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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Evidencia molecular de diferenciación genética e introgresión entre razas de fríjol común del acervo andino]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[We used the information generated by 29 microsatellite markers in the analysis of 63 common bean (Phaseolus vulgaris) accessions to evaluate clustering and prevalence indices and to determine the similarity and differentiation or introgression among races of the Andean gene pool. We identified three clusters of genotypes which corresponded to the races of the Andean gene pool, i.e. Nueva Granada, Chile and Peru and the existence of introgression between accessions of these three races. Introgression was more common for genotypes in races Chile and Peru , then for the race Nueva Granada.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p><b>    <center><font face="Verdana" size="4">Evidencia molecular de diferenciaci&oacute;n gen&eacute;tica e introgresi&oacute;n entre razas de fr&iacute;jol com&uacute;n del acervo andino</font></center></b></p>     <p><b>    <center><font face="Verdana" size="3">Molecular evidence for race structure and introgression among Andean races of common bean</font></center></b></p>      <p>    <center>Matthew W. Blair,<sup>1</sup> Juan M. D&iacute;az S.,<sup>2</sup> Myriam C. Duque,<sup>3</sup> Rigoberto Hidalgo<sup>4</sup></center></p>     <p>    <center><sup>1,3</sup>Centro Internacional de Agricultura Tropical (CIAT).<a href="mailto:m.blair@cgiar.org">m.blair@cgiar.org</a> <sup>2</sup>Universidad de Sucre, Sincelejo, Colombia. <sup>4</sup>Facultad de Ciencias Agropecuarias, Universidad Nacional de Colombia. AA 237, Palmira, Valle del Cauca, Colombia. <a href="mailto:rhidalgoh@palmira.unal.edu.co">rhidalgoh@palmira.unal.edu.co</a> </center></p>     <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center>REC.: 26-07-07 ACEPT.: 13-11-07</center></p> <hr size="1">     <p><b>RESUMEN</b></p>     <p><b>Se utiliz&oacute; la informaci&oacute;n generada por 29 microsat&eacute;lites en 63 accesiones del acervo andino de <i>P. vulgaris</i> para elaborar agrupamientos y calcular &iacute;ndices de prevalencia. Las accesiones formaron grupos que correspondieron a las razas Nueva Granada, Chile y Per&uacute;. Se determin&oacute; la existencia de notoria introgresi&oacute;n en genotipos de las razas Chile y Per&uacute;</b></p>     <p><b>Palabras clave:</b> <i>Phaseolus vulgaris</i> L.; acervo gen&eacute;tico; introgresi&oacute;n; &iacute;ndice prevalenc&iacute;a; diferenciaci&oacute;n gen&eacute;tica; microsat&eacute;lites.</p> <hr size="1">     <p><b>ABSTRACT</b></p>     <p><b>We used the information generated by 29 microsatellite markers in the analysis of 63 common bean (<i>Phaseolus vulgaris</i>) accessions to evaluate clustering and prevalence indices and to determine the similarity and differentiation or introgression among races of the Andean gene pool. We identified three clusters of genotypes which corresponded to the races of the Andean gene pool, i.e. Nueva Granada, Chile and Peru and the existence of introgression between accessions of these three races. Introgression was more common for genotypes in races Chile and Peru, then for the race Nueva Granada.</b></p>      <p><b>Key words:</b> <i>Phaseolus vulgaris</i>; genepool; introgression; marker prevalence index; genetic differentiation; microsatellites.</p> <hr size="1">     <p><b>    <center><font face="Verdana"  size="3">INTRODUCCI&Oacute;N</font></center></b></p>     <p>La detecci&oacute;n de la variabilidad gen&eacute;tica del ADN es m&aacute;s eficaz que la realizada mediante marcadores morfoagron&oacute;micos (Singh <i>et al.