a Molecular de la Universidad Nacional de Colombia sede Palmira se han desarrollado investigaciones utilizando la t&eacute;cnica RAMs con diversas especies animales, entre ellas bovinos criollos, como ganado Hart&oacute;n del Valle (Piedrah&iacute;ta, 2003), cerdos criollos (Oslinger <i>et al.</i>, 2006) y otras especies animales (&aacute;lvarez <i>et al.</i>, 2005).</p>     <p>El objetivo principal del presente trabajo fue evaluar la diversidad gen&eacute;tica utilizando marcadores moleculares RAMs y con t&eacute;cnicas multivariadas establecer la relaci&oacute;n entre grupo gen&eacute;tico y origen geogr&aacute;fico del pato criollo <i>Cairina moschata</i> L.</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><b>    <center><font face="Verdana" size="3">MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</font></center></b></p>     <p>Los patos obtenidos para el estudio provinieron de granjas de cuatro departamentos: Antioquia (4 individuos), Caldas (10 individuos), Risaralda (9 individuos) y Valle (30 individuos), los cuales se encuentran en la Granja Mario Gonz&aacute;lez Aranda de la Universidad Nacional de Colombia Sede Palmira (1.001 msnm, 23&#176C).</p>     <p>Las muestras de ADN se extrajeron de 0.2 ml de sangre mediante punci&oacute;n en la vena humeral, utilizando el protocolo de extracci&oacute;n de “Salting Out” (Oslinger <i>et al.</i>, 2006). La concentraci&oacute;n de ADN se determin&oacute; por comparaci&oacute;n con ADN del bacteri&oacute;fago lambda, a concentraciones conocidas y visualiz&aacute;ndose a trav&eacute;s de un gel de agarosa al 0.8% teñido con bromuro de etidio en una c&aacute;mara Maxicell Primo EC-340 Electroforesis Gel System. Las muestras de ADN se diluyeron a un volumen total de 100 &#181l a 10 ng.ul<sup>-1</sup>. Las muestras de ADN se evaluaron con tres cebadores RAMs (<a href="#3a06t01">Tabla 1</a>).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>    <center><a name="3a06t01"></a><img src="/img/revistas/acag/v56n3/3a06t01.gif"></center></p>     <p>Para estandarizar las condiciones de PCR se evaluaron 10 individuos y se realizaron en un volumen total de 25 &#181l que conten&iacute;an tamp&oacute;n de PCR 1X, 0.2mM de cada DNTP, 4&#181M de cebador, una unidad de Taq polimerasa, 20 ng de ADN y 2,5&#181M de MgCl<sub>2</sub>. La amplificaci&oacute;n se llev&oacute; a cabo en un termociclador PTC 100 Programmable Termal Controller (MJ. Research, Inc). El perfil comprendi&oacute; la desnaturalizaci&oacute;n inicial por 5 minutos a 95&#176C, seguido de 37 ciclos de 95&#176C por 30 segundos, 55-58&#176C por 30 segundos, 72&#176C por 2 minutos. Se realiz&oacute; una extensi&oacute;n final a 72&#176C por 7 minutos. La temperatura de hibridaci&oacute;n para los cebadores CT y CGA fue 58&#176C y para el cebador CCA fue 55&#176C.</p>     <p>Los productos amplificados por PCR se separaron mediante electroforesis utilizando una c&aacute;mara de secuenciaci&oacute;n (BIORAD Sequi-Gen Sequencing Cell) y geles de poliacrilamida al 4% (29:1 acrilamida – bisacrilamida), en condiciones desnaturantes (urea 5M). Cada muestra (25 &#181l) se mezcl&oacute; con 8 &#181l de buffer desnaturante (95% Formamida, 0.025% Azul de Bromofenol, 0.025% Xylene cyanol), se sometieron a 95&#176C durante 5 minutos y puestas en hielo inmediatamente. Se cargaron 5 &#181l de la mezcla y se corri&oacute; el gel a 120 Watts durante una hora. La tinci&oacute;n se realiz&oacute; usando sales de plata.</p>     <p>La lectura de los geles se realiz&oacute; con base en el criterio de Berg y Hamrick (1997), quienes consideran como locus polim&oacute;rfico aquel en el cual el alelo m&aacute;s com&uacute;n tiene una frecuencia menor del 95%. Se cre&oacute; una matriz de variables binarias de ceros y unos (ausencia o presencia). La similitud gen&eacute;tica entre los individuos se calcul&oacute; utilizando el coeficiente de similitud de Nei – Li (Leung Nelson y Leach, 1993), tambi&eacute;n conocido como DICE (1945) (Sneath y Sokal, 1973). Se realiz&oacute; un an&aacute;lisis de correspondencia m&uacute;ltiple y un dendrograma de haplotipos empleando el programa NTSYS (Numerical Taxonomy System for personal Computer, versi&oacute;n 2.02 PC). Para evaluar la diversidad gen&eacute;tica se estim&oacute; el n&uacute;mero de alelos polim&oacute;rficos por locus, heterocigosidad y diferenciaci&oacute;n poblacional (estad&iacute;stico Fst) utilizando el programa TFPGA<sup>&#174</sup> (Tools for population genetic analysis versi&oacute;n 1.3, 1997).</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><b>    <center><font face="Verdana" size="3">RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</font></center></b></p>     <p>Se hizo necesario realizar una diluci&oacute;n inicial de 1:20 ADN - agua (V/V) antes de cuantificar el ADN. Este se encuentra en el Laboratorio de Biolog&iacute;a Molecular de la Universidad Nacional de Colombia sede Palmira y hace parte del primer banco de ADN de patos criollos colombianos. Entre seis cebadores RAMs (CA, CCA, CGA, GT, TG y CT) se eligieron los que presentaron mayor n&uacute;mero de bandas polim&oacute;rficas (CA, CCA, CGA). En conjunto generaron 116 patrones de bandas, distinguibles en un rango entre 80 y 1.200 pares de bases. El cebador con mayor n&uacute;mero de bandas polim&oacute;rficas fue CCA (<a href="#3a06f01">Figura 1</a>) y el menor CA (<a href="#3a06t02">Tabla 2</a>).</p>     <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center><a name="3a06f01"></a><img src="/img/revistas/acag/v56n3/3a06f01.jpg"></center></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>    <center><a name="3a06t02"></a><img src="/img/revistas/acag/v56n3/3a06t02.gif"></center></p>     <p>Se obtuvieron 5 loci con alelos raros (IPGRI – Cornell University, 2004) con los cebadores CCA y CGA. La cantidad de bandas obtenidas utilizando tres cebadores RAMs visualizadas en geles de secuenciaci&oacute;n pueden ser equivalentes a utilizar la t&eacute;cnica AFLP, que es costosa y requiere m&aacute;s tiempo para la implementaci&oacute;n.</p>     <p>Las bandas presentes en el pato Muscovy y ausentes en Pek&iacute;n y Chileno hicieron posible diferenciar especies. La t&eacute;cnica RAMS permiti&oacute; identificar individuos con alelos poco frecuentes (alelos raros) que se sugiere conservar para mantener la diversidad en la poblaci&oacute;n.</p>     <p>Se obtuvo una heterocigosidad de 0.19 para todos los cebadores y valores que oscilaron entre 0.16 y 0.23. La mayor heterocigosidad (He) fue para el cebador CGA (0.23), seguido por CA (0.18) y por &uacute;ltimo CCA (0.16). El porcentaje de loci polim&oacute;rfico es uno de los indicadores del potencial de un marcador para evaluar diversidad. Al igual que para los valores de He, el cebador que obtuvo el mayor valor de loci polim&oacute;rfico fue el CA (<a href="#3a06t03">Tabla 3</a>).</p>     <p>    <center><a name="3a06t03"></a><img src="/img/revistas/acag/v56n3/3a06t03.gif"></center></p>     <p>Aunque el cebador CA present&oacute; el menor n&uacute;mero de bandas fue el m&aacute;s polim&oacute;rfico. El cebador de menor polimorfismo (CCA) present&oacute; el mayor n&uacute;mero de bandas. En animales gen&eacute;ticamente muy alejados se obtuvieron, con estos cebadores, valores de heterocigosidad diferentes; en bovinos criollos (Piedrah&iacute;ta, 2003) y en cerdos criollos (Oslinger <i>et al.