</i>, 1991). El an&aacute;lisis de la relaci&oacute;n entre accesiones se realiza mediante dendrogramas y agrupa las de parecido gen&eacute;tico (Karp <i>et al.</i>, 1997). Los marcadores microsat&eacute;lite SSR se utilizaron por primera vez en fr&iacute;jol por Yu <i>et al.</i> (1999), y el n&uacute;mero se increment&oacute; posteriormente por Gait&aacute;n <i>et al.</i> (2002) y Blair <i>et al.</i> (2003).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Los patrones de faseolina y del tamaño de la semilla de las accesiones de fr&iacute;jol com&uacute;n proveen evidencias sobre el intercambio de germoplasma entre Mesoam&eacute;rica y los Andes. En muestras de cultivares Mesoamericanos los &uacute;nicos que ten&iacute;an faseolina T (Tendergreen) eran de semilla grande y colores t&iacute;picos del acervo Andino, las faseolinas B y S, t&iacute;picas de los granos Mesoamericanos, se encuentran en algunos genotipos Andinos (Gepts, 1988).</p>     <p>Con el fin de establecer niveles de similitud y procesos de introgresi&oacute;n gen&eacute;tica entre accesiones del acervo Andino de fr&iacute;jol com&uacute;n, se analiz&oacute; con marcadores SSR, una muestra de accesiones conservadas en la Colecci&oacute;n N&uacute;cleo y en la Unidad de Recursos Gen&eacute;ticos del CIAT e identificadas como representativas de razas Andinas. Tambi&eacute;n se compar&oacute; la distribuci&oacute;n de patrones de faseolina con la agrupaci&oacute;n dada por el an&aacute;lisis con los microsat&eacute;lites.</p>     <p><b>    <center><font face="Verdana" size="3">MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</font></center></b></p>     <p><b>Caracterizaci&oacute;n molecular y genotipos utilizados</b></p>     <p>El estudio se adelant&oacute; en el Centro Internacional de Agricultura Tropical (CIAT) con 63 accesiones seleccionadas dentro del grupo no caracterizado previamente por microsat&eacute;lites y pertenecientes a razas del acervo Andino (Becerra and Gepts, 1994; Beebe <i>et al.</i>, 2001; Singh <i>et al.</i>, 1991; a, b y c); 25 de las cuales eran de la raza Nueva Granada, seis de la raza Chile y 28 de la raza Per&uacute;. Tambi&eacute;n se incluyeron dos controles tipo Andino (Diacol Calima y Chaucha Chuga) y dos tipo Mesoamericano (DOR 364 e ICA Pijao). Dentro del total de accesiones, 44 variedades eran nativas, ocho Ñuñas, cuatro variedades comerciales y tres l&iacute;neas mejoradas. Los controles se escogieron con base en el estudio previo de Blair <i>et al.</i> (2006).</p>     <p>En trifolios etiolados de cuatro plantas de ocho d&iacute;as de crecimiento en la oscuridad se extrajo el DNA (Afanador <i>et al.</i> 1993). Se almacen&oacute; a -20&#176;C y se cuantific&oacute; en fluor&oacute;metro DyNA Quant (Hoefer Pharmacia Biotech Inc., 1995), con base en una soluci&oacute;n de colorante Hoescht H 33258. La soluci&oacute;n de trabajo de ADN se utiliz&oacute; a 10ng/<i>&#181;</i>l en buffer TE. Posteriormente se realiz&oacute; el PCR para amplificar 29 marcadores SSR (18 gen&oacute;micos y 11 g&eacute;nicos), escogidos a partir del nivel de polimorfismo encontrado en estudios anteriores (Blair <i>et al.</i>, 2003; Gait&aacute;n <i>et al.</i>, 2002; Yu <i>et al.</i>, 1999; Yu <i>et al.</i>, 2000).</p>     <p>La determinaci&oacute;n de alelos se realiz&oacute; a partir de la lectura de los geles de electroforesis y luego se gener&oacute; una matriz de datos binaria que conten&iacute;a la informaci&oacute;n de las accesiones y el genotipo observado a trav&eacute;s de los loc&iacute; examinados. Se consideraron como nulos los que no amplificaron despu&eacute;s de repetir el procedimiento dos veces. Para determinar la diferenciaci&oacute;n entre las accesiones se construyeron dendrogramas y se utiliz&oacute; el &iacute;ndice de similaridad de huellas de ADN (Lynch, 1990), el cual se define como una fracci&oacute;n de bandas compartidas para los individuos X e Y, el n&uacute;mero de bandas comunes (Nxy) se divide por el n&uacute;mero de bandas promedio presentes en cada individuo. Se utilizaron los m&oacute;dulos Similarity/Genetic Distance y Clustering/SAHN del programa NTSYS V 2.11v (Rohlf, 2002). Con el &iacute;ndice de prevalenc&iacute;a (Beer <i>et al.</i>, 1997) se cuantific&oacute; la relaci&oacute;n entre la rareza de los marcadores utilizados y los genotipos en los cuales estaban presentes. Los genotipos con bajos valores indican composici&oacute;n al&eacute;lica rara y posible producto de introgresi&oacute;n (Islam <i>et al.</i>, 2004).</p>     <p><b>    <center><font face="Verdana" size="3">RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</font></center></b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>&Iacute;ndice de similaridad</b></p>     <p>El an&aacute;lisis a trav&eacute;s de dendrograma diferenci&oacute; dos grupos (<a href="#4a02f01">Figura 1</a>). El primero estuvo compuesto por genotipos de las razas Nueva Granada (75.9%), Per&uacute; (20.7%) y Chile (6.9%). El segundo por genotipos &quot;Jalo&quot; (G5024 y G2195) y los Mesoamericanos utilizados como controles. Los genotipos tipo &quot;Jalo&quot; indican procesos de introgresi&oacute;n entre el acervo Andino y el Mesoamericano, pues proceden de la zona suroriental de Brasil donde es frecuente encontrar cultivares tipo Andino y Mesoamericano (Maciel <i>et al.</i>, 2003). Tambi&eacute;n se pudieron delimitar 13 subgrupos (Figura 1) con una similitud de 0.58. Algunos de los grupos estaban compuestos por uno o dos genotipos. Sobresalieron dos grupos adyacentes, formados por genotipos de la raza Chile y otros grupos correspondientes a las razas Nueva Granada y Per&uacute;. La composici&oacute;n al&eacute;lica de los genotipos que no formaron agrupaciones consistentes con la clasificaci&oacute;n previa de razas andinas (Singh <i>et al.</i>, 1991) pudo haber sido diferente por la introgresi&oacute;n con razas del acervo Andino o con materiales silvestres. La posici&oacute;n en el dendrograma del genotipo G2544 de raza Chile confirm&oacute; los resultados de Paredes y Gepts (1995), quienes reportaron por medio de isoenzimas la presencia de alelos de la raza Per&uacute; en la raza Chile.</p>     <p>    <center><a name="4a02f01"></a><img src="img/revistas/acag/v56n4/4a02f01.jpg"></center></p>     <p>Los genotipos G12407 (Bol&oacute;n Bayo), G12709 (Mortiño), G11819 (Liborino) del norte de Per&uacute;, Colombia y Ecuador, pertenecientes a la raza Per&uacute;, que presentaron caracter&iacute;sticas morfoagron&oacute;micas Mesoamericanas, pero faseolina, aloenzimas y caracter&iacute;sticas de semillas andinas (Singh <i>et al.</i>, 1991) se localizaron dentro del grupo denominado raza Per&uacute;. El genotipo G5708 (Sangretoro), clasificado como t&iacute;pico de la raza Per&uacute;, se agrup&oacute; con genotipos representativos de la raza Nueva Granada. Por medio de isoenzimas y marcadores moleculares tipo RFLP, Becerra y Gepts (1994), reclasificaron los genotipos G12587 (Ñuña Callashina) y G5702 (Cargamanto), de presunto origen en la raza Per&uacute;, en un grupo con caracter&iacute;sticas Mesoamericanas. Sin embargo, en el estudio G12587 se situ&oacute; dentro del grupo raza Per&uacute;, mientras que los Cargamantos G5702 y G7231, considerados representativos de la raza Per&uacute;, se localizaron dentro del grupo raza Nueva Granada. Los genotipos G7930 (Alubia), G23604 (Ñuña) y G12644 (Morado), identificados mediante marcadores RAPD como introgresados (Islam <i>et al.