</i>, 2003) encontraron valores de heterocigosidad m&aacute;s altos para el cebador CCA (0.30 y 0.22 respectivamente), mientras que para el cebador CGA el valor de heterocigosidad fue menor (0.22 y 0.19 respectivamente).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En trabajos anteriores (Stai y Hughes, 2003) hallaron valores de He de 0.884 para individuos provenientes de Paraguay, Brasil y Estados Unidos. La He encontrada en este estudio (0.19) se puede explicar por el bajo n&uacute;mero de individuos muestreados procedentes de zonas geogr&aacute;ficas no muy alejadas.</p>     <p>El dendrograma (<a href="#3a06g01">Figura 2</a>) permiti&oacute; diferenciar entre g&eacute;neros. A 83% de similitud se diferenciaron dos grupos; el primero, formado por los patos Pek&iacute;n y Chilenos (utilizados para el an&aacute;lisis como punto de referencia), especies del g&eacute;nero <i>Anas</i>, y el segundo grupo conformado por los patos Muscovy del g&eacute;nero <i>Cairina</i>. Los patos Muscovy formaron cinco grupos a un &iacute;ndice de similitud de 0.894. Un grupo formado por individuos de todas las procedencias (Antioquia, Caldas, Risaralda y Valle) y los otros conformados por individuos del Valle del Cauca. Lo anterior indica posible flujo de genes, posibilitado por el transporte de individuos de un departamento a otro.</p>     <p>    <center><a name="3a06g01"></a><img src="/img/revistas/acag/v56n3/3a06g01.gif"></center></p>     <p>El mayor valor de Fst se consigui&oacute; con el cebador CCA (0.274) (<a href="#3a06t04">Tabla 4</a>), lo cual indica que este fue el mejor cebador para diferenciar entre especies. Para los tres cebadores el Fst fue de 0.2045, con una desviaci&oacute;n est&aacute;ndar de 0.0249, que indica una moderada diferenciaci&oacute;n gen&eacute;tica (Wright, 1978). Stai y Hughes (2003) hallaron un valor de Fst = 0.24.</p>     <p>    <center><a name="3a06t04"></a><img src="/img/revistas/acag/v56n3/3a06t04.gif"></center></p>     <p>El an&aacute;lisis de correspondencia m&uacute;ltiple (<a href="#3a06g02">Figura 3</a>) separ&oacute; la poblaci&oacute;n en tres grupos correspondientes a patos Pek&iacute;n, Chileno y Muscovy y confirm&oacute; la nula relaci&oacute;n entre grupo gen&eacute;tico y origen geogr&aacute;fico en el pato Muscovy.</p>     <p>    <center><a name="3a06g02"></a><img src="/img/revistas/acag/v56n3/3a06g02.gif"></center></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p><b>    <center><font face="Verdana" size="3">AGRADECIMIENTOS</font></center></b></p>     <p>A la Direcci&oacute;n de Investigaci&oacute;n de la Universidad Nacional de Colombia sede Palmira (DIPAL) por la financiaci&oacute;n del trabajo de grado de los zootecnistas D. Hern&aacute;ndez y D. Muñoz a partir del cual se gener&oacute; la informaci&oacute;n presentada en el art&iacute;culo.</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><b>    <center><font face="Verdana" size="3">BIBLIOGRAF&Iacute;A</font></center></b></p>     <!-- ref --><p>1. &Aacute;lvarez, L. A.; Muñoz, J. E.; Posso A. M. 2005. Programa de investigaci&oacute;n en utilizaci&oacute;n y conservaci&oacute;n de recursos zoogen&eacute;ticos. Universidad Nacional de Colombia, Palmira. 82 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0120-2812200700030000600001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2. Berg, E.; Hamrick, J. 1997. Quantification of genetic diversity at allozyme loci. <i>Canad. J. Forest Res.</i> 27:415-424.