</i> 2004), presentaron el mismo comportamiento mediante los marcadores SSR.</p>     <p>El an&aacute;lisis de la composici&oacute;n de las faseolinas evidencia que entre razas o acervos ha ocurrido introgresi&oacute;n gen&eacute;tica. El proceso de flujo de genes fue m&aacute;s evidente para las razas Nueva Granada y Chile, pues la primera present&oacute; genotipos con faseolinas (C, Ca, T/H1, H) no asignadas inicialmente a esta raza mientras que la raza Chile no present&oacute; las faseolinas C y H, tambi&eacute;n asignadas inicialmente como propias de esta raza (Singh <i>et al.</i>, 1991). Los tipos de faseolinas encontrados en la raza Per&uacute; se ajustaron a las formas ya reportadas para esa regi&oacute;n. En breve, los resultados indicaron que la faseolina no fue un car&aacute;cter determinante para la asignaci&oacute;n de genotipos de <i>P. vulgaris</i> L.</p>     <p><b>&Iacute;NDICE DE PREVALENCIA</b></p>     <p>La pendiente suave de la gr&aacute;fica para los &iacute;ndices de prevalencia (<a href="#4a02f02">Figura 2</a>) mostr&oacute; los conjuntos de alelos comunes que se distribuyeron de manera continua; en el extremo de la curva se encontraron los genotipos que presentaron alelos raros o alto nivel de introgresiones (IP=0.51), lo que concuerda con datos de Islam <i>et al.</i>, (2004). Los genotipos Mesoamericanos no formaron parte del grupo mayor Andino, presentaron bajos valores del &iacute;ndice de prevalenc&iacute;a y se situaron en el extremo de la curva. Los genotipos representantes de la raza Chile mostraron caracter&iacute;sticas que sugieren introgresi&oacute;n gen&eacute;tica. Esto indica que el patr&oacute;n de variabilidad de la raza Chile y los par&aacute;metros que la definen son diferentes del acervo Andino (Johns <i>et al.</i>, 1997).</p>     <p>    <center><a name="4a02f02"></a><img src="img/revistas/acag/v56n4/4a02f02.jpg"></center></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>    <center><font face="Verdana" size="3">CONCLUSIONES</font></center></b></p>     <p>Los marcadores SSR determinaron con mayor nivel de detalle la estructura y procesos de flujo gen&eacute;tico de las razas andinas superando los marcadores RAPD, RFLP y AFLP.</p>     <p>El &iacute;ndice de similaridad de huellas gen&eacute;ticas result&oacute; &uacute;til en la individualizaci&oacute;n de conjuntos de genotipos; sin embargo, es recomendable la aplicaci&oacute;n de procedimientos tipo multivariados que permitan obtener mayor resoluci&oacute;n de la informaci&oacute;n obtenida por medio de marcadores SSR.</p>     <p>El concepto de razas andinas de fr&iacute;jol es susceptible de revisi&oacute;n pues los rasgos originalmente establecidos no concuerdan en algunas de las accesiones estudiadas.</p>     <p>Fue evidente la existencia de flujo de genes entre los genotipos que representan razas andinas de <i>P. vulgaris</i> y entre los acervos</p>     <p><b>    <center><font face="Verdana" size="3">AGRADECIMIENTOS</font></center></b></p>     <p>Los autores desean agradecer a Lucy Milena D&iacute;az por la revisi&oacute;n del manuscrito, al personal del Laboratorio de Caracterizaci&oacute;n de Germoplasma de Fr&iacute;jol y a la Unidad de Recursos Gen&eacute;ticos del CIAT, as&iacute; como tambi&eacute;n a la Universidad Nacional de Colombia sede Palmira por ayudar a la realizaci&oacute;n de la tesis de Maestr&iacute;a de Juan Manuel D&iacute;az y a &quot;Generation Challenge Program&quot; por la financiaci&oacute;n del proyecto.