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0120-2812200700030000600002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3. Delgado J. V.; Barba. C.; Camacho, M. E.; Sereno. F. T. P. S.; Mart&iacute;nez. A.; Vega- Pla. J. L. 2001. Caracterizaci&oacute;n de los animales dom&eacute;sticos en España. Bolet&iacute;n de Informaci&oacute;n sobre Recursos Gen&eacute;ticos Animales. FAO. (Disponible en <a href="http://www.fao.org/dad-is/">http://www.fao.org/dad-is/</a>) 11-18-2006&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0120-2812200700030000600003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4. Ipgri – Cornell University. 2004. M&oacute;dulo de Aprendizaje sobre Marcadores Moleculares Cd-rom interactivo Vol. 1 y 2.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0120-2812200700030000600004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5. Johnsgard, A. P. 1980. Hybridazation in the Anatidas an its taxonomic implications. <i>Condor.</i> 62. 152.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0120-2812200700030000600005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6. Leung, H.; Nelson, R.; H.; Leach, J. E. 1993. Population structure of plant pathogenic fungi and bacteria. <i>Adv. Plant Pathol.</i> 10: 157-205.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0120-2812200700030000600006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7. L&oacute;pez, A. M. Ospina, R. 2000. Caracterizaci&oacute;n biol&oacute;gica del eyaculado del pato Muscovy <i>Cairina moschata</i> L. Trabajo de Grado (Zootec). Universidad Nacional de Colombia. Palmira. 84 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0120-2812200700030000600007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8. Oslinger, A.; Muñoz J. E.; &Aacute;lvarez L. A.; Moreno, F.; Posso A. 2006. Caracterizaci&oacute;n de cerdos criollos colombianos mediante la t&eacute;cnica molecular RAMs. <i>Acta Agron.</i> 55 (4) 45-50.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0120-2812200700030000600008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9. Piedrah&iacute;ta, A. M. 2003. Caracterizaci&oacute;n molecular de ganado criollo Hart&oacute;n del Valle mediante marcadores moleculares tipo RAM´s. Trabajo de Grado (Zootec). Universidad Nacional de Colombia. Palmira. 103 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0120-2812200700030000600009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10. Segura-Correa, J. C.; Montes-P&eacute;rez, R. C. 2001. Razones y estrategias para la conservaci&oacute;n de los recursos gen&eacute;ticos animales (RGA). Rev. Biomed (U. Aut&oacute;noma de Yucat&aacute;n). Disponible en: <a href="http//www.uady.mx/~biomedic/rb011237.pdf">http//www.uady.mx/~biomedic/rb011237.pdf</a>. 11-18-2006&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0120-2812200700030000600010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11. Sneath, P. H.; Sokal, R. 1973. Numerical taxonomy: the principles and practice of numerical classification. San Francisco: W. H. Freeman; 573p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0120-2812200700030000600011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12. Stai, S. M.; Hughes, C. R. 2003. Characterization of microsatellite loci in wild and domestic Muscovy ducks <i>(Cairina moschata). Anim Genet.</i> 34: 387.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0120-2812200700030000600012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13. Wright, S. 1978. Evolution and the genetics of populations, variability within and among natural populations. Vol 4. University of Chicago Press. 335 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0120-2812200700030000600013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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