</p>     <p><b>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center><font face="Verdana" size="3">BIBLIOGRAF&Iacute;A</font></center></b></p>     <!-- ref --><p>1. Afanador, L.; Hadley, S.; Kelly, J.D. 1993. Adoption of a mini-prep DNA extraction method for RAPD marker analysis in common bean (<i>Phaseolus vulgaris </i> L). <i>Bean Improv. Coop</i> 36:10–11.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000054&pid=S0120-2812200700040000200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2. Becerra, V.; Gepts, P. 1994. RFLP Diversity of Common Bean (<i>Phaseolus vulgaris</i>) in its centres of origin. <i>Genome</i> 37:256- 263.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000055&pid=S0120-2812200700040000200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3. Beebe, S.; Renjifo, J.; Gait&aacute;n-Sol&iacute;s, E.; Duque, M.C.; Tohme, J. 2001. Diversity and origin of Andean landraces of common bean. <i>Crop Sci</i>. 41:854-862.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000056&pid=S0120-2812200700040000200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4. Beer, S.; Siripoonwiwat W.; O´Donoughue L.; Souza E.; Matthews D.; Sorrells M. 1997. Associations between molecular markers and quantitative traits in an oat germplasm pool: Can we infer linkages? <i>J. Agric. Genomics</i> 3:1–16 <a href="http://www.probenalusdagov:8000/other.docs/jag" target="_blank">www.probenalusdagov:8000/other.docs/jag</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000057&pid=S0120-2812200700040000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5. Blair, M.W.; Giraldo M.C.; Buend&iacute;a H.F.; Tovar, E.; Duque M.C.; Beebe S. 2006. Microsatellite marker diversity in common bean (<i>Phaseolus vulgaris</i> L.). <i>Theor. Appl. Genet.</i> 113:100–109&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000058&pid=S0120-2812200700040000200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6. Blair, M.; Pedraza, F.; Buend&iacute;a, H.; Gait&aacute;n, E.; Beebe, S.; Gepts, P.; Tohme, J. 2003. Development of a genome-wide anchored microsatellite for common bean (<i>Phaseolus vulgaris</i> L). <i>Theor. Appl. Genet.</i> 107:1362-1374.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000059&pid=S0120-2812200700040000200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7. Gait&aacute;n, E.; Duque, M.C.; Edwards, K.; Tohme, J. 2002. Microsatellite repeats in common bean (<i>Phaseolus vulgaris L.</i>): isolation, characterization, and cross-species amplification in <i>Phaseolus</i> spp. <i>Crop. Sci.</i> 42:2128-2136.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000060&pid=S0120-2812200700040000200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8. Gepts, P. 1988. Phaseolin as an evolutionary marker, p. 215-141, <i>In:</i> Gepts, P. (ed.) Genetic resources of <i>Phaseolus</i> beans. Kluwer Academic.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000061&pid=S0120-2812200700040000200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9. Islam, A.; Beebe, S.; Muñoz, M.; Tohme, J.; Redden, R.; Basford, K. 2004. Using molecular markers to assess the effect of introgression on quantitative attributes of common bean in the Andean gene pool. <i>Theor. Appl. Genet.</i> 108:243-252.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000062&pid=S0120-2812200700040000200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10. Johns, M.; Skroch, P.; Nienhuis, J.; Hinrichsen, P.; Bascur, G.; Muñoz-Schick, C. 1997. Gene pool classification of common bean landraces from Chile based on RAPD and Morphological data. <i>Crop. 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